Summary
Les mutants de délétion de gène générés par recombinaison homologue sont l'étalon-or pour les études de fonction de gène. Le procédé OSCAR (One Step Construction of Agrobacterium-Recombination-ready-plasmids) pour la génération rapide de constructions de suppression est décrit. La transformation fongique médiée par Agrobacterium suit. Enfin, une méthode de confirmation basée sur la PCR des délétions de gènes dans les transformants fongiques est présentée.
Abstract
La suppression précise des gènes d'intérêt, tout en laissant le reste du génome inchangé, constitue le produit idéal pour déterminer la fonction du gène particulier dans l'organisme vivant. Dans ce protocole, on décrit la méthode OSCAR de construction de plasmide de deletion précise et rapide. OSCAR s'appuie sur le système de clonage dans lequel une seule réaction de recombinase est réalisée contenant les flancs 5 'et 3' amplifiés par PCR du gène intéressant et deux plasmides, pA-Hyg OSCAR (le vecteur marqueur) et pOSCAR (l'assemblage vecteur). La confirmation du vecteur de suppression correctement assemblé s'effectue par une cartographie de la digestion par restriction suivie d'un séquençage. Agrobacterium tumefaciens est ensuite utilisé pour méditer l'introduction de la construction de deletion dans les spores fongiques (appelées ATMT). Enfin, un essai de PCR est décrit pour déterminer si la construction de deletion est intégrée par une recombinaison homologue ou non homologue, indiquant la suppression du gène ouIntégration ectopique, respectivement. Cette approche a été utilisée avec succès pour la suppression de nombreux gènes dans Verticillium dahliae et dans Fusarium verticillioides parmi d'autres espèces.
Introduction
La dissection génétique est une méthodologie puissante pour déterminer l'importance fonctionnelle de l'individu ou des combinaisons de gènes. Une approche standard pour comprendre le rôle des gènes spécifiques est la production de mutants géniques uniques inchangés dans tout autre gène. L'approche la plus puissante et la moins potentiellement confuse est la suppression complète et précise d'un cadre de lecture ouvert du gène d'intérêt (GOF ORF) sans endommager d'autres fonctions génétiques.
Parce que les approches de ligature standard pour la production de plasmides de suppression nécessitent des étapes multiples, le rationnel pour OSCAR 1 était de produire une approche in vitro plus rapide. La figure 1 représente le processus d'assemblage dans l'approche OSCAR. La méthode décrite ici a l'avantage de combiner la construction rapide de vecteurs individuels de délétion de gène dans une seule réaction multipartite en combinaison avec un transfo médié ultérieur Agrobacterium tumefaciens(ATMT). OSCAR est très rapide et se compare bien avec d'autres stratégies telles que l'utilisation de l'assemblage de Gibson dans la levure 2 . La méthode OSCAR a été utilisée avec succès avec plusieurs espèces de champignons d'Ascomycota. Ces espèces comprennent : Fusarium verticillioides (non publié), Verticillium dahliae 3 , Setosphaeria turcica 4 , Metarhizium robertsii 5 , Fusarium oxysporum f. Sp. Vasinfectum 6 , Pestalotiopsis microspora 7 , Colletotrichum higginsianum 8 et Dothistroma septosporum 9 et Sarocladium zeae (non publié) .
Ce protocole fournit des instructions étape par étape pour la méthode, y compris la conception de l'amorce, l'amplification par PCR du flanc, la réaction OSCAR BP, la confirmation de la structure de la construction de la suppression, la transformationIon d' Agrobacterium avec la construction suivie d'un transfert à base de ATM de la construction de deletion dans les cellules fongiques et finalement différenciant les mutants de deletion des champignons de ceux avec des constructions de suppression ectopiquement intégrées.
