Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove

Biochemistry

La selección de alto rendimiento de los hidratos de carbono-El uso de enzimas que degradan la novela insoluble cromogénico sustrato de ensayo Kits

doi: 10.3791/54286 Published: September 20, 2016
* These authors contributed equally

Protocol

1. ensayo cromogénico con CPH sustratos en un formato de placa de 96 pocillos

  1. La activación de la placa de kit de ensayo
    1. Activar el filtro de 96 pocillos (que contiene azul CPH-xilano) placa kit de ensayo (Lista de Materiales) mediante la adición de solución de 200 l de activación (obtenido con el kit) en cada pocillo, seguido de 10 minutos de incubación a temperatura ambiente sin agitación.
    2. Aplicar vacío usando un colector de vacío (con el bloque espaciador dentro y cualquier estándar, transparente placa de 96 pocillos como una placa de recogida) para eliminar la solución de activación existente. También es posible utilizar una centrífuga a 2700 xg durante 10 min para este paso en lugar del colector de vacío.
    3. Lavar los sustratos CPH mediante la adición de 100 l de agua estéril y aplicar vacío (o fuerza centrífuga) para eliminar el estabilizador. Repita este paso dos veces más y las placas están ya listos para su uso.
  2. La reacción enzimática
    NOTA: Siempre incluya amortiguarsolo como control negativo y si es posible enzimas previamente caracterizados como controles positivos. Utilice un número estadísticamente adecuado de recipientes. Los sustratos CPH son estables entre pH 3,0 a 10,0 y el volumen total de solución de enzima final de tampón en cada pocillo no debe exceder de 180 l. extracto vegetal o caldo de cultivo también se pueden utilizar en lugar de solución de enzima purificada.
    1. Añadir 150 l 100 mM de tampón de acetato de sodio, pH 4,5 y 5 l solución -cellulase endo (a una concentración final de 1 U / ml) a cada pocillo de la placa de kit de ensayo.
    2. Coloque la placa de producto (una placa de pocillos claro compatible con el lector de placa de microtitulación) debajo de la placa kit de ensayo para recoger cualquier fuga potencial de la placa de reacción durante la agitación.
    3. Incubar la placa kit de ensayo a 25 ° C durante 30 min en un agitador horizontal a 150 rpm.
      NOTA: La mezcla de la reacción en la placa kit de ensayo durante la incubación es crucial para lograr un consistente y reproresultado ducible. CPH sustratos son utilizables hasta 90 ° C. El tiempo de incubación debe ser aumentada hasta 24 hr al probar caldos de cultivo que contienen concentraciones de enzima con sustratos desconocidos CPH. Tenga en cuenta que los tiempos de incubación apropiados dependen de la actividad de la enzima (s), pero en general, si no hay ninguna actividad detectable dentro de 24 horas, es probable que la enzima no se degradará el sustrato ensayado. Una enzima activa está degradando los polisacáridos cromogénicos insolubles del sustrato CPH en oligosacáridos cromogénicos solubles, que son visibles como sobrenadante de color.
    4. Coloque la placa de producto limpio el interior del colector de vacío con el bloque espaciador interior.
    5. Coloque la placa kit de ensayo en la parte superior y aplicar vacío (presión negativa máxima de -60 kPa). También es posible utilizar una centrífuga a 2700 xg durante 10 min.
      NOTA: El filtrado que contiene los oligosacáridos de color como producto de reacción se encuentra ahora en la placa de producto para su posterior análisis 8
  3. Detección y cuantificación
    1. Compruebe que el volumen de líquido en cada pocillo de la placa de producto es aproximadamente la misma mediante inspección visual.
    2. Leer la absorbancia de la placa de recogida a 595 nm para el azul CPH-xilano utilizando un lector de placas.
    3. Al hacer el análisis de datos, restar los búfer de sólo los valores de control negativo de los valores de los pozos que se añadió una enzima. Calcular el valor medio y el error estándar de las medias (SEM) de los pocillos replicados 8.

