Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

En rotte Model af Orthotopic levertransplantation ved hjælp af en roman magnetiske anastomose teknik for Suprahepatic Vena Cava genopbygning

Published: March 19, 2018 doi: 10.3791/56933
* These authors contributed equally

Summary

Rekonstruktion af suprahepatic vena cava (SHVC) er fortsat et vanskeligt skridt i rotte orthotopic lever transplantation. I denne artikel viser vi en trinvis protokol for SHVC genopbygning i rotter med en teknik, Roman magnetiske anastomose.

Abstract

Den rotte model af orthotopic lever transplantation (OLT) er afgørende for transplantation forskning. Det er en meget sofistikeret dyremodel og kræver en stejl indlæringskurve. Indførelsen af manchetten teknik til anastomose af Vena (PV) og infrahepatic vena cava (IHVC) har væsentligt forenklet hårtransplantation procedure i rotter. Men på grund af den korte forreste væg af modtagernes suprahepatic vena cava (SHVC), manchet teknik er meget vanskeligt at bruge til genopbygning af SHVC. De fleste forskere på dette område stadig bruge hånd-Sutur teknik for SHVC genopbygning, hvilket gør det flaskehals skridt i rotte orthotopic lever transplantation. Den magnetiske anastomose teknik (dvs, magnamosis) er en metode til at forbinde to fartøjer, som anvender den tiltrækkende kraft mellem to magneter. Vores seneste undersøgelse har vist, at den magnetiske anastomose teknik er overlegen i forhold til hånd-Sutur teknik for SHVC genopbygning i rotter. I denne artikel viser vi en trinvis protokol for SHVC genopbygning i rotter brug af roman magnetiske anastomose teknik. I denne model, blev genopbygningen af PV og IHVC udført af standard manchet teknikken, mens genopbygningen af galdegang (BD) blev udført af en stent teknik. Den hepatiske re arterialization blev ikke udført. Den magnetiske anastomose teknik lettere meget SHVC genopbygning og væsentligt forkortet anphepatic fasen. Efter en rimelig indlæringskurve, kan selv forskere uden avanceret microsurgical færdigheder producere pålidelige og reproducerbare resultater ved hjælp af denne rotte model af OLT.

Introduction

Den rotte model af orthotopic lever transplantation (OLT) er afgørende for transplantation forskning1,2. Den første rotte OLT blev beskrevet af Lee et al. i 19733. I denne model, blev alle fartøjer rekonstrueret af hånd-Sutur teknik. Hånd-Sutur teknik kræver avancerede microsurgical færdigheder, som væsentligt begrænser dets udnyttelse. Siden da, er blevet rapporteret forskellige ændringer til den originale protokol af rotte OLT. Blandt dem, manchet teknik til anastomose af Vena (PV) og infrahepatic vena cava (IHVC) rapporteret af Kamada et al. i 1979 er betragtes som en væsentlig forbedring til denne model, da det væsentligt forenklet genopbygning procedurer4 . Men på grund af den korte forreste væg af modtagernes suprahepatic vena cava (SHVC), manchet teknik er meget vanskeligt at bruge til genopbygning af SHVC. De fleste forskere på dette område stadig bruge hånd-Sutur teknik for SHVC genopbygning, hvilket gør det flaskehals skridt i rotte OLT5,6,7.

Den magnetiske anastomose teknik (dvs, magnamosis) er en metode til at forbinde to skibe eller andre rørformede strukturer ved hjælp af den tiltrækkende kraft mellem to magneter8,9,10,11. Den magnetiske kraft gradvist komprimerer og bygger om vævet ind i en stærk, sutureless anastomose12,13. Denne komprimering anastomose har vist sig for at være effektive i mennesker14,15. Vi har designet et par magnetiske ringe specielt til anastomose af SHVC i rotter. Vores seneste undersøgelse har vist, at den magnetiske anastomose teknik er overlegen i forhold til hånd-Sutur teknik for SHVC genopbygning i rotte OLT16. Formålet med denne artikel er at give en detaljeret, trinvis protokol for SHVC genopbygning i rotter brug af roman magnetiske anastomose teknik.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Protokollen blev gennemført i overensstemmelse med retningslinjerne for pleje og anvendelse af forsøgsdyr og blev godkendt af Udvalget om etik af dyr eksperimenter af Xi'an Jiaotong Universitet, Xi'an, Shaanxi-provinsen, Kina.