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Protocol
1. Conception d'amorce pour l'amplification par PCR des flancs de gènes
- Téléchargez dans un fichier de traitement de texte la région génomique du gène d'intérêt (GOI), y compris le cadre de lecture ouvert (ORF) et au moins 2 kb flanquant le gène de chaque côté de FungiDB ou d'autres ressources de données génomiques.
- Mettez en surbrillance l'ORF destiné à la suppression et à l'amorçage des étiquettes et à l'arrêt des codons.
- Identifiez et mettez en évidence les ORF adjacents dans la séquence téléchargée.
- Utilisez l'extrémité de 5 kb de l'ORF GOI et l'outil de conception d'amorce (voir la liste des matériaux) pour concevoir la paroi d'amorce PCR O1 et O2 pour générer un produit de taille minimale de 1 kb. Veillez à ne pas toucher les ORF adjacents.
- Collez le flanc de 5 kb de 5 'dans la fenêtre "Entrée de séquence". Cliquez sur "Afficher les paramètres personnalisés". Entrez les paramètres de conception personnalisés suivants: amorce TM 58 (min), 60 (opt) et 62 (max); Primaire GC 40 (min), 50 (opt) et 60 (max); Primer Taille 22 (min), 24 (opt) et 26(Max.); Amplicon Taille 1250 (min), 1500 (opt) et 2000 (max.).
- Choisissez le résultat qui place l'amorce inverse (O2) la plus proche de l'ORF. Capturez une capture d'écran des tests et copiez et collez les séquences d'amorces dans le document de traitement de texte.
- Répétez le processus pour le flanc 3 'pour générer les amorces O3 et O4, choisissez cette fois le résultat en plaçant l'amorce directe (O3) la plus proche de l'ORF cible.
- Ajoutez les sites attachés appropriés aux extrémités 5 'des amorces 1 à 4 (voir le tableau 1 ).
- Également concevoir et commander des amorces spécifiques à ORF à utiliser pour la confirmation de suppression dans la section 4 ci-dessous. Les paramètres doivent être identiques à ceux de l'étape 1.4.1, sauf utiliser Amplicon Size 500 (min), 750 (opt) et 1000 (max) pour la longueur de l'ORF si nécessaire. Enfin, pour la confirmation des recombinants homologues, générez des amorces 5 'et 3' trouvées juste en dehors des flancs dans le chromosome. Ces amorces "hors" seront utilisées avecHygR (210) et hygF (850), respectivement ( Fig. 2 ).
- Commander les amorces.
2. Production de constructions OSCAR
- En utilisant une Taq de haute fidélité , effectuez deux réactions, une pour les flancs 5 'et 3', en utilisant des amorces (100 μM) O1 et O2 dans une réaction et les amorces O3 et O4 dans la seconde. Le mélange réactionnel contient ce qui suit: 29,5 μL d'eau distillée stérile (SDW), 5 μL de tampon de PCR 10x LA, 8 μL de mélange de dNTP 2,5 mM, 5 μL de MgCl 2 25 mM, gabarit de 1 μL (50 ng / μL), 0,5 μL de hi- Taq de fidélité, 0,5 μL d'amorce O1 et 0,5 μL d'apprêt O2 pour un flan de 5 '(ou 0,5 μL d'amorce O3 et 0,5 μL d'amorce O4 pour le flanc 3') Les conditions de réaction d'utilisation sont les suivantes: 94 ° C pendant 1 min, puis 30 cycles de 94 ° C pendant 30 s, 60 ° C pendant 30 s, 72 ° C pendant 2 min, puis étapes finales de 72 ° C pendant 5 min, puis maintenez-le indéfiniment à 10 ° C.
- Exécuter 0,8%Agarose 1x TAE (40 mM Tris acétate pH 8,3, 1 mM EDTA) électrophorèse sur gel pour environ 125 Vh dans un appareil minigel standard pour déterminer la taille du produit et la concentration relative. Postez le gel avec une tache non éthidique conformément aux instructions du fabricant. Visualiser sur un illuminateur UV.
