Summary

Analys av Lymphocyte Extravasation Med användning av ett<em> In Vitro</em> Modell av det mänskliga blod-hjärnbarriären

Published: April 05, 2017
doi:

Summary

Here, we describe a human blood-brain barrier model enabling to investigate lymphocyte transmigration into the central nervous system in vitro.

Abstract

Lymfocyt extravasering in i det centrala nervsystemet (CNS) är kritisk för immunövervakning. Sjukdomsrelaterade förändringar av lymfocyter extravasering kan resultera i patofysiologiska förändringar i CNS. Sålunda, är undersökning av lymfocyt migration in CNS viktigt att förstå inflammatoriska CNS-sjukdomar och att utveckla nya terapi tillvägagångssätt. Här presenterar vi en modell in vitro av blod-hjärnbarriären för att studera lymfocyter extravasering. Mänskliga hjärnan mikrovaskulära endotelceller (HBMEC) är confluently odlas på en porös polyetylentereftalat Transwell infoga att härma endotelet av blod-hjärnbarriären. Barriärfunktionen är validerat av zonula occludens immunohistokemi, transendotelial elektrisk resistans (TEER) mätningar samt analys av Evans Blue permeation. Denna modell möjliggör undersökning av diapedes av sällsynta lymfocytundergrupper såsom CD56 ljusa CD16 dim / – NK-celler. Furthermmalm, effekterna av andra celler, cytokiner och kemokiner, sjukdomsrelaterade ändringar och distinkta behandlingsregimer på migrationskapacitet av lymfocyter kan studeras. Slutligen kan effekten av inflammatoriska stimuli samt olika behandlingsregimer på endothelial barriären analyseras.

Introduction

Lymfocyter migration från blodet till vävnader är avgörande för immunövervakning. En sekvens av specifika molekylära interaktioner säkerställer lägesspecifik extravasering in i tunntarmen, hud, lymfkörtlar, det centrala nervsystemet (CNS), och andra vävnader 1. Förändringar i lymfocyter migration är inblandade i patofysiologin av ett antal breda sprida sjukdomar 2. Migrering in immun-privilegierade CNS är hårt reglerad och följaktligen förändringar av denna process är involverade i CNS-relaterade sjukdomar som encefalomyelit 3, neuromyelitis optica, stroke och multipel skleros (MS) 2, 4, 5, 6, 7. Därför är det viktigt att studera lymfocyter extravasering att bättre förstå sjukdomen patofysiologi och att utveckla verktyg för en melioration sjukdomsbörda 8, 9, 10, 11, 12.

Lymfocyter vandrar in i CNS via olika vägar. Extravasation genom postkapillära venoler i det subaraknoidala utrymmet via blod-cerebrospinalvätska barriär inom de choroid plexus och över blod-hjärnbarriären har beskrivits 1, 13, 14, 15. Migrering genom blod-hjärnbarriären utföres genom interaktion av lymfocyter med endotelceller 14. I motsats till endotelceller i periferin, endotelceller i CNS uttrycker höga mängder av Täta fogar molekyler, vari strikt begränsa mängden av celler och proteiner som kan korsa blod-hjärnbarriärenlass = "xref"> 16. Inflammation resulterar i uppluckring av täta förbindelser och inducerar expression av adhesionsmolekyler; sålunda, förbättra lymfocyt migration in CNS 1, 17, 18.

Extravasering via blod-hjärnbarriären är en flerstegsprocess. Lymfocyter tjuder till endotelcellerna och sedan rulla längs endotelet i en process huvudsakligen förmedlas av selektiner 1, 15. Därefter, interaktioner mellan kemokiner som utsöndras av endotelet och respektive kemokinreceptorer som uttrycks på lymfocyter inducerar konformationsförändringar av integriner, därigenom främja fast adhesion till endotelcellerna 1. Slutligen, lymfocyter antingen krypa längs den endoteliala barriären mot blodflödet innan transmigrating in i perivaskulära utrymmet, eller stall omedelbart och direkt transmigrate vid stället för fast adhesion 1, 19, 20. Alla dessa steg av lymfocyt extravasering kan analyseras in vitro med användning distinkta tekniker 21. Time-lapse video mikroskopi används för att studera den initiala tjudra och rullande 15. Adhesionsanalyser ger detaljerad information om fast gripande att endotelceller hinder 22. Transmigration analyser som visat här möjliggör analys av immuncellstrans 21, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29.

Använda människa in vitro blodhjärnbarriären modell kunde vi nyligen visar att en högre MIGRAtory kapacitet på CD56 ljusa CD16 dim / – NK-celler jämfört med deras CD56 dim CD16 + motsvarigheter återspeglades av en dominans av denna NK-cellunderuppsättning i det intratekala utrymmet 21. Således verkar vår experimentuppställning för att vara lämplig att efterlikna in vivo situationen.

