Summary
Rekonstruktionen av suprahepatic vena cava (SHVC) är fortfarande ett svårt steg i råtta ortotop lever transplantation. I den här artikeln visar vi ett stegvisa protokoll för SHVC återuppbyggnad i råttor med en roman magnetiska anastomos teknik.
Abstract
En råtta modell av ortotop lever transplantation (OLT) är viktigt för transplantation forskning. Det är en mycket sofistikerad djurmodell och kräver en brant inlärningskurva. Införandet av manschetten tekniken för anastomos portvenen (PV) och infrahepatic vena cava (IHVC) har avsevärt förenklat förfarandet transplantation hos råttor. Men, på grund av den korta främre väggen i mottagarnas suprahepatic vena cava (SHVC), manschetten tekniken är mycket svåra att använda för återuppbyggnaden av SHVC. De flesta forskare inom detta område fortfarande använda hand-sutur teknik för SHVC återuppbyggnad, vilket gör det steget flaskhals i råtta ortotop lever transplantation. Magnetiska anastomos tekniken (dvs., magnamosis) är en metod för att ansluta två fartyg som använder den attraktiv kraften mellan två magneter. Vår senaste studie har visat att magnetiska anastomos teknik är överlägsen den hand-sutur tekniken för SHVC återuppbyggnad i råttor. I den här artikeln visar vi ett stegvisa protokoll för SHVC återuppbyggnad i råttor med romanen magnetiska anastomos tekniken. I denna modell utfördes återuppbyggnaden av PV och IHVC med standard manschetten teknik, medan återuppbyggnaden av gallgången (BD) utfördes av en stent-teknik. Den nedsatt re arterialization utfördes inte. Magnetiska anastomos tekniken gjort SHVC rekonstruktion mycket lättare och betydligt förkortas den anphepatic fasen. Efter en rimlig inlärningskurva, kan rentav som forskare utan avancerad mikrokirurgisk kompetens ge tillförlitliga och reproducerbara resultat med denna råtta modell av OLT.
Introduction
En råtta modell av ortotop lever transplantation (OLT) är viktigt för transplantation forskning1,2. Den första rat OLT beskrevs av Lee et al. 19733. I denna modell rekonstruerades alla fartyg med hand-sutur teknik. Den hand-sutur tekniken kräver avancerad mikrokirurgisk kompetens, som avsevärt begränsar dess utnyttjande. Sedan dess har har olika ändringar av den ursprungliga protokollet av råtta OLT rapporterats. Bland dem anses manschetten tekniken för anastomos portvenen (PV) och infrahepatic vena cava (IHVC) rapporterats av Kamada et al. 1979 en stor förbättring av denna modell, eftersom det avsevärt förenklat återuppbyggnad förfarandena4 . Men, på grund av den korta främre väggen i mottagarnas suprahepatic vena cava (SHVC), manschetten tekniken är mycket svåra att använda för återuppbyggnaden av SHVC. De flesta forskare inom detta område fortfarande använda hand-sutur teknik för SHVC återuppbyggnad, vilket gör det steget flaskhals i råtta OLT5,6,7.
Magnetiska anastomos tekniken (dvs., magnamosis) är en metod för att ansluta två fartyg eller andra rörformiga strukturer som använder den attraktiv kraften mellan två magneter8,9,10,11. Den magnetiska kraften gradvis komprimerar och remodels vävnaden in i en stark, sutureless anastomos12,13. Denna komprimering anastomos har visat sig vara effektiva i människor14,15. Vi har designat ett par magnetiska ringar specifikt för anastomos av SHVC hos råttor. Vår senaste studie har visat att magnetiska anastomos teknik är överlägsen den hand-sutur tekniken för SHVC återuppbyggnad i råtta OLT16. Syftet med denna artikel är att ge en detaljerad, steg för steg-protokollet för SHVC återuppbyggnad i råttor med romanen magnetiska anastomos tekniken.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Protokollet har genomförts i enlighet med riktlinjerna för vård och användning av försöksdjur och godkändes av kommittén för den etik av djur experiment av Xi'an Jiaotong University, Xi'an, Shaanxi-provinsen, Kina.
