Introduction
식균 작용은 인식을하고 섭취 재료의 국제화 및 저하로 연결하는 수용체를 표면 재료의 결합을 시작하는 중요한 세포 기능이다. 이러한 금형 Dictyostelium의 discoideum 및 아메바 같은 단세포 진핵 생물은 박테리아에 공급하는 식균 작용을 사용하는 반면, 고등 생물 전문 세포로 진화했다. 대 식세포 또는 수지상 세포는 다양한 조직과 기관의 병원균에 대한 방어의 첫 번째 라인이며, 항원 제시 및 사이토 카인 생산 1-4을 통해 적응 면역 체계를 활성화 할 중요하다. 특정 상황에서 식균 작용은 비전문가 탐식 세포, 예컨대, 내피 세포 및 상피 세포에 의해 수행 될 수있다. 이 과정은 개발 과정과 정상 조직의 매출과 리모델링에 대한 성인의 항상성을 유지하는 것이 중요하다. 이러한 고환 또는 망막의 세르 톨리 (Sertoli) 세포와 같은 마지막으로, 전문 식세포색소 상피 세포는 매우 강력한 식세포 5입니다.
phagosome의 형성은 어디 미생물이나 세포 파편의 저하는 탐식 세포의 표면에 식세포 수용체의 클러스터링 시작을 발생합니다. 이러한 Fc 수용체 FCR () 또는 보완 수용체 (CR을) 등의 옵 소닌 수용체의 클러스터링을 다음과 같은 다운 스트림 신호 이벤트가 아니라 특징으로하고있다. 그러나, 수신자 같은 수용체 (TLR에), 렉틴, 만노스 수용체와 스 캐빈 저 수용체 등 다양한 비 옵 소닌 수용체도 있습니다. 이들 수용체는 만노스 또는 푸 코스 잔기, 포스파티딜 세린, 및 리포 폴리 사카 라이드 1,6-9로서 입자 표면에 결정을 인식한다.
병원체 또는 세포 파편 인식에 다음 강렬하고 과도 굴지 리모델링으로 이어질 식세포 수용체의 여러 종류의 클러스터링 바인딩을 포함한다. 세포 내 compartmen의 병렬, 초점 세포 외 유출에TS는 막 긴장의 방출에 기여하고, 큰 입자의 효과적인 식세포 작용에 중요하다. 액틴 중합 막 변형을 유도하는 신호 이벤트는 하나의 식세포 수용체를 유발 실험 모델에서 해부했다. FcRγ 쇄 매개 식균 작용하는 동안, 작은 GTP 아제 (RAC, Cdc42)에 의해 조절된다 강렬한 액틴의 중합이있다. 자신의 다운 스트림 이펙터 중, 비스 코트 - 올드리치 증후군 단백질 (WASP)은 액틴 필라멘트 1,2,4,10를 핵이 액틴 관련 단백질 복합체 2/3 (Arp2 / 3)의 활성화로 연결됩니다. 포스파티딜 이노시톨 -4,5- 비스 포스페이트 (PI (4,5) P (2))의 로컬 생산 pseudopod 형성 초기 구동 액틴 중합 중요하다. PI (3,4,5) P (3) 그 변환은 pseudopod 확장 및 phagosome 폐쇄 (11)가 필요합니다. 여러 경로는 PI (4,5) P (2)의 실종에 기여한다. 포스파티딜 이노시톨 인산염 키나의 첫째 분리phagosome 체포의 PI (4,5) P (2) 합성에서 SES (PIPKIs). 둘째, 인산화 될 수 있고, 내가 키나제 (PI3K)를 PI3K 클래스에 의해 소비 PI (3,4,5) P (3) (12)에 변환됩니다. 포스와 포스 포에 대한 역할은 포유 동물 세포 및 Dictyostelium (13, 14)에 식균 작용 동안 PI (4,5) P (2) 가수 분해 및 F - 굴지 제거 암시하고있다. 포스 포 리파제 C (PLC) δ는 디아 실 글리세롤 및 이노시톨 1,4,5- 트리스 포스페이트에 PI (4,5) P (2)를 가수 분해한다. 