Protocol

1. Cell Culture of Human Brain mikrovaskulära endotelceller (HBMEC) Beläggning av cellodlingsflaskor Att förbereda fibronektin lösningen, tillsätt 10 ml PBS till en 15 ml centrifugrör. Tillsätt 150 mikroliter fibronektin och blanda väl. För att täcka botten en T-25 cellkultur kolv tillsätt 2 ml av fibronektinlösningen. Inkubera cellkulturflaska i minst 3 timmar vid 37 ° C i inkubatorn. Fibronektinbelagda kolvar kan lagras under 2 veckor vid 37 ° C / 5% CO2. </o…

Representative Results

Representativa resultat som visar transmigration av NK-cell och T-cell-underuppsättningar med användning av humant blod-hjärnbarriären modell (Figur 1A) visas. Integriteten hos HBMEC monoskiktet validerades genom färgning av den täta förbindningen molekylen ZO-1, transendotelial elektrisk resistans (TEER) mätningar, och Evans Blue trängning (Figur 1B). Följande 3 – 4 dagar kultur HBMEC uttryckte den täta förbindningen molekylen ZO-1 (…

Discussion

Här presenterar vi en teknik för att undersöka trans av lymfocyter över blod-hjärnbarriären. In vitro analys av lymfocyter migration till CNS är viktigt att studera grundläggande processer av lymfocyter extravasering potentiella sjukdomsrelaterade förändringar och nya behandlingsmetoder.

Flera modifieringar av blod-hjärnbarriären modell är möjliga. Till exempel, kan celler från det övre rummet analyseras för att undersöka sammansättningen av den icke-migrerade cel…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This study has been supported by the Collaborative Research Centre CRC TR128 “Initiating/Effector versus Regulatory Mechanisms in Multiple Sclerosis-Progress towards Tackling the Disease” (Project A9 to H.W. and C.C.G., project B1 to N.S.).

Materials

PBS Gibco 14190-094 without CaCl2 or MgCl2
Fibronectin 1mg/mL Sigma F1141-5MG from bovine plasma
T-25 cell culture flask Greiner BioOne 690160
HBMEC ScienCell 1000
Pelobiotech PB-H-6023
Accutase Sigma A6964-100ML
ECM-b ScienCell 1001-b
FBS ScienCell 1001-b
Penicillin/Streptomycin ScienCell 1001-b
Endothelial cell growth supplement ScienCell 1001-b
Transwell Corning 3472 clear, 6.5mm diameter, 3.0µm pore size
96-well flat bottom plate Corning 3596
Evans blue Sigma E2129-10G stock solution: 1 g/50 mL PBS
B27 Gibco 17504-044 50x concentrated
Infinite M200Pro Tecan
96-well black flat bottom plate Greiner BioOne 675086
48-well plate Corning 3526
RPMI 1640 Gibco 61870-010
Flow Count Fluorospheres Beckman Coulter 7547053
Na-EDTA Sigma E5134
BSA Sigma A2153
Gallios 10-color flow cytometer Beckman Coulter
Kaluza 1.5a Beckman Coulter
TNF-α Peprotech 300-01A
IFN-γ Peprotech 300-02
CD3-PerCP/Cy5.5 Biolegend 300430 clone UCHT1
CD56-PC7 Beckman Coulter A21692 clone N901
CD16-A750 Beckman Coulter A66330 clone 3G8
CD4-FITC Biolegend 300506 clone RPA-T4
CD8-A700 Beckman Coulter A66332 clone B9.11

References

  1. Ransohoff, R. M., Kivisakk, P., Kidd, G. Three or more routes for leukocyte migration into the central nervous system. Nat Rev Immunol. 3 (7), 569-581 (2003).
  2. Takeshita, Y., et al. An in vitro blood-brain barrier model combining shear stress and endothelial cell/astrocyte co-culture. J Neurosci Methods. 232, 165-172 (2014).
  3. Furtado, G. C., et al. A novel model of demyelinating encephalomyelitis induced by monocytes and dendritic cells. J Immunol. 177 (10), 6871-6879 (2006).
  4. Ransohoff, R. M. Illuminating neuromyelitis optica pathogenesis. Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (4), 1001-1002 (2012).
  5. Petty, M. A., Lo, E. H. Junctional complexes of the blood-brain barrier: permeability changes in neuroinflammation. Prog Neurobiol. 68 (5), 311-323 (2002).
  6. Lopes Pinheiro, M. A., et al. Immune cell trafficking across the barriers of the central nervous system in multiple sclerosis and stroke. Biochim Biophys Acta. 1862 (3), 461-471 (2016).
  7. Holman, D. W., Klein, R. S., Ransohoff, R. M. The blood-brain barrier, chemokines and multiple sclerosis. Biochim Biophys Acta. 1812 (2), 220-230 (2011).
  8. Kleinschnitz, C., Meuth, S. G., Kieseier, B. C., Wiendl, H. Immunotherapeutic approaches in MS: update on pathophysiology and emerging agents or strategies 2006. Endocr Metab Immune Disord Drug Targets. 7 (1), 35-63 (2007).
  9. Kleinschnitz, C., Meuth, S. G., Stuve, O., Kieseier, B., Wiendl, H. Multiple sclerosis therapy: an update on recently finished trials. J Neurol. 254 (11), 1473-1490 (2007).
  10. Wiendl, H., Hohlfeld, R. Multiple sclerosis therapeutics: unexpected outcomes clouding undisputed successes. Neurology. 72 (11), 1008-1015 (2009).
  11. Schwab, N., Schneider-Hohendorf, T., Breuer, J., Posevitz-Fejfar, A., Wiendl, H. JCV index and L-selectin for natalizumab-associated PML risk stratification. Journal of Neuroimmunology. 275 (1-2), 24 (2014).
  12. Schwab, N., et al. L-selectin is a possible biomarker for individual PML risk in natalizumab-treated MS patients. Neurology. 81 (10), 865-871 (2013).
  13. Takeshita, Y., Ransohoff, R. M. Inflammatory cell trafficking across the blood-brain barrier: chemokine regulation and in vitro models. Immunol Rev. 248 (1), 228-239 (2012).
  14. Schwab, N., Schneider-Hohendorf, T., Wiendl, H. Trafficking of lymphocytes into the CNS. Oncotarget. 6 (20), 17863-17864 (2015).
  15. Schneider-Hohendorf, T., et al. VLA-4 blockade promotes differential routes into human CNS involving PSGL-1 rolling of T cells and MCAM-adhesion of TH17 cells. J Exp Med. 211 (9), 1833-1846 (2014).
  16. Girard, J. P., Springer, T. A. High endothelial venules (HEVs): specialized endothelium for lymphocyte migration. Immunol Today. 16 (9), 449-457 (1995).
  17. Brown, D. A., Sawchenko, P. E. Time course and distribution of inflammatory and neurodegenerative events suggest structural bases for the pathogenesis of experimental autoimmune encephalomyelitis. J Comp Neurol. 502 (2), 236-260 (2007).
  18. Alvarez, J. I., Cayrol, R., Prat, A. Disruption of central nervous system barriers in multiple sclerosis. Biochim Biophys Acta. 1812 (2), 252-264 (2011).
  19. Rudolph, H., et al. Postarrest stalling rather than crawling favors CD8+ over CD4+ T-cell migration across the blood-brain barrier under flow in vitro. Eur J Immunol. , (2016).
  20. Bartholomaus, I., et al. Effector T cell interactions with meningeal vascular structures in nascent autoimmune CNS lesions. Nature. 462 (7269), 94-98 (2009).
  21. Gross, C. C., et al. Impaired NK-mediated regulation of T-cell activity in multiple sclerosis is reconstituted by IL-2 receptor modulation. Proc Natl Acad Sci U S A. 113 (21), E2973-E2982 (2016).
  22. Gross, C. C., Brzostowski, J. A., Liu, D. F., Long, E. O. Tethering of Intercellular Adhesion Molecule on Target Cells Is Required for LFA-1-Dependent NK Cell Adhesion and Granule Polarization. Journal of Immunology. 185 (5), 2918-2926 (2010).
  23. Grutzke, B., et al. Fingolimod treatment promotes regulatory phenotype and function of B cells. Ann Clin Transl Neurol. 2 (2), 119-130 (2015).
  24. Gobel, K., et al. Blockade of the kinin receptor B1 protects from autoimmune CNS disease by reducing leukocyte trafficking. J Autoimmun. 36 (2), 106-114 (2011).
  25. Schneider-Hohendorf, T., et al. Regulatory T cells exhibit enhanced migratory characteristics, a feature impaired in patients with multiple sclerosis. Eur J Immunol. 40 (12), 3581-3590 (2010).
  26. Huang, Y. H., et al. Specific central nervous system recruitment of HLA-G(+) regulatory T cells in multiple sclerosis. Ann Neurol. 66 (2), 171-183 (2009).
  27. Dehmel, T., et al. Monomethylfumarate reduces in vitro migration of mononuclear cells. Neurol Sci. 35 (7), 1121-1125 (2014).
  28. Gastpar, R., et al. The cell surface-localized heat shock protein 70 epitope TKD induces migration and cytolytic activity selectively in human NK cells. J Immunol. 172 (2), 972-980 (2004).
  29. Gastpar, R., et al. Heat shock protein 70 surface-positive tumor exosomes stimulate migratory and cytolytic activity of natural killer cells. Cancer Res. 65 (12), 5238-5247 (2005).
  30. Vandermeeren, M., Janssens, S., Borgers, M., Geysen, J. Dimethylfumarate is an inhibitor of cytokine-induced E-selectin, VCAM-1, and ICAM-1 expression in human endothelial cells. Biochemical and Biophysical Research Communications. 234 (1), 19-23 (1997).
  31. Rubant, S. A., et al. Dimethylfumarate reduces leukocyte rolling in vivo through modulation of adhesion molecule expression. Journal of Investigative Dermatology. 128 (2), 326-331 (2008).
  32. Hamann, A., et al. Evidence for an accessory role of LFA-1 in lymphocyte-high endothelium interaction during homing. J Immunol. 140 (3), 693-699 (1988).
  33. Shamri, R., et al. Lymphocyte arrest requires instantaneous induction of an extended LFA-1 conformation mediated by endothelium-bound chemokines. Nat Immunol. 6 (5), 497-506 (2005).
  34. Didier, N., et al. Secretion of interleukin-1beta by astrocytes mediates endothelin-1 and tumour necrosis factor-alpha effects on human brain microvascular endothelial cell permeability. J Neurochem. 86 (1), 246-254 (2003).
  35. Abbott, N. J., Dolman, D. E., Drndarski, S., Fredriksson, S. M. An improved in vitro blood-brain barrier model: rat brain endothelial cells co-cultured with astrocytes. Methods Mol Biol. 814, 415-430 (2012).
  36. Lippmann, E. S., Al-Ahmad, A., Azarin, S. M., Palecek, S. P., Shusta, E. V. A retinoic acid-enhanced, multicellular human blood-brain barrier model derived from stem cell sources. Sci Rep. 4, 4160 (2014).
  37. Franke, H., Galla, H. J., Beuckmann, C. T. An improved low-permeability in vitro-model of the blood-brain barrier: transport studies on retinoids, sucrose, haloperidol, caffeine and mannitol. Brain Res. 818 (1), 65-71 (1999).
  38. Abbott, N. J., Dolman, D. E., Patabendige, A. K. Assays to predict drug permeation across the blood-brain barrier, and distribution to brain. Curr Drug Metab. 9 (9), 901-910 (2008).
  39. Cucullo, L., Marchi, N., Hossain, M., Janigro, D. A dynamic in vitro BBB model for the study of immune cell trafficking into the central nervous system. J Cereb Blood Flow Metab. 31 (2), 767-777 (2011).
  40. Booth, R., Kim, H. Characterization of a microfluidic in vitro model of the blood-brain barrier (muBBB). Lab Chip. 12 (10), 1784-1792 (2012).
  41. Eugenin, E. A., et al. CCL2/monocyte chemoattractant protein-1 mediates enhanced transmigration of human immunodeficiency virus (HIV)-infected leukocytes across the blood-brain barrier: a potential mechanism of HIV-CNS invasion and NeuroAIDS. J Neurosci. 26 (4), 1098-1106 (2006).
  42. Ubogu, E. E., Callahan, M. K., Tucky, B. H., Ransohoff, R. M. CCR5 expression on monocytes and T cells: modulation by transmigration across the blood-brain barrier in vitro. Cell Immunol. 243 (1), 19-29 (2006).
  43. Bennett, J., et al. Blood-brain barrier disruption and enhanced vascular permeability in the multiple sclerosis model EAE. J Neuroimmunol. 229 (1-2), 180-191 (2010).
  44. Woolf, E., et al. Lymph node chemokines promote sustained T lymphocyte motility without triggering stable integrin adhesiveness in the absence of shear forces. Nat Immunol. 8 (10), 1076-1085 (2007).
  45. Ando, J., Nomura, H., Kamiya, A. The effect of fluid shear stress on the migration and proliferation of cultured endothelial cells. Microvasc Res. 33 (1), 62-70 (1987).
  46. Lawrence, M. B., Smith, C. W., Eskin, S. G., McIntire, L. V. Effect of venous shear stress on CD18-mediated neutrophil adhesion to cultured endothelium. Blood. 75 (1), 227-237 (1990).
  47. Wolff, A., Antfolk, M., Brodin, B., Tenje, M. In Vitro Blood-Brain Barrier Models-An Overview of Established Models and New Microfluidic Approaches. J Pharm Sci. 104 (9), 2727-2746 (2015).
  48. Cucullo, L., et al. Development of a humanized in vitro blood-brain barrier model to screen for brain penetration of antiepileptic drugs. Epilepsia. 48 (3), 505-516 (2007).

Play Video

Cite This Article
Schulte-Mecklenbeck, A., Bhatia, U., Schneider-Hohendorf, T., Schwab, N., Wiendl, H., Gross, C. C. Analysis of Lymphocyte Extravasation Using an In Vitro Model of the Human Blood-brain Barrier. J. Vis. Exp. (122), e55390, doi:10.3791/55390 (2017).

View Video