Summary

Isolering av endothelial stamceller fra friske frivillige og deres trekkende Potential påvirket av serumprøver etter hjerteoperasjon

Published: February 14, 2017
doi:

Summary

Endoteliale progenitorceller (PP-) er avgjørende involvert i neovaskularisering av ischemiske vev. Denne fremgangsmåten beskriver isoleringen av humane EPCs fra perifert blod, i tillegg til identifikasjon av deres vandrings potensial mot serumprøver av hjerte kirurgiske pasienter.

Abstract

Endoteliale progenitorceller (EPCs) er rekruttert fra benmargen henhold patologiske tilstander som hypoksi og er avgjørende involvert i neovascularization av iskemiske vev. Opprinnelse, klassifisering og karakterisering av EPCs er komplekse; til tross, er det etablert to fremtredende under typer EPCs: såkalt "tidlig" EPCs (heretter benevnt tidlig-EPCs) og sen-utvekst EPCs (sen-EPCs). De kan klassifiseres ved biologiske egenskaper, så vel som ved sin opptreden under in vitro kultur. Mens "tidlig" EPCs vises på mindre enn en uke etter kultur av perifert blod-avledet mononukleære celler i EF-spesifikke media, kan sen-utvekst EPCs bli funnet etter 2-3 uker. Late-utvekst EPCs har vært kjent for å være direkte involvert i neovascularization, hovedsakelig gjennom sin evne til å differensiere til modne endotelceller, mens "tidlig" EPCs uttrykke ulike angiogene faktorer som EndogenOUS last for å fremme angiogenese i en parakrint måte. Under myokardiskemi / reperfusjon (I / R), ulike faktorer kontrollere homing av EPCs til regioner av blodkardannelse.

Makrofag migrasjon hemmende faktor (MIF) er en chemokin-lignende pro-inflammatorisk og allestedsnærværende uttrykt cytokin og ble nylig beskrevet å fungere som sentrale regulator av EPCs migrasjon ved fysiologiske konsentrasjoner 1. Interessant er MIF lagret i intracellulære bassenger og kan raskt bli sluppet ut i blodet etter flere stimuli (f.eks hjerteinfarkt).
Denne protokollen beskriver en fremgangsmåte for pålitelig isolasjon og kultur av tidlig-EPCs fra voksent humant perifert blod basert på CD34-positiv utvelgelse med påfølgende kultur i medium inneholdende endoteliale vekstfaktorer for fibronektin-belagte plater for anvendelse i in vitro-migrasjons analyser mot serumprøver av hjerte kirurgiske pasienter. Viderevandrende innflytelse av MIF på kjemotaksen av EPCs sammenlignet med andre kjente angiogenese-stimulerende cytokiner er demonstrert.

Introduction

Endoteliale progenitorceller (PP-) er sirkulerer i menneskeblod, og har evnen til å differensiere til endotelceller 2. De deltar i vaskulogenese og er i stand til å minimere skader forårsaket av betennelse og iskemi / reperfusjon (I / R) skader på ulike måter 3, 4. For eksempel, EPCs viser forhøyede nivåer av intracellulære antioksidant enzymer som katalase, glutationperoksidase eller mangan superoksyddannende dismutaser (MnSOD) 5. Den forhøyede motstand mot oksidativt stress kan EPCs å fungere i microenvironments med forhøyede reaktive oksygenforbindelser (ROS) etter iskemisk skade seks. Tidligere undersøkelser viste også at antallet EPCs kan bli korrelert til vaskulær reparere, og at et redusert antall sirkulerende EPCs spår forekomst av kardiovaskulære hendelser 7,class = "xref"> 8. Imidlertid har en klar definisjon av en EPC ikke funnet ennå. Opp til nå, er det ingen spesifikk celleoverflaten markør eller konsekvent fenotype for EPCs og disse cellene er svært sjeldne i perifert blod 9. Et menneske EPC bør betraktes som en sirkulerende celle med evnen til å bidra til gjenoppbyggingen av de skadde endotel og nye vaskulære strukturer.

