Summary

Mätning av Differentiellt Methylated<em> INS</em> DNA Arter i humana serumprover som en biomarkör för Islet β celldöd

Published: December 21, 2016
doi:

Summary

Islet β cell death precedes development of type 1 diabetes, and detecting this process may allow for early therapeutic intervention. Here, we provide a detailed description of how to measure differentially methylated INS DNA species in human serum as a biomarker of β cell death.

Abstract

The death of islet β cells is thought to underlie the pathogenesis of virtually all forms of diabetes and to precede the development of frank hyperglycemia, especially in type 1 diabetes. The development of sensitive and reliable biomarkers of β cell death may allow for early therapeutic intervention to prevent or delay the development of diabetes. Recently, several groups including our own have reported that cell-free, differentially methylated DNA encoding preproinsulin (INS) in the circulation is correlated to β cell death in pre-type 1 diabetes and new-onset type 1 diabetes. Here, we present a step-by-step protocol using digital PCR for the measurement of cell-free INS DNA that is differentially methylated at cytosine at position -69 bp (relative to the transcriptional start site). We demonstrate that the assay can distinguish between methylated and unmethylated cytosine at position -69 bp, is linear across several orders of magnitude, provides absolute quantitation of DNA copy numbers, and can be applied to samples of human serum from individuals with new-onset type 1 diabetes and disease-free controls. The protocol described here can be adapted to any DNA species for which detection of differentially methylated cytosines is desired, whether from circulation or from isolated cells and tissues, and can provide absolute quantitation of DNA fragments.

Introduction

Typ 1 diabetes (T1D) är en autoimmun sjukdom som kännetecknas av destruktion av insulinproducerande ö-β-celler genom autoreaktiva T-celler 1. Diagnosen T1D typiskt görs vid mätning av hyperglykemi (blodglukos> 200 mg / dl) i en mager, ung individ, som kan uppvisa ketoacidos som bevis på insulinbrist. Vid tidpunkten för diagnos av T1D, finns det bevis för väsentlig förlust av β-cellfunktion och massa (50-90%) 2. I kliniska studier, flera immunmodulerande läkemedel som inletts vid tidpunkten för diagnos ledde till stabilisering av β cellfunktionen (och förmodligen massa), men ingen har resulterat i klinisk remission av sjukdomen, ett konstaterande som har höjt kravet på att utveckla av biomarkörer för tidig upptäckt av sjukdomen och för längsgående spårning av effektiviteten av kombinationsterapier 3,4. Ansträngningar från internationella konsortier, en sådans Human Islet Research Network Consortium vid National Institutes of Heath 5, har betonat behovet av att utveckla biomarkörer som fokuserar på β cellstress och död i T1D.

I linje med dessa ansträngningar, har vår grupp och andra nyutvecklade biomarkörer analyser som mäter cirkulerande, epigenetiskt modifierade DNA-fragment som uppstår i första hand från att dö p-celler 6-9. I samtliga av de publicerade analyserna hittills har fokus varit på kvantifiering av den humana genen som kodar preproinsulin (INS), som visar större grad av ometylerade CpG platser i de kodande och promotorregioner jämfört med andra celltyper. Befrielsen av ometylerade INS DNA-fragment var hypotes som uppstår i första hand från att dö (nekrotiska, apoptotiska) p-celler. Våra senare studier har visat att i ungdomen, höjder både ometylerade och metylerade INS DNA vid position -69 bp (i förhållande till than transkriptions start site) observerades i nydebuterat T1D, och tillsammans tjänade som specifika biomarkörer för denna population 6. Dessa biomarkörer analyser innefattar isolering av cellfria DNA från serum eller plasma med hjälp av kommersiella spin kit, följt av en bisulfit omvandling av den isolerade DNA (för att konvertera icke-metylerade cytosiner till uraciler, lämnar metylerade cytosiner intakt).