된 PI (4,5) P (2)와 PI (3,4,5) P (3) 인산 OCRL은 (로우의 로우 증후군)도 phagosome 형성에 관여하고있다. F - 굴지 및 해중합의 정확한 지역의 형성이 밀접하게 공간과 시간에 규제되고 우리가 세포 내 구획의 모집을 보인 것은 따라서 식세포 컵의 바닥에 지역 굴지의 해중합에 기여하고, 로컬 OCRL 포스 파타 아제를 제공하는 것이 중요하다 phagosome 폐쇄 및 막 절단에 필요한기구 및 분자 선수는 가난 때문에 시각화 및 phagosome 폐쇄의 사이트를 모니터링의 어려움 정의 된 상태로 유지됩니다. 최근까지, 식균 작용은 어려운 phagosome 폐쇄의 사이트의 적시 시각화하고, 자신의 등쪽면에 또는면에 입자를 내면화 고정 또는 살아있는 세포에서 관찰되었다. 또한, 고정 방법은 세포막과 바이어스 pseudopodia 확장 및 폐쇄에 결과의 철회의 원인이 될 수 있습니다. 대조적으로, 우리가 설정하고 여기에 기술 한 분석은 우리가 pseudopod 확장 및 총 내부 반사 현미경 (TIRFM) (16)에 기초하여 살아있는 세포 (13)의 탐식의 폐쇄 단계를 시각화 할 수 있습니다. 이 기술은 광학 투명의 계면에 얇은 영역에서 형광체를 여기하기 위해 소멸 파를 사용하므로뚜껑 (커버 슬립) 및 액체 (세포 배양 배지). 여진 깊이의 두께는 세포막에 가까운 분자 이벤트의 시각화를 허용 고체 표면에서 약 100 ㎚이다. TIRFM 높은 신호 대 바탕 비율을 허용 의한 세포의 조명에 수집 포커스 아웃 형광 세포 독성을 제한한다. TIRFM을 활용, 우리는 커버 슬립이의 IgG-옵 소닌 적혈구 (IgG를-SRBCs)로 코팅 한 후 폴리 리신으로 활성화되는 "phagosome 폐쇄 분석"을 개발했다. 관심 일시적으로 찬란 태그 단백질을 발현하는 대 식세포는 다음의 IgG-SRBCs을 삼켜 할 수 있습니다. 세포 비공유 유리 표면에 바인딩 대상 입자를 분리하는 동안, pseudopods의 선단 관찰하고 TIRF 모드에서 기록 될 수있다. TIRF 인수는 마주 할 수있는 위의 3 단계 μm의를 이동 한 후, 표면 형광 모드에서 인수와 결합탐식 컵베이스의 ualization. 이러한 과정 액틴 또는 dynamin 억제 것과 약리학 약물의 첨가는 상기 분자 수준의 처리를 절개하는 것이 가능하다. 여기에 상세히 설명 된 프로토콜은 RAW264.7 쥐의 대식 세포주 및 옵 소닌 입자이지만, 사실상, 이것은 다른 포식 세포와 같은 비드와 같은 다른 표적에 적용될 수있다. 이 방법은 시간과 다양한 식세포 과정에서 pseudopod 확장 및 phagosome 폐쇄에 관여하는 분자 선수의 공간에서 규제의 더 나은 특성을 수 있습니다.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
참고 : Lifeact-mCherry 사용되는 플라스미드 (17) 후에 생성 박사 기욤 Montagnac, 연구소 퀴리, 파리, 일종의 선물이다.
1. 세포와 형질
참고 RAW264.7 식세포가 완전 배지에서 서브 컨 플루 (RPMI (로스웰 파크 메모리얼 연구소) 1640 배지, 10 mM의 HEPES, 1 mM 피루브산 나트륨, 50 μM의 β 머 캅토 에탄올로 성장 2 mM의 글루타민 및 10 % FCS ( 100 밀리미터 접시에 소 태아 혈청)). 그들은 전기에 의해 찬란 태그 단백질을 코딩하는 플라스미드로 형질된다. 정기적으로 약 5 - 6 10 6 세포는 각각 각 형질 전환 또는 공동 형질 전환 용 플라스미드의 20 μg의 10 μg의 형질된다 X. 리포 펙션 또는 전기 천공에 기초하여 형질 전환의 다른 방법은 다른 방식으로 사용될 수 있습니다.