En måte å isolere og karakterisere EPCs er gjennom adhesjon til fibronektin. Derved blir kapasiteten av disse cellene brukes for å vise en overlegen adhesjon til fibronektin belagte etter i forhold til type 1 kollagen, for eksempel 3, 10, 11. Men andre funnet at plette mononukleære celler på fibronektin belagt retter uten foregående eller ytterligere rensetrinn fører til kolonier inkludert myeloide stamceller, monocytter og T-lymfocytter 12, 13, 14. Videre, i dette tilfellet, kan blodplatene forurense den mononukleære celler (MNC) fraksjon, og derved overføre plasmamembranproteiner til enhver adherente celler 15.

I tillegg til karakteriseringen ved in vitro assays adhesjonsegenskaper, er en kombinasjon av forskjellige celleoverflatemarkører som brukes til å beskrive en celletype betraktes som en EPC. I dette tilfellet, etter fibronektin-mediert adhesjon, blir cellene analyseres vedrørende deres endotel-lignende egenskaper. I denne prosessen, de to endotelcelle-assosierte markører, acetylert-low density lipoprotein (acLDL) og vaskulær endotelial vekstfaktor reseptor 2 (VEGFR-2, KDR), spille en rolle. Endoteliale celler og makrofager er blitt vist å spesifikt ta opp acLDL i en prosess som kalles "scavenger celle bane" 16. En annen markørprotein er KDR som hoved VEGF-reseptor på endotelcellerceller 17. Men som EPCs generelt dyrkes i medier supplert med endoteliale vekstfaktorer og føtalt kalveserum, er det mulig at makrofager, som også kan ha blitt feilaktig isolert, oppviser en endotelial-lignende markør profil. Som tidligere vist, hvis dyrket i en endothelial kondisjonerte medium, makrofager express "endotelceller spesifikke" proteiner 18.

Generelt er det to kategorier av EPCs i flere undergrupper, som kan finnes i blodet eller dyrkes in vitro. Late-utvekst EPCs (sen-EPCs) vises etter 2-3 uker med kultur. Disse cellene er integrert fortere inn i et monolag av humane umbilikalvene endotelceller og kan danne kapillarrør 19. Dessuten, såkalte "tidlig-EPCs" sirkulere i blodet i omtrent en uke og handle på en mer passiv måte gjennom å levere angiogene molekyler, slik som vaskulær endotelial vekstfaktor (VEGF), eller CXCL8 19. Pasienter med koronarsykdom (CAD) viste signifikant lavere mengder av tidlig EPCs sammenlignet med en kontrollgruppe uten CAD 20. Interessant nok viste det samme gruppe høyere mengder av sen-EPCs sammenlignet med en kontrollgruppe. En annen studie viste at tidlig EPCs beskytte differensierte EPCs fra apoptose etter oksidative betingelser i en parakrint måte 6. Derfor kan tidlige EPCs gi relevante beskyttende effekt gjennom migrasjon av andre celler i en auto- eller parakrint måte innenfor perifert blod.

Denne protokollen beskriver en metode for å rense tidlig-EPCs ved først å isolere PBMC-fraksjonen fra humant perifert blod og etterfølgende isolering av CD34 + celler fra PBMC-fraksjonen for å fjerne denne cellesuspensjon fra uønskede celler. CD34 er en markør, som brukes for isolering av humane hematopoietiske stamceller 9 </sup>. Etterpå, CD34 + -celler dyrkes på fibronektin-belagte vevskultur overflater. Etter tre dager blir mediet endret, og dermed miste alle ikke-adherente celler. Endelig er isolerte EPCs farget for å kontrollere opptaket av acLDL og tilstedeværelsen av KDR som endotelial celle-markør ved hjelp av fluorescens-aktivert cellesortering (FACS). Som en ekstra markør, analyserte vi blodplate endotelial celleadhesjonsmolekyl (PECAM-1, CD31), som også forekommer på endotelceller.