I denna rapport beskriver vi de tekniska aspekterna av serum provtagning, isolering av cellfritt DNA från serum, bisulfit konvertering och prestanda för dropp digital PCR (hädanefter, digital PCR) för differentiellt metylerade INS DNA.

Protocol

Ethics Statement: Protocols were approved by the Indiana University Institutional Review Board. Parents of subjects provided written informed consent, and children older than 7 years provided assent for their participation. 1. Serum Processing NOTE: The assay as described has been rigorously tested using human serum isolated as follows. Collect blood in one red top (no-additive; uncoated) blood collection tube. Let sit at room temperature for 30 min to allow the clot to form. <li…

Representative Results

Att tolka data på lämpligt sätt, använder vi plasmid kontroller för både ometylerade och metylerade mål INS DNA i varje digital PCR-körning. Dessa kontroller säkerställa att signaler som motsvarar metylerade och ometylerade DNA är klart urskiljbara. Figur 1 visar de 2-D spridningsdiagram som motsvarar till droppar för plasmid kontroller innehållande bisulfit-omvandlas ometylerade INS-DNA (figur 1 A), metylerad INS-DNA</…

Discussion

Metylering av cytosiner genom DNA metyltransferaser möjliggör epigenetisk reglering av transkription på många gener. INS-genen hos människa är nästan uteslutande uttrycks i ö-β-celler, och det verkar finnas ett samband mellan frekvensen av metylering av cytosiner i INS-genen till att tysta av dess transkription 11. Som sådan, de flesta celltyper visar betydligt högre frekvenser av metylering av INS-genen vid olika cytosiner jämfört med P-celler 11-13.</su…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by National Institutes of Health grant UC4 DK104166 (to RGM). We wish to acknowledge the assistance of the Indiana Diabetes Research Center Translation Core supported by National Institutes of Health grant P30 DK097512.

Materials

Red Top Vacutainer  Beckon Dickinson 366441 no additive, uncoated interior, 10 ml
Cryovial Tube Simport T310-3A polypropylene, screw cap tube, any size
QIAamp DNA Blood Mini Kit Qiagen 51106
Poly(A) Sigma P9403 disloved in TE buffer (10 mM Tris-Cl pH 8.0 + 1 mM EDTA) to 5 µg/µl 
Absolute Ethanol (200 Proof) Fisher Scientific BP2818-500
DPBS (with CaCl and MgCl) Sigma D8662
0.2 mL PCR 8-strip Tubes MidSci AVST
8-strip Caps, Dome MidSci AVSTC-N
EZ DNA Methylation-Lightning Kit Zymo D5031
ddPCR Supermix for Probes (No dUTP) Biorad 1863024
Buffer Control for Probes Biorad 1863052
Human Unmethylated/Methylated Primer/Probe mix Life Technologies AH21BH1
EcoR1 New England Biolabs R0101L
twin.tec PCR Plate 96, semi-skirted Eppendorf 951020346
Pierceable Foil Heat Seal Biorad 1814040
PX1 PCR Plate Sealer Biorad 1814000
QX200 AutoDG Droplet Digital PCR System Biorad 1864101
Automated Droplet Generation Oil for Probes Biorad 186-4110
DG32 Cartridge for Automated Droplet Generator Biorad 186-4108
Pipet Tips for Automated Droplet Generator Biorad 186-4120
Pipet Tip Bins for Automated Droplet Generator Biorad 186-4125
C1000 Touch Thermal Cycler Biorad 1851197
QX200 Droplet Reader Biorad 186-4003
ddPCR Droplet Reader Oil Biorad 186-3004

