Summary
Endochondral 뼈 치유 하는 동안 골절 굳은 살에 조직 개발의 평가 치료 과정을 모니터링 하는 데 필수적 이다. 여기, 우리는 자기 공명 영상 (MRI)의 사용을 보고-MRI 있도록 마우스 대 퇴 골에 대 한 호환 외부 fixator 쥐에서 뼈 재생 동안 검색.
Abstract
Endochondral 골절 치유 골절 굳은 살에 섬유, 연골, 뼈가 있는 직물의 개발을 포함 하는 복잡 한 공정 이다. 다른 조직에는 굳은 살의 금액 골절 치료 진행에 중요 한 정보를 제공 합니다. 경도 작은 동물을 사용 하 여 전 임상 골절 치유 연구에 굳은 살 조직 개발 모니터링 기술을 사용할 수 비보에 디지털 방사선 및 µCT 이미징 포함 됩니다. 그러나, 두 기법과 비 mineralized 광물 화 된 직물을 구별 수만 있습니다. 따라서, 섬유 조직에서 연골을 차별 수 아니다. 대조적으로, 자기 공명 영상 (MRI) 그들의 함량에 따라 해 부 구조를 시각화 하 고 따라서 noninvasively 부드러운 조직과 연골 골절 굳은 살에 확인할 수 있을 수 있습니다. 여기, 우리는 MRI 호환 외부 fixator 마우스 대 퇴 골에 대 한 쥐에서 뼈 재생 중 MRI 검사를 허용 하도록 사용을 보고 합니다. 실험 그는 fixator와 주문 품 장착 장치 수 있도록 반복적인 MRI 검사, 골절-굳은 살 조직 개발의 경도 분석 활성화 설명 했다.
Introduction
2 차 골절 치유 뼈 치유의 가장 일반적인 형태입니다. Ontogenic endochondral 나오고1,2,3의 특정 측면을 흉내 낸 복잡 한 과정 이다. 주로 초기 골절 혈은 면역 세포과 립 및 섬유 조직 구성 됩니다. 낮은 산소 긴장 및 높은 biomechanical 긴장 골절 간격에서 osteoblast 차별화를 방해 하지만 chondrocytes4,,56으로 조상 세포의 분화를 촉진. 이러한 셀 골절된 뼈의 초기 안정성을 제공 하는 연골 매트릭스를 형성 하는 상해의 사이트에 확산 하기 시작 합니다. 굳은 살 성숙 동안 chondrocytes hypertrophic, 되 받을 apoptosis, 또는 트랜스-osteoblasts로 분화. 연골 뼈 전이 영역에서 Neovascularization 제공 높은 산소 수준, 뼈 조직7의 형성. 뼈 분쇄 갭의 다리, 후 biomechanical 안정성 증가 하 고 외부 골절 굳은 살의 osteoclastic 개장 생리 뼈 윤곽 및 구조3을 얻을 수 발생 합니다. 따라서, 골절 굳은 살에 섬유, 연골, 뼈 조직 양의 뼈 치유 과정에 대 한 중요 한 정보를 제공 합니다. 굳은 살 조직 개발 모두 인간과 쥐8,9,,1011의 변경에 의해 방해 또는 지연 치유 표시 됩니다. 경도 연구 작은 동물을 사용 하 여 치료 전 임상 골절에 굳은 살 조직 개발 모니터링 기술을 사용할 수 비보에 디지털 방사선 및 µCT12,13이미징 포함 됩니다. 그러나, 두 기법 및 비 mineralized 광물 화 된 조직 사이 차별 수만 있습니다. 반면, MRI 우수한 연부 조직 대조를 제공 하 고 따라서 부드러운 조직과 연골 골절 굳은 살에 확인할 수 있을 수 있습니다.