2. Ensayo cromogénico con ICB Sustratos en un formato de 96 pocillos

  1. La reacción enzimática
    1. Añadir el 150 l 100 mM de tampón de acetato de sodio, pH 4,5 y 5 l 31 U / ml endo -xylanase solución a cada pocillo de la placa de kit de ensayo que contiene paja ICB-trigo rojo (concentración final de enzima en el pozo: 1 U / ml) .
      NOTA: Las placas kit de ensayo (filtro de 96 pocillos plates que contienen sustratos LPI) están fabricados como se describe en la literatura (ver Lista de Materiales). Los sustratos de LPI son estables en tampones con un rango de pH entre pH 3,0 a 10,0. Siempre incluya tampón solo como control negativo, enzimas comerciales como control positivo y el uso de un número estadísticamente apropiado de réplicas.
      1. No activar los sustratos de LPI como la placa de sustrato CPH, pero eliminar el estabilizador por lavado tres veces con 100 l de agua seguido por filtración a vacío o centrifugación.
    2. Coloque la placa de producto por debajo de la placa de sustrato para recoger cualquier fuga potencial de la placa de sustrato durante la agitación.
    3. Incubar la reacción a 25 ° C con agitación a 150 rpm durante 2 hr.
      NOTA: Una enzima activa está degradando los polisacáridos insolubles cromogénicos en el sustrato ICB en oligosacáridos solubles, que son visibles en forma de sobrenadante de color. sustratos de LPI son utilizables hasta 90 ° C. La incubación tIME debería incrementarse hasta 24 horas si se utilizan enzimas no purificada como caldos de cultivo.
    4. Coloque la placa de producto en el interior del colector de vacío con el bloque espaciador interior.
    5. Colocar la placa kit de ensayo en la parte superior y aplicar vacío (presión negativa máxima de -60 kPa) o usar una centrífuga para filtrar el producto de la placa de kit de ensayo en el pocillo de la placa de producto.
      NOTA: El filtrado que contiene los oligosacáridos de color como producto de reacción se encuentra ahora en la placa de recogida para su posterior análisis 8.
  2. Detección y cuantificación
    1. Compruebe que el volumen de líquido en cada pocillo de la placa de recogida es aproximadamente la misma mediante inspección visual.
    2. Leer la absorbancia de la placa de recogida a 517 nm para la paja de trigo ICB-roja usando un lector de placas.
    3. Al hacer el análisis de datos - restar el tampón - sólo los valores de control negativo de los valores de los pocillos en los que una enzimafue añadido. Calcular el valor medio y el error estándar de las medias (SEM) de los pocillos replicados 8.
      NOTA: En el caso de la detección de enzimas desconocidas, se sugiere hacer una serie de diluciones con el fin de obtener datos más detallados sobre el rango dinámico de la actividad de la enzima.

Representative Results

El alto rendimiento y la capacidad de multiplexación de este ensayo se basa en insoluble polímero cromogénico (o proteína) de hidrogel de sustratos (CPH) dispuestas en placas de filtro de 96 pocillos. Las enzimas, así como controles negativos se añaden a la placa de kit de ensayo (Figura 1A) y las enzimas degradan el correspondiente sustrato producir un sobrenadante de color (Figura 1B). Una vez finalizada la reacción, el sobrenadante se transfiere a una placa de producto bien clara y la absorbancia se puede medir directamente usando un espectrofotómetro adecuado para placas de 96 pocillos (Figura 1C).

Un ejemplo de una respuesta a la dosis de CPH-arabinoxilano de xilanasa a diferentes concentraciones de la enzima (0,00-0,75 U / ml) se muestra en la figura 1D donde la concentración de enzima disminución puede observarse visualmente. A quant espectrofotométrico más detalladaficación se puede utilizar para trazar la absorbancia frente a la concentración de enzima (Figura 1E). La intensidad de la señal corresponde a la actividad de la enzima. La reproducibilidad del ensayo se muestra por las barras de error (error estándar de la media, SEM, de tres réplicas). Experimentos más detallados sobre la reproducibilidad de este ensayo se publican en otro lugar 8.