- Si les produits de flan de 5 'et 3' sont en même temps concentrés, combinez-les et utilisez un kit de colonne d'affinité (ou précipitation de PEG 90 μL de produits de PCR combinés, 240 μL de tampon TE pH 7,5, 160 μL de 30% de polyéthylèneglycol PEG8000 30 mM de MgCl 2 ) pour co-purifier les produits de PCR selon le protocole du fabricant. Si elles ne sont pas de concentration égale, combiner tout un produit à faible concentration avec une quantité équivalente estimée de produit à partir de la réaction à rendement élevé.
- Utiliser un spectrophotomètre pour mesurer la concentration d'ADN purifiée.
- Effectuer la réaction BP en mélangeant ce qui suit: 1 μL de 60 ng / μL de pOSCAR, 2 μL de 60 ng /ΜL pA-Hyg-OSCAR, 1 μL de flancs combinés de 60 ng / μL, 1 μL de clonase. Incuber pendant 16 h à 25 ° C. Terminer la réaction en ajoutant 0,5 μL de protéinase K et incuber pendant 10 min à 37 ° C.
- Transformez la haute compétence E. Cellules coli . Les cellules compétentes disponibles dans le commerce et les cellules compétentes de DH5α CaCl 2 fabriquées à la maison ont été utilisées avec succès en tant que destinataires comme décrit par les instructions du fabricant. Plaque sur faible teneur en sodium (0,5 g / L de NaCl) LB contenant 100 μg / mL de spectinomycine (Spec).
- Identifiez la construction correcte en effectuant des minipreps d'ADN 10 des colonies générées ci-dessus. Effectuer une double digestion avec Hin dIII et Kpn I comme suit: pipeter 5 μL d'ADN, 2 U de chaque enzyme, 2 μL de tampon 10x approprié avec SDW à 20 μL de volume total. Cela libère l'insertion (environ 4,5 kb avec des flancs de gènes de 1,5 kb) du vecteur ( environ 7 kb) et coupe tous les sitesFlancs qui peuvent donner des tailles prévisibles de bande.
- La séquence 11 sélectionne des clones présentant un motif de bande approprié.
3. Agrobacterium tumefaciens Transformation médiatisée (ATMT) des champignons
- Transformez la souche AGL1 d' Agrobacterium tumefaciens avec la construction de suppression OSCAR 12 .
- Transformer le champignon avec AGL1 contenant le plasmide de suppression GOI OSCAR. Pour ce faire, procédez comme suit:
- Préparez une suspension de spores fongiques avec de l'eau stérile à 2 x 10 6 spores / mL. Quantifier les spores sur un hémocytomètre ou un compteur automatisé de cellules. Placez 500 μL dans un tube de microcentrifugeuse de 1,5 mL. Cette configuration est pour 4 plaques de transformation.
- Utilisez une boucle stérile stérile bleue pour ajouter une goutte facilement visible (devrait couvrir environ 20% du diamètre de la boucle) du plasmide de deletion contenant AGL1 à partir du milieu LB-Spec 100 de 2 à 3 jours (voir MListe des compositions pour la composition) contenant des plaques et mélanger dans la suspension de spores. Les cellules bactériennes de vortex jusqu'à la dispersion sont bien dispersées ( environ 5 min de vitesse moyenne).
- Pipetter 100 μL de la suspension Conidia-Agro sur le centre d'un filtre à membrane en cellulose placé sur chacune des quatre boîtes de Petri de 6 cm contenant du milieu de culture intermédiaire 12 .
- Faites passer la suspension avec des billes de verre stériles (environ 4) pour recouvrir toute la surface du filtre à membrane. Alternativement, répartir la suspension à l'aide d'un outil d'épandage traditionnel. Laisser sécher le filtre à membrane dans un capot pendant environ 10 min, enrouler avec un film de paraffine. Répétez les étapes 3.2.2 et 3.2.3 pour configurer plusieurs transformations.