이전 작업 intramembranous 뼈-결함 치유15동안 쥐에 사후 MRI 쥐에서 관절 골절14 그리고 vivo에서 MRI를 위한 유망한 결과 보여주었다. 그러나, 두 연구는 또한 제한 된 공간 해상도 조직 대비를 밝혔다. 우리는 이전 murine endochondral 골절 치유16동안 부드러운 굳은 살 형성의 경도 평가 대 한 고해상도 vivo에서 MRI의 타당성을 설명 했다. 여기, 우리는 굳은 살 조직 개발 endochondral 골절 치유 과정 동안 경도 모니터 하기 위해 쥐의 대 퇴 골 뼈에 대 한 MRI 호환 외부 fixator를 사용 하기 위한 프로토콜을 보고 합니다. 외부 fixator의 삽입에 대 한 주문 품 장착 장치 디자인 반복된 검사 하는 동안 표준된 위치를 보장합니다.
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Protocol
모든 동물 실험 관리 및 실험 동물의 사용에 대 한 국제 규정을 준수 하 고 (제 1250, Regierungspräsidium 튀빙겐, 독일) 지역 규제 당국에 의해 승인 했다. 모든 마우스 10 h 어두운 circadian 리듬 물과 음식을 제공 광고 libitum 14 h 빛에 감 금 소 당 2 ~ 5 동물의 그룹에서 유지 되었다.
1. 수술 재료 및 쥐의 치료 전 준비
- Sterilize 모든 수술 재료. 120-135 ° C의 압력가 마로 소독 온도 사용 하 여 살 균 시간 20-30 분.
- 구매 C57BL/6 마우스 또는 몸 무게의 19-35 g 사이 다른 스트레인에서 쥐. 적절 한 동물 보호 및 조사에 의해 승인 되는 국가 지침 서에 따라 실험 프로토콜에 따라 ' s 기관 동물 관리 및 사용 위원회. 절차를 시작 하기 전에 7 일 순응 기간의 최소 허용.
- 3 수술 날까지 수술 전에 1 일 식 수를 통해 모든 마우스 진통 제공.
2. 수술 절차 및 응용 프로그램의 외부 Fixator
- 장소 5-7 %isoflurane 및 60 mL/min 산소 튜브로 마우스 탑재. 자세 반사의 손실, 후에 마 취 유도 관에서 마우스를 제거 하 고 제공 하는 1-3 %isoflurane 및 60 mL/min의 산소 흡입 마스크를 통해 마 취를 유지 합니다.
마 취 중의
- 모니터 호흡 패턴 및 뒷 다리 발 반사 호흡 속도 약 100 사이클/분 하 고 뒷 발 반사 이다 결 석.
참고: 필요로 하는 가스의 양을 나이, 성별, 체중, 및 마우스의 변형에 따라 달라 집니다.
- 모니터 호흡 패턴 및 뒷 다리 발 반사 호흡 속도 약 100 사이클/분 하 고 뒷 발 반사 이다 결 석.
- 수술 전에 주입 마우스 항생제의 단일 투여와 피하 (clindamycin, 45 mg/kg). 또한, 생리 유체 균형의 유지 보수, 500 µ L 염 분의 피하 유체 디포 마우스 주입 (0.9 %NaCl).
- 막 방지 하기 위해 건조, 마우스 눈 눈 연 고를 적용 됩니다. 마 취 동안 37 ° C에서 난방 접시에 마우스를 배치 하 고 생리 유지 하기 위해 수술 신체 온도.
- 오른쪽 뒷 다리에서 모피를 제거 하 고 알코올 기반의 소독 제와 수술 영역을 문질러. 오른쪽 뒷 발 unsterile 지역을 피하기 위해 멸 균 장갑의 작은 부분을 커버. 오른쪽 뒷 다리를 세 번 치료. 외과 영역 제외한 전체 마우스 살 균 드 레이프 장소. 메스와 오른쪽 대 퇴 골의 앞쪽 측에 따라서 경도
- 절 개 피부 약 1 cm. 별도 퉁 명 스럽게 엠 팔 뚝 femoris와 m. vastus lateralis 마이크로 시저 및 집게. 뼈의 anterolateral 부분에 무료로 액세스할 수 있도록 마이크로 시저와 대 퇴 골 trochanter에 힘 원점 쪽을 잘라. 좌 골 신경 유지 됩니다 있는지 확인 하십시오.