Figura 1
Figura 1. tratamiento con xilanasa de CPH-arabinoxilano. A) Un esquema de la placa de kit de ensayo con el sustrato CPH (por ejemplo, CPH-arabinoxilano) cargado en pocillos de placas de filtro de 96 pocillos antes de la adición de enzimas 1 y 2 y el tampón el control -sólo (enzima 1 tuvo una actividad -xylanase endo); B) la degradación de CPH-arabinoxilano por la enzima 1 produce un sobrenadante de color; C) a filtrat asistida por vacíoion de los sobrenadantes en a la placa de producto, la absorbancia se mide espectrofotométricamente; D) la placa de producto que contiene los productos de reacción después del tratamiento de CPH-arabinoxilano en 4 colores diferentes con diferentes concentraciones de endo -β-1,4-xilanasa en 100 mM tampón de acetato de sodio, pH 4,5 durante 60 minutos a temperatura ambiente;. E) la cuantificación de los productos de reacción de D utilizando espectrofotometría Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Hay diferentes opciones para el uso de este ensayo en la detección de la enzima. Una opción es el uso de una placa de 96 pocillos que contiene diferentes polisacáridos para la detección, por ejemplo, un pequeño número de (purificada) endo -enzimas con actividad desconocida. En este caso el resultado se muestra que los polisacáridos son Degradcapaz por la enzima diana. Para mostrar este principio, un -cellulase endo se ensayó frente a diferentes sustratos CPH a 25 ° C. Tres concentraciones diferentes de la enzima (0,5 U / ml, 1,0 U / ml y 5 U / ml) se incubaron durante 30 min. El resultado es claramente visible en la placa de producto (Figura 2A). La hoja de producto para este endo -cellulase proporcionado por el proveedor especifica lado a la actividad de xiloglucano (tamarindo), cebada β-glucano, glucomanano, xilano de abedul y del lado de baja actividad económica de galactomanano. En consonancia con esto, se encontró que la actividad adicional a celulasa contra CPH-β-glucano (cebada), CPH-xiloglucano (tamarindo), CPH-xilano (madera de haya) y baja actividad frente a CPH-galactomanano (Figura 2B). El glucomanano no ha sido probado. Los mismos sustratos CPH fueron digeridos con enzimas disponibles comerciales (tres diferentes concentraciones de enzima: 0,1 U / ml, 0,5 U / ml y 1,0 U / ml) se utilizaron como controles positivos en las mismas condiciones que la anteriorexperimentar. Todos los sustratos fueron degradados por la enzima de control positivo y la intensidad de la señal aumentaron correspondiente a una mayor concentración de enzima (Figura 2C).

Figura 2
Figura 2. Ocho diferentes sustratos CPH se incubaron con agitación a 25 ° C durante 30 min. A) La placa de producto de diferentes sustratos CPH digeridos con una endo -cellulase, a diferentes concentraciones. B) Cuantificación de la actividad y varios actividad lado de la endo -cellulase. Las barras de error representan el error estándar de la media de tres réplicas C) actividad de diferentes enzimas comerciales al sustrato CPH correspondiente (endo-celulasa y 2-HE-celulosa;. E-LAMSE y CPH-paquimano, CPH-curdlano, CPH- β-glucano (cebada); e-XYAN4 y CPH-xilano, e-XEGP y CPH-xiloglucano, E-BLAAM y CPH-amilosa, E-BMACJ y CPH-galactomanano; todas las enzimas de Megazyme). Las barras de error representan el error estándar de la media de las dos réplicas. Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Los biomasa cromogénico (ICB) sustratos insolubles son una adición útil al repertorio sustrato cromogénico, ya que conservan en parte la disposición natural de polisacáridos de las paredes celulares vegetales que son el componente principal de la biomasa. CPH y LPI sustratos se utilizan en nuestro ejemplo para analizar las enzimas secretadas de Phanerochaete chrysosporium cuando se cultiva en medio líquido. La configuración de la placa de la placa de kit de ensayo se muestra en la Figura 3A, con 19 CPH sustratos y sustratos 5 de LPI (4 pocillos para cada sustrato, la Figura 3B). P. Chrysosporium fue cultivated durante tres días y luego se analizó el sobrenadante del cultivo. Por lo tanto, 125 l de tampón 200 mM se transfirió a cada sobrenadante de cultivo bien y 25 l añadió. Tres condiciones de pH diferentes se han probado usando tampón de acetato de sodio pH 4,0, tampón de fosfato de sodio pH 6,0 o pH 8,0 (Figura 3C). La placa se incubó agitación (150 rpm) a 25 ° C durante 2 hr.