- 셀 리프터 세포를 긁어로 pipetting하여 여러 번 아래 배지 10ml에이를 재현 탁.
- 원심 분리기세포 현탁액 (300) XG, 스윙 각도 로터의 RT에서 5 분.
- 완전 배지의 데우고 10 ml를 37 ℃에서 10 μg의 겐타 마이신 / ㎖로 보충.
- 원심 분리 후, 상층 액을 제거하고 전기 키트에서 "세척 버퍼 A"의 3 ㎖에 펠렛을 재현 탁.
- 세포 현탁액 300 XG, 스윙 로터 각도에서 실온에서 5 분 동안 원심 분리기.
- 한편, 실온에서 DNA 믹스를 조제 : 120 μL 배 완충액 B를, 관심있는 단백질 QSP 240 μL의 H 2 O를위한 플라스미드 DNA 코딩의 20 μg의
- 원심 분리 후, 전체 상층 액을 버린다.
- DNA의 혼합물에서 세포 펠렛을 재현 탁하고 4mm 전기 천공 큐벳으로 옮긴다.
- 3 분 동안 실온에서 품어.
- 250 V, 900 μF에서 Electroporate.
- 즉시 겐타 마이신으로 보충 된 상기 예열 (37 ° C) 세포를 완전 배지 재현 탁하고 판형100 밀리미터 접시에 m.
- 하룻밤 37 ° C, 5 % CO 2의 형질 감염된 세포를 품어.
- 다음날 아침, (페놀 레드없는 RPMI 1640, 10 mM의 HEPES, 1 mM 피루브산 나트륨, 50 μM의 β 머 캅토 에탄올, 2 mM의 글루타민) 혈청 현미경 배지 10 mL로 완전 배지를 교체한다.
적혈구 2. 옵 소닌
주 : 대 식세포 입자 대상의 모델로서, 양 적혈구 (SRBCs)가 사용된다. 일반적으로 35mm 유리 바닥 접시 당 약 7 × 10 6 SRBCs이 사용됩니다.
- 1X PBS (인산염 완충 식염수) /0.1% BSA (소 혈청 알부민)와 원심 분리기 (600 XG, 4 분) 100 ㎕로 세척 SRBCs.
- 원심 분리 후, 상층 액을 버리고 1X PBS 100 ㎕ / 0.1 % BSA와 원심 분리기 (600 XG, 4 분)에 SRBCs을 재현 탁.
- 원심 분리 후, 상층 액을 버리고 토끼 IgG 형 SRBCs와 1X PBS에서 / 0.1 % BSA를 SRBCs를 재현 탁에서 농도를 서브 응집. SRBCs의 항체 / 5 μl를 함유 용액 500 μl를 사용합니다.
주 : 항체의 서브 응집 농도 네트워크의 형성으로 검출 응집을 유도하지 않았다 최저 농도에 상응한다. 일반적으로, 서브 - 응집제의 농도는 8.2 ㎍ / mL로한다.- 혈구 응집 시험에 의해 SRBCs을 opsonize하는 데 필요한 IgG 형 SRBCs의 농도를 결정합니다. 마이크로 1 / 25,600 - 직렬 1/50 사이 (13.1 ㎎ / ㎖에서 주) IgG 형 SRBCs을 희석. 각 웰에 2 × 10 6 SRBCs를 추가합니다. 몇 시간 동안 실온에서 어둠 속에서 접시를 품어.
- 느린 회전 30 분 동안 실온에서 품어.
- 1X PBS에 두 세척 / 전술 한 바와 같이 0.1 % BSA 후 예열 현미경 무 혈청 배지에서의 IgG - 옵 소닌 SRBCs (IgG의-SRBCs) (2 ㎖ / 접시)를 재현 탁.
Coverslips는 3. 폴리 라이신 코팅
- 한편실온에서 30 분 동안 0.01 % 폴리 -L- 리신 2 ㎖로 35mm 유리 바닥 요리를 취급한다.
- 1X PBS 2 ㎖로 요리 두 번 씻으십시오.
유리 바닥 요리에 SRBCs 4. 비 공유 고정
- 35mm의 유리 바닥 접시 당 SRBCs 현탁액 2 ㎖를 붓고.