- 외부 fixator (3 N/mm, 그림 1 A의 축 강성) 대 퇴 골에 평행 하 게 배치합니다. 수동으로 0.45 m m 드릴 비트와 함께 피 질을 통해 시추공 훈련과 시추공에 핀을 장착 하는 세라믹을 배치. 가장 말 초 핀 뒤 가장 근 위 핀과 2 개의 핀 사이 시작 합니다.
- 는 긴장, 압축, 또는 전단 응력에는 fixator 장착 절차 동안 그렇지 않으면 달성된 뼈 격차는 fixator의 이완으로 인해 충분 한 되지 것입니다 있는지 확인 하십시오.
- 절단 절차 동안 탈수를 피하기 위해 무 균 NaCl의 작은 양의 뼈 축이다.
- 만들 0.4 m m 질 리 와이어 톱을 사용 하 여 두 내부 핀 사이 전체 뼈를 통해 서 0.4 m m 뼈.
참고: 필요에 따라, 진동 마이크로 보고 사용할 수 있습니다는 뼈를 만드는 데. 뼈 지역에서 본에서 어떤 금속 칩을 피하기 위해 있는지 확인 하십시오. - 두 골절된 외피가 사이 뼈 칩을 제거 하는 살 균 NaCl의 2 mL와 함께 신중 하 게 뼈 간격 플러시.
- Resorbable 봉합으로 연속 봉합 사를 사용 하 여 근육을 적응 (재료의 표 참조). 다음 중단된 비 resorbable 봉합 (재료의 표 참조)를 사용 하 여 피부를 적응. 상처 물고를 방지 하려면 배치 하지 마십시오 봉합 상처의 두개골 부분에.
참고: 피부 접착제를 사용 하지 마십시오 또는 클립 마우스 일반적으로 상처 발생에서 그것을 제거 하는 때문에, 더 피부를 손상. - 살 균 제와 수술 영역을 청소 하 고 마우스의 케이지. 모니터 마우스 그리고 공급 충분 한 열 (예: 적외선 빛) 때까지 완전히 깨어. 물, 음식 섭취 량과 몸 무게를 수술 후 모니터링 동물 통증과 고통을 하지 있는지 확인 합니다. 3 수술 날까지 식 수를 통해 모든 마우스 진통 제공.
참고: 마우스 최대 4 개의 동물의 그룹에서 지 내게 될 수 있습니다. - 모니터 마우스 ' 수술 후 1 ~ 5 일에 s 활동. 그 시간 과정, 마우스는 운영된 다리에 체중을 부담 한다. 그렇지 않으면, 마우스 추가 분석에서 제외 해야 합니다.
3. Mri 검사 절차 및 이미지 분석
- 이전 절차, 스캔 MRI에 2.1, 2.3, 단계에서 프로토콜에 따라 마우스를 anaesthetize 하 고 계속 호흡 속도 약 100 사이클/분의 오른쪽 뒷 다리에 외부 fixator를 삽입 합니다 주문 품 장착 장치 ( 그림 1 B, C)에 신중 하 게 마우스.
- 이후이 골절 치유를 방해할 수 있습니다 절곡 또는이 단계는 fixator의 압축을 피하기 위해 있는지 확인 합니다.
참고: MRI 검사는 동물 보호와 실험 프로토콜에 따라 수술 후 3 일 지휘 될 수 있다.
- 이후이 골절 치유를 방해할 수 있습니다 절곡 또는이 단계는 fixator의 압축을 피하기 위해 있는지 확인 합니다.
- MRI 장치 도입에 대 한 온도 제어 요람에 마우스를 놓습니다. 4 소자 헤드 코일에 단단하게 장착 장치를 연결.
