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Developmental Biology

Um novo uso da ultra-sonografia tridimensional de alta frequência para caracterização de gravidez precoce no Mouse

Published: October 24, 2017 doi: 10.3791/56207
* These authors contributed equally

Summary

Os ratos são amplamente utilizados para estudar Biologia gestacional. No entanto, a terminação de gravidez é necessária para tais estudos, que se opõe a investigações longitudinais e exige o uso de um grande número de animais. Portanto, descrevemos uma técnica não-invasiva da ultra-sonografia de alta frequência para a deteção adiantada e monitoramento de eventos após a implantação no mouse grávido.

Abstract

Ultra-sonografia de alta frequência (HFUS) é um método comum de forma não-invasiva, monitorar em tempo real desenvolvimento do feto humano no útero. O mouse é usado rotineiramente como um modelo in vivo para estudar a implantação do embrião e progressão da gravidez. Infelizmente, tais estudos murino exigem a interrupção da gravidez para permitir o acompanhamento análise fenotípica. Para resolver esse problema, usamos a reconstrução tridimensional (3D), de HFUS imagens, para a detecção precoce e caracterização de locais de implantação do embrião murino e sua progressão no desenvolvimento individual no utero. Combinando HFUS imagem com reconstrução 3D e modelagem, fomos capazes de precisão quantificar o número de local de implantação de embriões, bem como monitorar a progressão do desenvolvimento em ratos grávidas C57BL6J/129S de 5,5 dias pós coito (d.p.c) através de 9,5 d.p.c com o uso de um transdutor. Medições incluídas: número, localização e volume de locais de implantação, bem como espaçamento inter implantação local; viabilidade do embrião foi avaliada pelo monitoramento da atividade cardíaca. O período pós-implantação imediato (5,5 a 8,5 d.p.c), reconstrução 3D do útero gravid em malha e sobreposição sólida formato habilitado uma representação visual das gravidezes em desenvolvimento dentro de cada corno uterino. Como os ratos geneticamente modificados continuam a ser usados para caracterizar fenótipos reprodutivos femininos, derivados de disfunção uterina, este método oferece uma nova abordagem para detectar, quantificar e caracterizar mais cedo implantação eventos na vivo. Este novo uso de imagens 3D de HFUS demonstra a capacidade de detectar com sucesso, Visualizar e caracterizar locais de implantação do embrião durante a gravidez precoce murino de forma não-invasiva. A tecnologia oferece uma melhoria significativa sobre os métodos atuais, que contam com a interrupção da gravidez para tecido bruto e caracterização histopatológica. Aqui usamos um formato de vídeo e texto para descrever como executar com sucesso ultra-sonografias de gravidez precoce de murino para gerar dados confiáveis e reprodutíveis, com reconstrução da forma uterina em malha e imagens 3D sólidas.

Introduction

Perda de gravidez precoce recorrente é uma das complicações mais comuns após a concepção e afeta aproximadamente 1% dos casais que tentam engravidar1,2. Os mecanismos subjacentes de perda de gravidez precoce são variados: de anormalidades embrionárias intrínsecas e comorbidades maternas para defeitos na receptividade endometrial1,3,4. Por causa de sua rastreabilidade genética, modelos do rato têm sido amplamente utilizados para investigações de implantação do embrião precoce e gravidez. Além disso, o curto tempo gestacional de mouse e a capacidade de realizar estudos em grande escala têm garantido o utilitário crescente do rato em abordar questões-chave clínicos em medicina reprodutiva humana5. Dito isto, a grande maioria dos projetos experimentais murino exige ainda numerosas barragens para ser sacrificado em dias gestacional sequenciais para quantificar e analisar os padrões de espaçamento, número, tamanho e localização do local de implantação durante a gravidez6, 7,8, impedindo, assim, estudos longitudinais do mesmo animal.