References

  1. Lehuen, A., Diana, J., Zaccone, P., Cooke, A. Immune cell crosstalk in type 1 diabetes. Nat. Rev. Immunol. 10 (7), 501-513 (2010).
  2. Sherry, N. A., Tsai, E. B., Herold, K. C. Natural history of beta-cell function in type 1 diabetes. Diabetes. 54, 32-39 (2005).
  3. Maganti, A., Evans-Molina, C., Mirmira, R. From immunobiology to β-cell biology: the changing perspective on type 1 diabetes. Islets. 6 (2), 28778 (2014).
  4. Matthews, J. B., Staeva, T. P., Bernstein, P. L., Peakman, M., von Herrath, M. ITN-JDRF Type 1 Diabetes Combination Therapy Assessment Group Developing combination immunotherapies for type 1 diabetes: recommendations from the ITN-JDRF Type 1 Diabetes Combination Therapy Assessment Group. Clin. Exp. Immunol. 160 (2), 176-184 (2010).
  5. . Human Islet Research Network | HIRN Available from: https://hirnetwork.org/ (2016)
  6. Fisher, M. M., Watkins, R. A., et al. Elevations in Circulating Methylated and Unmethylated Preproinsulin DNA in New-Onset Type 1 Diabetes. Diabetes. 64 (11), 3867-3872 (2015).
  7. Husseiny, M. I., Kaye, A., Zebadua, E., Kandeel, F., Ferreri, K. Tissue-Specific Methylation of Human Insulin Gene and PCR Assay for Monitoring Beta Cell Death. PLoS ONE. 9 (4), 94591 (2014).
  8. Herold, K. C., Usmani-Brown, S., et al. β cell death and dysfunction during type 1 diabetes development in at-risk individuals. J. Clin. Invest. 125 (3), 1163-1173 (2015).
  9. Lehmann-Werman, R., Neiman, D., et al. Identification of tissue-specific cell death using methylation patterns of circulating DNA. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 113 (13), 1826-1834 (2016).
  10. Saiki, R. K., Gelfand, D. H., et al. Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA polymerase. Science. 239 (4839), 487-491 (1988).
  11. Kuroda, A., Rauch, T. A., et al. Insulin gene expression is regulated by DNA methylation. PloS One. 4 (9), 6953 (2009).
  12. Akirav, E. M., Lebastchi, J., et al. Detection of β cell death in diabetes using differentially methylated circulating DNA. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108 (47), 19018-19023 (2011).
  13. Fisher, M. M., Perez Chumbiauca, C. N., Mather, K. J., Mirmira, R. G., Tersey, S. A. Detection of islet β-cell death in vivo by multiplex PCR analysis of differentially methylated DNA. Endocrinology. 154 (9), 3476-3481 (2013).
  14. Patterson, K., Molloy, L., Qu, W., Clark, S. DNA methylation: bisulphite modification and analysis. J. Vis. Exp. (56), (2011).
  15. Derks, S., Lentjes, M. H. F. M., Hellebrekers, D. M. E. I., de Bruïne, A. P., Herman, J. G., van Engeland, M. Methylation-specific PCR unraveled. Cell. Oncol. 26 (5-6), 291-299 (2004).
  16. Husseiny, M. I., Kuroda, A., Kaye, A. N., Nair, I., Kandeel, F., Ferreri, K. Development of a quantitative methylation-specific polymerase chain reaction method for monitoring beta cell death in type 1 diabetes. PloS One. 7 (10), 47942 (2012).
  17. Hindson, B. J., Ness, K. D., et al. High-Throughput Droplet Digital PCR System for Absolute Quantitation of DNA Copy Number. Anal. Chem. 83 (22), 8604-8610 (2011).
  18. Sozzi, G., Roz, L., et al. Effects of prolonged storage of whole plasma or isolated plasma DNA on the results of circulating DNA quantification assays. J. Natl. Cancer Inst. 97 (24), 1848-1850 (2005).

Play Video

Cite This Article
Tersey, S. A., Nelson, J. B., Fisher, M. M., Mirmira, R. G. Measurement of Differentially Methylated INS DNA Species in Human Serum Samples as a Biomarker of Islet β Cell Death. J. Vis. Exp. (118), e54838, doi:10.3791/54838 (2016).

View Video