- 11.7 토니에서 전용된 높은 필드 작은 동물 MRI 시스템을 사용 하 여 취득 MRI 데이터
참고:는 MRI 데이터 수집 형상을 직교 나사에 대 퇴 골 뼈에 맞춰집니다. 양성자 밀도 지방 억제 멀티 슬라이스 TSE 시퀀스 (PD-TSE)을 적용 하 여- 취득 데이터 수집 매개 변수를 사용 하 여: 에코/반복 시간 테 5.8 ms/TR = 2500 ms, 해상도 Δr = 52 × 52 × 350 µm³, 보기의 필드 (FOV) = = 20 × 20 m m ², 그리고 대역폭 Δω = 150 KHz.
- 참고: 22 조각 총 수집 시간은 36 분
- 이미지 분석 소프트웨어와 함께 수집 된 데이터를 엽니다. 0.35 m m 3 x 0.05 x 0.05로 복 크기를 입력 합니다. (뼈, 연골, 섬유 조직/골) 골절 굳은 살에 다른 조직 같이 반자동 임계 처리를 가진 그들의 강도에 따라 세그먼트.
- 클릭
- 는 " 새로운 레이블 필드 편집 ", 클릭 " 추가 자료 ", 자료를 이름을 바꿉니다 " callus ". 사용 하 여과 포 강렬한 신호에 따라 주변 조직에서 굳은 살 지역 구분은 " 올가미 " 도구.
- 클릭 " 자료에 추가 ". 클릭 " 추가 자료 " 자료를 이름을 바꿉니다 " 연골 ". 연골을 사용 하 여 세그먼트는 " 임계값 " 도구 및 " 현재 자료만 선택 "에서 " callus ". 클릭 " 연골 " 및 " 물자에 추가 ". 이러한 단계를 반복 하 여 " 뼈 " 및 " 골/섬유 조직 ".
참고: 매우 작은, 하이퍼 강렬한 분야는 en을 둘러싼골절된 외피가의 ds 뼈에서 부드러운 조직 전환으로 유물을 될 가능성이 있습니다. 이 지역 추가 분석에서 제외 해야 합니다. 골절 중간 하이퍼 강렬한 지역 callus 대표 연골 조직 치유 골절의 endochondral 단계. Endochondral 나오고 단계에서 뼈 간격에서 골절 굳은 살 원심 hypo-강렬한 지역 및 전체 골절 굳은 살 나중 치유 단계에 걸쳐 동일한 강도 영역 새로 형성된 된 뼈 굳은 살 조직을 나타냅니다. 이 분야는 hypo 강렬한 신호, 성숙한 뼈 (피 질)에서 신호 강도 더 낮은. 임계 처리 후 골절 굳은 살의 연골 조직과 뼈 조직에 대 한 신호 강도 표시 골으로 나머지 조직과 섬유 조직. 조직 세분화에 대 한 값: 뼈 조직 (를 포함 하 여 성숙 피 질, 배수 뼈와 뼈의 굳은 살 조직) 1-3.3 (성숙 피 질 정규화 된 신호 강도)의 범위 내에서 세그먼트는 3.4-5.4의 범위 내에서 골 수/섬유 조직 및 5.5-6.2의 범위 내에서 연골 굳은 살 조직.
참고: 시간 포인트 동물 관리 및 실험 프로토콜에 따라 달라질 수 있습니다.
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Representative Results
첫째, 수술의 성공 ( 그림 2에서 예제 참조)는 MRI 검사의 분석에 의해 확인할 수 있습니다. 모든 4 개의 핀 대 퇴 축 가운데 위치 해야 합니다. 뼈 간격의 크기는 0.3-0.5 사이 여야 m m. 뼈 간격의 크기는이 값에서 크게 차이가, 마우스 추가 분석에서 제외 해야 합니다.