Los productos de reacción se transfirieron a la placa de producto (Figura 3D) y se analizaron. P. chrysosporium produce enzimas para la degradación de diversos glucanos, almidón y xilanos (Figura 3E). las señales más bajas podrían ser detectados para el arabinano hemicelulosas (remolacha azucarera) y galactano péctico, así como para RGI (soja). Las enzimas producidas eran más activos en condiciones ácidas (pH 4,0) que en condiciones neutras o ligeramente básica (pH 8,0). La menor actividad hacia sustratos de LPI (Figura 3F)demuestra que cuando los polisacáridos están en un contexto más natural, la eficiencia de la enzima no es la misma que con un polisacárido puro y es por eso sustratos ICB demuestran una visión más realista en la eficiencia de la enzima, si se aplicó a crudo o pre- material de la planta tratada.

figura 3
Figura 3. Proyección de un sobrenadante de cultivo de un cultivo líquido de edad de 3 días de Phanerochaete chrysosporium utilizando una placa de sustrato que contiene múltiples CPH 19 y 5 sustratos de LPI. A) Un esquema de la configuración de la placa con 4 pocillos para cada individuo sustrato (fondo gris = sustratos CPH, fondo naranja = sustratos ICB). B) Imagen de la placa de ensayo que contiene el sustrato. C) Esquema que muestra las condiciones de tampón utilizadas en este experimento (Se detectaron 200 mM acetato de sodio pH 4,0, fosfato de pH de sodio 6,0 y fosfato de sodio pH 8,0). D) la imagen de la placa de producto después de 2 horas a 25 ° C. E) absorbancias a 517 nm y se representó para cada sustrato CPH individual y F resultados ICB) de sustrato para las enzimas respectivas. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Los sustratos cromogénicos también se pueden utilizar para estudiar los efectos sinérgicos mediante el uso de una mezcla de diferentes sustratos CPH de color en un pocillo y analizar el sobrenadante de reacción después del tratamiento con enzimas individuales o una enzima cócteles.

En el siguiente ejemplo se muestra en la Figura 4, rojo CPH-celulosa y sustratos amarillo CPH-xilano se mezclaron juntos en un aproximadamente equal cociente en 96 pocillos pocillos de la placa de filtro. La figura 4A muestra los productos de reacción de color tras el tratamiento 1 hr a temperatura ambiente sin enzima (control), cel celulosa (2 U / ml), xyl xilanasa (1 U / ml) y una mezcla de ambas enzimas (3 repeticiones para cada enfoque) en tampón de acetato de sodio 100 mM pH 4,5. Para el análisis, el producto de reacción se cuantificó espectrofotométricamente mediante el escaneo del espectro de absorbancia de 350 nm a 700 nm (Figura 4B). A menudo, la inspección visual solo puede dar una indicación de si la enzima está actuando sobre uno o varios sustratos, sin embargo registró espectros de absorbancia derivados de diferentes tintes también se puede resolver utilizando regresión lineal simple 8 para dar una indicación más precisa de la extensión de la degradación de cada sustrato de la mezcla.