Na clínica, o ultra-som é uma ferramenta confiável e de valor inestimável para monitorar viabilidade fetal humana e desenvolvimento em uma forma não-invasiva9,10,11. Mais recentemente, ultra-som de alta frequência (HFUS) começou a encontrar aplicações limitadas no mouse, como um método para monitoramento da viabilidade fetal e crescimento durante gravidez12,13,14. Os recentes avanços tecnológicos em ultra-sonografia permitiram a aplicação de dados (3D) tridimensionais para reconstrução visual de órgãos animais e posterior acompanhamento de patologias15,16, 17. Utilização desta tecnologia de imagem avançada melhorou acentuadamente o poder de detectar flutuações de menor volume, para reduzir a variabilidade de animal para animal e para monitorar a progressão de uma patologia ou a eficácia de uma intervenção terapêutica17. Enquanto o utilitário principal desta tecnologia tem sido monitorar a progressão da malignidade em oncomouse modelos15,16, imagens 3D de HFUS só recentemente tem sido usada para quantificar e monitorar o crescimento ativo de implantação do embrião e desenvolvimento do feto no útero rato18.

Aqui, vamos demonstrar como executar HFUS imagem para produzir dados 2D e 3D para gerar reconstruções do útero rato grávida cedo. Vamos demonstrar a utilidade desse romance método para detectar esses eventos de implantação embrionária precoce sem a necessidade de cessação da gravidez, permitindo que os pesquisadores coletar dados de forma não-invasiva.

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Protocol

estes estudos foram conduzidos de acordo com o guia para o cuidado e uso de animais de laboratório publicado pela National Institutes of Health e animais protocolos aprovados pelo cuidado institucional do Animal e Comissão de utilização (IACUC) do Baylor College of Medicine, sob o protocolo número AN-4203.

1. preparação do Mouse grávida para ultra-som

  1. Timed acasalamento
    1. lugar a represa com um macho fértil comprovada início da noite de rato depois de 1700. Separe dam e macho por 07: 00 horas (h), independentemente se plug vaginal está presente, para garantir a exata datação da gravidez.
      Nota: Na manhã seguinte acasalamento é considerado 0,5 dia post coitum (d.p.c).
  2. Preparação para ecografia
    1. Coloque o mouse grávido num recipiente selado anestesia indução.
    2. Sedar com isoflurano (2%) inalado anestésico e oxigênio (1 L/min) até que o animal perde o braço endireitante reflex (aproximadamente 1-2 minutos dependendo do tamanho do mouse) e movimentos espontâneos não são observados (além de respiração).
    3. Lugar sedado o mouse na posição supina no cone de nariz com isoflurano (2%) inalado anestésico e oxigênio (1 L/min). Aplicar a pomada oftálmica ao animal ' olhos de s.
    4. Com um cotonete, aplicar o creme depilatório todo abdômen, esterno à vagina e lateral para os flancos.
    5. Permitir creme permanecer por um período máximo de 3 min e então remover o creme e o cabelo com tecido. Garantir a remoção de todo o cabelo, como qualquer cabelo restante irá diminuir a qualidade de imagem.

2. Preparação da fase ultra-som

  1. transformar no transdutor.
  2. Anexar 3D motor motor fase para o transdutor.
    1. Plug em 3D motor conectando o cabo do motor 3D ao conector do motor 3D no painel traseiro. Conecte o sistema motor 3D para o sistema de montagem usando o post de liberação rápida na parte superior para se conectar à estação de imagem e a liberação rápida montagem na parte inferior para fixar o grampo do transdutor.
  3. Anexar a sonda para o grampo do transdutor.

3. Begin Imaging o Mouse grávida

  1. rato de lugar supino na plataforma de monitoramento. O rato recebe continuamente isoflurano anestésico (entre 1,5-2,5%) e oxigênio (1 L/min) através do cone de nariz. Fita com cuidado todas as patas para almofadas na plataforma de controlo do ritmo cardíaco.
    1. Aplique 1 a 2 mL de gel de transmissão do ultra-som no abdômen.
  2. Usando o estágio motor manual, posicionar a sonda de ultra-som na parte inferior do abdome.
    1. Localizar a bexiga, que deve aparecer como um círculo escuro cheio de líquido apenas cefálica à abertura vaginal.
    2. , Uma vez que a bexiga está localizada, a sonda bem lentamente cefálica para visualizar o útero gestante, que deve aparecer como uma forma cilíndrica com áreas redondas em sites de gravidez. Isto pode ser descrito como parecendo pérolas em uma cadeia de.
    3. Uma vez que o útero gestante foi identificado, começar a imagem 2-D.

