Introduction
קדמי Nonarteritic נוירופתיה אופטית איסכמית (NAION) היא נגע איסכמי מוקד של החלק הקדמי של עצב הראייה (אונ) 1. NAION הוא הגורם השכיח ביותר לאובדן ראייה קשורת עצב ראייה פתאומי אצל אנשים מעל גיל 50 2. המנגנון הוא האמין להיות תסמונת תא שתוצאתו בצקת intraneural, וגורם דחיסה של הנימים באספקת אקסונים בתוך עצב הראייה 3.
מאז ON הוא למעשה מערכת עצבים מרכזית (CNS) בדרך, את NAION מכרסם מודל (rNAION) ניתן להשתמש כדי לחקור את המנגנונים ותגובות משייכות חומר לבן מבודדות CNS. מודל rNAION עשוי אפוא להיות שימושי לנתח בעיות רבות הקשורות ניזק הקשורים שבץ חומר לבן. ניתן להשתמש בו כדי להעריך אסטרטגיות neuroprotective שונות וסוכני שבץ חומר לבן.
אחד המאפיינים האטרקטיביים ביותר של המודל הוא שזההליך מכאיב, לא פולשנית. כוח לייזר יכול להיות מותאם כדי לייצר תואר שונים של נזק איסכמי. תכונה נוספת היא כי היא מסתמכת על רדיקלים דיסמוטאז המושרה לייזר לפגוע האנדותל נימי, הפקת בתפקוד נימי פרוגרסיבי. זה בצק תפקוד ומתקדם זו כי הוא האמין להיות דומה להפליא למנגנון שגורם NAION. מחקרים הראו כי הוא אינו גורם הקרישה נימי ישירה, אבל פועל דרך שני מנגנונים לפחות: מוות המושרה דיסמוטאז הפשטה של כמה נימי תאי אנדותל 4, ו NFkB (הפקטור הגרעיני כפא-אור-שרשרת-משפר של תאי B מופעל ) קשור תקנה דלקתית למעלה נותרים האנדותל, עם עליות בתחבורה נוזל על פני קרום התא אל interstitium 5. סגירת נימי עצב הראייה והדחיסה שנגרמו בעקבות הצטברות נוזל ביניים איסכמיה ראש עצב ראייה. תמונת סכמטית מוצגתאיור 2. מודל rNAION ניתן להשתמש בשני מיני החולדה ועכבר 6,7, וניתן לשינוי ברמת חומרתה, מתוך נגע קל עד הרס מוחלט, אבל כאבים של עצב הראייה והרשתית, כגון כמו חסימה בעורק המרכזי ברשתית (CRAO).
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
פרוטוקול זה אושר על ידי האוניברסיטה של טיפול בבעלי חיים מוסדיים מרילנד ועדת ניצול (IACUC; בבולטימור, מרילנד, ארה"ב)
1. ניסיוני Set-up
- ערוך עדשות מגע אישיות מעוצב מתוך מ"מ 7 עגול כיתה אופטית ברורה בקוטר פרספקס, בעובי 3 מ"מ. חותך את העדשות העגולות עם מקדחה. השתמש מקדח מקובל כדי להשמיע העיקול הפנימי, ולבסוף למרק את העקומות החיצוניות ופנימיות באמצעות מלטש עדשות מגע של חצץ ultrafine (1000/3000).
- הכן 2.5 מ"מ רוז בנגל (RB) ב- pH 7.4 חיץ מלוחים פוספט (PBS) מראש, מסנן לעקר עם מסנן מזרק 0.45 מיקרון ולאחסן 1 מ"ל aliquots ב -20 מעלות צלזיוס במיכל אור חזק עד 6 חודשים.