El uso de sustratos CPH como mezclas sustancialmente añade al caudal de la prueba, lo que permite screening contra un máximo de 4 sustratos diferentes en un experimento (un bien). En el ejemplo mostrado son cuatro sustratos diferentes utilizados: CPH-β-glucano azul (cebada), amarillo CPH-xilano (madera de haya), verde CPH-amilosa y galactan CPH-pectico rojo (altramuz). El diseño de la placa de sustrato se muestra en la Figura 4C y una imagen de la placa de ensayo en la Figura 4D. La reacción se realizó en tampón de acetato de sodio 100 mM pH 4,5 durante 30 min a 25 ° C y 150 rpm. Enzimas individuales en primer lugar con el aumento de la concentración de enzima se probaron con el sustrato correspondiente CPH (Figura 4E) y el sobrenadante de color fue recibido como se esperaba en la placa de producto (Figura 4F, fila 1A - 12D). Fila E contenía las dos diferentes sustratos CPH amarilla CPH-xilano y azul CPH-β-glucano, que se degrada con diferentes proporciones de las correspondientes enzimas endo-glucanasa y endo -xylanase. Después de la reacción, el resultado es visibLe en la placa de producto: el color del producto de reacción era más oscuro, verde y azul, cuando más endo-glucanasa estaba presente (Figura 4F, 4E-6E) y se convirtió en un encendedor de color amarillo-verde, cuando la concentración -xylanase endo aumentó ( Figura 4F, 10-12E). Lo mismo se ve en la fila F, donde los dos sustratos roja galactano CPH-pectico y amarillo CPH-xilano se degradaron con endo -galactanase y endo -xylanase. Los cuatro sustrato CPH color diferente estaban presentes (Figura 4F, 1G-12F) y las enzimas individuales degrada el sustrato CPH apropiado y mediante la adición de enzimas adicionales se recibió una combinación de los productos de reacción de color.

Figura 4
Figura 4. Una combinación de dos sustratos diferentes CPH, rojo CPH-celulosa y amarillo CPH-xilano, tratados con diferentes enzimas. UN) Sobrenadantes de reacción después del tratamiento de dos sustratos con endo -cellulase (cel) o endo -xylanase (Xyl) o ambas enzimas. B) espectros de absorbancia de los sobrenadantes de reacción. Una combinación de cuatro sustratos diferentes CPH tratados con diferentes enzimas C) Esquema de la placa de sustrato que contiene los sustratos CPH:. Azul CPH-β-glucano (cebada), amarillo CPH-xilano (madera de haya), verde CPH-amilosa y CPH- roja galactano péctico (altramuz) D) Imagen de la placa de ensayo que contiene los diferentes sustratos CPH E) Esquema de la placa de producto en la que la relación de las enzimas añadidas (concentraciones nominales (NC):.. glu = 1 U / ml endo-glucanasa, Xil = 1 U / ml endo -xylanase, amy = 5 U / ml endo-amilasa y gal = 0,5 U / ml endo -galactanase). F) Imagen de la placa de producto después de 30 minutos de incubación a 25 ° C. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