- 35mm의 유리 바닥 접시 위에 2 분 동안 500 XG에서 스윙 로터와 원심 분리기.
- 상층 액을 제거하고 1X PBS / 10 % BSA 2 ㎖로 한 번 씻는다.
- 접시 당 1X PBS / 10 % BSA 2 ㎖로 30 분 동안 입자를 부화.
- 1X PBS 2 ㎖로 요리 세 번 씻으십시오.
- 예열 된 (37 ℃) 무 혈청 현미경 배지 2 ㎖로 1X PBS 교체.
5. 탐식 TIRFM에 의해 가시화
- 현미경
참고 TIRFM는 오일 액침 대물 (N 100X, NA1.49), CO (2)와 가열 챔버를 구비 한 현미경을 사용하여 수행하고, 두 노래1.5 배 렌즈와 결합 르 광자 검출 카메라 EMCCD (배가 전자 전하 결합 소자).- TIRF 현미경 세션 전날, 현미경 스테이지의 균일 한 가열을 할 수 있도록 37 ºC에서 가열 실의 전원을 켭니다.
- 임계각 결정
참고 ImageJ에 컬러 프로파일 소프트웨어 TIRF 이미지 스트림을 처리하기 위해 사용된다.- 현미경 무 혈청 현미경 매체와 옵 소닌 SRBC를 포함하는 35mm의 유리 바닥 접시를 놓습니다.
- 세포를 긁어하고 추가하기 전에 매체를 재현 탁 - 접시에 (100 500 μl를).
- 현미경을 제어하고 491 nm의 및 / 또는 형광 태그 단백질을 발현하는 세포를 식별하는 561 nm의 레이저로 여기를 수행하기 위해 "라이브 취득"소프트웨어를 사용합니다.
- 찬란 태그 단백질을 발현하는 세포를 식별합니다.
- 필드의 중간에 배치하고 500 메신저 취득다른 각도와 하나의 여기 파장에서 연령, 0.01º (그림 2A)의 증가와 함께, 5 °까지 0 °에서 시작. 각도 자동 현미경 시스템에 의해 변경된다.
- 입사광이 완전히 유리 / 매체 인터페이스에 반영 될 수 있도록 임계각을 결정하고 소멸 파를 생성합니다. ImageJ에 색상 프로파일 러 소프트웨어를 사용하여, "파일"을 클릭하여 "열기"이미지 시퀀스를 열고 파일을 선택합니다.
- 균일 한 형광 (도 2B 옐로우 1)와 셀 직사각형 도구, ROI (region of interest)를 선택한다.
- 은 "Z 축 프로파일"플롯 (메뉴 "플롯 Z 축 프로필"드롭 다운 메뉴의 "콘텐츠"탭 "스택"을도 2b를 클릭하여 X 축에 대한 각도의 함수로 ROI 측정 형광 강도를 의미 빨간색 2).
주 : 임계각은 MA 선도 각도형광의 급격한 감소 전에 ximum 형광. - 예 2.00 (도 2C)과 같은 TIRF 신호를 획득하기 위해 현미경 세션 중 임계각보다 우수한 X 축에 대한 각도의 값을 사용한다.
- 취득
- 라이브 수집 소프트웨어를 사용하여 모듈 "프로토콜 편집기"(그림 3A)와 인수의 매개 변수를 설정합니다.
- TIRF 지역에 대한 관심의 단백질의 형광 신호를 획득하는 "멀티 채널"인수를 포함하는 "루프"와 프로토콜을 만듭니다. (예 : 2.00)을 TIRF 각도 (예 : 50 밀리 초에 대한) 노출 시간 (예 50 %) 레이저 강도 (그림 3B 1)를 입력합니다.
- 은 "멀티 채널"도구를 사용하여 표면 형광에서 신호 포착을 얻기 위해 TIRF 영역 위의 목적 3 ㎛의 "Z 이동"을 소개합니다. t 아래 각도를 입력그 임계각 (예 : 1.00)을, 폭발의 시간 (50 밀리 초) 레이저 강도 (50 %) (도 3b,도 2 및도 3).