הערה: השימוש בבעלי חיים זכר outbred לבקן, כגון ספראג Dawley ממזער את ההבדלים בתגובה תלוי זן, מאפשרת בקלות מוגברת של אינדוקציה ומקטינה את ההשתנות שעלולות להתרחש עם הייחום cycliנקבת ng. - הגדר את תדירות הוכפל נופך אלומיניום ניאודימיום איטריום (FD-YAG) לייזר רפואי עיניים, אשר מייצר אור לייזר 532 ננומטר. הר לייזר על מנורת סדק עיניים Haag-שטרייט באמצעות מתאם לייזר עיניים רגיל. התקן זמין מסחרי זו מאפשר הדמיה סימולטני של יישום נקודת עין ליזר של החיה. הלייזר הרפואי יש גם קרן מכוון התמקדות נכונה centration שימוש באותו גודל נקודה כמו אינדוקציה לייזר. פרמטרי כוח הליזר הם כדלקמן:
- לזירוז rNAION עכברוש: להשתמש 500 מיקרומטר נקודה גודל / 50 mW לייזר כוח / 1000 משך msec / 1,000 מרווח msec.
- לזירוז עכבר rNAION: לשנות את גודל הנקודה 300 מיקרומטר עבור דיסק אופטי קטן ולהשאיר ופרמטרים נוספים באותו כהגדרת החולדה.
- משתמשים באופן שגרתי מד הכוח לייזר על מנת להבטיח את תפוקת החשמל לייזר.
2. נוהל ניסיוני
- הפעילו את המחשב לייזרולהקים פרמטר הליזר המתאים. מומלץ לחמם את לייזר לפני השימוש חמש דקות לפחות.
- לשקול את החיה על מנת לקבוע את המינון המתאים עבור קטמין / xylazine וצבע RB. להרדים את החיה על ידי הזרקת intraperitoneal של תערובת 1 מ"ל / ק"ג של 80 מ"ג / מ"ל קטמין ו xylazine 4 מ"ג / מ"ל.
- השאר את החיה בכלוב מחומם עד בהרדמה מלאה. בדקו אם אין תגובה לגירויים מרתיעים (זנב או קמצוץ בוהן). בדוק חיות עבור עומק ההרדמה כל 10 דקות.
- להרחיב את התלמידים של החיה עם 1% tropicamide ו להרדים את השטח של העין עם 0.5% proparacaine. אם השימוש בבעלי חיים פיגמנט, כגון לונג אוונס, טיפות עיניים 2.5% neosynephrine יגדל הרחבת אישון.
- השתמש במספריים לחתוך את הזיפים קרובים הלוע בצד כדי להיגרם למנוע חסימת הנוף.
- שים טיפת 1% methylcellulose או ירידת צימוד עיניים אחרת לחלק הפנימי של עדשת מגע מחוייט, ולאחר מכן להחיל את העדשה על tהוא עין עכברוש.
- מניח את החיה על פלטפורמה המותאמת לגובה של מנורת הסדק. הגדר את הראש של החיה בזווית של 45 מעלות, כך העין הוא בניצב מנורת סדק ו קרן לייזר.
- דמיינו את העין דרך מנורת סדק עיניים. ודא קרן המכוונת הוא בגודל הנכון וכן ממוקד מרוכז ישירות על העצב דמיין האופטי. צלם את הפונדוס הרשתית באמצעות מצלמה דיגיטלית עם גבוה אס"א (1,200 - 2,000) מהירות רכובה על אחת יצירות העין של מנורת הסדק עם מתאם בהתאמה אישית.
הערה: היכולת לראות את כלי כורואידלית חושפת את השקיפות של הרשתית. זהו סימן חשוב כדי להיות מסוגל לזהות איסכמיה ברשתית לאחר מכן, אשר יכולה לבלבל את הפרשנות אם היא מתרחשת. rNAION הוא איסכמיה עצב ראייה, שתוצאתה אובדן RGC המבודד, בעוד שתוצאות איסכמיה ברשתית לניזק ברשתית המשפיעים כל התאים של שכבות הרשתית הפנימיות. - לחלופין, תמונה נוספת הרשתיתעצב הראייה באמצעות טומוגרפי קוהרנטיות ספקטרלי אופטי-דומיין (SD-Oct 8) כדי להעריך את העין הנגרמת האו"ם. סרוק אן-פאס (איור 3B) וכן 7 סריקות חתך דרך הרשתית (איור 3 ג). הדמית SD-Oct משתמשת באותו עדשות מגע המשמשות לזירוז ליזר.