sustrato Fuente
CPH-2-hidroxietil N / A
(CPH-2-HE-celulosa)
CPH-amilopectina patata
CPH-amilosa patata
CPH-arabinano remolacha azucarera
CPH-arabinoxilano trigo
CPH-caseína leche bovina
CPH-quitosano origen animal
CPH-curdlan Alcaligenes faecalis
CPH-dextrano Leuconostoc spp.
CPH-galactomanano algarroba
CPH-laminarina Laminaria digitata
CPH-liquenano musgo de Islandia
CPH-metilcelulosa N / A
CPH-paquimano Poria cocos
galactan CPH-pectico patata
CPH-pululano Aureobasidium pullulans
CPH-ramnogalacturonano I (RG I) patata
CPH-ramnogalacturonano I (Gal) * patata
CPH-ramnogalacturonano de soja
CPH-xilano madera de haya
CPH-xiloglucano Tamarindo
CPH-β-glucano a partir de cebada cebada
CPH-β-glucano de avena avena
CPH-β-glucano de levadura levadura
ICB-Arabidopsis Hojas en roseta de Arabidopsis thaliana Col-0 (planta adulta)
semillas de Arabidopsis-ICB Arabidopsis thaliana
ICB-bagazo Saccharum officinarum (planta adulta seca, tallo y hojas)
ICB-celulosa cristalina (papel de filtro) papel comercial Whatman 3MM Chr Cromatografía
semillas de alholva-ICB Trigonella spp. Semillas
ICB-cáñamo Cannabis spp. (Planta adulta seca, tallo y hojas)
semillas de altramuz-ICB Lupinus angustifolius semillas
ICB-polen de P. pratense Phleum pratense polen
ICB-abeto Picea spp. (Mitronco de un árbol LLED)
ICB-tabaco hojas de Nicotiana benthamiana de (planta joven)
paja de trigo ICB Triticum spp. (Planta adulta seca, tallo y hojas)
ICB-sauce Salix spp. (Planta adulta secado, tronco de árbol molida)
ICB-Sorgo Sorghum spp. (Hojas de la planta adulta)
(cadenas laterales de β-1,4-D-galactano retirados con endo -β-1,4-D-galactanasa) *

Tabla 1. Lista de cromogénicos disponibles polímero de hidrogel (CPH) y sustratos cromogénicos insoluble Biomasa (ICB).

Discussion

Estamos utilizando una nueva generación de CPH y ICB sustratos de varios colores que están basadas en colorantes clorotriazina (lista completa de los sustratos de la Tabla 1) dispuesto en un kit de ensayo comercial de diseño personalizado. La digestión enzimática de los sustratos produce productos pequeños, solubles, teñidos que son detectables en la solución de ensayo y se pueden cuantificar usando un lector de placas 9. Este ensayo está diseñado para la evaluación de enzimas endo-actuando y la sensibilidad del ensayo es similar al uso de una azurina reticulado (AZCL) sustratos 10, mientras que otros métodos están disponibles para exo enzimas-actuando 11,12. La limitación de este kit de ensayo se encuentra en la detección de la actividad endo -enzyme, como CPH, así como los sustratos de LPI no son degradables por exo -enzimas muy probablemente debido al impedimento estérico que surge de las moléculas de colorante y el reticulante 8.

El ensayo se realiza en un 96-well formato y las reacciones individuales se llevan a cabo en los pocillos. La reacción tiene que ser mezclado en la placa para recibir datos reproducibles. Los sobrenadantes resultantes se filtran en una placa de producto donde la absorbancia de cada pocillo se puede cuantificar utilizando la espectrometría de absorbancia. Los principios básicos y el diseño del ensayo se muestran en la Figura 1. El ensayo consiste en una placa de ensayo (una placa de filtro de 96 pocillos) con los sustratos, y después de la incubación con las enzimas, el sobrenadante se filtra a través en una placa clara y las absorbancias se leen proporcionar una medición semi-cuantitativa de la especificidad y la actividad de la enzima. Se ha demostrado, que este ensayo de selección utilizando sustratos CPH puede también ser utilizado en un formato de placa de agar, en donde los productos de reacción solubles crean un halo de color después de la incubación durante la noche. 8

Los kits de ensayo se pueden utilizar para detectar enzimas purificadas y sus secundarios potenciales actividades como se demuestra enLa Figura 2. Secundarios actividades pueden surgir de una sola enzima y su especificidad promiscua, sino también de un hecho que la muestra analizada es una mezcla de diferentes enzimas y su efecto sinérgico necesita ser estudiado. Adicionalmente, como se ha demostrado en estudios anteriores, que los cócteles de enzimas, la microbiota intestinal 13 y cultura caldos de hongos 8, así como enzima vegetal endógeno y bacterias (datos no publicados) se pueden utilizar como una fuente de enzima.