4. A ecografia 2D (Figura 1)

  1. uma vez que o útero gestante foi identificado, começa no site da gravidez mais próximo à bexiga e lentamente e sequencialmente mover cefálica para determinar o número e localização dos sítios de gravidez.
  2. Se o rim, baço ou fígado é visualizado, reposicionar a sonda mais caudal (mais perto da bexiga) como o usuário já foi demasiado longe cefálica.
  3. o corno uterino contralateral da imagem da mesma maneira.
  4. Congelar a imagem quando o quadro de ultra-som está no centro do site implantação/gravidez para salvar para posterior análise e medições.
    Nota: Demora menos de um segundo para a imagem a ser congelado e salvos para posterior análise.
  5. Distância de implantação de
  6. medida usando a reação de decidualization hiperecoico como um marcador manualmente clicando sobre o " medida " ferramenta primeiro e em seguida, clicando sobre a localização de um local de implantação. Em seguida, arraste o cursor para o próximo local de implantação e clique para desenhar uma linha que o computador automaticamente irá relatar a sua distância. O software então irá relatar o que é a medição manual. Esta etapa não é informatizada, mas depende do usuário para marcar a distância entre os locais decidualized desenhando uma linha entre os sites decidualized, que o programa irá fornecer uma medida for
  7. Medir o tamanho do implante, tamanho do saco gestacional e tamanho do polo fetal.

5. Ritmo cardíaco fetal

Nota: no d.p.c 9.5, o batimento cardíaco fetal deve ser claramente visualizado.

  1. , Mantendo a sonda muito ainda, girar sobre a onda de pulso Doppler e coloque-o sobre o visível heartbeat.
  2. Registro cardíaco o coração bater pulsações.
    Nota: Para além do coração, este procedimento também pode gravar pulsações no cordão umbilical.

6. aquisição de ultra-som 3D

  1. depois que o útero gestante tem sido visualizado na imagem 2-D, posicionar a sonda em uma área que está no ponto médio aproximado a imagem desejada em 3D. Por exemplo, se uma foram de imagem de uma maçã em 3-d, a sonda deve inicialmente ser colocada onde o caroço da maçã está previsto ser localizado (ou seja, meio do objeto).
  2. Com a sonda em uma posição no meio a imagem desejada, obter uma aquisição em 3D. Fase 3-d motor viajará esta distância através do útero em uma série de passos ou quadros, com a intenção de capturar na totalidade o que o investigador deseja.
  3. Confirma que o pretendido estruturas completamente são capturadas na digitalização em 3D antes de completar a parte de ultra-som em tempo real. Salve essas informações em 3D para pós-processamento em um momento posterior. O tempo total para a aquisição de 2-D e 3-d ultrasom é aproximadamente 10-20 minutos quando executada por um usuário experiente.

7. reconstituição 3D pós-processamento (Figura 2)

  1. carregar os dados desejados para o processamento de imagem 3-d.
  2. Escolher " paralelos e rotacionais métodos ", que irá carregar todos os quadros de imagem 3D em um 3-d " caixa " que o usuário irá então traçar o objeto desejado em, quadro por quadro. Escolha o passo tamanho 0,08 mL. Começa em uma extremidade do bloco de imagem e percorrer para se familiarizar com as imagens que foram capturadas dentro espaço.
    1. Start em uma extremidade da imagem e manualmente trace o contorno do objeto.
    2. Rolar a próxima fatia de imagem 2-D ou " quadro " e manualmente, trace o contorno do objeto.
    3. Continue esse processo até que todos os quadros foram manualmente anotado/traçada pelo usuário.
    4. Clique " terminar " para obter a imagem em 3D e cálculos de volume total.
  3. Escolher entre malha e sobreposição de sólido, que é uma seta no canto superior esquerdo.
  4. Escolher manter ou remover as informações de imagem de ultra-som circundante de clareza. Cada reconstrução 3D pode demorar entre 10 e 20 min.