- 다음은 TIRF 영역 (그림 3B 4)에서 반환, 아래의 목적 3 ㎛의 "Z 이동"을 추가합니다. (발광 다이오드) (그림 3B 5) LED 밝은 빛 셀의 "스냅 샷"을 추가합니다.
- 입자 주위에 세포막을 확장하여 SRBC의 식균 작용을 시작 형광 태그 단백질 발현의 중간 수준으로 관심의 세포를 찾아보십시오.
- 필드의 중간에 넣습니다.
- 1000 프레임 - 500의 인수를 스트리밍 시작합니다. 은 "루프 카운트"탭에서 "750 프레임"(그림 3B 1)를 입력합니다.
참고 ImageJ에 컬러 프로파일 소프트웨어 TIRF 이미지 스트림을 처리하기 위해 사용된다. - 클릭하여 이미지 J 소프트웨어의 시퀀스 이미지를 엽니 다, "열기", "파일"파일을 선택.
- 탭 "이미지"를 클릭하여 채널을 분리, "Hyperstacks은"메뉴 "스택 hyperstack하기"기능에 드롭 다운. 등장 창을 완료 : 주문 : xyctz을; 채널 (C) : 채널 번호 (예 : "2"두 개의 형광 색소가있는 경우); 조각 (z) : z 축 슬라이스의 수 (예 : "1"Z- 축에 아무런 움직임이없는 경우); 프레임 (t) : 채널 수에 따라 분할 이미지의 수; 디스플레이 모드 : 그레이 스케일.
주 : 두 개의 별도의 이미지 시퀀스는 두 개의 서로 다른 채널에 대응하여 생성된다.
- 라이브 수집 소프트웨어를 사용하여 모듈 "프로토콜 편집기"(그림 3A)와 인수의 매개 변수를 설정합니다.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
이 논문에 설명 된 실험 시스템은 개략적으로도 1에 표시된다. 형광 태그에 융합 관심의 단백질을 발현하는 트랜 RAW264.7 식세포는 비공유 수정 된 IgG를 - 옵 소닌 양 적혈구 (SRBCs)에 접촉 배치 커버 슬립에. 대 식세포는 그것을 삼켜하기 위해 커버 슬립에서 SRBC를 분리 할 수 있습니다. 사용 TIRF 현미경이 3 μm 이상의 Z 시프트 후의 표면 형광 모드 pseudopods 및 신호의 선단에 대응하는 TIRF 영역으로부터 신호를 수반 취득 할 수있다.
이는도 2이 플라즈마 막 아래의 100 nm의 영역에서 깨끗한 TIRF 신호 보장에 기재된 3도. 전반사 형광 대한 임계각을 결정하는 것이 필수적이다 acquisiti의 발전을 나타낸다"프로토콜 편집기"라는 모듈을 통해 매개 변수를 라이브 수집 소프트웨어에 포함되어 있습니다. 이 모듈은 사용자가 생성하고이 프로세스를 실행 현미경에 보내기 전에 워크 플로우를 관리 할 수 있습니다. 인수의 끝에서, 사용자는 TIFF 스트림을 수집한다.
그림 4는, 예를 들어, Lifeact-mCherry 박사 기욤 Montagnac, 연구소 퀴리, 파리의 일종 선물이 후 생성 된 플라스미드 (형질 RAW264.7의 대 식세포에 "phagosome 폐쇄 분석"의 대표 라이브 셀 TIRFM 영화 17) 액틴의 중합을 수행합니다. 대 식세포는 일시적으로 발현하는 플라스미드는 coverslip에 바인딩의 IgG-SRBCs를 침몰시켰다. pseudopods의 팁 하나 SRBC 주위에 유리 커버 슬립에 나란히 놓이는 된 바와 같이, F - 굴지 링은 TIRF 영역에 폐쇄 될 때까지 점진적으로 축소 (상단 패널)를 검출되었다. 병행, 흐린 F - 굴지탐식 컵의 바닥에 해중합에 맞습니다 (아래 패널) 위의 3 단계 μm의 이동 후 표면 형광 검출 신호를 출력한다. 투과광 (오른쪽 패널)로 확인 된 인수의 3 분 후, SRBC 완전히, 내면화되었다.