- להזריק 1 מ"ל / ק"ג RB לווריד דרך וריד הזנב, ולחכות 30 שניות, ולאחר מכן להפעיל את כוח לייזר. עיכוב זמן זה מאפשר RB להפיץ באופן שווה על פני המחזור. אנו משתמשים דופק ליזר 50 mW באחד שניות / דופק. האנרגיות רבתי (≥ 60 mW) עלולה לגרום נזק הרשתית או לגרום איסכמיה וסקולרית רשתית.
זהירות: לוודא שכולם יש זוג משקפיים סינון בטיחות לייזר של אורך הגל חסימת הנאותים כדי למנוע אור לייזר תועה הזנת העין של החוקר.
הערה: ממשל לייזר חייב להינתן במהירות לאחר ההזרקה IV RB מאז לצבוע מסולק במהירות מהמחזור. ככל אינדוקצית הליזר, חמור יותר איסכמיה עצב הראייה. באופן כללי, בעלי חיים מקבלים 7 - 12 פולסים שניים ברצף מהיר. המגע של אור לייזר עם צבע במחזור נותן כלי עצב הראייה זוהר זהוב יפה כי ניתן לראות דרך מנורת סדק (איור 4B). זה מוכיח לצבוע הוזרק מערכתי ומופץ לתוך זרם הדם. אם הזוהר הוא קלוש, או בכלל (איור 4 א), לצבוע לא הוזרק לווריד. במקרה זה, לא נותנים זריקה שנייה מיד, מאז החיה תצטרך להתאושש במשך יומיים לפחות לפני reinjection. - מיד לאחר אינדוקציה, להסיר את עדשות המגע. מכסים בשני העיניים עם אנטיביוטיקה משולשת עיניים (וכוהל / polymyxin / Bacitracin) משחה עם dexamethasone, ומקום חי על כרית חימום על 37 מעלות צלזיוס בתוך כלוב שוכן יחיד תחת השגחה צמודה עד להחלמה מלאה.
- נקו את עדשות המגע עם מזוקקים wאטר ולנגב יבש עם מטלית ניקוי שאינו שוחקת לשימוש עתידי.
- יומיים לאחר אינדוקציה להעריך את בצקת עצב הראייה על ידי שני בצילום צבעוני הפונדוס ו SD-Oct ניתוח 8.
הערה: השוואת מידת בצקת בעצב הראייה נותן אומדן של חומרת איסכמיה עצב הראייה. בגיל ימים, במרווח דיסק עצב הראייה מטושטש, ואת הוורידים ברשתית מורחבים מעט, לעומת העין הנגדית (un-induced). בצע electroretinography (ERG) ופלאש חזותי עורר פוטנציאל (VEP 11) בשעה שתיים לארבע שבועות לפרסם אינדוקציה לניתוח אלקטרופיזיולוגיה.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
עדשות מגע מופעלת להדמית הרשתית המרכזית (האיור 1). נקודת ליזר המוקדים מאירה את בדיסק האופטי בחלק האחורי של הרשתית (איור 2). רשתית un-induced הנורמלית מוצגת צלמה ידי מיקרוסקופ ביו מנורת סדק (איור 3 א) ועל ידי SD-אוקטובר (איור 3 ב ו -3 ג). במהלך אינדוקצית ליזר, כשאף לצבוע שוהה במחזור, אור הליזר אינו מביא כלי קרינת דיסק (איור 4 א). RB תוך ורידי ואת תאורת לייזר אור על התוצאות דיסק אופטי בתוך הקרינה צבע זהוב על עצב הראייה (איור 4B). ימים לאחר אינדוקצית rNAION, עצב הראייה נפוח (איור 5 א). פנים צמודים ו חתך SD-Oct לחשוף דיסק נפיחות (איור 5 ב) והרחבת עצב הראייה (איור 5 ג).
t "FO: keep-together.within-page =" 1 ">
איור 1. סכמטי של עדשות מגע העכברוש Planoconcave. עדשת המגע בהתאמה האישית עשויה 3 פרספקס מ"מ (עיצוב מוצג), עם מ"מ 7 קוטר חיצוני, קוטר פנימי 5 מ"מ. עדשה זו נועדה להתאים מעל הקרנית של העין עכברוש, ולאפשר להדמיה ישירה של הרשתית. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.
