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Neuroscience

小鼠小脑颗粒神经元神经元死亡和变性的模型研究

Published: November 6, 2017 doi: 10.3791/55871
Automatic Translation
1,2, 1, 3, 1,2,4
1Lady Davis Institute for Medical Research, Jewish General Hospital, 2Integrated Program in Neuroscience, McGill University, 3Department of Cellular and Molecular Medicine, University of Ottawa, 4Department of Oncology, Faculty of Medicine, McGill University

Summary

本协议描述了一种简单的方法, 分离和培养的小鼠脑颗粒神经元 (CGNs) 从6-7 天的老幼崽, 有效的转导 CGNs 的损失和增益的功能研究, 并建模 NMDA 诱导神经元兴奋,低诱导的细胞死亡, DNA 损伤, 和氧化应激使用相同的培养模式。

Abstract

小脑颗粒神经元 (CGNs) 是一种常用的神经元模型, 在小脑中形成了丰富的均质种群。根据其产后发育、丰度和可及性, CGNs 是研究神经元过程的理想模型, 包括神经元发育、神经元迁移和生理神经元活动刺激。此外, CGN 文化为研究不同的细胞死亡模式, 包括兴奋和细胞凋亡提供了一个很好的模型。在一个星期内的文化, CGNs 表达 n-甲基-d-天门冬氨酸 (NMDA) 受体, 一个特定的离子谷氨酸受体与许多关键功能的神经元健康和疾病。在 CGN 培养基中加入低浓度的 nmda 与膜去极化剂结合, 用于模拟生理性神经元活动刺激, 同时增加高浓度的 nmda 可用于模型兴奋神经元损伤。本文介绍了6天幼崽 CGNs 的分离培养方法以及腺和慢对 CGNs 的遗传操作。我们还提出了优化的协议, 如何刺激 NMDA 诱导的兴奋, 低诱导的凋亡, 氧化应激和 DNA 损伤后, 这些神经元的转导。

Introduction

小脑颗粒神经元 (CGNs) 具有良好的文化特征, 并已成为研究神经元死亡和发育的有效模型 1,2,3,4,56. CGN 培养的 n-甲基-d-天门冬氨酸 (nmda) 受体在体外的早期表达, 使其成为研究 NMDA 诱导信号的有吸引力的模型。这些受体的激活与 NMDA 结合膜去极化是用来模拟生理神经元活动的刺激, 并允许研究突触可塑性的机制7,8。相反, 这些受体的过度的 NMDA 配体可用于模型兴奋, 一个主要机制的神经元丧失的急性脑损伤和神经退行性疾病9。一个机制为诱导兴奋是通过 ATP 饥饿与减少的氧气, 如看见与急性神经元损伤。这导致膜的去极化和高水平的谷氨酸释放在突触。随后刺激的 NMDA 受体的高活性谷氨酸导致过量的 ca2 +通过这些受体的流入, 反过来又激活了包括 ca2 +激活的蛋白酶, 磷脂和酶, 导致严重的细胞成分和细胞死亡失控的退化。此外, 高胞内钙2 +导致氧自由基和线粒体损伤的生成10,11。

当 NMDA 诱导的神经元兴奋的大部分神经元丢失是由于钙的流入和 Bax/Bak 的独立, 其他机制的细胞死亡不能排除在此模型。兴奋的坏死和凋亡样细胞死亡的出现, 部分原因是由于高胞内 Ca2级级别12导致的活性氧 (ROS) 和 DNA 损伤的产生。DNA 损伤通过凋亡机制导致神经元死亡, 与凋亡细胞死亡的特征相关, 如染色质肿块和凋亡体的出现。诱导细胞凋亡是介导的细胞色素 c 从线粒体释放, 并已证明是依赖于 Bax/Bak 齐聚13。Bax/Bak 齐聚促进外线粒体膜的孔隙形成, 导致细胞色素 c 释放和亡调节剂的活化, 见轻度缺血性损伤14。