8. Cuidados pós-procedimento

  1. quando o ultra-som for concluído, desligue o gás de anestesia, remover o mouse da plataforma e Limpe suavemente e lavar qualquer gel de ultra-som do animal.
  2. Coloque o mouse volta na gaiola em posição em uma área acolchoada. Monitorar até que o animal está acordado e em movimento espontaneamente.

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Representative Results

Conforme demonstrado na Figura 1, o ultra-som de alta frequência pode detectar a implantação local desenvolvimento começando tão cedo quanto o ponto de tempo 5.5 d.p.c. Usando o isqueiro hiperecoico decidualized endométrio como um marcador de locais de implantação no d.p.c 6.5 permite que o número de locais de implantação e o espaçamento desses sites para ser quantificada. Como a gravidez progride para 7,5 d.p.c, um saco gestacional de mais escuro Hipoecoica e polo fetal também é facilmente identificáveis.

Como mostrado na Figura 2, a composição de pós-processamento concluída da reconstrução tridimensional do útero rato é capaz de ser visualizado. No d.p.c 6.5, a composição de ultra-som 3D de alta frequência em ambos os formatos de sobreposição sólido e malha pode ser usada para fornecer uma representação visual. Outro exemplo, desta vez no d.p.c 7.5, demonstra a imagem composta final de outro útero com malha e sobreposição de sólidos.

Figure 1
Figura 1: deteção de alta frequência de ultra-som de desenvolvimento local de implantação e acompanhamento do crescimento fetal, ao longo da gestação. Como mostrado na figura 1A, na d.p.c 5.5 o isqueiro hiperecoico endométrio decidualized (D) permite que o número de locais de implantação e espaçamento para ser quantificada. Como mostrado na figura 1B, os sites de decidualization (D) em outro corno uterino são Unidos pelo corno uterino (U). Por d.p.c 7.5, o mais escuro Hipoecoica sac (GS) e o polo fetal (F) são facilmente identificáveis, Figura 1. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figure 2
Figura 2: A reconstrução tridimensional do útero do mouse durante a gravidez precoce. No d.p.c 6.5, como mostrado na Figura 2A, 3-d de alta frequência ultrasom em malha e sobreposição sólida formatos são mostrados. No d.p.c 7,5, como mostrado na Figura 2B, imagens de ultra-som 3D de alta frequência com malha e sobreposição sólida formatos são mostrados. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

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Discussion

Este novo uso de imagens 3D de HFUS demonstra a capacidade de detectar com sucesso, Visualizar e caracterizar locais de implantação do embrião durante a gravidez precoce murino de forma não-invasiva. A tecnologia oferece uma melhoria significativa sobre os métodos atuais, que contam com a interrupção da gravidez para tecido bruto e caracterização histopatológica. No entanto deve notar-se que métodos histológicos ainda seria considerados mais ideais quando caracterização em um nível mais ampliada e mais celular é desejada, ou quando a análise do gene e a proteína é necessária. Com um número crescente de novos modelos de rato exibindo defeitos de implantação e gravidez precoce perda19,20,21,22, a capacidade de esta avançada técnica de ultra-som para detecção precoce gravidezes de d.p.c 5.5 em diante fornece vantagens evidentes em anteriores métodos de ultra-som que limitavam-se a detecção no meio da gravidez12,13. Além disso, esse método detecta movimento cardíaco assim que o coração começa a bater, entre 8,5-9,5 d.p.c23,24 , permitindo a confirmação dos fetos viáveis. A capacidade de acompanhar os eventos de gravidez precoce no mesmo animal significa menos animais são necessários por experiência e análise mais preciso pode ser executada com tais projetos experimentais longitudinais25,26, 27.

