We describe a simple protocol using only basic lab equipment to generate and purify large quantities of a fusion protein that contains mouse Myelin Oligodendrocyte Glycoprotein. This protein can be used to induce experimental autoimmune encephalomyelitis driven by both T and B cells.
Multiple sclerosis (MS) is a chronic inflammatory disease of the central nervous system (CNS), thought to occur as a result of autoimmune responses targeting myelin. Experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) is the most common animal model of CNS autoimmune disease, and is typically induced via immunization with short peptides representing immunodominant CD4+ T cell epitopes of myelin proteins. However, B cells recognize unprocessed protein directly, and immunization with short peptide does not activate B cells that recognize the native protein. As recent clinical trials of B cell-depleting therapies in MS have suggested a role for B cells in driving disease in humans, there is an urgent need for animal models that incorporate B cell-recognition of autoantigen. To this end, we have generated a new fusion protein containing the extracellular domain of the mouse version of myelin oligodendrocyte glycoprotein (MOG) as well as N-terminal fusions of a His-tag for purification purposes and the thioredoxin protein to improve solubility (MOGtag). A tobacco etch virus (TEV) protease cleavage site was incorporated to allow the removal of all tag sequences, leaving only the pure MOG1-125 extracellular domain. Here, we describe a simple protocol using only standard laboratory equipment to produce large quantities of pure MOGtag or MOG1-125. This protocol consistently generates over 200 mg of MOGtag protein. Immunization with either MOGtag or MOG1-125 generates an autoimmune response that includes pathogenic B cells that recognize the native mouse MOG.
MS er en human sygdom karakteriseret ved kronisk inflammation og neurodegeneration af CNS, som menes at være drevet af en autoimmun reaktion rettet mod myelin. Tabet af myelin og axoner over tid resultere i gradvis nedgang af kognitiv og motorisk funktion 1. "Experimental Autoimmune Encephalomyelitis" er en samlebetegnelse for dyremodeller for autoimmun sygdom rettet mod CNS myelin. Som menneskelige MS, er EAE typisk kendetegnet ved immun celle infiltration af CNS og i nogle tilfælde, demyelinisering 2. Men i hvilken grad en given EAE model ligner human MS delvis afhænger af art eller stamme anvendes, og af kompleksiteten af den underliggende anti-myelin autoimmun reaktion.
Anti-myelin autoimmunitet kan eksperimentelt induceret på flere måder, men den mest almindelige metode i dag er at immunisere mus med et kort peptid af aminosyrer efterligner den immunodominante CD4 <sup> + T-celleepitop af et myelinprotein. Dette repræsenterer minimumskravet til at inducere en patogen respons. Måske den mest almindelige af disse er en 21 aminosyre peptid afledt fra myelin oligodendrocyt glycoprotein (MOG 35-55), som anvendes til at inducere EAE i C57BL / 6-mus 3. For nogle eksperimentelle formål er det imidlertid ønskeligt eller endog nødvendigt at immunisere med større proteinantigener og faktisk er der flere fordele ved denne end immunisering med kort peptid. Første på grund af MHC-restriktion, korte peptider er sædvanligvis kun effektive i et meget begrænset udvalg af stammer, mens større proteinantigener repræsenterer enten hele proteinet eller et bestemt domæne kan behandles normalt til præsentation i flere indavlede musestammer eller endog i forskellige arter fire. Sekund, et større protein-antigen er i stand til at inducere en mere kompleks immunrespons inkorporerer flere typer af lymfocytter i antigengenkendelse, snarere end limiting antigengenkendelse til CD4 + T-celler. For eksempel B-celler via deres B-celle receptor (BCR) interagere direkte med hele snarere end forarbejdet protein. Vi og andre har vist, at B-celler aktiveres af MOG 35-55 immunisering ikke anerkender MOG protein 5. Da B-celler for nylig blev påvist at spille en patogen rolle i human MS 6, EAE-modeller, der inkorporerer B-celler i autoimmune patologi er stadig vigtigere.
Trods fordelene ved at anvende større proteinantigener at inducere EAE, er der stadig nogle kommercielt tilgængelige kilder for sådanne proteiner. For selv korte peptider som MOG 35-55 kan syntetiseres meget hurtigt og til en relativt lav pris, de kommercielle muligheder for MOG protein er begrænsede, og omkostningerne væsentligt mere at købe. Ikke desto mindre er der flere ekspressionsvektorer til rådighed for forskergrupper til at generere MOG ekstracellulære domæne (MOG 1-125) selv. However, alle de ekspressionssystemer, som vi har identificeret i litteraturen er baseret på ældre teknologier, der siden er blevet erstattet med mere effektive ekspressionssystemer 7. Endvidere er de fleste er baseret på rotte- eller human MOG 8. For nogle undersøgelser af autoimmunitet i mus, et antigen baseret på musen MOG autoantigenet foretrækkes. Endelig har alle MOG-baserede proteiner, som vi har identificeret, enten kommercielle eller som ekspressionsvektorer, er fusionsproteiner indeholdende yderligere aminosyrer til MOG 1-125 basen. Disse omfatter et tag til oprensning og sædvanligvis andre sekvenser samt, hvoraf mange med en funktion vi ikke kunne identificere.
For at løse disse begrænsninger, genereret vi en hidtil ukendt fusionsprotein baseret på musen MOG ekstracellulære domæne fusioneret til et mærke indeholdende thioredoxin at bekæmpe den kendte uopløselighed MOG protein 5. Tag-sekvensen indeholder også en 6xHis sekvens for oprensning og en TEV protease cleavage site, der muliggør fuldstændig fjernelse af alle tag-sekvenserne, hvis det ønskes. Dette er den eneste metode, som vi er opmærksomme på at generere ren MOG 1-125 protein. For at lette produktionen af store mængder protein, det MOG 1-125 sekvensen blev kodon-optimeret til bakteriel ekspression og MOG tag fusionsproteinet blev indsat i pET-32 ekspressionssystem. Her beskriver vi i detaljer protokollen til at producere og rense MOG tag protein, og ren MOG 1-125, ved hjælp af ikke-specialiseret udstyr til rådighed for de fleste immunologi laboratorier.
Her har vi beskrevet en protokol for produktion af MOG tag protein og hvordan man kan generere ren MOG 1-125 fra MOG tag protein. Denne protokol er baseret både på standard His-mærke baseret proteinoprensningsmetoder, samt en tidligere beskrevet protokol for frembringelse af en ældre MOG-baserede protein 15. Selvom det ikke beskrives her, den primære brug af MOG tag protein er at inducere EAE gennem immunisering med proteinantigen. En protokol der beskriver, hv…
The authors have nothing to disclose.
This work was supported by a grant from the Multiple Sclerosis Society of Canada. RWJ is the recipient of the Waugh Family MS Society of Canada Doctoral Studentship Award.
BL21 E.coli– pet32-MOGtag | Kerfoot lab | These bacteria are required to make the MOGtag protein. Glycerol stocks of these bacteria are available upon request. | |
LB broth miller | Bioshop | LBL407.1 | |
Ampicillin | bio basic | AB0028 | Reconsititute the powder into 50% ethanol/ 50% H2O at 100 mg/ml. Store at -20 °C. |
IPTG | Bioshop | IPT002.5 | Reconsititute the powder into H2O at 1M and store at -20 °C. |
Chicken-egg lysozyme | Bioshop | LYS702.10 | Reconstitute in H2O at 50 mg/ml and store at -80 °C. |
Triton-X100 | Sigma | T-8532 | |
Phosphate buffered saline | life technologies | 20012-027 | Commercial phosphate buffered saline is not required, any standard lab made phosphate buffered saline is sufficient. |
Sodium chloride | Bioshop | SOD004.1 | |
Tris-HCl | Bioshop | TRS002.1 | |
Imidazole | Bioshop | IMD508.100 | |
Guanidine-HCl | Sigma | G3272 | The quality must be greater than 98% purity. |
0.5M EDTA | bioshop | EDT111.500 | |
Nickel (II) sulfate | Bioshop | NIC700.500 | |
His bind resin | EMD Millipore | 69670-3 | Store in 20% ethanol 80% H2O at 4 °C |
Anhydrous ethanol | Commercial Alcohols | P016EAAN | Dilute with water as needed. |
Glacial acetic acid | Bioshop | ACE222.1 | |
Sodium acetate trihydrate | Bioshop | SAA305.500 | |
bovine serum albumin standard | bio-rad | 500-0206 | |
Bio-rad protein assay dye reagent concentrate | bio-rad | 500-0006 | |
Ethylenediamine tetraacetic acid, disodium salt dihydrate | Fisher scientific | BP120-500 | |
Tris-base | Bioshop | TRS001.1 | |
7000 MW Snakeskin dialysis tubing | Thermoscientific | 68700 | |
2-mercaptoethanol | Sigma | M3148-25ml | This reagent should not be handled outside of a fume hood. |
AcTEV protease | lifetechnologies | 12575-015 | Producing your own TEV protease can be accomplished using (https://www.addgene.org/8827/) and purified as in reference 17 |
Polyethyleneglycol 3350 | Bioshop | PEG335.1 | |
polyethyleneglycol 8000 | Bioshop | PEG800.1 | |
Nunc MaxiSorp flat-bottom 96 well plate | ebioscience | 44-2404-21 | |
Sonicator | Fisher scientific | FB-120-110 | |
Eon microplate spectrometer | Biotek | 11-120-611 | This equipment uses the Gen5 data analysis software. |
Gen5 data analysis software | BioTek | ||
sodium dodecyl sulphate | Bioshop | SDS001 | |
bromophenol blue | Bioshop | BRO777 | |
Glycerol | Bioshop | GLY001 | |
Protein desalting columns | Thermoscientific | 89849 | |
Glycine | Bioshop | GLN001 | |
precast 12% polyacrylamide gel | bio-rad | 456-1045 | |
Rapid stain reagent | EMD Millipore | 553215 | |
Gel dock EZ imager | bio-rad | 1708270 | |
White Light Sample Tray | bio-rad | 1708272 | Used along with gel dock EZ imager for coomassie blue stains |
Protein ladder | bio-rad | 1610375 |