איור 2. סכמטי של rNAION דגם. חתך אורך דרך החלק האחורי של העין. נקודת הליזר מרוכזת על הדיסק האופטי (חצים ירוקים). התא ירוק האקסון מייצג נוירון תא גנגליון ברשתית. מיד לאחר admi RB תוך ורידיnistration, את RB מפיצה באמצעות כלי הדם בחלק האחורי של העין ועצב הראייה. קרן הלייזר משמש כדי להאיר את הדיסק עבור 7 - 12 שניות בהתאם לחומרת איסכמי הרצוי. הליזר מפעיל את photosensitizing RB לייצר רדיקלים דיסמוטאז, גורם סגירת נימים הקדמית על הראש (איסכמיה אקסונלית; ראה בצד השמאל של העצב כמו אובדן הקווים אדומים קטנים) תוך חוסך כלי intraretinal הגדול המתעורר מראש ON לתוך העין. איסכמיה מוקד מייצרת חוסר תפקוד אקסונלית מקומי (קו ירוק שנתלש ממקומו). נא ללחוץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.
איור 3. Baseline רגיל רשתית (RET) ועצב הראייה (אונ) ניתוח באמצעות צילומי צבע ו SD-Oct. א של הפונדוס רשתית עכברוש Sprague-Dawley נורמלי ידי צילום קרקעית עין מנורת סדק. כלי הרשתית לצאת מן בדיסק האופטי לספק את השכבות הפנימיות של הרשתית. הדיסק יש גבול ברור גוון אדמדם שמסביב (סומק כורואידלית). כלי הרשתית הם דקים ומופץ באופן שווה. מרווח דיסק עצב הראייה בדרך כלל מתוחם היטב לפני גיוס rNAION. ב תמונה של הפונדוס נורמלי ידי אן-פאס SD-Oct ההדמיה. תמונות חתך פרט של הרשתית שמוצגת C פנל נוצרות מתוך הקופסה הירוקה. כיוון סריקה מוצג עם חץ ירוק. ג יחיד SD-Oct סריקת חתך של רשתית נורמלית בדיסק אופטי מראה שכבות הרשתית. שכבת סיבי עצב ברשתית (RNFL, חץ לבן קטן) יש מראה אפרפר, אבל הוא קל יותר מאשר שכבת הגרעין החיצונית הבסיסית (ONL, חץ לבן קטן). RNFL הוא שטוח נגד עצב הראייה. צל עצב הראייה הוא צר (מצביע D על ידי שני חיצים). ON: עצב ראייה. RNFL: שכבת סיבי עצב תא / הגנגליון ברשתית. ONL: שכבת גרעין חיצונית. סרגל קנה מידה:. 200 מיקרומטר אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.
איור 4. מראה אינדוקציה rNAION. א 532 ננומטר / 500 מיקרומטר במקום תאורת לייזר של הדיסק עצב הראייה ברשתית ללא הזרקת RB מערכתית. דיסק עצב הראייה ברשתית כהה. תאורת ליזר ב 532 ננומטר 30 שניות לאחר הזרקת RB מערכתית. בתצוגה על מראה זוהר הזהב בתוך כלי המתעוררים מהדיסק באתר המקום לייזר, המציין RB מערכתית בזרם הדם מואר באור לייזר ירוק."Target =" g _ blank "> לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.