Note-se que os três passos mais críticos no protocolo são: (1) saber o dia exato gestacional; (2) a habilidade do operador para localizar o útero e posicionar a sonda sobre o local anatômico correto; e (3) técnicas precisas para produzir uma reconstrução 3-d. As seguintes diretrizes de resolução de problemas se provaram úteis: quando é difícil localizar o útero no ultra-som, o usuário pode iniciar, garantindo que a bexiga é identificada primeiro. A bexiga é normalmente vista como um círculo preto e é imediatamente cefálica da abertura vaginal. Mesmo em ratos que foram submetidos a micção imediatamente antes do ultra-som, a bexiga nunca está completamente vazia e assim (em nossa experiência) pode ser um marcador fiável. Uma vez que a bexiga é identificada, a sonda deve ser lentamente movida cefálica até o útero é visto. Se a bexiga for pequeno ou incapaz de ser visualizada, o usuário pode também tentar visualizar o útero, iniciando-se no ovário, que pode ser encontrado em flancos, inferiores do rim. Usando essa abordagem sistemática, cada local de implantação e o desenvolvimento fetal podem ser observado, como na Figura 1. Na ocasião, pode ser difícil obter a região desejada do útero durante a ultra-sonografia devido à maneira em que o útero está posicionado no abdômen, como mostrado na Figura 2 por diferentes formas e posições do útero in vivo. O usuário pode inclinar o avião de plataforma de rato para deslocar ou realinhar o útero internamente para uma posição mais favorável em que a região uterina desejada pode ser capturada pelo ultra-som. Finalmente, o usuário pode confirmar que as imagens desejadas uterinas foram obtidas durante a ultra-sonografia por percorrer rapidamente as imagens do ultra-som adquirida logo após a sessão de ultra-som é concluída. Uma limitação menor é que a sobreposição de malha/sólido 3D para reconstrução visual não pode ser executada durante a sessão de ultra-som. Para garantir que as imagens do ultra-som sendo obtidas são precisas, recomendamos que como os pesquisadores estão ganhando proficiência, os animais são sacrificados após ultra-som para correlacionar a exatidão dos achados ultra-som para amostra de tecido bruto medições e anatomia.

Enquanto aqui descrevemos a modelagem da gravidez normal murino, futuras aplicações desta técnica serão aplicadas para quantificar eventos anormais de gravidez precoce. HFUS e reconstrução 3D permitirá que os investigadores, para detectar e monitorar o número, tamanho e localização das gravidezes que são anormais em crescimento e/ou desenvolvimento. Por exemplo, não-invasivo Caracterização fenotípica de anormalidades —ou seja, defeituoso decidualization endometrial, distribuição de implantação do embrião aberrante e invasão trofoblástica inadequada e crescimento — exibido por um aumento número de camundongos geneticamente modificados agora pode ser analisado longitudinalmente sem interrupção de gravidez usando esta metodologia de imagem.

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Disclosures

Os autores não têm nada para divulgar.

Acknowledgments

Agradecemos muito a ajuda de Rong Zhao Jie Li e Yan Ying.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
VisualSonics Vevo 2100 Ultrasound Imaging Platform/Machine VisualSonics, inc. VS-11945
Vevo Imaging Station VisualSonics, inc. SA-11982
Aquasonic 100 Ultrasound Transmission Gel Parker #SKU PLI 01-08
Isoflurane (IsoThesia) 100mL bottle Henry Shein #29404
PuraLubenAnimal Ophthalmic Ointment Dechra #12920060

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Rai, R., Regan, L. Recurrent miscarriage. Lancet. 368 (9535), 601-611 (2006).
  2. Sugiura-Ogasawara, M., Ozaki, Y., Suzumori, N. Management of recurrent miscarriage. J Obstet Gynaecol Res. 40 (5), 1174-1179 (2014).
  3. Kutteh, W. H. Novel strategies for the management of recurrent pregnancy loss. Semin Reprod Med. 33 (3), 161-168 (2015).
  4. Page, J. M., Silver, R. M. Genetic Causes of Recurrent Pregnancy Loss. Clin Obstet Gynecol. 59 (3), 498-508 (2016).
  5. Zhang, J., Croy, B. A. Using ultrasonography to define fetal-maternal relationships: moving from humans to mice. Comp Med. 59 (6), 527-533 (2009).
  6. Li, S. J., et al. Differential regulation of receptivity in two uterine horns of a recipient mouse following asynchronous embryo transfer. Sci Rep. 5, 15897 (2015).
  7. Ding, Y. B., et al. 5-aza-2'-deoxycytidine leads to reduced embryo implantation and reduced expression of DNA methyltransferases and essential endometrial genes. PLoS One. 7 (9), e45364 (2012).
  8. Kusakabe, K., Naka, M., Ito, Y., Eid, N., Otsuki, Y. Regulation of natural-killer cell cytotoxicity and enhancement of complement factors in the spontaneously aborted mouse placenta. Fertil Steril. 90 (4 Suppl), 1451-1459 (2008).
  9. Demianczuk, N. N., et al. The use of first trimester ultrasound. J Obstet Gynaecol Can. 25 (10), 864-875 (2003).
  10. Thompson, H. E. Evaluation of the obstetric and gynecologic patient by the use of diagnostic ultrasound. Clin Obstet Gynecol. 17 (4), 1-25 (1974).
  11. Unterscheider, J., et al. Definition and management of fetal growth restriction: a survey of contemporary attitudes. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 174, 41-45 (2014).
  12. Greco, A., et al. High frequency ultrasound for in vivo pregnancy diagnosis and staging of placental and fetal development in mice. PLoS One. 8 (10), e77205 (2013).
  13. Flores, L. E., Hildebrandt, T. B., Kuhl, A. A., Drews, B. Early detection and staging of spontaneous embryo resorption by ultrasound biomicroscopy in murine pregnancy. Reprod Biol Endocrinol. 12, 38 (2014).
  14. Nguyen, T. M., et al. Estimation of mouse fetal weight by ultrasonography: application from clinic to laboratory. Lab Anim. 46 (3), 225-230 (2012).
  15. Singh, S., et al. Quantitative volumetric imaging of normal, neoplastic and hyperplastic mouse prostate using ultrasound. BMC Urol. 15, 97 (2015).
  16. Liu, L., et al. Ultrasound-mediated destruction of paclitaxel and oxygen loaded lipid microbubbles for combination therapy in ovarian cancer xenografts. Cancer Lett. 361 (1), 147-154 (2015).
  17. Ni, J., et al. Monitoring Prostate Tumor Growth in an Orthotopic Mouse Model Using Three-Dimensional Ultrasound Imaging Technique. Transl Oncol. 9 (1), 41-45 (2016).
  18. Peavey, M. C., et al. Three-Dimensional High-Frequency Ultrasonography for Early Detection and Characterization of Embryo Implantation Site Development in the Mouse. PLoS One. 12 (1), e0169312 (2017).
  19. Song, H., et al. Cytosolic phospholipase A2alpha is crucial [correction of A2alpha deficiency is crucial] for 'on-time' embryo implantation that directs subsequent development. Development. 129 (12), 2879-2889 (2002).
  20. Nallasamy, S., Li, Q., Bagchi, M. K., Bagchi, I. C. Msx homeobox genes critically regulate embryo implantation by controlling paracrine signaling between uterine stroma and epithelium. PLoS Genet. 8 (2), e1002500 (2012).
  21. Hirate, Y., et al. Mouse Sox17 haploinsufficiency leads to female subfertility due to impaired implantation. Sci Rep. 6, 24171 (2016).
  22. Wang, T. S., et al. Dysregulated LIF-STAT3 pathway is responsible for impaired embryo implantation in a Streptozotocin-induced diabetic mouse model. Biol Open. 4 (7), 893-902 (2015).
  23. Ji, R. P., et al. Onset of cardiac function during early mouse embryogenesis coincides with entry of primitive erythroblasts into the embryo proper. Circ Res. 92 (2), 133-135 (2003).
  24. Srinivasan, S., et al. Noninvasive, in utero imaging of mouse embryonic heart development with 40-MHz echocardiography. Circulation. 98 (9), 912-918 (1998).
  25. Franco, N. H., Olsson, I. A. Scientists and the 3Rs: attitudes to animal use in biomedical research and the effect of mandatory training in laboratory animal science. Lab Anim. 48 (1), 50-60 (2014).
  26. Pratap, K., Singh, V. P. A training course on laboratory animal science: an initiative to implement the Three Rs of animal research in India. Altern Lab Anim. 44 (1), 21-41 (2016).
  27. Landi, M. S., Shriver, A. J., Mueller, A. Consideration and checkboxes: incorporating ethics and science into the 3Rs. J Am Assoc Lab Anim Sci. 54 (2), 224-230 (2015).

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