ROS 的产生是一个重要的问题, 在大脑中由于低内源性的抗氧化剂, 加上大的氧气需求的神经元功能的15。当暴露于缺血性事件时, 一氧化氮合酶上调, 产生一氧化氮和增加活性氧的种类14。氧自由基浓度的增加会导致 DNA 损伤, 并间接导致能量的饥饿。高水平的 DNA 双断裂是通过活化的聚 adp-核糖 polymerase-1 (PARP-1), 一个真核染色质结合蛋白负责催化转移的 ADP 核糖单位从和+, 一个过程积分到DNA 修复16。然而, 由于氧化应激造成的过度损害, PARP-1 活化可能导致能量饥饿, 由于增加的流失, 在和+, 一个必要的基质 ATP 生产通过氧化磷酸化。最终, 氧化应激将触发凋亡的 Bax/Bak 的依赖方式导致线粒体细胞色素 c 释放, 并已证明诱导线粒体重塑在 CGNs 17。

最后, CGN 培养基中氯化钾 (氯化钾) 浓度的变化可以用来模拟低钾/去极化介导的凋亡18,19,20。当暴露于低水平的 K+时, CGNs 经历了明显的生理变化, 导致线粒体呼吸和糖酵解减少, 这归因于细胞需求减少21, 以及减少核因子-nf-(NFκB), 它调节活动, 包括炎症和突触传递22。该模型对神经细胞发育过程中细胞死亡的研究具有特别的意义。低 K+环境更接近于生理条件, 并导致神经元发育过程中出现的细胞死亡特征23。

总之, CGNs 提供了一个长期的模型来研究神经元死亡和变性的基本分子机制。下面的协议将允许分离和培养 CGNs, 表达或抑制特定的基因通路使用病毒和诱导神经元死亡通过不同的机制, 代表神经元损伤和变性。

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Protocol

此协议基于先前描述的过程的修改 18 、 24 、 25 , 26 , 27 . 本议定书由麦吉尔大学动物保育委员会批准.

1. 实验准备

注意: 可以准备和维护以下库存解决方案直到使用.

  1. 解剖解决方案
    1. 溶解3.62 克氯化钠 (氯化钠), 0.2 克氯化钾 (氯化钾), 0.069 克磷酸磷酸钠 (NaH 2 PO 4 和 #8729; H 2 O) 和 1.306 g 的 d-(+)-葡萄糖在500毫升的蒸馏 H 2 O。然后在溶液中加入12.5 毫升的 HEPES 缓冲液、450和 #181; 酚红溶液的 L 和20毫升的 BSA 分数 V。使用 1 N 氢氧化钠 (氢氧化钠) 调整到 pH 值 7.4.
    2. 用0.22 和 #181 进行灭菌, 在4和 #176 进行过滤和存储;此解决方案将保持稳定长达一周至10天.
  2. 胰蛋白酶
    1. 在0.9% 氯化钠的浓度为25克/升的胰蛋白酶中制备一个储存溶液。将解决方案存储在-20 和 #176; C.
  3. 胰蛋白酶抑制剂
    1. 通过在100毫升的 1 mM 中溶解1克鸡蛋白胰蛋白酶抑制剂, 准备一份浓度为10毫克/毫升的股票. 将此解决方案存储在-20 和 #176; C.
  4. dnasei
    1. 在10毫升的无菌水中溶解100毫克的 dnasei 1, 以生成10毫克/毫升的库存。将解决方案存储在-20 和 #176; C.
  5. MgSO 4
    1. 添加6.02 克硫酸镁 (MgSO 4 ) 到50毫升蒸馏水 (H 2 O) 以生成1米的库存。将解决方案存储在4和 #176; C.
  6. CaCl 2
    1. 溶解0.735 克氯化钙 (CaCl 2 和 #8729; 2H 2 o) 在50毫升蒸馏 H 2 o 到库存浓度 100 mM。存储解决方案在4和 #176; C.
  7. 氯化钾
    1. 在50毫升的蒸馏 H 2 O 中溶解3.7275 克氯化钾, 并将 1 m 存储解决方案的库存集中在 4 & #176; C.
  8. d-(+)-葡萄糖
      将1.802 克的 d-(+)-葡萄糖溶解在50毫升的蒸馏 H
    1. 2 O 中, 以库存浓度为 100 mM。存储解决方案在4和 #176; C.
  9. 单元格区域性媒体
    1. 准备单元格区域性媒体, 如下所示: 5 毫升热灭活透析胎牛血清, 500 和 #181; 200 毫米 l-谷氨酰胺, 100 和 #181; 50 毫克/毫升庆大霉素和1毫升1.0 米氯化钾应加到45毫升 过滤灭菌鹰和 #39 的最小基本培养基 (电子记忆), 补充1.125 克/升 d-葡萄糖, 产生50毫升的小脑颗粒神经元培养基。在4和 #176 存储媒体; C.
  10. 胞嘧啶β-d-Arabino Furanoside
    1. 在10毫升的生长培养基中溶解48毫克的胞嘧啶β-d-Arabino Furanoside, 其浓度为20毫米。存储解决方案在-20 和 #176; C.
  11. 聚 d-赖氨酸
    1. 生成2毫克/毫升的聚 d-赖氨酸, 添加10毫升的无菌 H 2 O 到20毫克的聚 d-赖氨酸。聚 d-赖氨酸应贮存在-80 和 #176; C 在100和 #181; 等分.
  12. 注意: 在解剖前应准备以下解决方案, 并保持在4和 #176; C 直到使用.
  13. MgSO 4 补充的解剖解决方案
    1. 添加300和 #181; 库存 MgSO 4 到250毫升的解剖解决方案.
  14. 胰蛋白酶剥离解决方案
    1. 添加100和 #181; l 库存胰蛋白酶和12和 #181; 库存 MgSO 4 到10毫升的解剖溶液.
  15. 胰蛋白酶抑制剂解决方案 1
    1. 添加164和 #181; 股票胰蛋白酶抑制剂, 250 和 #181; 库存 dnasei 1 和12和 #181; l 库存 MgSO 4 到10毫升的解剖解决方案.
  16. 胰蛋白酶抑制剂解决方案 2
    1. 添加1040和 #181; 股票胰蛋白酶抑制剂, 750 和 #181; l 库存 dnasei 1 和12和 #181; l 库存 MgSO4 到10毫升的解剖溶液.
  17. CaCl 2 补充的解剖解决方案
    1. 添加10和 #181; 库存 CaCl 2 和25和 #181; 库存 MgSO 4 到10毫升的解剖解决方案.
  18. 聚 d-赖氨酸涂布培养皿
    1. 以覆盖培养皿, 稀释100和 #181; L 在40毫升的无菌 H 2 O 中储存聚 d-赖氨酸。对于35毫米发音培养皿, 加入2毫升稀释聚 d-赖氨酸溶液。对于4井板, 增加300和 #181; L 稀释聚 d-赖氨酸.
    2. 让聚 d-赖氨酸在吸气和洗涤前先坐1小时, 用4毫升或600和 #181; L (分别为 35 mm 培养皿或4个井板) 无菌 h 2 O。然后抽吸 H 2 O, 让盘子的空气干燥1小时.

2。小脑的脑提取与分离

  1. 使用斩首剪刀斩首6-7 天的老老鼠幼崽。在无菌组织培养罩中进行大脑解剖.
  2. 要卸下大脑, 请使用一副镊子抓住头部, 然后使用显微切割剪刀在头部前部切开皮肤, 如 图 1 所示。然后用一把新剪刀把头骨骨切开, 以减少污染的风险。用镊子将颅骨覆盖在脑部, 用镊子或刮刀将大脑梳理出来.
    1. 根据需要, 通过视神经切开以促进整个大脑的发育.
  3. 将大脑放在与 MgSO 4 一起补充的解剖解决方案中。把溶液和大脑放在冰上.
  4. 以下脑切除术, 解剖显微镜下, 解剖了小脑从大脑, 而仍然在 MgSO 4 补充解剖解决方案, 并删除脑膜使用细钳。将小脑转向腹侧, 并确保脉络丛的切除.
  5. 将小脑池放入包含1毫升 MgSO 4 补充剥离解决方案的 35 mm 盘中.
  6. 将组织切成小块并转移到50毫升管中, 其中包含30毫升的 MgSO 4 缓冲剥离解决方案.

3。小鼠小脑颗粒神经元的分离和培养

  1. 离心50毫升管包含切碎的脑组织5分钟在 644 x g 和4和 #176; C.
  2. 清除上清液并添加10毫升的胰蛋白酶解剖溶液。然后在37和 #176 高速摇动管15分钟; C.
  3. 添加10毫升胰蛋白酶抑制剂溶液1到管和岩石轻轻地2分钟.
  4. 离心管5分钟在 644 x g 和4和 #176; C.
  5. 移除上清液并添加2毫升胰蛋白酶抑制剂溶液 2, 然后转移到15毫升管.
  6. 研制15毫升管中的组织, 直到溶液变得混浊为止。然后, 让解决5分钟的
  7. 去除清上清液并将上清物转移至含有1毫升 CaCl 的新管 2 补充解剖溶液.
  8. 添加另一毫升的胰蛋白酶抑制剂溶液2到底部的管包含颗粒从步骤3.6。再次研制, 并让解决5分钟. 移除上清, 并将其添加到包含步骤3.7 中上清的管 (即重复步骤 3.6-3.7)。重复这个过程, 直到大多数组织是机械分离的.
  9. 添加0.3 毫升的 CaCl 2 补充解剖溶液的上清收集每毫升上清.
  10. 混合管的内容, 然后离心5分钟, 在 644 x g.
  11. 移除上清液, 并将新介质添加10毫升的颗粒和混合.
    12. 然后,
  12. 单元格可以被计算并稀释到 1.5 x 10 6 单元/毫升的浓度。请注意, 一般1000万细胞预计从每个解剖的大脑, 取决于 trypsinization 时间和解剖效率。以前制作的聚 d-赖氨酸板上的平板细胞。对于4井板, 板 0.5 mL, 每井提供 7.5 x 10 5 单元格。对于35毫米的盘子, 4 毫升的盘子, 每个盘子给 6 x 10 6 的细胞.
  13. 24 小时后, 添加胞嘧啶-#946;-arabino furanoside (分析), 以减少胶质污染。每毫升的媒体0.5 和 #181; L 20 mM 分析是必需的。添加分析不需要媒体更改。如果要维持7-8 天的细胞, 在3天重复这种治疗.
  14. 维护 5% CO 中的区域性 2 37 和 #176 的孵化器; C 和100和 #181 的饲料; 100 mM 葡萄糖每2天的2天添加到培养基中。不需要进行完整的媒体更改.

4。慢包装、纯化和滴定

注意: 慢的包装、浓缩、纯化和滴定的协议以前已经详细描述过, 而不使用套件 28 , 包括用于滴定的替代方法, 如流式细胞仪 29 。在这里, 我们简要介绍的协议, 用于生产慢研究神经元损伤使用快速病毒纯化解决方案和 qPCR 慢滴定试剂盒.

  1. 在 10 cm 培养皿中 Hek293T 细胞, Dulbecco 和 #39 的改性鹰和 #39 的最小必需培养基 (DMEM), 辅以 10% FBS。为了获得高的病毒效价, 每种转染至少要有 5 Hek293T 细胞。确保在转染细胞的一天是70% 汇合。在转染前三小时更换介质.
  2. 对于每个转染, 准备两个管。在管1中加入1.5 毫升的血清培养基和41和 #181; 转染试剂 L, 拌匀。在管 2, 增加1.5 毫升的记忆减少血清培养基和6和 #181; 转移质粒, 6 和 #181; g pCMV dR8.2 载体 (包装质粒), 3 和 #181; g pCMV-VSV-g 载体 (包络质粒), 和35和 #181; p3000 增强剂的 L。混合好, 并结合管1和 2, 漩涡和孵化15分钟.
  3. 从 Hek293T 板中取出50% 的介质, 并将 DNA 脂复合物添加到细胞中。孵育6小时, 在37和 #176; C, 5% CO 2 。取出培养基, 更换5毫升新鲜 DMEM, 一夜孵化.
  4. 在24小时 post-transfection, 从每个板块收集第一批病毒上清液。将病毒介质保持在4和 #176; C, 并在每个 Hek293T 细胞中加入5毫升的新鲜培养基。夜间孵化.
  5. 48 h post-transfection, 收集第二批病毒上清液, 将其与第一批和离心机结合, 病毒上清液为10分钟, 600 x g.
  6. 用45和 #181 的过滤器过滤清液; m 孔径大小.
  7. 使用快速病毒净化解决方案净化病毒。每45毫升的病毒上清, 添加5毫升的慢结合溶液, 混合和离心10分钟和 #62; 5000 x g 和4和 #176; C.
  8. 小心地除去上清, 以免扰乱颗粒.
  9. 添加20-40 和 #181; 中等和 re-suspend 的 L 颗粒。分-80 和 #176; C.
  10. 要获得慢效价, 使用 qPCR 慢滴定试剂盒。在500和 #181 中稀释2和 #181; 纯化病毒的 l; PBS 的 l。将稀释病毒的2和 #181 l 添加到18和 #181; 病毒裂解缓冲液 l (在工具箱中提供).
  11. 在 triplicates 中设置三不同的 RT q PCR 反应, 并将其标记为病毒裂解酶、阳性对照 1 (STD1) 和阳性对照 2 (STD2)。对于每个反应相加, 12.5、#181; l 2x qPCR MasterMix、2.5 和 #181; 或病毒裂解液或 STD1 (在试剂盒中提供) 或 STD2 (在试剂盒中提供) 和10和 #181; 试剂混合 (在试剂盒中提供), 0.2 毫升 PCR 管.
  12. 将 PCR 程序设置为:20 分钟, 在42和 #176; c 用于反转转录, 10 分钟在95和 #176; c 为酵素活化, 40 周期十五年代在95和 #176; c 为变性和 1 min 在60和 #176; c 用于退火/扩展.
  13. 使用此公式计算病毒滴度:
    病毒裂解液滴度 = 5 x 10 7 /2 3 (酰-Ct1)/(Ct2-Ct1) .
    酰 = 未知样品的平均 Ct 值, Ct1 = STD1 的平均值, Ct2 = 平均值 STD2.
    注意: CGNs 可以是最好的转与慢或感染的腺取决于所研究的伤害模式。在培养基中添加慢2-3 到细胞培养液, 用于研究 NMDA 诱导的信号在7天的文化。这导致超过80% 转导, 是适当的追求与这些神经元的生化分析 ( 图 2 )。在5天的培养基中添加腺 (在莫伊 50) 和研究 NMDA 诱导的信号在7-8 天用于其他技术, 如成像。这种治疗结果在不到10% 的神经元感染, 使其理想的成像和共存的蛋白质。腺在电镀时可用于研究 DNA 损伤诱导的细胞死亡, 其方法是在2-3 天加入喜树碱或氧化应激增加过氧化氢。荧光蛋白的存在 (GFP, RFP, CFP 或 YFP) 标记的基因的兴趣可以用来估计百分比转导和潜在的毒性。在建议的莫伊, 我们看到最小的毒性和最大的转导 ( 图 3 ).