Bemærk: Ingen af procedurerne i denne protokol blev udført under en kirurgisk mikroskop.

1. Præoperativ forberedelse

  1. Design og form af de magnetiske ringe (figur 1)
    1. Samle den magnetiske anastomose enhed ved at matche et par neodym-jern-bor magnetiske ringe.
    2. Design ringe efter parametrene i rotte SHVC med en major akse diameter, mindre akse diameter, tykkelse og vægt af 8 mm, 5,5 mm, 1 mm, 0,5 g, henholdsvis.
    3. Kurven ringe til den ønskede form af en wire-elektrode opskæring teknik, og derefter pels de opnåede ringe med en titanium oxid airbrush og sterilisere med 500 mg/L ethylenoxid på 55-60 ° C 6 h.
  2. Manchetter (figur 2)
    1. Forberede manchetten til anastomose af IHVC og PV ved at skære polyethylen rør. Sikre, at selve manchet er 5 mm lang med en 2 mm manchet forlængelse.
      Bemærk: De indre og ydre diameter af PV manchetten er 1,8 og 2,1 mm, mens de af IHVC cuff er 2.6 og 2,8 mm, henholdsvis.
  3. Stent (figur 2)
    1. Forberede stenten anastomose af BD ved skæring 24-G intravenøs kanyle med en længde på 5 mm til at producere drejning i begge ender.
  4. Forsøgsdyr
    1. Brug mandlige Sprague Dawley rotter vejer mellem 250 og 280 g som donorer og modtagere. Sikre at modtageren er den samme vægt eller lidt tungere (< 10 g) end donor.
    2. Holde rotter i klima-kontrollerede værelser med fri adgang til mad og vand før operationen.

2. donor drift

  1. Injicere buprenorphin (0,05 mg/kg) subcutaneously som et smertestillende 1 time før operationen.
  2. Bedøver donor rotte ved isofluran indånding. Brug 5 vol. % isofluran med en væskehastighed på 1,5 L/min i en Plexiglas boks til induktion af anæstesi og 2 vol. % isofluran med en væskehastighed 0,6-0,8 L/min på en kegle maske til vedligeholdelse af anæstesi. Bekræfte dybde af anæstesi ved at udføre en tå knivspids og lidt hud.
  3. Barbere hele abdominal huden af rotte ved hjælp af en elektrisk barbermaskine til renere eksponering. Desinficer den tilsvarende huden med en povidon-jodopløsning.
  4. Åbn bughulen via en korsformet indsnit ved hjælp af kirurgiske saks fra roden af penis udvidelse til 1 cm over xiphisternum langs linea alba, udvidelse fra midtpunktet af den langsgående snit til linjen midaxillary. Exteriorize mave-tarmkanalen til venstre og dække det med våde gaze.
  5. Klemme og træk xiphisternum mod hovedet ved hjælp af en hæmostatisk pincet. Dissekere den falciform ledbånd og bindevæv omkring leveren. Isolere og ligate venstre ringere phrenic vene med en 6-0 silke sutur.
  6. Indsætte en stent i galdegang.
    1. Klemme BD lige over det punkt hvor den gastroduodenale vene tiltræder Vena og trække det for at opretholde en lille spænding ved hjælp af en microforceps. Derefter udføre en "V" indsnit i 1 mm længde på den forreste væg omkring 5 mm proksimalt for galde sammenløbet af en mikro saks.
    2. Indsætte en stent i lumen af galdegang ved hjælp af en buet microforceps. Sørg for mindst et halvt stent ligger udenfor galdegang.
    3. Sikre stent med en 6-0 silke sutur. Skære ene ende af sutur. Holde anden, til at holde under senere anastomose. Transekttællinger galdegang nedenfor stenten og sørg for, at galden kan komme ud af stenten.
  7. Isolere IHVC ned på venstre nyre-vene. Gratis IHVC fra forreste og laterale omkringliggende væv af bomuld bud dissektion, indtil IHVC er skeletteret. Adskille og ligate lige suprarenal venen og højre nyre-vene med en 6-0 silke sutur.
  8. Heparinize rotter ved at indsprøjte 50 U af heparin fortyndet i 2 mL af normale saltopløsning gennem den dorsale vene af penis.
  9. Perfuse leveren.
    1. Isolere den abdominale aorta nedenfor den venstre nyre-vene. Indsæt en 22-G kateter i aorta.
    2. Udføre en torakotomi, klemme torakal aorta ved hjælp af en microforceps.
    3. Perfuse donor leveren via kateter i aorta med 20 mL af normale saltopløsning indeholdende 25 U af heparin (4 ° C) med en hastighed på 3 mL/min. med en infusion pumpe. I mellemtiden skæres vena cava under højre nyre-vene til at tillade perfusion løsning til at flyde ud af leveren.
    4. Transekttællinger SHVC sammen med en del af mellemgulvet og IHVC på niveau med den venstre nyre-vene, når donor leveren blev blege.
  10. Dissekere bindevæv omkring PV af to mikro pincet. Ligate og opdele pylorus venerne med en 8-0 prolene sutur. Transekttællinger PV på niveau med den milt vene. Punktafgifter donor leveren og skyl det med kolde normale saltopløsning. Sted det i et koldt saltvand bad 4 ° C.

3. graft forberedelse

Bemærk: Alle procedurerne for leveren graft forberedelse udføres i et koldt saltvand bad ved 4 ° C.

  1. Vedhæfte en manchet til donorens IHVC (figur 3).
    1. Indsætte IHVC i sin manchet med filtypenavnet manchet peger mod leveren. Placer filtypenavnet manchet på den bageste væg IHVC. Fix manchet udvidelse og IHVC med en buet microforceps, selve fastgjort ved hjælp af en fil klip til objektbeholderen bad.
    2. Evert den distale ende af IHVC over manchet kroppen ved hjælp af to mikro pincet.
    3. Sikre kanten med en 6-0 silke sutur. Sørg for, at IHVC ikke er snoet i løbet af processen.
  2. Gentag trin 3.1 på PV til at vedhæfte en manchet til donorens PV.
  3. Vedhæfte en magnetisk ring til donorens SHVC (figur 4).
    1. Træk mellemgulvet gennem de fire pincet og trim SHVC.
    2. Passere SHVC igennem den magnetiske ring ved hjælp af titanium-legering mikro pincet.
    3. Evert den distale ende af SHVC over ringen.
    4. Sikre ring med en 6-0 silke sutur. Sørg for, at SHVC ikke er snoet i løbet af processen.
    5. Fjern overskydende mellemgulvet omkring leveren.
  4. Fordyb donor leveren i et koldt normale saltvand bad og opbevares ved 4 ° C.

4. modtageren drift

Bemærk: Graft implantation i den modtagende rotte skema er vist i figur 5.