따라서,이 방법은 적절히 pseudopods의 맨 끝과 식세포 컵의베이스에서 발생하는 분자 수준에서 일어나는 분자 이벤트를 구별하는데 사용될 수있다.
그림 TIRFM에 의해 분석은 "Phagosome 폐쇄 분석"의 도식 표현. phagosome 폐쇄 분석은 일시적으로 하나 또는 두 개의 형광 태그로 단백질을 발현하는 대 식세포를 사용하여 수행된다. 대 식세포는 비공유 폴리 리신 COA에 고정-IgG의 옵 소닌 SRBCs에 퇴적테드가 된 커버. 이미지는 식세포 컵의 바닥을 감지 phagosome의 폐쇄 및 표면 형광 모드에서 사이트를 감지 할 TIRF 모드에 기록됩니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2 : TIRFM에 대한 중요 각도의 결정. (A) "라이브 인수"를 사용하여, 형광 태그로 단백질을 발현하는 세포가 (적색 영역 (1)) 필드의 중앙에 배치된다. TIRF 스택 옵션을 선택하면 이미지가 다른 각도는 0.01 ° (빨간색 영역 2)의 증가와 함께, 5 °까지 0 °에서 시작하는, 하나의 여기 파장에서 획득 하였다. (B) 이미지의 순서가 ImageJ에를 사용하여 열 컬러 프로파일 소프트웨어 및 AR의 평균 형광 강도관심 egion (ROI)는 "스택"과 "PlotZ 축 프로파일"(빨간색 영역 1)을 이용하여 X 축에 대한 각도의 함수로 도시된다. (C)의 플롯 형광 피크의 x 위치에 대응 임계각 : 1.98 ° (검은 점선). 이 각도 후의 상관 값을 사용할 수있다. 예를 들어, 2.00 °가 (빨간 선) 선택 될 수있다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
라이브 획득 모듈을 사용하여 그림 3. 워크 플로 프로세스 "프로토콜 편집기". (A)은 "편집기 프로토콜"윈도우에서, 워크 플로 캔버스가 생성된다. (B)이 프로토콜은 현미경 결정 횟수를 반복 할 것이다 조치 "루프"를 포함사용자가. 예로서, 750 (1). 한 루프 포함 : TIRF 모드에 대한 관심의 형광 단백질의 레이저 여기에 "멀티 채널"취득. 예로서 : 레이저 491 nm의 강도의 50 % -TIRF 각도 2.00 (2); 목적의 "Z 이동"3 μm의 (3); 표면 형광 모드에서 "멀티 채널"수집 (4); 다시 TIRF 영역 (5)과 투과광 (6)에 "스냅 샷"에 목적의 "Z 이동". 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 4. F - 굴지는 일시적으로 플라스미드 Lifeact-mCherry (박사 기욤 모 일종의 선물을 표현 RAW264.7의 대 식세포를 사용하여 수행 하였다 Phagosome 폐쇄. Phagosome 폐쇄 분석의 사이트에서 포인트로 누적됩니다ntagnac, 17 일 후에 생성 연구소 퀴리, 파리,). 플라스미드 신호는 TIRF 영역 (위)와 표면 형광 모드 (아래)에 인수되었다. 빨간색 화살표는 TIRF 지역에서 굴지의 축적을 나타냅니다. 3 분의 투과광 이미지는 내면화 SRBC를 나타내는 표시됩니다. 스케일 바, 10 μm의. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
영화 1 :.이 일시적으로 플라스미드를 표현 RAW264.7의 대 식세포를 사용하여 수행 된 식세포 컵 Phagosome 폐쇄 분석의 자료에서 해제되는 동안 F - 굴지가의 Pseudopods의 팁과 Phagosome 폐쇄의 사이트에 축적된다. TIRFM를 사용하여 플라스미드 TIRF 영역 (상부)의 표면 형광 이미징 모드 (하단)의 대안 실시 하였다LY 37 ° C에서 3 분 동안 매 50 밀리 초. 이 비디오를 보려면 여기를 클릭하십시오.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Anti-sheep red blood cells IgG | MP Biomedicals | 55806 | |
| Bovine Serum Albumin heat shock fraction, pH 7, ≥98% | Sigma | A7906 | |
| Cell lifter | Corning | 3008 | |
| Cuvettes 4 mm | Cell project | EP104 | |
| DPBS, no calcium, no magnesium | Thermo Fischer Scientific | 14190-094 | Room temperature |
| Electrobuffer kit | Cell project | EB110 | |
| 100 mm TC-Treated Cell Culture Dish | Corning | 353003 | |
| Gene X-cell pulser | Biorad | 165-2661 | |
| Gentamicin solution | Sigma | G1397 | |
| Glass Bottom Dishes 35 mm uncoated 1.5 | MatTek corporation | P35G-1.5-14-C Case | |
| iMIC | TILL Photonics | Oil-immersion objective (N 100X, NA1.49), heating chamber with CO2, a camera single photon detection EMCCD (Electron Multiplying Charge Coupled Device) and a 1.5X lens | |
| Poly-L-Lysine Solution 0.1% | Sigma | P8920-100ml | Dilution at 0.01% in water |
| RPMI 1640 medium GLUTAMAX Supplement | Life technologies | 61870-010 | |
| RPMI 1640 medium, no phenol red (10 x 500 ml) | Life technologies | 11835-105 | Warm in 37 °C water bath before use |
| Sheep red blood cells (SRBCs) | Eurobio | DSGMTN00-0Q | Conserved in Alsever buffer at 4 °C before use |
References
- Flannagan, R. S., Jaumouille, V., Grinstein, S.
- Swanson, J. A. Shaping cups into phagosomes and macropinosomes. Nat Rev Mol Cell Biol. 9, 639-649 (2008).
- Stuart, L. M., Ezekowitz, R. A. Phagocytosis and comparative innate immunity: learning on the fly. Nat Rev Immunol. 8, 131-141 (2008).
- Niedergang, F. Encyclopedia of Cell Biology. Bradshaw, R. A., Stahl, P. D. 2, Academic Press. Waltham, MA. 751-757 (2016).
- Poon, I. K., Lucas, C. D., Rossi, A. G., Ravichandran, K. S. Apoptotic cell clearance: basic biology and therapeutic potential. Nat Rev Immunol. 14, 166-180 (2014).
- Aderem, A., Underhill, D. M.
- Underhill, D. M., Goodridge, H. S.
- Underhill, D. M., Ozinsky, A.
- Canton, J., Neculai, D., Grinstein, S. Scavenger receptors in homeostasis and immunity. Nat Rev Immunol. 13, 621-634 (2013).
- Freeman, S. A., Grinstein, S. Phagocytosis: receptors, signal integration, and the cytoskeleton. Immunol Rev. 262, 193-215 (2014).
- Scott, C. C., et al. Phosphatidylinositol-4,5-bisphosphate hydrolysis directs actin remodeling during phagocytosis. J Cell Biol. 169, 139-149 (2005).
- Schlam, D., et al. Phosphoinositide 3-kinase enables phagocytosis of large particles by terminating actin assembly through Rac/Cdc42 GTPase-activating proteins. Nat Commun. 6, 8623 (2015).
- Marion, S., et al. The NF-kappaB Signaling Protein Bcl10 Regulates Actin Dynamics by Controlling AP1 and OCRL-Bearing Vesicles. Dev Cell. 23, 954-967 (2012).
- Loovers, H. M., et al. Regulation of phagocytosis in Dictyostelium by the inositol 5-phosphatase OCRL homolog Dd5P4. Traffic. 8, 618-628 (2007).
- Deschamps, C., Echard, A., Niedergang, F. Phagocytosis and cytokinesis: do cells use common tools to cut and to eat? Highlights on common themes and differences. Traffic. 14, 355-364 (2013).
- Johnson, D. S., Jaiswal, J. K., Simon, S. Chapter 12, Unit 12.29: Total internal reflection fluorescence (TIRF) microscopy illuminator for improved imaging of cell surface events. Curr Protoc Cytom. , (2012).
- Riedl, J., et al. Lifeact: a versatile marker to visualize F-actin. Nat Methods. 5, 605-607 (2008).
- Marie-Anais, F., Mazzolini, J., Herit, F., Niedergang, F. Dynamin-actin cross-talk contributes to phagosome formation and closure. Traffic. 17 (5), 487-499 (2016).