sustratos ICB abordan mezclas complejas de componentes de la pared celular se encuentran a menudo en los procesos industriales de la descomposición de la biomasa. Estos sustratos están diseñados para evaluar la disponibilidad de polisacáridos y proporcionar información acerca de cómo optimizar efectivamente cócteles de degradación para la salida de la degradación más eficiente. Como se ilustra en la Figura 3 CPH y LPI sustratos se pueden utilizar en el lado de detección de la enzima a lado - que revela una gran cantidad de información acerca de una especificidad enzimáticaactividad d tanto en el contexto de el sustrato preferido (CPH) y un complejo de más natural que contiene otros componentes además de el sustrato preferido imitando más a un ensamblaje macromolecular encuentra en la naturaleza (ICB). El uso de múltiples colores permite la detección simultánea de diferentes actividades enzimáticas en contra de varios sustratos que aumenta el alto rendimiento y la multiplicidad del ensayo. Spectra de diferentes tintes se puede resolver mediante regresión lineal simple y en la mayoría de los casos la actividad multi-sustrato se puede observar por inspección visual solo. Un ejemplo simulado de un experimento de este tipo y sus resultados se representa en la Figura 4.

Esta caja de herramientas de ensayo y la versatilidad de su aplicación son muy adecuadas para el cribado de primer nivel de las enzimas y los caldos de cultivo con actividades desconocidas. Los aspectos más importantes de este ensayo son su naturaleza de alto rendimiento, de personalización, facilidad de uso y la flexibilidad. Con esto en mente, we cree que este nuevo conjunto de herramientas mejorará en gran medida y acelerar los procesos enzimáticos de detección en aplicaciones industriales, así como aplicaciones académicas.

Disclosures

Hay dos solicitudes de patentes presentadas que implica el ensayo de sustrato placa CPH 96 pocillos y el ensayo de sustrato ICB 96 pocillos (WO2015036000 y Dinamarca PA 2015 70311).

Acknowledgments

Nos gustaría agradecer al Prof. J. Paul Knox (Universidad de Leeds, Reino Unido), que proporciona acceso a sus laboratorios para el rodaje, y Susan E. Marcus por su excelente asistencia técnica. JS reconoce el proyecto WallTraC (VII Programa Marco de la Comisión Europea (acuerdo de subvención. No: 263916) y la biomasa proyecto de siglo 21 (Innovación fundación Dinamarca, y el caso no .: 103408) SKK está agradeciendo el proyecto SET4Future (Consejo Danés de Investigación Estratégica), la estratégica Bio-Valor fundada por el Consejo danés de Investigación estratégica, el Consejo danés para la Tecnología y la Innovación (Grant Caso nº .: 0603-00522B), y un enfoque de Biología impulsada para comprender la degradación enzimática del complejo polisacárido Sistemas (Grant Caso sin .:. 107279) para la financiación de este trabajo se refleja puntos de vista de los autores sólo la Unión Europea no se hace responsable del uso que pueda hacerse de la información contener el presente documento..

Materials

Name Company Catalog Number Comments
assay kit plates Glycospot customized assay kit plates
activation solution Glycospot for activating CPH substrates
350 ml receiver plate spacer block for vacuum manifold Pall Corporation 5015 spacer block
96-well MultiScreen HV filter plate, 0.45 µm, clear, non-sterile Millipore MSHVN4510 assay plate
96-Well Microplates, Polypropylene Greiner Bio-One 651201 collection plate after washing the substrates
Nunc MicroWell 96-Well Microplates Thermo Scientific 269620 product plate
Diaphragm pump MZ 2 NT Vacuubrand 732000 vacuum pump used with the vacuum manifold
Infors HT Ecotron Infors HT 4950132 (Buch & Holm) horizontal shaker
SpectraMax M5 Molecular Devices 10067-750 (VWR) 96-well plate absorbance reader
Vacuum manifold Pall Corporation 5017 vacuum manifold
endo-cellulase (EGII) (Trichoderma longibrachiatum) Megazyme E-CELTR cellulase [cel]
endo-β-1,4-mannanase (Cellvibrio japonicus Megazyme E-BMACJ mannanase [man]
endo-β-1,3-glucanase (Trichoderma spp.) Megazyme E-LAMSE β-glucanase [glu]
endo-β-1,4-D-galactanase (Aspergillus niger Megazyme E-EGALN galactanase [gal]
endo-β-1,4-xylanase M4 (Aspergillus niger Megazyme E-XYAN4 xylanase [xyl]
endo-xyloglucanase (GH5) (Paenibacillus sp. Megazyme E-XEGP xyloglucanase [xg]
α-amylase (Bacillus licheniformis Megazyme E-BLAAM amylase [amy]