둘째, 골절 치유 같은 동물에서 과정 동안 경도 검사의 평가 굳은 살 조직 개발에 대 한 정보를 제공 합니다. 연골 조직 10 일째에 골절 굳은 살 중간에 표시 되는 마우스 하루 10, 14, 21 ( 그림 3에서 예를 참조)에서 검색 하는 경우 (상대 연골 영역 = 30.8%)와 하루 14 (상대 연골 영역 = 29.0%), 후 21 일까지 감소 수술 (상대 연골 영역 = 10.5%) (그림 3)입니다. 뼈 조직 10 일째에 골절 굳은 살의 주변에 표시 됩니다 (상대 골 지역 = 7.2%), 하루 14까지 증가 (상대 골 지역 = 15.6%), 21 일까 발생 몸 브리징 (상대 골 지역 = 45.7%).
셋째, 이미지 분석 소프트웨어를 사용 하 여 골절 굳은 살에 다른 조직의 세분화, 후 골절된 대 퇴 골과 골절 굳은 살에서 3D 이미지 생성 될 수 있습니다. 그림 4에 표시 된 예제에서 전체 대 퇴 골 스캔에 하루 26 골절 표시 후 합니다. 성숙 피 질 회색으로 표시 됩니다, 세라믹 핀 노란색으로 표시 됩니다, 굳은 살 부드러운 조직 녹색으로 표시 됩니다, 연골 조직, 빨간색으로 표시 되어 고 굳은 살 뼈 조직 자주색으로 표시 됩니다.
그림 1 : 세라믹 장착 핀 및 MRI 장착 장치 외부 fixator. (A) 외부 fixator의 플라스틱 몸 MRI 검사에 호환 되는 4 개의 세라믹 장착 핀 뿐만 아니라 표시 됩니다. 눈금 막대: 1 cm. (B)는 전산의 그림 맞춤 장착 장치 MRI 스캔 하는 동안 외부 fixator의 삽입은 표시. 마우스의 오른쪽 대 퇴 골에서 외부 fixator 장착 장치의 구조에 삽입 됩니다. 그런 다음, 장치 검색 전에 4 요소 헤드 코일에 꽂혀 있는. 눈금 막대: 0.4 cm. (C) 마우스에에서 배치 탑재 장치 (파란색), 4 요소 머리 코일 (화이트)에 연결 된. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 2 : 골절된 대 퇴 골 수술 후 3 일의 PD TSE MRI 이미지. 골절된 대 퇴 골 수술 표시 후에 하루 3 스캔에의 한 중앙 쪼 갠 다. BM: 골 수; B: 뼈; FX: 골절 간격입니다. 눈금 막대: 0.5 mm. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 3 : MRI 기술을 사용 하 여 골절 굳은 살 개발의 경도 모니터링. 중앙 MRI 골절된 대 퇴 골에서의 조각 한 마우스 스캔된 (A)에 하루 10, (B) 하루 14, 및 (C) 하루 21 후 수술 표시 됩니다. 하이퍼-강렬한 연골 조직 골절 굳은 살 중간에 보이는 10 일과 14 일에 이며 수술 후 21 일까지 감소. Hypo-강렬한 뼈 조직 표시 골절 굳은 살의 주변에 당일 10, 하루 14까지 증가 이며 하루 21까지 발생 몸 브리징. BM: 골 수; Cg: 연골 조직; B: 뼈 조직입니다. 눈금 막대: 0.5 mm. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 4 : 골절된 대 퇴 골에서 3 차원 개조 수술 후 26 당일 검사. 성숙 피 질 회색으로 표시 됩니다, 세라믹 핀 노란색으로 표시 됩니다, 굳은 살 부드러운 조직 녹색으로 표시 됩니다, 연골 조직, 빨간색으로 표시 되어 고 굳은 살 뼈 조직 자주색으로 표시 됩니다. 이미지는 이미지 분석 소프트웨어를 사용 하 여 생성 되었습니다. 눈금 막대: 0.4 mm. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
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Discussion
수정 및 문제 해결:
이 연구의 주요 목표를 사용 하 여 MRI 호환 외부 fixator의 마우스에 대 퇴 골 뼈에 대 한 경도 endochondral 골절 치유 과정 동안 굳은 살 조직 개발을 모니터링 하는 기능에 대 한 프로토콜을 설명 했다. 외부 fixator의 삽입에 대 한 주문 품 장착 장치 디자인 반복된 검사 하는 동안 표준된 위치를 보장합니다. 자동 조직 세분화 골절 굳은 살에 섬유, 연골, 뼈 조직의 금액의 분석을 수 있습니다. 또한, MRI 이미지의 3D 복원 endochondral 골절 치유 과정에서 각 개별 마우스의 시각화를 수 있습니다.
프로토콜 내에서 중요 한 단계:
MRI-호환 외부 fixator를 사용 하 여 수술의 가장 중요 한 단계는: (1) 피하 모든 수술 하는 동안 좌 골 신경 손상, 그렇지 않으면 마우스 수 없습니다 체중 곰 하는 뼈 후 5 일 이내 고에서 제외 해야 합니다 추가 분석. (2) 피 긴장, 압축, 또는 전단 스트레스는 fixator에 설치 절차 동안, 그렇지 않으면 뼈 간격이 없을 것 이다 표준화 된 크기와 모양. 또한,는 뼈의 안정적인 정착을 보장, 대 퇴 골의 세로 축에 평행한 fixator를 탑재 해야 합니다. (3) 피 금속 칩에서 보면 질 리 와이어를 사용 하 여, 이후 그 MRI 검사 절차를 방해할 것 이다 보았다.
프로시저를 스캔 하는 MRI의 가장 중요 한 단계는: (1) 확인 확실히 피하려고 절곡 또는 삽입 fixator의 압축 및 장착 장치 제거로이 골절 치유를 방해할 수 있습니다. (2) 생리 적인 체온을 유지 하기 위해 스캔 절차 동안 적절 한 온도 제어를 확인 합니다.
기존의 방법 및 기술의 한계 의미:
이전 연구에 대 한 유망한 결과 보여주었다 사후 관절 골절14 쥐에서 MRI 및 intramembranous와 쥐에서 vivo에서 MRI 뼈-결함 치유15. 그러나, 두 연구는 또한 제한 된 공간 해상도 조직 대비를 밝혔다. 우리 이전 시연 callus 형성 초기 동안 및 중간 단계와 새로운 MRI 기술을 비교 하 여 쥐에서 치유는 골절의 타당성과 고해상도 vivo에서 MRI 소프트의 경도 분석의 정확도 골드 표준 µCT 및 histomorphometry16. 그러나, 우리는 또한 MRI의 공간 해상도 크게 전 비보 µCT의 해상도 보다 낮은 발견. 이것은 전 비보 뿐만 아니라 vivo에서 µCT을 포함 하 여 경쟁 기술에 비해 MRI 기법의 명확한 한계 이다.
미래의 응용 프로그램:
Murine 골절 치유 연구 과정에서 MRI의 사용에 대 한 관점은: (1) 조합의 mri 다친된 다리 통해 혈액의 흐름을 측정 하는 조 영제의 사용. (셀 밀매 실험17,18,,1920철 산화물의 superparamagnetic 입자와 함께 셀 라벨 뿐만 아니라 MRI 및 애완 동물의 조합 2) 검색 합니다.
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Disclosures
저자 로마노 Matthys RISystem AG 다보스, 스위스는 임 플 란 트를 생산 하 고이 문서에서 사용 되는 특정 악기 임 플 란 트의 직원입니다. 다른 모든 저자 아무 경쟁 금융 관심사 있다.
Acknowledgments
우리는 우수한 기술 지원에 대 한 Sevil Essig, 스테파니 치유력이, 레나 피셔, 카 차 Prystaz,이 본 Hägele, 및 앤 Subgang 감사합니다. 우리는 또한 독일 연구 재단 (CRC1149, INST40/499-1)와 AO 외상 기초 독일이이 연구 자금에 대 한 감사 합니다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Anaesthesia tube | FMI, Seeheim, Germany | ZUA-82-ANA-TUB-Mouse | |
| Anaesthetic machine | FMI, Seeheim, Germany | ZUA-82-GME-MA | |
| Artery forceps | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BH104R | |
| Autoclave | Systec, Wettenberg, Germany | DX-150 | |
| Autoclaving packaging | Stericlin, Feuchtwangen, Germany | 2301-04/06/10/12/16 | |
| Avizo software | FEI, Burlington, USA | - | Version 8.0.1 |
| BioSpec 117/16 magnetic resonance imaging system | Bruker Biospin, Ettlingen, Germany | 117/16 | |
| Bulldog clamp | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BH 021R | |
| Carbon steel scalpel no. 11/15 | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BA211/215 | |
| Ceramic mounting pin 0.45 mm | RISystem, Davos, Switzerland | HS691490 | |
| Clindamycin (300 mg / 2ml) | Ratiopharm, Ulm, Germany | - | |
| Dressing forceps 115 mm | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BD210R | |
| Dressing forceps 130 mm | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BD025R | |
| Drill bit coated 0.45 mm | RISystem, Davos, Switzerland | HS820420 | |
| Durogrip needle holder 125 mm | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BM024R | |
| Foliodrape | Hartmann, Heidenheim, Germany | 2513026 | |
| Frekaderm | Fresenius, Bad Homburg, Germany | 4928211 | |
| Gigli saw 0.44 mm | RISystem, Davos, Switzerland | RIS.590.110.25 | |
| Hand drill | RISystem, Davos, Switzerland | RIS.390.130-01 | |
| Heating plate | FMI, Seeheim, Germany | IOW-3704 | |
| Hygonorm gloves | Hygi, Telgte, Germany | 2706 | |
| Isoflurane | Abbot, London, UK | Forene | |
| Micro forceps 155 mm | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BD343R | |
| Micro scissors 120 mm | Aesculap, Tuttlingen, Germany | FD013R | |
| Mouse FixEx L 0.7 mm | RISystem, Davos, Switzerland | RIS.611.300-10 | |
| Needle case for drills | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BL911R | |
| Needle holder | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BB078R | |
| Octenisept | Schülke, Norderstedt, Germany | 121403 | |
| Osirix software | Pixmeo SARL, Bernex, Switzerland | - | Version 4.0 |
| Oxygen, medical grade | MTI, Ulm, Germany | - | |
| Resolon 5/0 | Resorba, Nürnberg, Germany | 88143 | |
| Saline 0.9% | Braun, Melsungen, Germany | 3570350 | |
| Scalpel handle 125 mm | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BB073R | |
| Scissors 150 mm | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BC006R | |
| Sealer for autoclave packaging | Hawo GmbH, Obrigheim, Germany | HM500 | |
| Sterican 27 G | Braun, Melsungen, Germany | 4657705 | |
| Sterile surgical blades no. 11/15 | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BB511/515 | |
| Surgical gloves | Hartmann, Heidenheim, Germany | Peha-micron 9425712 | |
| Surgical light | Maquet SA, Ardon, France | Blue line 80 | |
| Syringes 5 ml | Braun, Melsungen, Germany | Injekt 4606051V | |
| Tissue forceps 80 mm | Aesculap, Tuttlingen, Germany | OC091R | |
| Tramadol 25 mg/l | Grünenthal, Aachen, Germany | 100mg/ml | |
| Vasofix Safety | Braun, Melsungen, Germany | 4268113S-01 | |
| Vicryl 5-0 | Ethicon, Norderstedt, Germany | V30371 | |
| Visdisic eye ointment | Bausch & Lomb, Berlin, Germany | 3099559 |
References
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