Die Auswertung der Gewebeentwicklung in Fraktur Kallus während Endochondral Knochenheilung ist wichtig, den Heilungsprozess überwachen. Wir berichten hier, die Verwendung von einer Magnetresonanztomographie (MRT)-kompatibel Fixateur externe für die Maus Femur erlauben MRI scans während Knochenregeneration bei Mäusen.
Endochondral Frakturheilung ist ein komplexer Prozess mit der Entwicklung von faserigen, knorpeligen und knöchernen Gewebe in der Fraktur Kallus. Die Menge der verschiedenen Gewebe in der Kallus liefert wichtige Informationen über den Fortschritt der Frakturheilung. Verfügbar in Vivo Techniken, längs der Kallus Gewebeentwicklung in präklinischen Frakturheilung Studien mit kleinen Tieren zu überwachen sind digitale Radiographie und µCT-Bildgebung. Beide Techniken sind jedoch nur in der Lage, zwischen mineralisierten und nicht mineralisierten Gewebe zu unterscheiden. Infolgedessen ist es unmöglich, Knorpel aus fibrösem Gewebe zu unterscheiden. Im Gegensatz dazu Magnetresonanz-Bildgebung (MRI) anatomische Strukturen anhand des Wassergehaltes visualisiert und können daher möglicherweise nicht-invasiv Weichgewebe und Knorpel in der Fraktur Kallus zu identifizieren. Hier berichten wir über die Verwendung von ein MRI-kompatiblen Fixateur externe für die Maus Femur, MRI-Scans während Knochenregeneration bei Mäusen zu ermöglichen. Die Experimente zeigten, dass der Fixateur und eine maßgeschneiderte Montagevorrichtung repetitive MRT-Untersuchungen erlauben damit Längsschnittanalyse von Fraktur-Kallus Gewebeentwicklung.
Sekundäre Frakturheilung ist die häufigste Form der Knochenheilung. Es ist ein komplexer Prozess imitiert bestimmte Aspekte von ontogenic Endochondral Verknöcherung1,2,3. Die frühen Fraktur Hämatom besteht überwiegend aus Immunzellen, Granulierung und Bindegewebe. Wenig Sauerstoff Spannung und biomechanischen Hochstämme Osteoblasten Differenzierung bei den Frakturspalt behindern, sondern fördern die Differenzierung von Vorläuferzellen in Chondrozyten4,5,6. Diese Zellen beginnen sich zu vermehren sich an der Stelle der Verletzung eine knorpelige Matrix bietet Primärstabilität des gebrochenen Knochens zu bilden. Während der Reifung der Kallus, Chondrozyten, hypertrophe, werden unterziehen Apoptose oder Trans-Osteoblasten differenzieren. Neovaskularisation bei der Knorpel-Knochen-Übergangszone bietet erhöhten Sauerstoffgehalt, die Bildung von Knochengewebe7ermöglicht. Nach knöcherne Überbrückung der Frakturspalt, biomechanische Stabilität erhöht und osteoclastic Umbau der externen Fraktur Kallus auftritt, um physiologische Knochen Kontur und Struktur3zu gewinnen. Daher liefern die Mengen von faserigen, knorpeligen und knöchernen Gewebe in der Fraktur Kallus wichtige Informationen über die Knochenheilung Prozess. Gestörte oder verzögerte Heilung wird sichtbar durch Veränderungen der Hornhaut Gewebeentwicklung sowohl bei Menschen und Mäusen8,9,10,11. Verfügbar in Vivo Techniken zur Längsrichtung Kallus Gewebeentwicklung in präklinischen Studien mit kleinen Tieren der Frakturheilung überwachen gehören digitale Radiographie und µCT imaging-12,13. Beide Techniken sind jedoch nur in der Lage, zwischen mineralisierten und nicht mineralisierten Gewebe zu unterscheiden. Im Gegensatz dazu MRT bietet ausgezeichneten Weichgewebe Kontrast und kann daher möglicherweise Weichgewebe und Knorpel in der Fraktur Kallus zu identifizieren.
Bisherige Arbeit zeigte vielversprechende Ergebnisse für Postmortem MRI bei Mäusen mit14 und in Vivo MRT artikuläre Frakturen bei Mäusen während intramembranous Knochendefekt heilende15. Beide Studien gaben auch begrenzte räumliche Auflösung und Gewebe-Kontrast. Wir zeigten zuvor die Machbarkeit der hochauflösenden in Vivo MRT für längs-Beurteilung der weichen Kallus-Bildung während der murinen Endochondral Frakturheilung16. Hier berichten wir über das Protokoll für die Verwendung eines MRI-kompatible externe Fixateur für Femur Osteotomie bei Mäusen um Kallus Gewebeentwicklung längs während der Endochondral Frakturheilung Prozess zu überwachen. Das Design der eine maßgeschneiderte Halterung zum Einschieben der Fixateur externe gewährleistet eine einheitliche Position während der wiederholten Scans.
Modifikationen und Fehlerbehebung:
Das Hauptziel dieser Studie war es, ein Protokoll für die Verwendung von einem MRI-kompatible externe Fixateur für Femur Osteotomie in der Maus mit der Fähigkeit, Kallus Gewebeentwicklung längs während des Endochondral Frakturheilung Prozesses überwachen zu beschreiben. Das Design der eine maßgeschneiderte Halterung zum Einschieben der Fixateur externe gewährleistet eine einheitliche Position während der wiederholten Scans. Halbautom…
The authors have nothing to disclose.
Wir danken Sevil Essig, Stefanie Schroth, Verena Fischer, Katja Prystaz, Yvonne Hägele und Anne Subgang für ausgezeichneten technischen Support. Wir danken auch der Deutschen Forschungsgemeinschaft (CRC1149, INST40/499-1) und der AO Trauma Foundation Deutschland für die Finanzierung dieser Studie.
Anaesthesia tube | FMI, Seeheim, Germany | ZUA-82-ANA-TUB-Mouse | |
Anaesthetic machine | FMI, Seeheim, Germany | ZUA-82-GME-MA | |
Artery forceps | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BH104R | |
Autoclave | Systec, Wettenberg, Germany | DX-150 | |
Autoclaving packaging | Stericlin, Feuchtwangen, Germany | 2301-04/06/10/12/16 | |
Avizo software | FEI, Burlington, USA | – | Version 8.0.1 |
BioSpec 117/16 magnetic resonance imaging system | Bruker Biospin, Ettlingen, Germany | 117/16 | |
Bulldog clamp | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BH 021R | |
Carbon steel scalpel no. 11/15 | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BA211/215 | |
Ceramic mounting pin 0.45 mm | RISystem, Davos, Switzerland | HS691490 | |
Clindamycin (300 mg / 2ml) | Ratiopharm, Ulm, Germany | – | |
Dressing forceps 115 mm | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BD210R | |
Dressing forceps 130 mm | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BD025R | |
Drill bit coated 0.45 mm | RISystem, Davos, Switzerland | HS820420 | |
Durogrip needle holder 125 mm | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BM024R | |
Foliodrape | Hartmann, Heidenheim, Germany | 2513026 | |
Frekaderm | Fresenius, Bad Homburg, Germany | 4928211 | |
Gigli saw 0.44 mm | RISystem, Davos, Switzerland | RIS.590.110.25 | |
Hand drill | RISystem, Davos, Switzerland | RIS.390.130-01 | |
Heating plate | FMI, Seeheim, Germany | IOW-3704 | |
Hygonorm gloves | Hygi, Telgte, Germany | 2706 | |
Isoflurane | Abbot, London, UK | Forene | |
Micro forceps 155 mm | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BD343R | |
Micro scissors 120 mm | Aesculap, Tuttlingen, Germany | FD013R | |
Mouse FixEx L 0.7 mm | RISystem, Davos, Switzerland | RIS.611.300-10 | |
Needle case for drills | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BL911R | |
Needle holder | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BB078R | |
Octenisept | Schülke, Norderstedt, Germany | 121403 | |
Osirix software | Pixmeo SARL, Bernex, Switzerland | – | Version 4.0 |
Oxygen, medical grade | MTI, Ulm, Germany | – | |
Resolon 5/0 | Resorba, Nürnberg, Germany | 88143 | |
Saline 0.9% | Braun, Melsungen, Germany | 3570350 | |
Scalpel handle 125 mm | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BB073R | |
Scissors 150 mm | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BC006R | |
Sealer for autoclave packaging | Hawo GmbH, Obrigheim, Germany | HM500 | |
Sterican 27 G | Braun, Melsungen, Germany | 4657705 | |
Sterile surgical blades no. 11/15 | Aesculap, Tuttlingen, Germany | BB511/515 | |
Surgical gloves | Hartmann, Heidenheim, Germany | Peha-micron 9425712 | |
Surgical light | Maquet SA, Ardon, France | Blue line 80 | |
Syringes 5 ml | Braun, Melsungen, Germany | Injekt 4606051V | |
Tissue forceps 80 mm | Aesculap, Tuttlingen, Germany | OC091R | |
Tramadol 25 mg/l | Grünenthal, Aachen, Germany | 100mg/ml | |
Vasofix Safety | Braun, Melsungen, Germany | 4268113S-01 | |
Vicryl 5-0 | Ethicon, Norderstedt, Germany | V30371 | |
Visdisic eye ointment | Bausch & Lomb, Berlin, Germany | 3099559 |