Restaurering av skadet eller infarkt hjerteinfarkt vev av økt rekruttering av EPCs tilhører intensivt undersøkte behandlingsstrategier i hjerte- og karsykdommer. Imidlertid er oversettelsen av eksperimentelle resultater til klinisk praksis fortsatt krevende, gitt det komplekse cellulære samspillet i menneskekroppen under forskjellige patofysiologiske tilstander. Videre er det myokardiale I / R-skade utløse en overdreven utskilling av forskjellige cytokiner, hormoner og vekst fac torer, som styrer homing av EPCs til regioner av blodkardannelse 13. Som allerede vist, CXCL8, stromal celle-avledet faktor 1α (SDF-1α, CXCL12), VEGF og makrofag migrasjon hemmende faktor (MIF) er betydelig økt i serumprøver etter hjerteinfarkt I / R skade en. Blant disse faktorene, er en pleiotropisk MIF kjemokin-lignende cytokin med overveiende pro-inflammatoriske egenskaper. I motsetning til sin historiske navn, har MIF pro-trekkende funksjoner, fungerer som en sann chemokin på ulike celletyper 1, 21, 22. MIF-mediert celle rekrutteringsprosesser har vært knyttet til kjemokinreseptorer CXCR2 og CXCR4, som MIF binder seg til og aktiverer i et ikke-beslektet måte 21. Av notatet, EPCs uttrykker begge disse reseptorene på overflaten, som i tillegg blir oppregulert etter hypoksiske betingelserass = "xref"> 23, 24. Dessuten foreslår akkumulerende bevis for at MIF har en samlet kardio-beskyttende effekt under I / R-skade av hjertet 22, 25, 26. I denne sammenheng har det blitt ytterligere vist at MIF kan støtte neovascularization under hypoksisk stress som er spesielt relevant, da vurderer begrenset mekanismer for gjenoppretting av den skadde hjertemuskelen 27. Tidligere in vitro-studier og eksperimenter i pre-kliniske musemodeller gitt første bevis om rollen til MIF i EPCs rekruttering fire. Av notatet, MIF også er en fremtredende last protein av EPCs som kan bli lansert i løpet av EPCs rekruttering innen iskemiske områder 28. Men studier i kliniske settinger spesielt i sammenligning med andre (angiogene) serumcytokinene forblir unnvikende.

Protocol

Blood for isolering av EPCs ble hentet fra friske frivillige etter informert samtykke i samsvar med lokale etikkomité. Serumprøver som brukes i migrasjons analysene ble oppnådd fra pasienter som gjennomgikk konvensjonell hjertekirurgi med bruk av kardiopulmonal bypass (CPB). Eksklusjonskriterier var nødoperasjoner, kjent eller mistenkt graviditet, patient`s alder mindre enn 18 år, og unnlatelse av å innhente informert samtykke. Serumprøver ble tatt i tillegg til kliniske rutinemålinger (umiddelbart før operasjo…

Representative Results

Karakterisering av isolerte endotel stamceller Først ble opptaket av acLDL verifisert, så vel som ekspresjon av KDR, og CD31 på overflaten av den isolerte cellepopulasjon. Som figur 7a viser, 85,1% av de isolerte EPCs viste opptak av acLDL og uttrykt CD31. Figurene 7b og 7c viser videre en homogen fordeling av hvert merke, selv om det synes å være en mindre populasjon, negat…

Discussion

Den første delen av denne studien inkluderte isolering av menneskelige EPCs fra perifert blod fra friske frivillige for å muliggjøre en omfattende evaluering av blodet av hjertekirurgi. Derfor ble en tetthetsgradient sentrifugering utført for å separere PBMC fraksjonen fra plasma, granulocytter og erytrocytter. For å fjerne det meste av de forurensende blodplater, ble denne cellefraksjon utsettes for kort og langsom vasketrinn 29, 30. Deretter ble CD34 <su…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne har ingen bekreftelser.

Materials

Fibronectin Biochrom AG L7117 Coating of T-75 flasks
Aqua ad iniectabilia Fresenius Kabi
Endothelial cell growth medium MV2 Promo Cell C-22221
Endothelial cell growth medium MV2 SupplementMix Promo Cell C-39226
Ficoll-Paque plus GE Healthcare 17-1440-03 Density centrifugation
EasySep human CD34 positive Selection Kit Stemcell Technologies 18056 Isolation of CD34+ cells
EasySep magnet Stemcell Technologies 18000
Accutase Sigma-Aldrich A6964-100ML Detachment of cells
Corning HTS transwell 96 well permeable supports Sigma-Aldrich CLS3387-8EA Migration system
Hoechst solution ThermoFisher 33342 Staining of migrated cells
ImageJ National institutes of health xxx Counting of migrated cells