  1. Injicere buprenorphin (0,05 mg/kg) subcutaneously som et smertestillende 1 time før operationen. Bedøver donor rotte ved isofluran indånding. Brug 5 vol. % isofluran med en væskehastighed på 1,5 L/min i en Plexiglas boks til induktion af anæstesi og 2 vol. % isofluran med en væskehastighed 0,6-0,8 L/min på en kegle maske til vedligeholdelse af anæstesi.
  2. Barbere hele abdominal huden af rotten. Desinficer den tilsvarende huden med en povidon-jodopløsning.
  3. Åbn bughulen via en 4 cm midterlinjen indsnit. Placer de abdominale retraktorer. Trække ribben så langt fra hinanden som muligt fra midterlinjen.
  4. Klemme og træk xiphisternum mod hovedet ved hjælp af en hæmostatisk pincet. Dissekere bindevæv og ledbånd omkring leveren. Ligate og opdele den hepato-esophageal ligament. Ligate og dele af hepatisk arterie med en 8-0 prolene sutur.
  5. Isolere fælles galdegang fra den første hepatisk portal. Placer en 6-0 silke sutur omkring fælles galdegang lige under sin division og ligate fælles galdegang.
  6. Dissekere IHVC ned til højre nyre-vene. Ligate og splitte den højre binyre vene. Placer en rem i SHVC i leveren.
  7. Spænd IHVC lige over højre nyre-vene med microvessel klip. Klemme PV på niveau med den pylorus vene med microvessel klip.
    1. Til at skylle blod ud af leveren, langsomt injicere 2 mL af normale saltvand gennem PV. Træk ned i leveren ved at trække den tidligere indsatte strop. Klemme SHVC og en del af membranen med en Satinsky klemme.
    2. Transekttællinger IHVC tæt på parenkym og PV på porta hepatis. Punktafgifter leveren af transecting SHVC lige over leveren. Fjerne den modtagende leveren hurtigt.
  8. Vedhæfte en magnetisk ring til modtagerens SHVC.
    1. Indsæt en magnetisk ring modtagerens resterende SHVC.
    2. Løse den magnetiske ring på en Satinsky klemme ved magnetisk tiltrækning.
    3. Evert SHVC over den magnetiske ring, indtil fartøjet dækker kanten af ringen.
  9. Placer donor lever graft orthotopically og dække det med en kold våd gaze.
  10. Fyld lumen af donorens og modtagerens SHVCs med normal saltopløsning. Fjerne luftbobler grundigt for at forhindre luft emboli. Udfør SHVC genopbygning ved at koble de magnetiske ringe indlejret i donors og modtagers SHVC sammen gennem magnetisk kraft.
  11. Rekonstruere PV.
    1. Tarmkanalen den højre og venstre gren af modtagerens PV ved at trække en 8-0 prolene sutur at fastholde spændingen i PV.
    2. Flytte klemme af modtagerens PV ned fra pylorus vene til milt vene for at udsætte venen fuldt ud.
    3. Incise den forreste væg af modtageren. Fyld lumen af PV med normal saltopløsning.
    4. Hold en manchet udvidelse af donorens PV med en buet pincet.
    5. Indsæt manchet kroppen af donorens PV i modtagerens PV samtidig holde rødmen PV lumen med normal saltvand.
    6. Fastgør det med en omkredsen 6-0 silke ligatur. Genoprette blodtilførslen til graft leveren ved at frigive klemmerne på PV og SHVC.
  12. Gentag trin 4.11 på IHVC til at rekonstruere IHVC.
  13. Rekonstruere galdegang ved en stent teknik.
    1. Incise en "V" på den forreste væg af den modtagende fælles galdegang.
    2. Indsætte donor stent i lumen af modtageren BD og ordne det med en 6-0 silke omkredsen sutur. Samle suturer på to galdegangene og binde sutur for at skabe BD tæt på hinanden.
    3. Wrap omentum væv omkring Anastomotiske stedet at forhindre galde lækage.
  14. Overrisle bughulen med varm normal saltopløsning. Luk maven indsnit i to lag med en løbende 3-0 ikke-resorberbare kirurgiske sutur.
  15. Administrere 16 mg/kg cefuroxim (et antibiotikum) og 0,05 mg/kg buprenorphin (et smertestillende) ved subkutan injektion efter operationen straks.
  16. Placere rotten i en ren bur og giver mulighed for mad og vand ad libitum.
  17. Indsprøjtes cefuroxim (16 mg/kg) og buprenorphin (0,05 mg/kg) i bughulen hver 12 timer til 3 dage.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Efter ca. 10 forsøg, blev magnetiske anastomose teknik for SHVC genopbygning med held beherskes af en forsker, der ikke havde nogen forudgående microsurgical uddannelse. Genopbygningen af SHVC tog mindre end 2 min. Anhepatic fasen for de modtagende rotter var ca 10 min. Ingen blodprop, blødning eller angiostegnosis blev observeret på webstedet SHVC Anastomotiske 1, 5 og 30 dage efter reperfusion. Den ringere vena cavography blev udført på 2 uger efter transplantation. Som vist i figur 6, magnetiske ringene var intakt, og blodgennemstrømningen var patent gennem SHVC anastomose. Efter transplantation overlevelsesraten var 95% på dag 1, 90% på dag 3, og 85% på dage 7-30 (figur 7).