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Lombard, V., Ramulu, H. G., Drula, E., Coutinho, P. M., Henrissat, B. The carbohydrate-active enzymes database (CAZy) in 2013. Nucleic Acids Res. 42, (Database issue), D490-D495 (2014).
  2. Cantarel, B. L., et al. The Carbohydrate-Active EnZymes database (CAZy): an expert resource for Glycogenomics. Nucleic Acids Res. 37, D233-D238 (2009).
  3. Agblevor, F. A., Murden, A., Hames, B. R. Improved method of analysis of biomass sugars using high-performance liquid chromatography. Biotechnol. Lett. 26, (15), 1207-1211 (2004).
  4. Black, G. E., Fox, A. Recent progress in the analysis of sugar monomers from complex matrices using chromatography in conjunction with mass spectrometry or stand-alone tandem mass spectrometry. J. Chromatogr. A. 720, (1-2), 51-60 (1996).
  5. Miller, G. L. Use of Dinitrosalicylic Acid Reagent for Determination of Reducing Sugar. Anal. Chem. 31, 426-428 (1959).
  6. Somogyi, M. Notes on Sugar Determination. J. Biol. Chem. 195, (1), 19-23 (1952).
  7. Zantinge, J. L., Huang, H. C., Cheng, K. J. Microplate diffusion assay for screening of beta-glucanase-producing microorganisms. Biotechniques. 33, (4), 798 (2002).
  8. Kračun, S. K., et al. A new generation of versatile chromogenic substrates for high-throughput analysis of biomass-degrading enzymes. Biotechnol Biofuels. 8, (2015).
  9. Leemhuis, H., Kragh, K. M., Dijkstra, B. W., Dijkhuizen, L. Engineering cyclodextrin glycosyltransferase into a starch hydrolase with a high exo-specificity. J. Biotechnol. 103, (3), 203-212 (2003).
  10. Nyyssonen, M., et al. Coupled high-throughput functional screening and next generation sequencing for identification of plant polymer decomposing enzymes in metagenomic libraries. Front Microbiol. 4, 282 (2013).
  11. Sweeney, M. D., Xu, F. Biomass Converting Enzymes as Industrial Biocatalysts for Fuels and Chemicals: Recent Developments. Catalysts. 2, (2), 244-263 (2012).
  12. Biely, P., et al. Action of xylan deacetylating enzymes on monoacetyl derivatives of 4-nitrophenyl glycosides of beta-D-xylopyranose and alpha-L-arabinofuranose. J. Biotechnol. 151, (1), 137-142 (2011).
  13. Mackenzie, A. K., et al. A polysaccharide utilization locus from an uncultured bacteroidetes phylotype suggests ecological adaptation and substrate versatility. Appl Environ Microbiol. 81, (1), 187-195 (2015).
La selección de alto rendimiento de los hidratos de carbono-El uso de enzimas que degradan la novela insoluble cromogénico sustrato de ensayo Kits
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Schückel, J., Kračun, S. K., Willats, W. G. T. High-throughput Screening of Carbohydrate-degrading Enzymes Using Novel Insoluble Chromogenic Substrate Assay Kits. J. Vis. Exp. (115), e54286, doi:10.3791/54286 (2016).More

Schückel, J., Kračun, S. K., Willats, W. G. T. High-throughput Screening of Carbohydrate-degrading Enzymes Using Novel Insoluble Chromogenic Substrate Assay Kits. J. Vis. Exp. (115), e54286, doi:10.3791/54286 (2016).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter