Abstract
Выделение гигантских вирусов представляет большой интерес в этой новой эры вирусологии, тем более, что эти гигантские вирусы связаны с простейшими. Гигантские вирусы могут быть потенциально патогенными для многих видов протистов. Они принадлежат к недавно описанному порядку Megavirales. Новая линия Faustovirus, который был выделен из проб сточных вод является отдаленное отношение к возбудителю млекопитающих африканской чумы свиней вирусом. Этот вирус также специфическими для его amoebal хозяина, Vermamoeba vermiformis, в протисты распространены в системах здравоохранения воды. Крайне важно, чтобы продолжить выделения новых генотипов Faustovirus для того, чтобы расширить свою коллекцию генотип и изучения ее пан-геном. Мы разработали новые стратегии для выделения дополнительных штаммов путем улучшения использования антибиотиков и противогрибковых комбинаций, чтобы избежать бактериальных и грибковых загрязнений амебы сокультивирования и пользу размножение вируса. Мы также реализовали новую starvatioп среда для поддержания V. vermiformis в оптимальных условиях на наличие вирусов сокультивирования. Наконец, мы использовали поточной цитометрии, а не Микроскопическое наблюдение показало, что занимает много времени отнимает много, чтобы обнаружить цитопатогенный эффект. Мы получили два изолятов из проб сточных вод, доказывая эффективность этого метода и таким образом расширяя коллекцию Faustoviruses, чтобы лучше понять их окружение, хозяина и специфичность генетического содержания.
Introduction
Открытие гигантских вирусов, особенно те, которые принадлежат к порядку Megavirales, полностью изменили мир вирусов с точки зрения размера частиц и сложности генома. Вирусы были ранее считались малые предприятия, а мимивирус явился нарушить все правила. 1 метагеномной данные свидетельствуют о вездесущность гигантских вирусов не только в среде, 2-5 , но и в организме человека. 6 Таким образом, все еще существует необходимость для поиска этих вирусов в больших масштабах. Разнообразие этих гигантских вирусов оценивали путем отбора проб не только разнообразие водной среды и связанных с ними отложений по всему миру, 7-11 , но и путем скрининга различных человеческих образцов 12,13 и проб окружающей среды. В 7,9 Polyphaga мимивирус Acanthamoeba было изолированы путем совместной культуры с помощью фагоцитоза простейших, в первую очередь Acanthamoeba SPP. 14-16 вся коллекция гигантских вирусов были тогда такжеизолированы от этого указанного протисты хозяина, который сделал научное сообщество ограничить свою исследовательскую и изолированности процедуру Acanthamoeba SPP. Ясно, что эта зависимость от одного вида хозяина привела большая часть вирусов не замечают. Тот факт , что гигантский вирус, CroV, был выделен с высоко мотильных морских простейшими кафетерия roenbergensis, 17,18 демонстрирует необходимость использования более широкого спектра простейшими для того , чтобы открыть новые клоны или семейства гигантских вирусов. Reteno и др. Удалось выбрать другой простейшими в качестве клетки хозяев , которые никогда ранее не были использованы, и выделили новый Asfar связанную происхождение гигантских вирусов (недавно названный Faustovirus). 19
В попытке выделить новые генотипы Faustovirus с целью расширения членов этого вирусного происхождения, мы изменили наши процедуры изоляции и использовали их для скрининга проб окружающей среды, способных уборки новых Faustoviruses. Мы тогдаописал весь протокол для характеристики новых изолятов. Мы оценивали Vermamoeba vermiformis, наиболее распространенный свободно живущих протисты обнаружены в человеческих условиях, 20-22 , которая уже используется в изоляции первого Faustovirus прототипа E12. 19 Этот протисты в настоящее время до сих пор у себя специфичные для Faustovirus. Мы знали, что ни один из известных вирусов гигантских был патогенным для этого амебы, потому что никакие попытки не выращивать другие вирусы гигантские в нашей лаборатории показали, амебы лизиса или вирусный рост. По этой причине мы считаем , что В. vermiformis является лучшим и самым уникальным поддержка клеток известно, выделить новые Faustoviruses.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. Сбор образцов
- Соберите 70 образцов из различных условий и регионов. В этом случае рекомендуется использовать следующие: 5 грязных проб воды из деревни Сен-Пьер-де-Meyzoargues (Франция), 15 образцов из озера в Парк Барели в Марселе (Франция); 15 образцов морской воды с осадком из скалистыми бухтами в Samena в Марселе (Франция), 25 проб речной воды из Альп (Франция), и, наконец, 10 образцов из сточных вод в Ла-Сьота (Франция).
- Образцы Vortex для гомогенизации перед заражением, в течение одной минуты при комнатной температуре без какого-либо лечения.
Процедура 2. Изоляция
- Принимающая Подготовка к процедурам Слепой культуры и образца Прививка
- Использование В. vermiformis (штамм CDC19) в качестве поддержки клеток для совместной культуры.
- Поддержание амебы при 28 ° С, в 75 см 2 клеточной культуральной колбе с 30 мл протеаза-пептон-дрожжевой экстракт-глюкоза среде (PyГ). Пожалуйста , проверьте состав PYG в таблице 1.
Примечание: Через 48 ч амебы количественно с помощью обычных подсчета с помощью подсчета слайдов (например, Kovaslides). - Урожай клетки в концентрации 5 х 10 5 до 10 6 клеток / мл, и осадок амебы центрифугированием при 720 х г в течение 10 мин.
- Удалить супернатант аспирацией и вновь приостановить амеб осадок в 30 мл физиологического раствора стерильного amoebal Пейджа (ССА) Таблица 1. Повторите эту процедуру полоскания.
- Повторное приостановить амебы в 30 мл голодной среды с антибиотиком и противогрибковым смеси в концентрации приблизительно 10 6 амебовидных / мл. Голодание среда является средой выживания для амебы, что позволяет ему остаться в живых без инцистирования или умножения. Проверить состав в таблице 1.
Примечание: Противомикробное смесь агент содержал 10 мкг / мл ванкомицина, 10 мкг / мл имипенема, 20 мкг / мл ципрофлоксацин, 20 МКМг / мл доксициклин, и 20 мкг / мл вориконазола. Эта смесь служит для уменьшения бактерий и грибков загрязнение, которое может уменьшить или изменить размножение вируса. - Непосредственно инокуляции 25 мкл каждого образца на 200 мкл амебы монослое в 96-луночный планшет плоским дном в пользу присоединения амеба и инкубировать при 30 ° С во влажной среде (влажная среда состоит из размещения влажного компресса внутри мешка, содержащего пластины для того, чтобы избежать испарения). Это прима-культура. Оставьте две лунки амеб без какого-либо образца прививки; это действует в качестве отрицательного контроля. Выдержите эту Primo-культуру в течение трех дней.
- Через три дня после первой иммунизации, к югу от культуры Primo-культуральный планшет на свежем амебы, как описано выше, без каких-либо микроскопического наблюдения. Выдержите новую плиту в течение трех дней при тех же самых условиях, что и примы-культуры.
- Выполните окончательную культуру после того, как эти три дня инкубации таким же образом, что и для ее primo- и субкультура. Выдержите окончательную культуру в течение двух дней. Затем приступают к обнаружению.
- Обнаружение лизису автоматизированной проточной цитометрии
Примечание: Слепой культура в сочетании с проточной цитометрии отличается от предыдущей стандартной системы изоляции. Он более чувствителен, точный и автоматизированный. Для обнаружения целей, мы применили новую методику, разработанную для обнаружения лизис на максимальной скорости и без микроскопического наблюдения. Этот метод является предпочтительным для образцов скрининга и имеет лучшую чувствительность , чем более старые методы. 7-9- С помощью 96-луночного планшета окончательного сокультивирования для обнаружения лизис.
- Включите цитометр и запустить чистый и полоскание цикла, чтобы получить более низкий фоновый шум в соответствии с протоколом производителя.
- Запуск High Throughput Sampler (HTS) в сочетании с проточной цитометрии для автоматической загрузки образцов из 96-луночного планшета и выполнять полностью автоматизированное приобретение в течение 40 мин Accordinг с протоколом производителя.
- Настройте HTS следующим образом: объем пробы 150 мкл, смешиваясь объем 50 мкл, скорость перемешивания 180, количество смесей 5, объем промывки между каждой пробы 400 мкл, при скорости потока 2,5 мкл / сек, количество зарегистрированных событий 10000.
- Оценка негативных контрольных лунках конечного сокультуры микроплиты сначала, чтобы ворота население амеба и определить процент этих клеток хозяев в соответствии с их физическими характеристиками. Обязательно иметь однородную амебы населения и второй популяции низших событий, соответствующих мусора и шума.
Примечание: Эта процедура стробирования отличает внутриклеточную мусора и комков из отдельных клеток, по размеру, по оценкам, от рассеяния вперед. Поэтому очень важно, чтобы точно определить процент каждой группы населения, используя наилучшую процедуру стробирования. Эти проценты могут различаться, особенно если используются многие виды простейших, поэтому важно всегда иметь Negativуправления е, который может быть использован в качестве референтной группы населения для остальных образцов. - Запустите стробирования, нажав образец приобрести.
- Запишите число событий, не менее 10000 событий.
- Локализуйте амебы население интереса с помощью стрелки. Это, как определить ворота.
- После того, как стробирования, пусть пятно HTS или найти пластину, нажав 'Home', а затем запустить всю пластину автоматически. Выполнение сбора и анализа данных в соответствии с параметрами размера и структуры (соответственно, FSC (вперед разброс) и SSC (боковое рассеивание)).
Примечание: Обнаружение потери амебы закрытого населения сигнализирует о присутствии патогенного агента, ответственного за амебы лизиса. Простейшие лизис, связанный с вирусной инфекцией обнаруживается с произвольно разработанной порогом 50% лизиса населения амебы закрытого типа с помощью анализатора и по сравнению с тем же неинфицированным населения, используемого в качестве надежного отрицательного контроля.
- Предварительное Окрашивание, чтобы выявить наличие гигантских вирусов
- После обнаружения лизиса с помощью проточной цитометрии, пипеткой лизированных сопутствующих культур приостановить остальные амебы. Затем непосредственно цитоцентрифуге 50 мкл суспензии при 800 х г в течение 10 мин.
- После центрифугирования фиксируют слайды с чистым раствором метанола. Пятно слайды с использованием коммерческого быстрого окрашивания Azur и DAPI окрашивания эозином / синий и наблюдать под световым микроскопом при увеличении 1,000X с целью проверки на наличие вирусов заводов.
- Для быстрого окрашивания, погрузить слайды в первый раствор эозина (4 сек повторяли три раза), а затем перейти непосредственно погрузить слайдов во вторую фиксирующем растворе, содержащем синий Azur в течение 6 сек, и, наконец, полоскание слайды в течение 45 секунд с фосфатным буферным раствором рН 7,2. Оставьте слайды высохнуть при комнатной температуре, а затем приступить к observatiна.
- Для окрашивания DAPI, депозит 15 мкл коммерческого раствора DAPI на фиксированный сухой слайд. Защита от света затем приступить к наблюдению.
- Электронная микроскопия
- После первой идентификации на слайдах, оценить наличие гигантского вируса путем наблюдения электронной микроскопии супернатанта культур.
- Депозит 5 мкл положительного образца на раскаленной разряжен сетки. Подождите примерно 20 минут при комнатной температуре.
- Тщательно высушите сетку и депозит на него небольшую каплю 1% молибдата аммония в течение 10 сек. Оставьте сетку, чтобы высохнуть в течение 5 мин.
- Перейдем к электронной микроскопии при 200 кэВ.
- Поместите сетку на держателе; ввести держатель в микроскоп. Проверьте обзор вакуума, нажав на соответствующую иконку. Закройте клапаны и начать наблюдение в размере пятна 5, и увеличение х 25000.
- Измерьте гигантский вирус с помощью ImageJ или прямойLY на микроскопе с помощью инструмента измерения микроскопа, расположенного на экране сбора.
Примечание: Классифицировать образец в группе Faustovirus с размером капсида приблизительно 200 нм.
- Молекулярная биология
Примечание: После этой идентификации, тесты молекулярной биологии имеет решающее значение для подтверждения для того, чтобы отличить Faustovirus от Marseillevirus, который имеет тот же размер капсида и внешний вид под электронным микроскопом, хотя они не имеют один и тот же хост-специфичность. Marseillevirus не может расти на Vermamoeba, Faustovirus является специфическим для Vermamoeba и все попытки вырастить его на других амебы , таких как Acanthamoeba не смогли до сих пор . Конструкция и применение конкретных систем праймера / зонда , перечисленных в работах Reteno и др. позволило более точную предварительную классификацию вновь выделенных вирусов путем амплификации и секвенирования вирусных генов.- бывшийДНК-кишечного тракта из положительных образцов культуры с использованием автоматизированной системы экстракции в соответствии с протоколом производителя.
- Выполните ПЦР в реальном времени с использованием Термоциклер , как описано в Reteno и др. 19
- Последовательность с использованием тех же праймеров, которые были использованы для амплификации. С помощью праймеров улавливающей ДНК-направленной РНК-полимеразы субъединица 1 ген: Fstv_S2F 5'-CCA GGA CAT GAT GGT CAC ATA G-3 '(вперед) и Fstv_S2R 5'-TTG CAC CTC CGC AGT ТАА A-3' (обратный) с Fstv_S2P FAM-TATGCTCCAATGGCCTTCAACGACA-TAMRA зонд.
4. Вирус производства, очистки и секвенированию генома
- Субкультуры один вирус амебы культуры для конечной точки разбавления клонирования.
- Для производства: готовят 20 колб , содержащих 30 мл PYG 10 мл Vermamoeba vermiformis и 5 мл выделенного вируса уже переданного из скважин , в небольших флаконах.
- Инкубируют при 30 ° С до завершения реакциилизис амебы. Обратите внимание каждый день с помощью перевернутой оптической микроскопии, пока все амеба не лизируют.
- После полного лизиса, объединить все колб в адрес одного получателя. Фильтр с 0,45 мкм фильтр для устранения мусора.
- Начните очистку с помощью ультрацентрифугирования в 89,800 мкг в течение 75 мин. Убедитесь в том, чтобы откалибровать вес труб перед началом центрифугирования.
- После центрифугирования, удалить супернатант из каждой пробирки с помощью аспирации и повторно приостанавливать осадок в ПАС с таким же объемом, используемого для калибровки, прежде чем повторить центрифугирование.
- Как и выше, удалить супернатант и повторно приостанавливать все гранулы в 1 мл фосфатно-буферного раствора (PBS).
- Очищают вирус, который производится с использованием 25% сахарозы (27,5 г сахарозы в 100 мл PBS, фильтруют на фильтре 0,22 мкм).
- С помощью 8 мл сахарозы и 2 мл вирусной суспензии. Центрифуге при 89,800 мкг в течение 1 ч 15 мин. Повторно приостанавливать осадок в 1 мл PBS. Хранить при температуре -80 ° С.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Система, изучаемые в этой рукописи подтверждено ее доказательство концепции путем выделения двух новых Faustoviruses. Из 70 испытанных образцов, были обнаружены два эпизода лизиса, в отличие от наших надежных отрицательных контролей. Отрицательный контроль за лизиса содержал население амебы 86%. В противоположность этому, положительные образцы (ST1 для Сен-Пьер-де-Meyzoargues), и (LC9 для Ла-Сьота образца 9) показали резкое снижение в закрытом амеб; более 60% от амебы были лизируют с самым высоким процентом мусора. Эти надежные результаты стадии обнаружения нашего метода представлены на рисунке 1. Эозин / синий Azur и DAPI окрашивания подтвердили наличие вируса заводов внутри амебы, как показано на рисунке 2. С помощью электронной микроскопии показал типичный вид Megavirales с икосаэдрической капсида , 200 нм в размерах, и не имеющие фибриллы (рисунок 3). Конкретный ПЦР для гигантских вирусов, раrticularly для Faustovirus, подтвердили наши предыдущие выводы. Она должна быть проверена с помощью ПЦР с целью устранения неоднозначных результатов или загрязненных обособления. Вирусы были клонированы, полученный и очищенный для всего генома. Геномы вновь выделенных Faustoviruses представляются по следующим Bioproject: PRJEB11169. Primo-, к югу, и заключительная культура не показали грибковой или бактериальной контаминации, в пользу этого размножение вируса. Vermamoeba vermiformis переносили противогрибковое и смеси антибиотиков. Это было ясно в отрицательном контроле амебы , где через три дня, заключительная культура содержала более 80% живой амебы. Vermamoeba также при условии хорошей клетки - хозяина для изоляции, производя значительную вирусную нагрузку после лизиса.
Рисунок 1: Обнаружение лизиса с помощью автоматизированной проточной цитометрии данных О представлениях.т двух образцов, которые заготовленные Faustovirus и показал амебы лизис. Живое амеба население, использовали в качестве отрицательного контроля. Два ворота были разработаны в FSC-SSC участка, потенциально соответствующих клеток и мусора. После окончательной совместной культуры, большая засоренность показали наличие потенциальной инфекции в образцах (ST1 и LC9) (B), по сравнению с отрицательным контролем , который не показал каких - либо существенных изменений в огороженных населения (A). Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
Рисунок 2: Вирусные фабрики , характерные для некоторых гигантских вирусов в эозином / синий Azur окрашивание и DAPI окрашивание Отрицательный контроль , показывая В.. vermiformis ядро с помощью эозином / синий Azur окрашивание(A), и DAPI окрашивания (D) (стрелки указывают на ядро амебы). Увеличение на 1,000X. (B, C): эозин / синий Azur окрашивание при 1,000X увеличении V. vermiformis инфицированных Faustovirus LC9. Стрелки указывают на ядро замыкают в цикл, инфицированных амебы, вирусные фабрики отмечены звездочкой. (E, F) DAPI окрашивание при 1,000X увеличении V. vermiformis инфицированных Faustovirus LC9. Стрелки указывают на вирус заводов в 8 ч после инфицирования (Е), и 12 ч после инфицирования (F). Масштабная линейка 10 мкм. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
Рисунок 3: Отрицательное окрашивание MICRograph. Отрицательное окрашивание вирусной суспензии после обнаружения лизиса, показывая недавно обнаруженный Faustovirus с типичным возникновением Megavirales, с икосаэдрической капсида и общим размером 200 нм. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
| состав PYG | величины |
| Протеаза пептон | 20 г |
| Экстракт дрожжей | 2 г |
| MgSO 4. 7H 2 O | 0,980 г |
| CaCl 2 | 0,059 г |
| цитрат натрия. дигидрата | 1 г |
| Fe (NH 4) 2 (SO 4) 2 × 6 H 2 O | 0,02 г |
| глюкоза | 18 г |
| дистиллированную воду для | 1 L |
| Отрегулируйте рН 6,8 с помощью HCl или KOH. | |
| Автоклавы 15 мин при температуре 121 ° С. | |
| Голодание среда | величины |
| Экстракт дрожжей | 2 г |
| глюкоза | 18 г |
| Fe (NH 4) 2 (SO 4) 2. 6 H 2 O | 0,02 г |
| PAS (подробно изложено ниже) | 1 L |
| Отфильтрованный на 0,22 мм | |
| PAS раствор А | величины |
| KH 2 PO 4 | 0,136 г |
| Na 2 HPO 4 | 0,142 г |
| PAS раствор В | величины |
| MgSO 4 · 7H 2 O | 4.0 мг |
| CaCl 2 · 2H 2 O | 4.0 мг |
| NaCl | 0,120 г |
| 10 мл каждого раствора А и В, добавляют в 1 л дистиллированной воды. | |
Таблица 1: Решение рецептов.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Возможность того, что Faustovirus может быть первым членом нового семейства Megavirales близко к АЧС была впервые предложена Reteno и др., 19 , но некоторые различия все еще можно отличить. Оказывается, неясно, следует ли Faustovirus присоединиться к семье Asfarviridae или должен ли он вместо того, чтобы сформировать новую предполагаемую вирусную семью. Этот вопрос потребует дальнейшего изучения, в частности, более полную характеристику его морфологии, круг хозяев, цикл репликации и репертуар генов. Больше генотипы Faustovirus должны быть выделены для того, чтобы расширить пан-генома и, чтобы лучше понять происхождение и родство с этой вирусной группы или семьи. Техника, которую мы использовали позволило нам продолжить изоляцию новых членов этой потенциальной новой семьи. Этот метод в сочетании с немного модифицированной методики сокультуры, которая выступает в качестве шага обогащения для лучшего обнаружения. Время, необходимое с помощью проточной цитометрии для сбора данных для Hundreds образцов не превышает полчаса, что является основным преимуществом по сравнению с предыдущей стандартной системы совместного культивирования. 9 Методика гораздо лучше , чем в предыдущей стандартной системе, в частности , с точки зрения ее более высокой чувствительностью и точной количественной оценке.
Из 70 образцов, запущенных, мы выделили еще две Faustoviruses из сточных вод, которые могли бы предоставить информацию об экологической специфичности или экосистемы этого вируса. Действительно, специфика Faustovirus для протисты Vermamoeba vermiformis, 19, а также новая классификация HcDNAV среди Asfarviridae 23 и тот факт , что этот вирус заражает многих штаммов динофлагеллятных Heterocapsa SPP , но не способен инфицировать другие типы фитопланктон 24 предлагает присутствие хозяина специфичности среди Asfarvirus или его близких родственников.
Эти данные подразумевают использование новых клеточных носителей, действующихспецифичный или неспецифических хозяев, которые могут питать эти виды вирусов. Наша методика может быть адаптирована к другим типам простейшими в различных условиях. Наш метод знаки прогресса с точки зрения вирусных методов выделения и культивирования. Таким образом, обогатительные шаги с наиболее подходящей антибактериальные и противогрибковые смеси имеют решающее значение для устранения любой возможной бактериальной или грибковой загрязнения. Наша голодание среда является наилучшим решением для поддержания амебы в наилучших условиях для совместной культуры, в то время как PAS среда , используемая в повседневной культуры , как представляется, не подходят для Vermamoeba SPP, так как быстро инцистирования наблюдали после 24 ч инкубации. Это был большой шаг в сторону оптимальных условий культивирования, где предыдущие методы были до сих пор не удалось. Для того, чтобы получить наилучшие результаты с использованием протоколов, описанных здесь, культура, рекомендуется использовать свежие амебы способны к фагоцитозу. Антибиотик и противогрибковое смесь должна быть нетоксичными для протистов ; следовательно, рекомендуется проверить жизнеспособность использованного protozoon на смеси. Все используемые материалы должны быть стерилизованы. Работа должна проводиться в микробиологическом обеспеченных пост класса II, чтобы избежать любого возможного загрязнения. инкубационного и три стадии культуры должны соблюдаться, как описано. Время обработки для обнаружения цитометрии потока может быть откалиброван в зависимости от организмов, изученных. Небольшой сдвиг в популяции от первоначального стробирования может наблюдаться, но это зависит от надежного отрицательного контроля, используемой в качестве референтной группы населения.
Multi-резистентные бактерии, которые могут быть найдены в культуре и являются патогенами для амебы могут каким-то образом ограничить наш вирусный метод изоляции, где мы можем иметь рост бактерий, маскирующий размножение вирусов. Варьируя смесь антибиотик или даже фильтрование культуру, чтобы устранить бактерии более чем 200 нм размера должны управлять этим ограничением иногда.
"> Все эти адаптированные условия предлагают новый оптимальная процедура изоляции, которая поддерживает размножение вируса. Этот метод представляет собой значительное преимущество в обнаружении новых вирусов, в частности Megavirales, чтобы лучше понять их разнообразие, происхождение и потенциал патогенности.Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| LSR FORTESSA cytometer | BD Biosciences | France | 649225B4 |
| TECNAI G2 F20 | FEI | Germany | 5027/11 |
| Optical inverted microscope | leica | France | 72643 |
| DNA extraction | Qiagen EZ1 Advanced XL Extraction Robot | France | L106A0452 |
| PCR Cycler CFX96 | Bio rad | France | 785BR06298 |
| PYG medium, PAS, Starvation medium | In house laboratory production | Marseille URMITE | x |
| Amoeba strain CDC-19 | ATCC | France | 50237 |
| Plates | Cellstar | France | 655180 |
| PCR materials, primers. | eurogentec | France | Primers cited in manuscript |
| glasstic slide 10 with grids | Kova | USA | H899871441F |
| Eosin/blue Azur-Hemacolor stain | Merck milipore | France | 111955,6,57,109468 |
| Vacuum driven filters | Thermo scientific | France | BPV4550 / 20170115 |
| Phosphate-Buffered Saline | Thermo Fisher scientific | France | 10010-023 |
| DAPI stain | Life Technologies | France | D1306 |
| cytospin 4 cytocentrifuge | Thermo Fisher scientific | France | 10522013JT184-31 |
| Single cytology tunnel | Biomedical polymers inc. | France | BMP-cyto-S50 |
| Carbon grids | Euromedex | France | FCF400NI |
| Ammonium molibdate | VWR internationanl | France | 21276185 |
| Flasks | SARSTEDT | Germany | 833911 |
| 0.22 μm filters | Milex millipor | France | SE2M229104 |
| Ultracentrifuge Sorval WX 80 | Thermo scientific | France | 9102448 |
| Rapid-flow filters | Nalgene | France | 450-0020 |
References
- Raoult, D., et al. The 1.2-megabase genome sequence of Mimivirus. Science. 306 (5700), 1344-1350 (2004).
- Claverie, J. -M. Giant viruses in the oceans: the 4th Algal Virus Workshop. Virol J. 2, 52-52 (2004).
- Monier, A. A., et al. Marine mimivirus relatives are probably large algal viruses. Audio, Transactions of the IRE Professional Group on. 5, 12-12 (2007).
- Monier, A., Claverie, J. M., Ogata, H. Taxonomic distribution of large DNA viruses in the sea. Genome Biol. , (2008).
- Claverie, J. -M., et al. Mimivirus and Mimiviridae: Giant viruses with an increasing number of potential hosts, including corals and sponges. J Invertebr Pathol. 101 (3), 9-9 (2009).
- Colson, P., et al.
- La Scola, B., et al. Tentative characterization of new environmental giant viruses by MALDI-TOF mass spectrometry. Intervirology. 53 (5), 344-353 (2010).
- Boughalmi, M., et al. High-throughput isolation of giant viruses of the Mimiviridae and Marseilleviridae families in the Tunisian environment. Environ Microbiol. , (2012).
- Pagnier, I., et al. A decade of improvements in mimiviridae and marseilleviridae isolation from amoeba. Intervirology. 56 (6), 354-363 (2012).
- Philippe, N., et al. Pandoraviruses: Amoeba Viruses with Genomes Up to 2.5 Mb Reaching That of Parasitic Eukaryotes. Science. 341 (6143), 281-286 (2013).
- Legendre, M., et al. Thirty-thousand-year-old distant relative of giant icosahedral DNA viruses with a pandoravirus morphology. PNAS. , (2014).
- Saadi, H., et al. First Isolation of Mimivirus in a Patient With Pneumonia. Clin Infect Dis. , (2013).
- Saadi, H., et al. Shan virus: a new mimivirus isolated from the stool of a Tunisian patient with pneumonia. Intervirology. 56 (6), 424-429 (2013).
- Claverie, J. -M., Abergel, C. Mimivirus: the emerging paradox of quasi-autonomous viruses. Trends Genet : TIG. 26 (10), 431-437 (2010).
- Colson, P., et al. Viruses with more than 1,000 genes: Mamavirus, a new Acanthamoeba polyphaga mimivirus strain, and reannotation of Mimivirus genes. Genome Biol Evol. 3 (0), 737-742 (2010).
- Claverie, J. -M., Abergel, C. Open questions about giant viruses. Adv Virus Res. 85, 25-56 (2013).
- Fischer, M. G. M., Allen, M. J. M., Wilson, W. H. W., Suttle, C. A. C. Giant virus with a remarkable complement of genes infects marine zooplankton. PNAS. 107 (45), 19508-19513 (2010).
- Van Etten, J. L. Another really, really big virus. Viruses. 3 (1), 32-46 (2011).
- Reteno, D. G., et al. Faustovirus, an asfarvirus-related new lineage of giant viruses infecting amoebae. J.Virol. , (2015).
- Coşkun, K. A., Ozçelik, S., Tutar, L., Elaldı, N., Tutar, Y. Isolation and identification of free-living amoebae from tap water in Sivas, Turkey. Biomed res Int. 2013, 675145 (2013).
- Bradbury, R. S. Free-living amoebae recovered from human stool samples in Strongyloides agar culture. J Clin microbiol. 52 (2), 699-700 (2014).
- Pagnier, I., Valles, C., Raoult, D., La Scola, B. Isolation of Vermamoeba vermiformis and associated bacteria in hospital water. Microb Pathog. 80, 14-20 (2015).
- Ogata, H., Toyoda, K., et al. Remarkable sequence similarity between the dinoflagellate-infecting marine girus and the terrestrial pathogen African swine fever virus. Virol J. 6, 178-178 (2008).
- Tarutani, K., Nagasaki, K., Itakura, S. Isolation of a virus infecting the novel shellfish-killing dinoflagellate Heterocapsa circularisquama. Aquat Microb Ecol. 23, 103-111 (2001).