- Incuber la plaque pendant 2 jours à température ambiante, inversée.
- Transférer le filtre à membrane sur un milieu de sélection d' Aspergillus de 6 cm 12 plaques contenant de l'hygromycine B (Hyg) 150 μg / mL, cefotaxime 200 mM et 100 μg / mLMoxalactam. Incuber à température ambiante pendant 5-7 jours avant d'isoler les colonies résistantes à l'Hyg.
- Avec des cure-dents stériles, transférez des transformants putatifs sur des plaques d'agarine de dextrose de pomme (PDA) de 6 cm contenant 150 ug / ml d'Hyg, 100 μg / ml de kanamycine.
4. Supprimer l'identification de mutant par PCR
- Extraire l'ADN pour la PCR des transformants par thermolyse 13 .
- Une fois que les transformants forment des colonies sur le PDA à partir de l'étape 3.2.7, utiliser un cure-dent stérile pour transférer une petite quantité (2 mm x 2 mm) de cellules de mycélium ou de levure de la colonie en 100 μL de solution de lyse (phosphate de sodium 50 mM, pH 7,4, EDTA 1 mM, 5% de glycérol) dans un tube à microcentrifugeuse.
- Incuber le mélange à 85-90 ° C pendant 20 à 30 minutes. Conserver l'extrait brut contenant de l'ADN génomique à -20 ° C jusqu'à l'utilisation à l'étape 4.2.
- Effectuer 4 réactions de PCR par transformant, chacune à dEtect recombinaison homologue des flancs 5 'et 3', respectivement, une pour le marqueur sélectionnable (hygromycine phosphotransférase dans ce cas) et une pour l'ORF GOI.
REMARQUE: Nous utilisons généralement une Taq basse fidélité peu coûteuse pour ces réactions. Les conditions de réaction sont telles que décrites dans l'étape 2.1 ci-dessus et contiennent 20 μL SDW, tampon Taq 10x 2,5 μL, dNTPS (10 mM) 0,5 μL, Taq 14 fait maison, 0,5 μL, Primer A (100 uM) 0,5 μL, Primer B (100 uM ) 0,5 μL, modèle 0,5 μL. Les stocks d'amorces à concentration plus faible (10 μM) peuvent être utilisés également bien. - Exécuter un gel d'agarose ( p. Ex. 0,8%) des produits de PCR. Les mutants de deletion produiront la bande Hyg mais pas un produit ORF. Les intégrés ectopiques montreront les deux bandes. Le type sauvage ne produira que la bande ORF.
- Conserver en permanence les mutants de suppression (et un transformant ectopique ou deux pour les contrôles) pour une utilisation future.
REMARQUE: 15% de glycerol est utilisé pour sA détruit nos contraintes à long terme à -80 ° C.
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Representative Results
La méthode OSCAR, dans une seule réaction, génère un plasmide contenant les flancs du gène cible à supprimer entourant la cassette de marque sélectionnable. La production de constructions de suppression utilisant OSCAR est très efficace. Cependant, le système peut produire des constructions partielles contenant certains mais pas les trois fragments (les deux flancs de gènes et le marqueur sélectionnable). Généralement, la majorité des transformants de E. coli contiennent la bonne construction OSCAR. Par exemple, la figure 2 représente la construction de suppression OSCAR pour le gène Verticillium dahliae VDAG_06812. Dans ce cas, les flancs de VDAG_06812 manquent de sites Hin dIII ou KpnI et, par conséquent, un insert de plasmide de 4 247 pb devrait être libéré. La figure 3 montre la confirmation de double digestion de l'enzyme de restriction Hin dIII- Kpn I de la structure plasmidique correcte, à l'exception des voies 5 et 11 représentant une structure anormaleTs. La figure 4 montre la confirmation finale de deux délétions de gènes différentes par Southern Blot. La figure 5 montre une approche PCR définitive comme alternative à Southern Blot.
Figure 1: réaction de construction de suppression OSCAR. Le processus de construction de suppression de OSCAR comprend une amplification par PCR séparée des flancs de gène 5 'et 3', suivie d'une réaction de clonase BP avec les produits de flanc purifiés combinés et les plasmides marqueurs binaires et de sélection. B1r, B2r, B3, B4, P1r, P2r, P3, P4, R1, R2, L3 et L4 représentent des sites de recombinaison lambda. Re-imprimer avec l'autorisation de la référence 1 .
Figure 2: construction de suppression OSCAR pour < Em> Verticillium dahliae gene VDAG_06812. Les positions de reconnaissance enzymatique de restriction et les sites de recuit d'amorces pour vérifier la structure de construction de suppression correcte sont indiquées. Re-imprimer avec l'autorisation de la référence 1 .
Figure 3: Confirmation de la digestion par restriction de la structure de construction de suppression de VDAG_06812 avec Kpn I et Hin dIII. Les plasmides ont été digérés deux fois et analysés par électrophorèse sur gel sur un gel d'agarose à 0,8%. La construction correcte génère deux bandes, d'environ 6,9 kb et 4,2 kb, représentant le squelette du vecteur binaire et le marqueur HygR fusionné respectivement aux flancs des gènes cibles. Re-imprimer avec l'autorisation de la référence 1 .
Figure 4: hybridation Southern Blot confirmant la suppression de VDAG_02161 et VDAG_09930 dans V. dahliae en utilisant des constructions de suppression OSCAR. Les ADN génomiques ont été digérés avec Bcl I. Ils ont ensuite été sondés simultanément avec des sondes ORF VDAG_02161 et VDAG_09930. Les bandes d'hybridation sont de 2,757 pb et 1,426 pb pour les allèles de type sauvage de VDAG_02161 et VDAG_09930, respectivement. Les échantillons sont les suivants: voie 1: souche de type sauvage VdLs.17; Voie 2: souche mutante de deletion 02161.1; Voie 3: souche mutante de deletion 02161.3; Voie 4: souche transformante ectopique Ect 02161.2; Piste 5: souche 09930.3 de mutant de deletion; Voie 6: souche 09930.10 de mutant de deletion; Voie 7: souche transformante ectopique Ect 09930.4. Re-imprimer avec la permission de Référence 1 .
Figure 5: Suppression de la confirmation de mutant par PCR. Analyse de la deletion et des transformants ectopiques de Fusarium verticillioides pour le gène FVEG_13253. Lanes 1 haut et bas, marqueur; Pistes 2-6 amplification du fragment de PCR 5 'de transformant de gel supérieur; Pistes 7-11 amplification ORF de gel supérieur; Pistes 2-6 amplification du gène de l'hyg du gel inférieur; Pistes 7-11 amplification de fragment de 3 'de gel de fond. Les échantillons sont des souches de suppression 11/31 (pistes 2 et 7), 11/32 (pistes 3 et 8), 11/33 (pistes 4 et 9) et les transformants ectopiques 11/34 (pistes 5 et 10) et 11 / 35 (pistes 6 et 11).
| Apprêt | Utilisation | Séquence |
| Primer O1- (attB2r) | Amplification du flanc 5,5,Primaire avant | 5'-GGGGACAGCTTTCTTGTACAAAGTGGAA |
| Primer O2- (attB1r) | Amplification du flanc 5,5, amorce avant | 5'-GGGGACTGCTTTTTTGTACAAACTTGT |
| Primer O3- (attB4) | Amplification du flanc 3 ', primaire avant | 5'-GGGGACAACTTTGTATAGAAAAGTTGTT |
| Primer O4- (attB3) | Amplification du flanc 3 ', amorce avant | 5'-GGGGACAACTTTGTATAATAAAGTTGT |
Tableau 1: Extensions spécifiques de l'amorce OSCAR 5 'ajoutées aux séquences d'amorces spécifiques aux gènes.
| Apprêt | Utilisation | Séquence |
| OSC-F | 5'-CTAGAGGCGCGCCGATATCCT | |
| OSC-R | Amorce de séquençage inversé OSCAR, séquence de brin anti-sens du flanc 5 ' | 5'-CGCCAATATATCCTGTCAAACACT |
| HygR (210) | Amorce de séquençage inversé, séquence de brin anti-sens du flanc 5 ' | 5'-GCCGATGCAAAGTGCCGATAAACA |
| HygF (850) | L'amorce de séquençage avant, le brin sens de séquences du flanc 3 ' | 5'-AGAGCTTGGTTGACGGCAATTTCG |
| New Hyg Marker Forward | Pour amplifier le gène de résistance à l'hygromycine comme témoin (avec l'amorce New Hyg Marker Reverse ci-dessous) | 5'-GACAGGAACGAGGACATTATTA |
| New Hyg Marker Reverse | Pour amplifier le gène de résistance à l'hygromycine comme témoin (avec l'amorce New Hyg Marker Forward ci-dessus) | 5'-GCTCTGATAGAGTTGGTCAAG |
Tableau 2: Imprimantes pour l'analyse des constructions de suppression OSCAR.
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Discussion
La construction en une étape des plasmides prêts à l'emploi d'Agrobacterium-Recombination (OSCAR) a été utilisée avec succès avec un nombre toujours croissant de champignons d'Ascomycota. La méthode devrait également être facilement applicable aux Basidiomycota et aux espèces d'autres phylas fongiques (avec des promoteurs appropriés conduisant des gènes marqueurs sélectionnables), en supposant que la transformation médiée par Agrobacterium et la recombinaison homologue sont possibles. Des vecteurs marqueurs supplémentaires ont été générés pour diversifier les choix de composés antifongiques ainsi que pour la production de mutants à double et à ordre supérieur. Ceux-ci incluent la résistance à G418, la nourseothricine, et récemment les herbicides glufosinate ammonium et chlorimuron éthyle 4 .
La méthode a été élaborée pour être utilisée avec Verticillium dahliae à partir duquel les images présentées ici sont principalement dérivées 1 . Plus récemment, OSCAR a été largement utilisé pour la suppressionDes gènes dans le champignon mycotoxigénique Fusarium verticillioides. Plus de 60 constructions de suppression ont été réalisées et des suppressions de mutants pour plus de 30 gènes ont généré (non publié).
Dans son itération actuelle, le processus nécessite environ 4-6 semaines pour avoir un ensemble de mutants de suppression confirmés en main. Voici une brève liste des principales étapes de l'OSCAR et du temps approximatif nécessaire pour les accomplir: 1) Conception et acquisition d'amorces OSCAR basées sur les données génomiques (5 jours), 2) l'amplification et le clonage du flanc (2 jours), 3) Confirmation du clone par miniprep et séquençage (1 semaine), 4) introduction du plasmide dans Agrobacterium pour ATMT (4 jours), 5) production de transformants par ATMT dans Fusarium verticillioides et croissance (2 semaines, notez que cela dépend du taux de croissance Du champignon à l'étude), la thermolyse et la détermination de la PCR des génotypes de transformants (2 jours), 6) une sportive unique, la confirmation de génotype et le stockage (1-2 semaines).
15 . D'autres plasmides marqueurs OSCAR tels que pA-Bar-OSCAR et pA-Sur-OSCAR peuvent être disponibles chez les auteurs 5 .
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Disclosures
Les auteurs n'ont rien à dévoiler.
Acknowledgments
Les auteurs remercient les étudiants de premier cycle et de lycée suivants pour leur travail de génération de mutants OSCAR dans les verticillioiodes de Fusarium : Anjellica Miller, Athar Naseer, Xiu Lin, Katelyn Woodburry, Chelsea Patterson, Kathleen Robertson, Krystina Bradley, Ashton Rogers, Alexis McKensie, Manny Hernandez Ashli Crepsac, Jeff Delong, Christian King, Gi Jeong, Maria Belding, Christy Burre, Daniel O'Meara, Lauren (Victoria) Cook, Jake Goodman, Sampriti De, Oge Okoye, Alyssa Beckstead, Garrett Hibbs, Nick Goldstein, Caroline Twum Chris Benson, Louis Stokes, Hannah Itell, Jane Hulse, Jasim Mohammed, James Loggins, Kelli Russell, Gre'Nisha Jones, Kristin Sheaffer, Mariam Hammady, Ava Wilson, Katrina Bazemore, Toney Harper, Karlin McGhee, Mohmed Momin, Rima Momin , Thi Ngoc Le et Angel Pham.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| FungiDB | Database/ http://fungidb.org/fungidb/ | ||
| IDT PrimerQuest | IDT | Primer design online software/ http://www.idtdna.com/Primerquest/Home/Index | |
| Microsoft Word | Sequence file manipulation | ||
| Low Na LB Spec 100 medium | E. coli transformant selection, composition: 1% tryptone, 0.05% NaCl, 0.5% yeast extract, 1.5% agar if for solid medium | ||
| Co-cultivation medium | ATMT transformation induction (Reference 12) | ||
| Aspergillus minimal medium with Hygromycin | Fungal transformant selection | ||
| PDA medium | Acumedia | 7149A | Single spore slant tubes |
| PDA-Hyg-Kan medium | Fungal ransformant isolation, PDA containing 150 μg/mL hygromycin B and 100 μg/mL Kanamycin | ||
| Glass beads | Genlantis | C400100 | Plate spreading |
| Nitrocellulose filters (47 mm) | Fisher | 09-719-555 | Co-culturing for ATMT |
| Various centifuge tubes | multiple preps | ||
| Petri plates (various) | Culturing of bacteria and Fungi | ||
| pA-Hyg OSCAR | Addgene | 29640 | Selectable marker vector |
| pOSCAR | Addgene | 29639 | Assembly vector |
| DH5α One Shot Competent E. coli cells | Life Technologies | 12297-016 | BP reaction transformation |
| ccdB survival E. coli cells | Life Technologies | A10460 | Maintenance of pOSCAR |
| Wooden transfer sticks | Colony streaking | ||
| Toothpicks | Colony picking | ||
| Microcentrifuge | Pelleting Bacteria, etc. | ||
| Preparative centrifuge | Fungal spore collection | ||
| Dissecting microscope | Single spore isolation | ||
| Automated Cell Counter | Spore suspension calculation | ||
| Compound microscope | Hemocytometer cell counting | ||
| QIAquick PCR Purification Kit | Qiagen | 28104 | PCR gene flank produict purification |
| TaKaRa LA Taq | Takara Bio USA | RR002A | Hi Fidelity taq polymerase for OSCAR flank generation |
| Hygromycin B | InvivoGen | ant-hg-5 | |
| Spectinomycin | Sigma | 22189-32-8 | |
| Cefotaxime | TCI America | C2224 | |
| Kanamycin | 11815032 | ||
| Moxalactam | Sigma-Aldrich | 43963 | |
| GelRed | Phenix Research Products | RGB-4103 | Post staining agarose gels |
| Qiagen QIAquick PCR Purification Kit (Cat. No. 28104) | |||
| (OneShot_ Mach1TM T1R or One Shot_ OmniMAX™ 2 T1R from Invitrogen) | Thermo Fisher Scientific | C862003 | |
| Gateway BP Clonase II Enzyme mix | Thermo Fisher Scientific | 11789020 | Used to assemble deletion construct in pOSAR |
References
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