איור 5. רשתית ואת עצב הראייה ניתוח 2 ימים לאחר אינדוקציה rNAION. התמונה הפונדוס א צבע מראה על נפיחות חיוורון בדיסק האופטי, עם הפסד של סומק כורואידלית שמסביב. הוורידים בדרך כלל הן מתפשטים ועקומים, לפעמים עם התאגרף (זרימה מופרעת) ורידים. ב אן-פאס SD-Oct תמונה שלאחר אינדוקצית תערוכות בצקת דיסק התרחבות ורידים. חתך פרט מופק בתוך הקופסה הירוקה. כיוון סריקה מוצג עם חץ ירוק. סעיף ג הצלב מראה על בצקת בדיסק, כפי שמעידים עובי מוגבר של RNFL ועוצמת אפור מופחת (יותר לבן, עולה בקנה אחד עם תכולת מים גבוהה). הקוטר של ON התוך-רשתית (מסומן בין blחיצי ack) הוא גדל. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
אמנם ישנם מספר דגמים של נזק עצבי הראייה (למחוץ עצב הראייה 12, חיתוך רוחב עצב הראייה 13, ו pion 14), המודל rNAION הוא אנושי, להתאמה הן חולדות ועכברים. זה יותר דומה מצבו הקליני בבני האדם של NAION. מצב זה כולל בצקת בעצב הראייה מתקדמת קדמי, תסמונת תא עצב ראייה קדמית, איסכמיה אקסונלית מוקדים, ניזק axonal תא גנגליון ברשתית מבודד והפסד לאורך קורס זמן ממושך. הדו"ח הנוכחי נותן את ההוראות המתאימות אינדוקציה rNAION, דן בעיות פוטנציאליות במהלך אינדוקציה, ואינדוקציה פוסט מוקדם תיאר מנתח שניתן להשתמש בהם כדי להעריך את טיב הנגע המושרה לפני הכנסתם נתונים. היתרון של מודל rNAION הוא כי עם תרגול, רמות עקביות יחסית של ניזק יכולות להיות מושגת. בדרך כלל 10 - 11 תוצאות החשיפה השנייה ב -40 - 65% אובדן RGC. שיעור ההצלחה יכול להשתנות מאדם לאדם, דהממתין על ניסיון ומיומנות, אבל חוקר מנוסה יכול להשיג כמעט שיעור אינדוקציה 100%.
בנוסף קלות אינדוקציה שלה, כמובן חומרת והשעה של הנגע ניתן לפקח בקלות. חלק מוקדם חשוב של בקרת איכות במודל rNAION, אשר יכול להוסיף מודל יתרונות, הוא ניתוח אינדוקציה מוקדם פוסט. בדרך כלל אנחנו להעריך חיות יומיות לאחר האינדוקציה, כאשר הבצקת בעצב הראייה היא מקסימלית. RNAION מאופיין בצקת בעצב הראייה שפותר פני תקופה של חמישה ימים (בערך 5 פעמים מהר יותר מאשר המתרחשת אצל בני אדם), ואחריו חיוורון עצב הראייה ואובדן תא גנגליון מבודד רשתית. אפשר לזהות איסכמיה ברשתית (להבדיל איסכמיה עצב ראייה) על ידי אובדן של שקיפות רשתית הלבנה של הרשתית. איסכמיה רשתית הוא אשר מבחינה תפקודית על ידי אובדן האות ברשתית פנימית עם electroretinography (ERG). אם יש אובדן נרחב של שקיפות רשתית ולבנהנינג של הרשתית, זה מצביע על איסכמיה ברשתית מפוזרת, אשר עולה בקנה אחד עם חסימת וריד מרכזית ברשתית, ולא rNAION לבד. אם תוצאות האינדוקציה איסכמיה ברשתית חמורה מספר בעלי החיים (מאופיינת הלבנת רשתית המודולרית או מלאה), פרמטרי האינדוקציה יכולות להיות מופחתות על ידי זמן חשיפה אחת או שתי שניות. בדרך זו אפשר לייעל הן את מידת הפגיעה בעצב הראייה, ולקבל עקביות האינדוקציה בחיות. בעלי חיים עם אובדן משמעותי של אות ERG צריכים להתבטל מן המחקר. אובדן בודד של פונקצית עצב ראייה יכול להיות מאושר על ידי מדידת פוטנציאל חזותית עוררת פלאש (VEP).
ישנם מספר משתנים כדי להישמר לזכור בעת השימוש במודל rNAION. חיות אדם יכולות נבדלות את החומרה הכוללת של הנגע, כך בעלי חיים רבים צריכים לשמש מבחני נוירו, וכן ניתוח כוח יש לבצע כדי לקבוע את המספר המזערי של בעלי החיים הנדרשים כדי להשיג STAתוצאות תקפות tistically, במיוחד כאשר השפעה מגנה צנועה יותר נתפסת או חזה. מצאנו כי 10 - 15 בעלי חיים נדרשים לקביעת השפעה מגנה RGC 25% בחולדות, ו 15 - 20 בעלי חיים כאשר עכברים משמשים. מאז לצבוע RB המשמש האינדוקציה מסולקת במהירות, פעם החיה מוזרקת, השתנות יכולה להיות גם תלוי במהירות של הזמן הנדרש לביצוע האינדוקציה. הבדלים קלים על ההתמקדות בדיסק האופטי, הבדלי הזווית של תאורת לייזר, וכן להבדלים במהירות האינדוקציה יכול גם להשפיע על התוצאה. מוקדש בודד אחת יש לבחור לבצע את הטכניקה בכל מעבדה, כדי להפחית עוד יותר השתנות. בערך 10 - 15% של בעלי חיים המושרה ייתכן שיהיו צורך שנגרעו לאחר הערכה שלאחר אינדוקציה המוקדמת בשל חומרת האינדוקציה (וריד רשתית מרכזית או סניף חסימה). דו"ח זה אינו דן משתנים מהותי אחרים עצום שעשויים להשפיע על התוצאות, כמו זה הנמצא להבדלים בין המינים,קצב יממה, והבדלי גיל או זן. שאלות אלה יש להסתפק חוקר הפרט. ישנן הגדרות פרמטר שונה אחרים דיווחו לאחרונה, כגון כוח לייזר 80 mW 15. שינויים אלה השתמשו עדשות מגע שונים או אורך גל לייזר אבל הביאו לתוצאות דומות.
חשוב להבין כי למרות הדמיון של rNAION להיבטים רבים של NAION הקליני, rNAION הוא מודל, ואין מודל הוא שכפול מושלם של מחלות אנושיות, מאז הגורמים סיבתי בפועל NAION אינם ידועים, ואת כלי הדם ואת דלקתיות שליטה פיזיולוגית של הרשתית ועצב ראייה המכרסמות שונה במובנים רבים מן הפרימטים האדם אנושיים. ממצאים שנוצרו על ידי המודל צריכים להתפרש לאור ההבדלים הללו. חרף זאת, מודל rNAION היא שיטת ערך של לנתח במהירות רבה של מנגנוני pathophysiological הפוטנציאל האחראים לאובדן ראייה וגישותכדי neuroprotection במערכת יונקים החיים.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
המחברים אין לחשוף.
Acknowledgments
אנו מודים תלמידים רבים הבחורים שעבדו לדגם זה כדי לשפר את האפקטיביות שלה, וכדי להבין את דרכי עבודתו. תודה מיוחדת לד"ר של. מרי ג'ונסון (אוניברסיטת מרילנד-בולטימור), ניצה גולדנברג-כהן (בית החולים לילדים שניידרמן, פתח-תקוה, ישראל), צ'ארלס ג'אנג (מדיקל קולג 'איינשטיין, ברונקס, ניו יורק), ואלרי טויטו (Hopital Salpetrie, פריז, צרפת). מחקר זה מומן בחלקו על ידי RO1 EY015304 כדי SLB.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 50 mW 532 nm laser | Iridex | Standard Ophthalmic Laser | |
| 0 - 100 mW 532 nm laser | Laserglow technologies | Substitute for iridex | |
| Laser slit lamp adapter | Iridex | SMA coupled adapter for laser output | |
| Coherent Fieldmate laser meter with thermopile sensor | Coherent | others also appropriate | |
| Ophthalmic Examing Slit lamp biomicroscope | Various | Haag-Streit is the best; cheaper versions available on ebay | |
| Rose Bengal | Sigma | 330000-1G | Photoinducing agent |
| Fundus Contact lens or glass cover slip | custom/Cantor and Nissel (UK) | Custom designed planoconvex plastic lens for eye exam and induction | |
| Tropicamide 1% | |||
| Tamiya polishing compound | Tamiya, INC | 87068 | polishing contact lens |
| 2.5% Hypromellose (Goniovisc)/1% Methycellulose | HUB Pharmaceuticals | contact lens coupling agent | |
| 2.5% Neosynephrine Ophthalmic drops | Alcon labs | pupil dilating agent | |
| Tropicamide 1% | Alcon labs | pupil dilating agent | |
| 0.5% Proparacaine | Alcon labs | topical Anesthetic | |
| 30 G fused needle insulin syringe | Various | Various | for intravenous injection of rose bengal |
| Ophthamic Antibiotic ointment with dexamethasone added (Triple antibiotic ointment) | Various | Various | Apply after induciton to minimize corneal scarring |
| Heidelberg Corporation Spectral domain-Optical Coherence Tomograph | Heidelberg Corporation | For Optical coherence measurements baseline and post-induction; not essential for induction |
References
- Banik, R. Nonarteritic Anterior Ischemic Optic Neuropathy: An Update on Demographics, Clinical Presentation, Pathophysiology, Animal Models, Prognosis, and Treatment. J. Clin. Experimental Ophthalmol. 10, 1-5 (2013).