5。神经元损伤的建模

  1. 在体外诱导 nmda 诱导的神经元兴奋, 7 天后 , CGNs 100 和 #181; m NMDA 和 10 #181; m. 甘氨酸为 1 h. 从平行培养培养基中取代所有培养基治疗.这种浓度导致50% 细胞死亡24小时后治疗 ( 图 3C )。线粒体分裂是明显的在 6-8 h 岗位治疗 (参见 Jahani-手语 et al. 26 , 27 ).
  2. 诱导 ROS 诱导的细胞死亡 (氧化应激), 治疗神经ns 与75-100 和 #181; M 过氧化氢 (H 2 O 2 ), 并从并行区域性切换到条件媒体在5分钟接触到 H 2 o 2 之后。注意, 由于 h 2 O 2 的不稳定性, 将浓度优化为在 24 h 治疗后的培养中诱导50-70% 细胞死亡的水平.
  3. 诱导 DNA 损伤诱导的细胞死亡, 治疗 CGNs 与10和 #181; M 喜树碱。这种浓度导致超过50% 细胞死亡 24 h. 线粒体碎裂和早期凋亡信号发生2-3 小时后, 在这个浓度的喜树碱添加 (见 Jahani-手语 et al. 18 )
  4. 在 CGNs 中诱导低钾诱导的神经细胞凋亡, 将含有25毫米 k + 的介质转换为具有 5 mm k + 7 天的体外 .

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Representative Results

仔细解剖后, 完整的大脑应该被删除, 最小的伤害, 如图 1A-b所示。应努力减少对大脑的损伤, 特别是对小脑的损伤。损害小脑, 使更困难的识别和完全清除脑膜, 并增加了可能的污染的神经元文化。一旦脑膜被切除, 小脑可以从剩余的组织中解剖, 如图 1C所示, 并准备分离。

在电镀之前, CGNs 可以转与慢或感染腺病毒, 如图 2所述。我们发现最高效率和最小的毒性与莫伊50感染腺病毒, 和莫伊2-3 在电镀日慢 (图 3)。

转健康的 CGN 文化在 7 DIV 中显示在图 3A中。如果在培养中存在大量的胶质细胞, 可以增加分析的浓度, 以确保纯神经元的数量。此外, 神经胶质细胞比神经元更容易感染病毒, 如果 transductions 在5天进行, 就会变得至关重要。如图 3C所示, 固核的形成可以评估细胞死亡的神经元的存在。所有浓度的 NMDA, H2O2, 和喜树碱的优化诱导50% 细胞死亡后24小时。这使得研究其他早期的事件之前, 神经元丧失, 如线粒体碎片。

Figure 1
图 1: 小鼠大脑切除和小脑解剖.(a) 提取6-7 天老老鼠的大脑, 使用一对镊子, 抓住头部, 用一把切割的剪刀把前的皮肤沿着虚线切开。要小心切开皮肤和结缔组织, 太深的切口可能刺穿头骨和损伤脑子。这三切口, 沿着中线, 两个侧面弯曲, 让皮肤被推回揭示头骨。一旦暴露, 头骨可以穿透与剪刀尖端, 并削减前。必须非常小心, 不要损害小脑, 以方便识别和清除脑膜。一旦切割, 钳子可以用来剥去头骨, 露出大脑, 然后用镊子或刮刀将其被梳理成冷的解剖溶液。为了去除大脑, 视神经可能需要被切断。(B) 一旦从颅骨中取出, 应使用一对细尖的镊子将脑膜从小脑中取出。(C) 使用一对细尖的镊子, 从剩余的组织中解剖小脑, 并检查以确保完全切除脑膜。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 2
图 2: 模拟小脑颗粒神经元的神经细胞损伤.在3部分中提出的过程中, 6-7 只小鼠的孤立小脑被分离成单个细胞。在离解之后, 细胞被计数并且悬浮在一容量培养基中, 以产生 1.5 x 106细胞/ml. 对于 35 mm 的菜肴, 4 毫升是电镀, 给 6 x 106细胞每板。对于成像幻灯片, 0.5 mL 被镀, 给 7.5 x 105单元格/好。CGNs 可以转与慢或感染腺病毒。使用腺病毒在电镀的天 (0 天在体外(DIV)) 提供超过90% 的转染效率, 并允许研究神经元损伤的氧化应激和 DNA 损伤。添加10µM 喜树碱 (CPT) 将导致 DNA 损伤, 而75-100 µM 过氧化氢 (H2O2) 将诱发氧化应激。必须对 H2O2的浓度进行优化, 以在24h 后诱发50% 细胞死亡。感染与腺在 5 DIV 给予较低的转导效率低于10%。在 7 DIV 中, 当 nmda 受体在培养中被丰富时, 神经元可以用100µM nmda 和10µM 甘氨酸来诱导兴奋。这是理想的后续成像分析或跟踪一个单一的神经元。最后, 换与慢在 0 div, 其次处理100µM NMDA 和10µM 甘氨酸在 7 div, 给予足够高的转导效率 (和 #62; 80%), 以允许对文化的生物化学分析, 包括芯片排序, 检查蛋白质表达, 并执行活/死化验。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 3
图 3: 小脑颗粒神经元.(A) 在电镀时, 神经元被转为 RFP, 慢为 3, 在体外7天内固定和染色。定位的 RFP 信号, MAP2 和赫斯特显示出健康的神经元是完全转的慢。(B) 图像表示对感染不同语言的神经元进行活体死亡分析, 以测定其毒性。CGNs 感染腺病毒表达 LacZ 在莫伊之间的25和50允许最大的效率, 同时保持最小的毒性。与对照组相比, 细胞存活率不到1% 的差异在这种语言中被感染。(C) 赫斯特染色控制 CGNs 和 CGNs 治疗 NMDA 诱导细胞死亡。注意固核的形成与 NMDA 治疗。这是细胞死亡的指示, 可以看到在大约50% 的培养 24 h 治疗后与100µM NMDA 和10µM 甘氨酸。请单击此处查看此图的较大版本.

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Discussion

在这里, 我们提供了一个简单的方法, 培养小鼠小脑颗粒神经元 (CGNs), 失去和增益的功能研究, 并建模不同的机制, 细胞死亡。有几个因素影响的重复性的结果使用这个程序, 需要密切监测。这些包括文化的纯净, 包括在文化中消除胶质细胞, 文化的汇合, 以及维持健康的细胞。在这些因素中引入变异性会对结果产生偏见, 并挑战重复性。下面我们将描述如何最小化影响结果的因素。

为了消除 CGNs 培养中的胶质细胞, 建立一个纯神经元种群, 我们使用10µM 胞嘧啶β arabino furanoside (分析), 一种嘧啶 antimetabolite, 通过抑制 DNA 合成杀死增殖细胞。如果仍然存在胶质细胞的数量, 分析的浓度可以增加到15µM。这也是很多依赖。此外, 对于保持7-8 天的文化, 第二次分析治疗可以在3天进行。为了获得一个纯粹的神经元种群并避免细胞死亡, 重要的是要剥离所有的小脑之前, 切割的组织成块, 其次是 trypsinization。这应该在相当短的时间内完成 (不长于每小脑7-10 分钟)。脑膜在神经元培养中的存在导致了不健康的文化和最终的细胞死亡。另一个可能导致神经元在治疗前死亡的因素是 trypsinization 时间。细胞不 over-trypsinized 是很重要的。另一方面, under-trypsinization 需要进一步的机械离解的细胞, 可能会损害他们或导致低产量。因此, trypsinization 时间需要优化, 这是非常依赖的。

下一个要考虑的因素是在使用时细胞的汇合。不同的70-100 可以产生变化的结果。这是特别重要的取决于在实验中的读数。在低汇流状态下, 神经元在2-3 天后开始结块。神经元的太低或太高的汇合状态会损害信号。准确电镀活细胞数是重要的。

CGN 文化的其他方法被描述了, 特别是看基本的培养的规程使用木瓜蛋白酶离解系统成套工具30并且 post-culturing 规程和操作 CGN 为了研究神经元迁移和形态学31。Lee et al.提供的协议描述了木瓜蛋白酶离解系统套件的使用。他们建议两种方法来提高分离 CGNs 的纯度: 通过 Percoll 梯度分离来运行细胞, 以及在聚 d-赖氨酸板上镀20分钟。这两种方法都有助于从胶质污染物中分离出 CGNs。这是建议在个案治疗与分析单独是不够丰富的纯神经元文化。另外, 李使用4-6 天老鼠幼崽, 而这为检查神经元分化提供了一个有效的模型;我们发现使用 CGNs 从6-7 天老鼠幼崽更适合研究神经元损伤。Holubowska et al. 提出了一种利用磷酸钙方法体外和电穿孔体内来转染后有丝分裂小脑神经元的协议。这些都是对神经元进行遗传操作的极好方法, 其中单个神经元可以被追踪。采用磷酸钙法转染效率可从 0.1-5% 不等。因此, 我们发现, 对于包括芯片-Seq 分析, Co 沉淀和免疫的生化分析, 使用慢是更合适的, 因为它导致超过80% 的转导时, 转在电镀时。

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Disclosures

作者没有什么可透露的。

Acknowledgments

这项工作得到加拿大自然科学和工程研究理事会以及加拿大卫生研究院的资助。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
qPCR lentivitral titration kit  ABM #LV900
speedy virus purification solution  ABM #LV999
pCMV-dR8.2 Addgene #8455
pCMV-VS.VG Addgene #8454
Distilled water  Gibco #15230162
200 mM L-Glutamine  Gibco #25030081
35 mm Nunc culture dishes Gibco #174913
PowerUP SYBR green master mix life technologies #A25742
BSA V Solution Sigma Aldrich #A-8412
CaCl2 • 2H2O Sigma Aldrich #C-7902 
Camptothecin Sigma Aldrich #C-9911
Chicken Egg White Trypsin Inhibitor  Sigma Aldrich #10109878001
Cytosine beta-D-Arabino Furanoside Sigma Aldrich #C-1768
D-(+)-Glucose  Sigma Aldrich #G-7528
DNase1  Sigma Aldrich #11284932001
Eagle-minimal essential medium Sigma Aldrich #M-2279
Glycine Sigma Aldrich #G-5417
Heat inactivated dialyzed Fetal Bovine Serum  Sigma Aldrich #F-0392
Hepes Buffer  Sigma Aldrich #H-0887
Hydrogen peroxide Sigma Aldrich #216763
50 mg/mL Gentamycin  Sigma Aldrich #G-1397
MgSO4  Sigma Aldrich #M-2643
N-Methyl-D-aspartic acid Sigma Aldrich #M-3262
Phenol Red Solution  Sigma Aldrich #P-0290
Trypsin  Sigma Aldrich #T-4549
Lipofectamine 3000 Thermo Fisher Scientific L3000-008
p3000 enhancer reagent Thermo Fisher Scientific L3000-008
Opti-MEM I Reduced Serum Medium Thermo Fisher Scientific 31985070
KCl  VWR #CABDH9258
NaCl  VWR #CABDH9286
NaH2PO4H2O  VWR #CABDH9298
Poly D-lysine  VWR #89134-858
DMEM Wisent #319-005-CL
FBS Wisent #080-450

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References

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神经科学 问题 129 小脑 小脑颗粒神经元 (CGN) 腺病毒 慢转导 兴奋 n-甲基-d-天门冬氨酸 (NMDA) 凋亡 氯化钾 (氯化钾) 喜树碱 过氧化氢 (H2O2)
小鼠小脑颗粒神经元神经元死亡和变性的模型研究
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Laaper, M., Haque, T., Slack, R. S., Jahani-Asl, A. Modeling Neuronal Death and Degeneration in Mouse Primary Cerebellar Granule Neurons. J. Vis. Exp. (129), e55871, doi:10.3791/55871 (2017).

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