Obs: Ingetdera av förfarandena i detta protokoll utfördes under ett kirurgiskt Mikroskop.
1. preoperativ förberedelse
- Design och form av de magnetiska ringarna (figur 1)
- Montera magnetiska anastomos enheten genom att matcha ett par neodym-järn-bor magnetiska ringar.
- Design ringar enligt parametrarna för råtta SHVC med större axel diameter, mindre axel diameter, tjocklek och vikt av 8 mm, 5,5 mm, 1 mm, 0,5 g, respektive.
- Kurva ringarna till önskad form av en tråd-elektrod styckning teknik, och sedan belägga de erhållna ringarna med en Titan oxid airbrush och sterilisera med 500 mg/L etylenoxid vid 55-60 ° C för 6 h.
- Ärmslut (figur 2)
- Förbereda manschetten för anastomos IHVC och PV genom att skära polyeten röret. Se till att manschetten kroppen är 5 mm lång med en 2 mm manschetten förlängning.
Obs: De inre och yttre diametrarna av PV manschetten är 1,8 och 2,1 mm, medan de av IHVC manschetten är 2.6 och 2.8 mm, respektive.
- Förbereda manschetten för anastomos IHVC och PV genom att skära polyeten röret. Se till att manschetten kroppen är 5 mm lång med en 2 mm manschetten förlängning.
- Stenten (figur 2)
- Förbereda stenten för anastomos av BD genom styckning 24-G intravenös kanyl med en längd av 5 mm att producera vinkling i båda ändar.
- Försöksdjur
- Använda manliga Sprague Dawley-råttor som väger mellan 250 och 280 g som givare och mottagare. Se till att mottagaren är samma vikt eller något tyngre (< 10 g) än givaren.
- Hålla råttorna i klimat-kontrollerade rum med fri tillgång till mat och vatten innan operation.
2. givare drift
- Injicera buprenorfin (0,05 mg/kg) subkutant som smärtstillande medel 1 timme före operationen.
- Söva givare råtta av isofluran inandning. Använd 5 vol % isofluran med en flödeshastighet på 1,5 L/min i en Plexiglas ruta för induktion av anestesi och 2 vol % isofluran flödeshastighet 0,6-0,8 L/min på en kon mask för underhåll av anestesi. Bekräfta djup anestesi genom att utföra en tå nypa och en hud nypa.
- Raka hela bukhuden råttans använda en rakapparat som möjliggör renare exponering. Desinficera motsvarande huden med en povidon-jodlösning.
- Öppna bukhålan via en korsformad snitt med kirurgisk sax från roten av penis sträcker sig till 1 cm ovanför xiphisternum längs linea alba, utvidga från mittpunkten av det längsgående snittet till raden midaxillary. Exteriorize mag-tarmkanalen till vänster och täck den med våt kompress.
- Klämma och dra i xiphisternum mot huvudet med en hemostatiska pincett. Dissekera den falciform ligamentet och bindväv runt levern. Isolera och ligera vänster sämre phrenic venen med en 6-0 silk sutur.
- Infoga stenten i gallgången.
- Klämma BD precis ovanför den punkt där den gastroduodenala ven ansluter till portalen ven och dra det för att behålla lite spänning med hjälp av en microforceps. Sedan utföra ett ”V” snitt av 1 mm längd på den främre väggen ca 5 mm proximalt biliär sammanflödet av en mikro sax.
- Infoga stenten i lumen av gallgången med en böjd microforceps. Kontrollera att minst en halv av stent ligger utanför gallgången.
- Säkra stenten med en 6-0 silk sutur. Skär ena änden av suturen. Håll den andra en till håll under senare anastomos. Transekt gallgången nedanför stenten och kontrollera att gallan kan komma ut av stenten.
- Isolera IHVC nivån i vänster nedsatt ven. Gratis IHVC från främre och laterala omgivande vävnader av bomull knopp dissektion tills IHVC är skeletterad. Separata och ligera just suprarenal venen och den rätt njurvenen med en 6-0 silk sutur.
- Heparinize råtta genom att injicera 50 U av heparin utspätt i 2 mL normal saltlösning genom dorsala venen av penis.
- BEGJUTA levern.
- Isolera bukaorta nedanför den vänster nedsatt ven. Infoga en 22-G kateter i aorta.
- Utföra en torakotomi, klämma den aorta som använder en microforceps.
- BEGJUTA givare levern genom katetern i aorta med 20 mL normal koksaltlösning innehållande 25 U av heparin (4 ° C) med en hastighet av 3 mL/min med en infusionspump. Under tiden skär vena cava nedanför den rätt njurvenen till att perfusion lösningen rinna ut ur levern.
- Transekt i SHVC tillsammans med delen av membranet och IHVC i nivå med den vänster nedsatt ven när givare levern blev blek.
- Dissekera den bindväv som omger PV av två micro pincett. Ligera och dela pyloric venerna med en 8-0 prolene sutur. Transekt PV på nivån av mjälten ven. Punktskatt givare levern och skölj med kallt normal koksaltlösning. Plats det i en kall saltlösning bad 4 ° C.
3. graft förberedelse
Obs: Alla procedurer för levern transplantat beredning utförs i ett kallt saline bad vid 4 ° C.
- Bifoga en manschett till givarens IHVC (figur 3).
- Infoga IHVC i dess manschetten med manschetten förlängning pekar mot levern. Position på den bakre väggen manschetten förlängningen av IHVC. Fixa tillägget manschetten och IHVC med en krökt microforceps sig fäst med ett fil-klipp till behållaren för bad.
- Evert den distala änden av IHVC över manschetten kroppen med hjälp av två micro pincett.
- Säkra kanten med en 6-0 silk sutur. Kontrollera IHVC inte vrids under processen.
- Upprepa steg 3.1 på PV bifoga en manschett till givarens PV.
- Bifoga en magnetiska ring till givarens SHVC (figur 4).
- Dra membranet genom fyra tången och trimma SHVC.
- Passera SHVC genom magnetiska ringen använder titanlegering micro tången.
- Evert den distala änden av SHVC över ringen.
- Säkra i ringen med en 6-0 silk sutur. Kontrollera SHVC inte vrids under processen.
- Ta bort överflödigt membranet runt levern.
- Fördjupa givare levern i ett kallt normal koksaltlösning bad och förvaras vid 4 ° C.
4. mottagarens drift
Obs: Schemat för transplantat implantation i mottagarens råtta visas i figur 5.
- Injicera buprenorfin (0,05 mg/kg) subkutant som smärtstillande medel 1 timme före operationen. Söva givare råtta av isofluran inandning. Använd 5 vol % isofluran med en flödeshastighet på 1,5 L/min i en Plexiglas ruta för induktion av anestesi och 2 vol % isofluran flödeshastighet 0,6-0,8 L/min på en kon mask för underhåll av anestesi.
- Raka hela bukhuden råttans. Desinficera motsvarande huden med en povidon-jodlösning.
- Öppna bukhålan via en 4 cm mittlinjen snitt. Placera de buk upprullningsdon. Dra revbenen så långt från varandra som möjligt från mittlinjen.
- Klämma och dra i xiphisternum mot huvudet med en hemostatiska pincett. Dissekera den bindväv och ligament runt levern. Ligera och dividera den hepato-esofagus ligamentet. Ligera och dividera den hepatiska artären med en 8-0 prolene sutur.
- Isolera den gemensamma gallgången från första nedsatt portal. Placera en 6-0 silk sutur runt gallgången precis nedanför sin division och ligera gallgången.
- Dissekera IHVC ner till den rätt njurvenen. Ligera och dela höger binjure venen. Placera en rem i SHVC i levern.
- Klämma på IHVC strax ovanför den rätt njurvenen med microvessel klipp. Klämma PV på nivån av pyloric ven med microvessel klipp.
- För att spola blodet ur levern, injicera långsamt 2 mL fysiologisk koksaltlösning via PV. Dra ned levern genom att dra tidigare placerade remmen. Klämma de SHVC och delen av membranet med en Satinsky klämma.
- Transekt IHVC nära parenkymet och PV på den porta hepatis. Punktskatt levern av transecting i SHVC strax ovanför levern. Ta bort mottagare levern snabbt.