- IONDT study group. Characteristics of patients with nonarteritic anterior ischemic optic neuropathy eligible for the Ischemic Optic Neuropathy Decompression Trial. Arch Ophthalmol. 114, 1366-1374 (1996).
- Tesser, R. A., Niendorf, E. R., Levin, L. A. The morphology of an infarct in nonarteritic anterior ischemic optic neuropathy. Ophthalmology. 110, 2031-2035 (2003).
- Bernstein, S. L., Johnson, M. A., Miller, N. R. Nonarteritic anterior ischemic optic neuropathy (NAION) and its experimental models. Prog Retin Eye Res. 30, 167-187 (2011).
- Nicholson, J. D., et al. PGJ2 Provides Prolonged CNS Stroke Protection by Reducing White Matter Edema. PLoS One. 7 (12), (2012).
- Goldenberg-Cohen, N., et al. Oligodendrocyte Dysfunction Following Induction of Experimental Anterior Optic Nerve Ischemia. Invest Ophthalmol Vis Sci. 46, 2716-2725 (2005).
- Bernstein, S. L., Guo, Y., Kelman, S. E., Flower, R. W., Johnson, M. A. Functional and cellular responses in a novel rodent model of anterior ischemic optic neuropathy. Invest Ophthalmol Vis Sci. 44, 4153-4162 (2003).
- Berger, A., et al. Spectral-Domain Optical Coherence Tomography of the Rodent Eye: Highlighting Layers of the Outer Retina Using Signal Averaging and Comparison with Histology. PLoS One. 9 (5), (2014).
- Huang, T. L., et al. Protective effects of systemic treatment with methylprednisolone in a rodent model of non-arteritic anterior ischemic optic neuropathy (rNAION). Exp Eye Res. 131, 69-76 (2015).
- Mantopoulos, D., et al. An Experimental Model of Optic Nerve Head Injury. Invest Ophthalmol Vis Sci. 57, 6222 (2014).
- You, Y., et al. Visual Evoked Potential Recording in a Rat Model of Experimental Optic Nerve Demyelination. J. Vis. Exp. (101), e52934 (2015).
- Templeton, J. P., Geisert, E. E. A practical approach to optic nerve crush in the mouse. Mol Vis. 18, 2147-2152 (2012).
- Magharious, M. M., D'Onofrio, P. M., Koeberle, P. D. Optic Nerve Transection: A Model of Adult Neuron Apoptosis in the Central Nervous System. J Vis Exp. (51), e2241 (2011).
- Wang, Y., et al. A Novel Rodent Model of Posterior Ischemic Optic Neuropathy. JAMA Ophthalmol. 131 (2), 194-204 (2013).
- Huang, T. L., Chang, C. H., Chang, S. W., Lin, K. H., Tsai, R. K. Efficacy of Intravitreal Injections of Antivascular Endothelial Growth Factor Agents in a Rat Model of Anterior Ischemic Optic Neuropathy. IOVS. 56, 2290-2296 (2015).