Figure 1
Figur 1 : Design (A) og foto (B) af den magnetiske ring til anastomose af SHVC.
SHVC: suprahepatic vena cava.  Venligst klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 2
Figur 2 : Manchetter og stent til anastomose af IHVC (A), PV (B) og BD (C).
IHVC: infrahepatic vena cava; PV: portal vene; BD: galdegang. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 3
Figur 3 : Skemaet for manchet anastomose af IHVC og PV. Indsæt IHVC eller PV i en manchet (A); Evert den distale ende af IHVC eller PV over manchet kroppen ved hjælp af to microforceps (B); Sikre kanten med en 6-0 silke sutur (C); Indsæt manchet kroppen af donorens IHVC eller PV i modtagerens IHVC eller PV (D).
IHVC: infrahepatic vena cava; PV: portal vene. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 4
Figur 4 : Skemaet for den magnetiske anastomose af SHVC. Passere SHVC igennem en magnetisk ring ved hjælp af titanium-legering microforceps (A); Evert den distale ende af SHVC over ring (B); Sikre ring med en 6-0 silke sutur (C). Par magnetiske ringene indlejret i donors og modtagers SHVC sammen gennem magnetisk kraft (D).
SHVC: suprahepatic vena cava. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 5
Figur 5 : Skemaet for graft implantation i den modtagende rotte. Genopbygning af SHVC: magnetisk anastomose; Rekonstruktion af IHVC og PV: manchet anastomose; Genopbygning af BD: stent anastomose. Genopbygning af HA: ikke udføres.
SHVC: suprahepatic vena cava; IHVC: infrahepatic vena cava; PV: portal vene; BD: galdegang; HA: hepatisk arterie. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 6
Figur 6 : Ringere vena cavography af rotte på 2 uger efter transplantation. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 7
Figur 7 : Repræsentative overlevelse kur efter transplantation. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Mange kliniske skrider frem i levertransplantation kan henføres til dyreforsøg. Rotte OLT er en udbredt og godt accepterede model i forskning af orgel bevarelse, transplantation immunologi, fysiologi og patologi. Men det er også en meget kompliceret procedure og kræver avancerede microsurgical færdighed. Trods mange forbedringer i proceduren af rotte OLT forblev SHVC anastomose et udfordrende skridt. I denne artikel vil beskrive vi en roman magnetiske anastomose teknik for SHVC genopbygning i rotte OLT. Anvendelsen af denne teknik reduceret tid til SHVC genopbygning til mindre end 2 min og anhepatic fasen af rotte OLT til ca 10 min. Vi mener, at denne teknik har store konsekvenser i hårtransplantation forskning.

Den kritiske trin i brug af denne magnetiske anastomose teknik til genopbygningen af SHVC er at knytte de magnetiske ringe til donors og modtagers SHVC. Hver forsigtighed bør anvendes til at undgå at vride SHVC. Desuden, når du tilslutter to magnetiske ringene, luftbobler i SHVC bør fjernes grundigt.

Der er visse begrænsninger i benytter indeværende teknik. Nogle stammer af rotter som Fischer-344 rotter og Buffalo rotter har en ekstremt kort SHVC. Det er umuligt at vedhæfte den magnetiske ring til deres SHVC. De er således ikke egnet til denne teknik. Dog, denne teknik kan let anvendes for OLT i de fleste stammer af rotter herunder Sprague Dawley rotter, Lewis rotter og brun Norge rotter. Magnetiske ringe kan interferere med magnetisk resonans imaging (MR) scan. Derfor, denne magnetiske anastomose teknik kan ikke bruges, hvis en MR-scanning eksamen er nødvendig for eksperimentet.

Resumé muliggør magnetiske anastomose teknik nem og hurtig SHVC genopbygning i rotter. Efter en rimelig indlæringskurve, kan selv forskere uden avanceret microsurgical færdigheder producere pålidelige og reproducerbare resultater ved hjælp af denne rotte model af OLT.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Forfatterne har ikke noget at oplyse.

Acknowledgments

Dette arbejde blev støttet af tilskud fra den Ministeriet for uddannelse Innovation Team udvikling Program i Kina (nr. IRT16R57), National Natural Science Foundation i Kina (nr. 81470896), og en forskning fond for unge Talent rekruttering planer af Xi'an Jiaotong Universitet (RW).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Anesthesia Machine Harvard  tabletop Animal anaesthesia
PLX7000B HF Mobile Digital C-arm System Perlong Medical PLX7000B It is mainly used for the angiography and photography of various operations
Syringe Pump Mindray BeneFusion SP5 intravenous infusion
Isoflurane RWD life Science Co. anesthetic:for the induction and maintenanceof anesthesia
iohexol Shanghai General Pharmaceutical Co  intravascular contrast media  
heparin sodium injection SPH No.1 Biochemical & Pharmaceutical Co., LTD   prevent the formation of thrombosis 
cefuroxime  Glaxo Operations UK Limited  an antibiotic
buprenorphine  TIPR Pharmaceutical Responsible Co.,Ltd an analgesic
curved microforceps Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. W40350 surgical tool
hemostatic forceps(straight) Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. J31010 surgical tool
hemostatic forceps(curved) Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. J31020 surgical tool
Satinsky clamp Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. XEC050 surgical tool
needle holder Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. J32010 surgical tool
microneedle holder Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. WBA040 surgical tool
notched forceps Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. J42010 surgical tool
tissue forceps(with hook) Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. J41010 surgical tool
tissue scissor Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. Y00040 surgical tool
surgical scissors Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. Y00030 surgical tool
micro scissors Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. MR-S121T surgical tool
microvessel clips Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. XEC240 surgical tool
straight microforceps(titanium alloy) Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. WCC010 surgical tool
curved microforceps  (titanium alloy) Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. WCC020 surgical tool