References

  1. Emontzpohl, C., et al. Key role of MIF in the migration of endothelial progenitor cells in patients during cardiac surgery. Int J Cardiol. 181C, 284-287 (2014).
  2. Smadja, D. M., et al. Interleukin 8 is differently expressed and modulated by PAR-1 activation in early and late endothelial progenitor cells. J Cell Mol Med. 13 (8B), 2534-2546 (2009).
  3. Asahara, T., et al. Isolation of putative progenitor endothelial cells for angiogenesis. Science. 275 (5302), 964-967 (1997).
  4. Simons, D., et al. Hypoxia-induced endothelial secretion of macrophage migration inhibitory factor and role in endothelial progenitor cell recruitment. J Cell Mol Med. 15 (3), 668-678 (2011).
  5. Dernbach, E., et al. Antioxidative stress-associated genes in circulating progenitor cells: evidence for enhanced resistance against oxidative stress. Blood. 104 (12), 3591-3597 (2004).
  6. Yang, Z., et al. Paracrine factors secreted by endothelial progenitor cells prevent oxidative stress-induced apoptosis of mature endothelial cells. Atherosclerosis. 211 (1), 103-109 (2010).
  7. Asahara, T., Kawamoto, A., Masuda, H. Concise review: Circulating endothelial progenitor cells for vascular medicine. Stem Cells. 29 (11), 1650-1655 (2011).
  8. Schmidt-Lucke, C., et al. Reduced number of circulating endothelial progenitor cells predicts future cardiovascular events: proof of concept for the clinical importance of endogenous vascular repair. Circulation. 111 (22), 2981-2987 (2005).
  9. Yoder, M. C. Human endothelial progenitor cells. Cold Spring Harb Perspect Med. 2 (7), a006692 (2012).
  10. Ito, H., et al. Endothelial progenitor cells as putative targets for angiostatin. Cancer Res. 59 (23), 5875-5877 (1999).
  11. Hill, J. M., et al. Circulating endothelial progenitor cells, vascular function, and cardiovascular risk. N Engl J Med. 348 (7), 593-600 (2003).
  12. Yoder, M. C., et al. Redefining endothelial progenitor cells via clonal analysis and hematopoietic stem/progenitor cell principals. Blood. 109 (5), 1801-1809 (2007).
  13. Rohde, E., et al. Blood monocytes mimic endothelial progenitor cells. Stem Cells. 24 (2), 357-367 (2006).
  14. Rohde, E., et al. Immune cells mimic the morphology of endothelial progenitor colonies in vitro. Stem Cells. 25 (7), 1746-1752 (2007).
  15. Prokopi, M., et al. Proteomic analysis reveals presence of platelet microparticles in endothelial progenitor cell cultures. Blood. 114 (3), 723-732 (2009).
  16. Voyta, J. C., Via, D. P., Butterfield, C. E., Zetter, B. R. Identification and isolation of endothelial cells based on their increased uptake of acetylated-low density lipoprotein. J Cell Biol. 99 (6), 2034-2040 (1984).
  17. Koch, S., Claesson-Welsh, L. Signal transduction by vascular endothelial growth factor receptors. Cold Spring Harb Perspect Med. 2 (7), a006502 (2012).
  18. Hirschi, K. K., Ingram, D. A., Yoder, M. C. Assessing identity, phenotype, and fate of endothelial progenitor cells. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 28 (9), 1584-1595 (2008).
  19. Hur, J., et al. Characterization of two types of endothelial progenitor cells and their different contributions to neovasculogenesis. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 24 (2), 288-293 (2004).
  20. Tagawa, S., et al. Determination of Early and Late Endothelial Progenitor Cells in Peripheral Circulation and Their Clinical Association with Coronary Artery Disease. Int J Vasc Med. , 2015 (2015).
  21. Bernhagen, J., et al. MIF is a noncognate ligand of CXC chemokine receptors in inflammatory and atherogenic cell recruitment. Nat Med. 13 (5), 587-596 (2007).
  22. Stoppe, C., et al. Interaction of MIF Family Proteins in Myocardial Ischemia/Reperfusion Damage and Their Influence on Clinical Outcome of Cardiac Surgery Patients. Antioxid Redox Signal. 23 (11), 865-879 (2015).
  23. Kanzler, I., et al. Differential roles of angiogenic chemokines in endothelial progenitor cell-induced angiogenesis. Basic Res Cardiol. 108 (1), 310 (2013).
  24. Walenta, K. L., Bettink, S., Bohm, M., Friedrich, E. B. Differential chemokine receptor expression regulates functional specialization of endothelial progenitor cell subpopulations. Basic Res Cardiol. 106 (2), 299-305 (2011).
  25. Rassaf, T., Weber, C., Bernhagen, J. Macrophage migration inhibitory factor in myocardial ischaemia/reperfusion injury. Cardiovasc Res. 102 (2), 321-328 (2014).
  26. Stoppe, C., et al. High postoperative blood levels of macrophage migration inhibitory factor are associated with less organ dysfunction in patients after cardiac surgery. Mol Med. 18, 843-850 (2012).
  27. Amin, M. A., et al. Migration inhibitory factor mediates angiogenesis via mitogen-activated protein kinase and phosphatidylinositol kinase. Circ Res. 93 (4), 321-329 (2003).
  28. Kupatt, C., et al. Embryonic endothelial progenitor cells expressing a broad range of proangiogenic and remodeling factors enhance vascularization and tissue recovery in acute and chronic ischemia. FASEB J. 19 (11), 1576-1578 (2005).
  29. Colotta, F., et al. Expression of a monocyte chemotactic cytokine by human mononuclear phagocytes. J Immunol. 148 (3), 760-765 (1992).
  30. Casale, T. B., Kaliner, M. A rapid method for isolation of human mononuclear cells free of significant platelet contamination. J Immunol Methods. 55 (3), 347-353 (1982).
  31. Lewandowska, K., Kaplan, D., Husel, W. CD34 expression on platelets. Platelets. 14 (2), 83-87 (2003).
  32. Stellos, K., et al. Platelet-derived stromal cell-derived factor-1 regulates adhesion and promotes differentiation of human CD34+ cells to endothelial progenitor cells. Circulation. 117 (2), 206-215 (2008).
  33. Thornton, M. A., Poncz, M. In vitro expansion of megakaryocytes from peripheral blood hematopoietic progenitors. Methods Mol Med. 31, 337-345 (1999).
  34. Ivetic, N., et al. Producing megakaryocytes from a human peripheral blood source. Transfusion. 56 (5), 1066-1074 (2016).
  35. Friedrich, E. B., Walenta, K., Scharlau, J., Nickenig, G., Werner, N. CD34-/CD133+/VEGFR-2+ endothelial progenitor cell subpopulation with potent vasoregenerative capacities. Circ Res. 98 (3), e20-e25 (2006).
  36. Wijelath, E. S., et al. Novel vascular endothelial growth factor binding domains of fibronectin enhance vascular endothelial growth factor biological activity. Circ Res. 91 (1), 25-31 (2002).
  37. Hulkower, K. I., Herber, R. L. Cell migration and invasion assays as tools for drug discovery. Pharmaceutics. 3 (1), 107-124 (2011).
  38. Yao, E. H., et al. Effects of the antioxidative beta-blocker celiprolol on endothelial progenitor cells in hypertensive rats. Am J Hypertens. 21 (9), 1062-1068 (2008).
  39. Takahashi, T., et al. Ischemia- and cytokine-induced mobilization of bone marrow-derived endothelial progenitor cells for neovascularization. Nat Med. 5 (4), 434-438 (1999).
  40. Kawamoto, A., et al. Therapeutic potential of ex vivo expanded endothelial progenitor cells for myocardial ischemia. Circulation. 103 (5), 634-637 (2001).
  41. Kim, B. S., et al. Myocardial Ischemia Induces SDF-1alpha Release in Cardiac Surgery Patients. J Cardiovasc Transl Res. 9 (3), 230-238 (2016).
  42. Frangogiannis, N. G., Smith, C. W., Entman, M. L. The inflammatory response in myocardial infarction. Cardiovasc Res. 53 (1), 31-47 (2002).
  43. Zernecke, A., Bernhagen, J., Weber, C. Macrophage migration inhibitory factor in cardiovascular disease. Circulation. 117 (12), 1594-1602 (2008).
  44. White, D. A., et al. Pro-inflammatory action of MIF in acute myocardial infarction via activation of peripheral blood mononuclear cells. PLoS One. 8 (10), e76206 (2013).

Play Video

Cite This Article
Emontzpohl, C., Simons, D., Kraemer, S., Goetzenich, A., Marx, G., Bernhagen, J., Stoppe, C. Isolation of Endothelial Progenitor Cells from Healthy Volunteers and Their Migratory Potential Influenced by Serum Samples After Cardiac Surgery. J. Vis. Exp. (120), e55192, doi:10.3791/55192 (2017).

View Video