- Bifoga en magnetiska ring till mottagarens SHVC.
- Infoga mottagarens återstående SHVC i en magnetisk ring.
- Fastställa den magnetiska ringen på en Satinsky klämma av magnetiska attraktion.
- Evert SHVC över magnetiska ringen tills fartyget täcker kanten av ringen.
- Placera den givare levern transplantat orthotopically och täcka det med en kall våt kompress.
- Fyll lumen av givarens och mottagarens SHVCs med normal saltlösning. Avlägsna luftbubblor noggrant för att undvika luftemboli. Slutför SHVC återuppbyggnaden av koppling de magnetiska ringarna inbäddad i den givarens och mottagarens SHVC tillsammans med magnetkraft.
- Rekonstruera PV.
- Tarmkanalen den högra och vänstra grenen av mottagarens PV genom att dra en 8-0 prolene sutur att upprätthålla spänningen av PV.
- Flytta klämman av mottagarens PV ner från pylorus venen till mjälten venen för att exponera venen fullt.
- Incisionsfilm den främre väggen i mottagaren. Fyll lumen av PV med normal saltlösning.
- Håll manschetten förlängning av givarens PV med en böjd pincett.
- Infoga manschetten kroppen av givarens PV i mottagarens PV samtidigt hålla spolning PV lumen med fysiologisk koksaltlösning.
- Säkra den med en omkretsriktningen 6-0 silk ligatur. Återupprätta blodflödet till transplantat levern genom att släppa klämmorna på PV och SHVC.
- Upprepa steg 4.11 på IHVC att rekonstruera IHVC.
- Rekonstruera gallgången genom en stent-teknik.
- Incisionsfilm en V-på den främre väggen i mottagarens gallgången.
- Infoga givare stenten i lumen mottagarens BD och fixa det med en 6-0 silk omkretsriktningen sutur. Dra suturerna på två gallgångarna ihop och knyta suturerna för att föra BD nära varandra.
- Linda omentum vävnad runt anastomotic platsen för att förhindra galla läcka.
- Vattna bukhålan med varma normal saltlösning. Nära buken snittet i två lager med en kontinuerlig 3-0 icke-resorberbara kirurgiska suturer.
- Administrera 16 mg/kg cefuroxim (ett antibiotikum) och 0,05 mg/kg buprenorfin (ett smärtstillande medel) subkutant efter operationen omedelbart.
- Placera råtta i en ren bur och ge mat och vatten ad libitum.
- Injicera cefuroxim (16 mg/kg) och buprenorfin (0,05 mg/kg) i bukhålan varje 12 timmar under 3 dagar.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Efter ca 10 försök, var magnetiska anastomos tekniken för SHVC återuppbyggnad framgångsrikt behärskas av en forskare som hade ingen tidigare mikrokirurgisk utbildning. Återuppbyggnaden av SHVC tog mindre än 2 min. Den anhepatic fasen för mottagarens råttorna var cirka 10 min. Ingen trombos, blödning eller angiostegnosis observerades vid SHVC anastomotic platsen 1, 5 och 30 dagar efter reperfusion. Den sämre vena cavography utfördes på 2 veckor efter transplantation. I figur 6visas de magnetiska ringarna var intakt, och blodflödet var patent genom SHVC anastomos. Överlevnaden efter transplantation var 95% på dag 1, 90% vid dag 3, och 85% vid dagar 7 till 30 (figur 7).
Figur 1 : Design (A) och (B) foto av den magnetiska ringen för anastomos av SHVC.
SHVC: suprahepatic vena cava. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 2 : Ärmslut och stenten för anastomos av IHVC (A), PV (B) och BD (C).
IHVC: infrahepatic vena cava; PV: portalen ven; BD: gallgången. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 3 : Schemat för manschetten anastomos IHVC och PV. Infoga IHVC eller PV i en manschett (A). Evert den distala änden av IHVC eller PV över manschetten kroppen med hjälp av två microforceps (B). Säkra kanten med en 6-0 silk sutur (C). Infoga manschetten kroppen av givarens IHVC eller PV i mottagarens IHVC eller PV (D).
IHVC: infrahepatic vena cava; PV: portalen ven. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 4 : Schemat för magnetiska anastomos av SHVC. Passera SHVC genom en magnetiska ring använder den titanlegering microforceps (A). Evert den distala änden av SHVC över ringen (B). Säkra i ringen med en 6-0 silk sutur (C). Par de magnetiska ringarna inbäddad i den givarens och mottagarens SHVC tillsammans med magnetkraft (D).
SHVC: suprahepatic vena cava. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 5 : Schemat för transplantat implantation i mottagarens råtta. Rekonstruktion av SHVC: magnetiska anastomos; Rekonstruktion av IHVC och PV: manschetten anastomos; Rekonstruktion av BD: stent anastomos. Rekonstruktion av HA: inte utförs.
SHVC: suprahepatic vena cava; IHVC: infrahepatic vena cava; PV: portalen ven; BD: gallgången; HA: levern artär. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 6 : Sämre vena cavography av råtta vid 2 veckor efter transplantation. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 7 : Representativa överlevnad botemedel efter transplantation. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Många kliniska fortskrider i levertransplantation kan tillskrivas djurstudier. Rat OLT är en allmänt använd och väl accepterad modell i forskningen av orgel bevarande, transplantation, fysiologi och patologi. Men det är också en mycket komplicerad procedur och kräver avancerad mikrokirurgisk skicklighet. Trots många förbättringar i förfarandet av råtta OLT förblev SHVC anastomos ett utmanande steg. I den här artikeln beskriver vi en roman magnetiska anastomos teknik för SHVC återuppbyggnad i råtta OLT. Tillämpningen av denna teknik minskar tiden för SHVC återuppbyggnad till mindre än 2 min och den anhepatic fasen av råtta OLT till ca 10 min. Vi tror att denna teknik har stor betydelse i transplantation forskning.
Det kritiska steget i med denna magnetiska anastomos teknik för återuppbyggnaden av SHVC är att fästa de magnetiska ringarna till givarens och mottagarens SHVC. Varje försiktighet bör iakttas för att undvika vridning i SHVC. Dessutom när du ansluter två magnetiska ringar, bör luftbubblor i SHVC avlägsnas noggrant.
Det finns vissa begränsningar med att använda denna teknik. Vissa stammar av råttor som Fischer-344 råttor och Buffalo råttor har en extremt kort SHVC. Det är omöjligt att fästa den magnetiska ringen till deras SHVC. Således är de inte lämpliga för denna teknik. Men kan denna teknik lätt tillämpas för OLT i de flesta stammar av råttor inklusive Sprague Dawley-råttor, Lewis råttor och brun Norge råttor. Magnetiska ringar kan interferera med magnetisk resonanstomografi (MRT) scan. Därför kan inte denna magnetiska anastomos teknik användas om det krävs en Mr-examen för experimentet.
Sammanfattningsvis möjliggör magnetiska anastomos tekniken enkel och snabb SHVC återuppbyggnad hos råttor. Efter en rimlig inlärningskurva, kan rentav som forskare utan avancerad mikrokirurgisk kompetens ge tillförlitliga och reproducerbara resultat med denna råtta modell av OLT.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Författarna har något att avslöja.
Acknowledgments
Detta arbete stöds av bidrag från ministeriet för utbildning Innovation Team utveckling Program i Kina (nr. IRT16R57), National Natural Science Foundation Kina (nr. 81470896) och en forskning fond för ung talang rekrytera planer av Xi'an Jiaotong University (RW).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Anesthesia Machine | Harvard | tabletop | Animal anaesthesia |
| PLX7000B HF Mobile Digital C-arm System | Perlong Medical | PLX7000B | It is mainly used for the angiography and photography of various operations |
| Syringe Pump | Mindray | BeneFusion SP5 | intravenous infusion |
| Isoflurane | RWD life Science Co. | anesthetic:for the induction and maintenanceof anesthesia | |
| iohexol | Shanghai General Pharmaceutical Co | intravascular contrast media | |
| heparin sodium injection | SPH No.1 Biochemical & Pharmaceutical Co., LTD | prevent the formation of thrombosis | |
| cefuroxime | Glaxo Operations UK Limited | an antibiotic | |
| buprenorphine | TIPR Pharmaceutical Responsible Co.,Ltd | an analgesic | |
| curved microforceps | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | W40350 | surgical tool |
| hemostatic forceps(straight) | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | J31010 | surgical tool |
| hemostatic forceps(curved) | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | J31020 | surgical tool |
| Satinsky clamp | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | XEC050 | surgical tool |
| needle holder | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | J32010 | surgical tool |
| microneedle holder | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | WBA040 | surgical tool |
| notched forceps | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | J42010 | surgical tool |
| tissue forceps(with hook) | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | J41010 | surgical tool |
| tissue scissor | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | Y00040 | surgical tool |
| surgical scissors | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | Y00030 | surgical tool |
| micro scissors | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | MR-S121T | surgical tool |
| microvessel clips | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | XEC240 | surgical tool |
| straight microforceps(titanium alloy) | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | WCC010 | surgical tool |
| curved microforceps (titanium alloy) | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | WCC020 | surgical tool |
References
- Aller, M. A., et al. A half century (1961-2011) of applying microsurgery to experimental liver research. World journal of hepatology. 4, 199-208 (2012).
- Aller, M. A., et al. The value of microsurgery in liver research. Liver international : official journal of the International Association for the Study of the Liver. 29, 1132-1140 (2009).
- Lee, S., Charters, A. C., Chandler, J. G., Orloff, M. J. A technique for orthotopic liver transplantation in the rat. Transplantation. 16, 664-669 (1973).
- Kamada, N., Calne, R. Y. Orthotopic liver transplantation in the rat. Technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage. Transplantation. 28, 47-50 (1979).
- Oldani, G., Lacotte, S., Morel, P., Mentha, G., Toso, C.
- Nagai, K., Yagi, S., Uemoto, S., Tolba, R. H. Surgical procedures for a rat model of partial orthotopic liver transplantation with hepatic arterial reconstruction. Journal of visualized experiments : JoVE. , e4376 (2013).
- Liu, X., He, C., Huang, T., Gu, J. Development of a New Technique for Reconstruction of Hepatic Artery during Liver Transplantation in Sprague-Dawley Rat. PloS one. 10, e0145662 (2015).
- Jamshidi, R., Stephenson, J. T., Clay, J. G., Pichakron, K. O., Harrison, M. R. Magnamosis: magnetic compression anastomosis with comparison to suture and staple techniques. Journal of pediatric surgery. 44, 222-228 (2009).
- Pichakron, K. O., et al. Magnamosis II: Magnetic compression anastomosis for minimally invasive gastrojejunostomy and jejunojejunostomy. Journal of the American College of Surgeons. 212, 42-49 (2011).
- Gonzales, K. D., et al. Magnamosis III: delivery of a magnetic compression anastomosis device using minimally invasive endoscopic techniques. Journal of pediatric surgery. 47, 1291-1295 (2012).
- Wall, J., et al. MAGNAMOSIS IV: magnetic compression anastomosis for minimally invasive colorectal surgery. Endoscopy. 45, 643-648 (2013).
- Xue, F., et al. Choledochojejunostomy with an innovative magnetic compressive anastomosis: How to determine optimal pressure? World journal of gastroenterology. 22, 2326-2335 (2016).
- Yan, X., et al. Portacaval shunt established in six dogs using magnetic compression technique. PloS one. 8, e76873 (2013).
- Dorman, R. M., Vali, K., Harmon, C. M., Zaritzky, M., Bass, K. D. Repair of esophageal atresia with proximal fistula using endoscopic magnetic compression anastomosis (magnamosis) after staged lengthening. Pediatric surgery international. 32, 525-528 (2016).
- Russell, K. W., Rollins, M. D., Feola, G. P., Scaife, E. R. Magnamosis: a novel technique for the management of rectal atresia. BMJ case reports. , (2014).
- Shi, Y., et al. Magnetic ring anastomosis of suprahepatic vena cava: novel technique for liver transplantation in rat. Transplant international : official journal of the European Society for Organ Transplantation. 28, 89-94 (2015).