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Aller, M. A., et al. A half century (1961-2011) of applying microsurgery to experimental liver research. World journal of hepatology. 4, 199-208 (2012).
  2. Aller, M. A., et al. The value of microsurgery in liver research. Liver international : official journal of the International Association for the Study of the Liver. 29, 1132-1140 (2009).
  3. Lee, S., Charters, A. C., Chandler, J. G., Orloff, M. J. A technique for orthotopic liver transplantation in the rat. Transplantation. 16, 664-669 (1973).
  4. Kamada, N., Calne, R. Y. Orthotopic liver transplantation in the rat. Technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage. Transplantation. 28, 47-50 (1979).
  5. Oldani, G., Lacotte, S., Morel, P., Mentha, G., Toso, C. Orthotopic liver transplantation in rats. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2012).
  6. Nagai, K., Yagi, S., Uemoto, S., Tolba, R. H. Surgical procedures for a rat model of partial orthotopic liver transplantation with hepatic arterial reconstruction. Journal of visualized experiments : JoVE. , e4376 (2013).
  7. Liu, X., He, C., Huang, T., Gu, J. Development of a New Technique for Reconstruction of Hepatic Artery during Liver Transplantation in Sprague-Dawley Rat. PloS one. 10, e0145662 (2015).
  8. Jamshidi, R., Stephenson, J. T., Clay, J. G., Pichakron, K. O., Harrison, M. R. Magnamosis: magnetic compression anastomosis with comparison to suture and staple techniques. Journal of pediatric surgery. 44, 222-228 (2009).
  9. Pichakron, K. O., et al. Magnamosis II: Magnetic compression anastomosis for minimally invasive gastrojejunostomy and jejunojejunostomy. Journal of the American College of Surgeons. 212, 42-49 (2011).
  10. Gonzales, K. D., et al. Magnamosis III: delivery of a magnetic compression anastomosis device using minimally invasive endoscopic techniques. Journal of pediatric surgery. 47, 1291-1295 (2012).
  11. Wall, J., et al. MAGNAMOSIS IV: magnetic compression anastomosis for minimally invasive colorectal surgery. Endoscopy. 45, 643-648 (2013).
  12. Xue, F., et al. Choledochojejunostomy with an innovative magnetic compressive anastomosis: How to determine optimal pressure? World journal of gastroenterology. 22, 2326-2335 (2016).
  13. Yan, X., et al. Portacaval shunt established in six dogs using magnetic compression technique. PloS one. 8, e76873 (2013).
  14. Dorman, R. M., Vali, K., Harmon, C. M., Zaritzky, M., Bass, K. D. Repair of esophageal atresia with proximal fistula using endoscopic magnetic compression anastomosis (magnamosis) after staged lengthening. Pediatric surgery international. 32, 525-528 (2016).
  15. Russell, K. W., Rollins, M. D., Feola, G. P., Scaife, E. R. Magnamosis: a novel technique for the management of rectal atresia. BMJ case reports. , (2014).
  16. Shi, Y., et al. Magnetic ring anastomosis of suprahepatic vena cava: novel technique for liver transplantation in rat. Transplant international : official journal of the European Society for Organ Transplantation. 28, 89-94 (2015).

Tags

Medicin sag 133 dyremodel Rat Orthotopic levertransplantation magnetiske anastomose magnetisk Ring Suprahepatic Vena Cava genopbygning kirurgi
En rotte Model af Orthotopic levertransplantation ved hjælp af en roman magnetiske anastomose teknik for Suprahepatic Vena Cava genopbygning
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Yang, L., Lu, J., Wang, Y., Zhang,More

Yang, L., Lu, J., Wang, Y., Zhang, M., Shi, Y., Wei, S., Liu, P., Wu, Z., Lv, Y., Wu, R. A Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation Using a Novel Magnetic Anastomosis Technique for Suprahepatic Vena Cava Reconstruction. J. Vis. Exp. (133), e56933, doi:10.3791/56933 (2018).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter