Summary
이 프로토콜에는 vivo에서 쥐의 모델을 접착성 capsulitis 선물 한다. 모델 모션 (ROM)와 증가 관절 경직의 감소 회전 범위에 오랜된 시간 동안 여분 관절 봉합 고정으로 갑 공동의 내부 고정 포함 되어 있습니다.
Abstract
이 제안은 vivo에서 쥐 모델 연구이 상태와 유사한 arthrofibrosis의 다른 etiologies에 대 한 잠재적인 치료 옵션에 대 한 접착성 capsulitis의 생성을 목표로 한다. 모델 포함 어깨의 여분 관절 고정 상 박 골의 봉합에 스카풀라를 통해 쥐에서 관절 내부 공간을 침입 하 고 감소 회전 ROM과 증가 관절에 발생 하지 않고 보조 contracture 결과 강성입니다.
우리 10 Sprague-Dawley 쥐가이 연구 목적으로 사용합니다. 기본 ROM 측정 자동 동원 정지 하기 전에 찍은 사진. 고정 봉합을 제거 했다 고 평가 했다 ROM과 관절 경직에 변화 하기 전에 쥐 동원 정지의 8 주를 받게 했다. ROM에 있는 뜻깊은 감소 귀착되 었 다 동원 정지 여부를 평가 하려면 운동학에 변화 계산 했다. ROM 후속 기간에 각 시간 지점에서 측정 되었다와 기준선 내부 및 외부 ROM 측정에 비해 했다. 강성, 공동 활동을 평가 하기 위해 60 °의 초기 외부 회전 및 80 °의 초기 내부 회전에 도달 하는 데 필요한 토크 (text 와 tint )의 차이 확인 하 여 계산 했다.
후속 주 0에 있는 여분 관절 봉합 고정 제거 후 우리는 총 ROM 기준에 비해 63% 감소를 발견. 19% 제한 주위를 늦추고 진행과 함께 후속, 5 주까지 지속적인 개선을 관찰 합니다. 속 행의 8 주에 아직도 후속 날 0 rom에 있습니다. 또한,의 18% 제한, 우리 13.3 Nmm 기준선에 비교 될 때 증가 하는 토크를 발견. 8 주, 총 토크는 1.4 ± 0.2 측정 되었다 Nmm 초기 측정 보다 높은. 이 작품의 지속적인 감소 ROM과 외경으로 어깨 접착성 capsulitis 쥐 모델을 소개 합니다.
Introduction
어깨의 접착성 capsulitis는 자주 언된 어깨 또는 어깨 contracture 라고 합니다. 그것은 아마도 결과로 고급 섬유 증 및 공동 contracture1,2,3통증과 제한 자동 모션 특징 이다. 조건이 공동 캡슐2,3(유형 I 및 III) 결과 조밀한 콜라겐 매트릭스와 섬유 및 myofibroblast 셀 채용을 포함 한다. 성별, 당뇨병 mellitus, 갑 상선, 외상 성 부상, 및 머리말 붙인된 동원 정지4,,56을 포함 하 여 공동 contracture 개발을 위한 많은 가능한 위험 요인이 있다.
효과적인 치료 옵션 부족 하 고 주로 보수적인 치료와 개선 되지 않고 있다 극단적인 경우에 외과 릴리스의 형태로 개입으로 물리 치료를 포함 합니다. 가장 좋은 치료 방법은 불확 실한 남아 있고 의료 분야7,8년 큰 관심의 대상이 되었습니다. 새로운 치료 옵션의 개발 내부 관절 유발된 외상에 의존 하지 않는 조건에 대 한 재현 동물 모델을 필요 합니다. 최적의 접착성 capsulitis 모델 질병의 두 가지 주요 특징을 포함 한다: contracture 어깨 캡슐 및 모션 (ROM)의 범위에서 장기 감소. Schollmeier 외. 9 개에 어깨 contracture 개발 하는 캐스트를 사용 하 여 첫 번째 공동 contracture 모델 중 하나를 설명 합니다. 그들은 또한 ROM과 관절 내부의 압력에서 변화 immobilization9의 정지 후 정상 수준으로 돌아 보고. 그러나, 연구에 언급 한 중요 한 제한 캐스트 기법을 사용 하는 동물 사이의 다리 위치에 변화 이다. 쉽게 재현 가능한 모델, 칸 노 외. 를 얻기 위하여 10 나중 어깨의 경직 된 내부 고정을 사용 하는 접착제 capsulitis 쥐 모델 제시. 그러나, 그들은 그들의 모델 ROM에 상당한 감소를 달성, 비록 그들은 않았다 진술 하지 이러한 변화 했다 임시 또는 오래 지속 여부. 우리의 연구의 목적은 ROM과 관절 경직에 장기간된 여분 관절 갑 합동 동원 정지의 효과 조사 하 여 적합 한 비보에 어깨 contracture 쥐 모델을 만드는 것 이었다.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
연구 기관 동물 관리 및 사용 위원회 베스 이스라엘 여자 집사 의료 센터에 의해 승인 되었다. 불필요 한 장시간된 마 취를 방지 하 고 또한 저체온증을 피하기 위해 주의 되었다. 동물 각 ROM 측정 세션에서가 중 되었고 체중 감량에 대 한 모니터링.
1. 연구 주제
- 13 주 이전 수술과 몸 무게의 250-300 g 사이의 범위 시 10 Sprague-Dawley 쥐를 사용 합니다.
2. 수술
- 마 취 및 수술 동원 정지 하기 전에, 초기 토크 외부 회전의 60 °와 80 ° 내부 회전의 회전 각도의 함수로 측정 (단계 5 참조).
-
마 취 유도 실에서 흡입을 통해 5 %isoflurane 유발 하 고 수술을 통해 코 통해 2 %isoflurane 유지할.
- 동물 아래 물 히터를 사용 하 여 마 취 동안 체온을 유지 하기 위해.
- 통증 제어를 위해 쥐의 몸 무게에 따라 1.2 mg/kg의 복용량에 피하 지속 출시 buprenorphine를 관리 합니다.
-
Immobilize 왼쪽된 갑 납치 (상 박 골의 샤프트과 견 갑 골 척추 사이의 각도)10 의 60 °의 각도로 관절 , 11.
- 상 박 골의 축에 평행 하 게 후부 세로 절 개를와 함께 수술을 시작 합니다. 바로 갑 아래 피부 절 개를 공동 확인 하 고 약 3 cm에 대 한 확장.
- 2 봉합 (꼰된 폴리에스터) 갑 공동 안팎의 상 박 골의 샤프트 원심 2/3 견 갑 골의 측면 가장자리를 통해 피어 싱으로 고정을 사용 하 고 이후 그림 1A에서 볼 수 있듯이 강화. 상 완 동맥 같은 중요 구조 constricting 피하려고 노력을 가져가 라.
참고: 외과 기술은 다른 계획 (X 및 Y)를 영향을 주지 않고 납치 (Z)의 60 ° 자동 합동을 제한 할 수 있는 장점이 있습니다. 주위에 상 완 골과 견 갑 골의 측면 테두리 통해 봉합을 배치 하 여 두 구조체의 근사값은 달성 하 고 견 갑 골 블레이드 평면 유지. 강화는 봉합, 후 팔은 고정 휴식 위치 X 및 Y 평면을 고려할 때, 납치의 60 °에 Z 비행기 간주 됩니다 때. 이 미세 3 계획에 공동 위치 조정의 실패에서 생성 될 수 있는 동물 사이 가변성을 제한 하 생각 된다.
3. 절 개 폐쇄
- 적절 한 hemostasis 후 피부 클립을 사용 하 여 피부 절 개를 닫습니다.
- 마 취를 중단 하 고 따뜻한 환경에서 감독 복구 동물 허용. 동물 sternal recumbency를 유지 하기 위해 충분 한 의식 회복, 후의 감 금 소를 다시 반환 합니다.
- 절차 후 바로 정상적인 활동에 반환을 동물 허용. 동물 자동 공동을 해결 하기 위해 내부 봉합에 주로 의존 하는 제한 없이 이동 하실 수 있습니다.
- 감염에 대 한 모니터링 하려면 첫 번째 수술 후 1 주일 동안 매일 절 개 사이트를 검사 합니다.
- 수술 후 10일 하루에 상처 클립을 제거 합니다.
참고: 절차 동안, 근육의 아무 조작 그리고 기술은 어떤 내부 관절 외상, 따라서 capsular 및 관절 연속성 및 해부학 무결성 유지를 포함 하지 않았다. 어느 외부 제 지 나 활동 제한 우리의 프로토콜에서 뒤를 이었다. - 진통 지속 출시 buprenorphine를 사용 하 여 마 취 유도에서 시작 하는 1.2 mg/kg의 복용량에 피하 주사 하 고 필요한 경우 모든 72 h를 반복을 제공 합니다.
4. 봉합 사 제거 동원 정지 후 8 주
- 마 취 유도 실에서 흡입을 통해 5 %isoflurane 유도 후 수술을 통해 코 통해 2 %isoflurane 지속. 통증 제어를 위해 쥐의 몸 무게에 따라 1.2 mg/kg의 복용량에 피하 지속 출시 buprenorphine를 관리 합니다.
- 이전 절차에서 흉터 위에 절 개를 확인 합니다.
- 잘라는 봉합 하 고 상 완 골과 견 갑 골에서 제거 합니다.
- 절 개 상처 클립을 닫습니다.
- 감염의 어떤 표시 든 지 검출 하기 위하여 첫 번째 주 동안 매일 절 개 사이트를 검사 합니다. 통증과 고통 뿐만 아니라 모니터링 합니다.
- 수술 후 10일 하루에 상처 클립을 제거 합니다.
5. 범위의 모션 및 공동 강성 측정
-
동원 정지는 팔 클램프, 센서 조립 및 선회 차축11의 구성 된 사용자 지정된 장치를 사용 하 여 전후 ROM 및 수동 어깨 역학을 측정 합니다. 이것은 수술 전 수행 (초기 계획) 및 봉합 사 제거 후 지속적으로.
- 봉합 사 제거 (후속 일 0) 직후 측정 ROM 그리고 연속적으로 두 번 주.
- 매주 한 번, 10% 미만 기록 시 이전 시간 지점에서 변경 하는 측정을 줄일 수 있습니다.
참고: 테스트 후 ROM 주, 각 동물의 ROM 바꾸지 않았다 크게 시험 시간 포인트 사이 (10% 미만 변경). 따라서, 우리는 느꼈다 일주일에 한 번에 일주일에 두 번에서 테스트 주파수 감소 충분, ROM이 시점에서 고원 하 듯.
- 마 취 유도 5%와 2% (약 5 분), 절차의 전체 길이 대 한 유지 보수에 대 한 측정을 효율적으로 촉진 하기 위하여 isoflurane 통해 정밀 기화 기를 사용 하 여 측정을 실시 합니다. 동물 아래 물 히터를 사용 하 여 마 취 동안 체온을 유지 하기 위해.
- 위치 레이저 가이드의 도움으로 ROM 측정을 위해 제대로 동물입니다. 위치는 팔 클램프 forelimb 감지 축과 90 ° 앞으로 굴곡에 상 완 골의 긴 축에 맞춰집니다. 손목과 팔꿈치 그림 1B에서 볼 수 있듯이 여 forelimb 보안.
- 일관 된 방식에서 ROM과 토크를 평가 하기 위해 스테퍼 모터에 의해 수동 forelimb 회전을 제어 합니다. 마이크로컨트롤러와 스테퍼 모터를 제어 합니다. 경사 계, 시작과 측정의 끝을 나타내기 위해 토크 센서에서 그와 함께에서에서 사용 하 여 입력.
- 마이크로컨트롤러는 컴퓨터와 사내 개발된 MATLAB 코드를 사용 하 여 컨트롤을 연결 합니다.
- 초기 측정, 주기 센서 어셈블리 3 번 외부 회전의 60 °와 80 ° 초기 토크 측정을 얻기 위해 내부 회전의 사이 대 한 (외부: t내선 및 내부: tint) 나중에 비교를 위해.
- ROM 측정을 위해를 사용 하 여 각 동물의 토크 값 (text 와 tint) 그들의 자신의 기준선 측정에서 프로그램에서 미리 설정 된 입력 변수 변화 회전 롬 사용에 기준선 측정으로 감지 중지 비교 후속 ROM 측정 지점입니다. 변화는 0.2 ° 해상도 감지 했다.
- 강성 측정을 위해 프로그램에서 미리 설정 된 입력으로 원래 회전 각도 60 ° 외부 회전 및 80 ° 내부 회전을 사용 하 여 토크에 변화를 감지 하기 위해. 변경 0.01 Nmm의 해상도 함께 발견 했다.
- 각 ROM 평가와 같은 날에 동물을 무게. 비늘에 동물을 놓고 그들의 대 중을 기록 합니다. 이러한 데이터는 연구 기간 동안 동물의 건강 상태를 평가 하는 도구 중 하나로 사용 되었다.
- 복구, 다음 그들의 감 금 소에 쥐를 반환 하 고 통증이 나 조 난의 흔적에 대 한 모니터링 합니다. Sternal recumbency를 유지 하기 위해 충분 한 의식 회복 될 때까지이 테스트를 통해 어떤 동물도는 무인 왼쪽입니다.
참고: ROM 및 토크 측정 {빌라 Camacho 2015} 우리의 그룹에 의해 이전에 보고 된 사용자 지정 된 장치와 달성 했다. 장치는 스테퍼 모터에 의해 회전 하 고 사용자 지정 MATLAB 스크립트에 의해 제어의 구성 된 맞춤 지 그. 토크 센서 및 관성 측정 단위 토크를 캡처하고 표본의 조음 동안 데이터를 배치 하는 데 사용 됩니다.
6. 사후 Immunohistologic 분석
- 8 주 ROM 측정 기간의 끝에, CO2 노출 쥐를 안락사.
- 둘 다 왼쪽 부 (움직일) 및 disarticulating에서 척 골, 상 완 골과 쇄 골과 흉 강에서 견 갑 골 단면 (건강 관리) 어깨를 오른쪽.
- 수정 삭제 어깨 10% 중립 버퍼링 된 포 르 말린의 솔루션에 3 일 뒤에 또 다른 2 달 동안 pH 7.4에 ethylenediaminetetraacetic 산 (EDTA) 10%의 솔루션에 decalcification.
- 이 과정 동안, 샘플 통에 부드러운 동요 주기를 놓고 4 ° c.에 저장 모니터링 매주 microcomputed tomography (uCT) 검사와 공동 자동의 decalcification.
참고: EDTA는 점차적으로 감소 크리스탈 크기12,,1314는 인회석 크리스탈 외부 표면에서 칼슘 이온 chelating 에이전트. 이 과정은 매우 느리고 부드러운, 그리고 immunohistochemistry (IHC) 등 기술에 대 한 유지 해야 하는 특정 조직 요소를 검색 하는 데 사용 됩니다. 속도는 EDTA는 견본 decalcifies pH는 용액의 농도에 따라 달라 집니다. 산도, 측면에서 그것은 수에서 범위 7 7.4, 더 알카라인 솔루션 decalcification 속도 가속. 그러나, 더 높은 pH 수준의 솔루션 주요 조직 요소를 손상 수 있습니다. 또한, 같은 실험에 대 한 일반적인 EDTA 농도 거짓말 사이 10% ~ 14%, 하지만 그것은 매우 중요 한 그래서이 적어도 3 ~ 4 배 decalcification 액체의 교체를 위해서는 칼슘, 채권 일단 활성 에이전트 고갈 된다 기억 하 당 주15. - Decalcification 과정 체결 했습니다 일단 갑 관절 조직학 단면에 대 한 파라핀 스택에 탑재 합니다. 동양 코로나 조각 수 있도록 샘플. 상 박 골의 머리의 50% 깊이에서 얻은 조각 (센터, 중간 coronally) 그림 1에 나와 있습니다. Immunohistochemical 얼룩 거리 조직 공동의 존재를 과산화 효소-안티-과산화 효소 방법을 사용 하 여 수행 합니다. 4 , 9 , 10 , 16
- 나트륨 구 연산 염 버퍼 솔루션 (10 m m 나트륨 구 연산 염, 0.05% 트윈 20, pH 6.0, 95-100 ° C에서 5 분을 위한 미리 데워) 플라스틱 Coplin jar에는 일반 전자 레인지에서 10 분 동안 배치 슬라이드 물속에 넣고 전자 레인지 방사선 항 원 복구 수행 중간 힘에서. 슬라이드를 실 온에서 30 분 동안 냉각 허용 합니다.
- 30 분, 혈 청 염소와 차단을 수행 하 고는 기본 마우스 모노 클론 항 체 (1:400 희석) 4 ° c.에 하룻밤 fibronectin와 표본 품 어
- 1 차적인 항 체를 가진 외피 후 씻어 두 번 PBS와 표본 (0.5 ug/mL) 10 분; 그리고 2 차 항 체 (1:400 희석)에 30 분 동안 공액 염소 antimouse IgG-과산화 효소와 함께 품 어.
- PBS와 두 번 표본 세척 (2.5 µ g/mL) 10 분 및 3,30 diaminobenzidine 테 염화 및 30% 과산화 수소 10 분 Counterstain Carazzi hematoxylin와에 대 한 어둠 속에에 폭로 대 한 통에.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
모션의 범위
후속 날 0, 우리가 발견 초기에 비해 총 ROM에 63% 감소 (P <.001. 19% 제한에 진행 중지 될 때까지 주 5 후속, ROM의 점진적 개선 관찰 (P < 0.001). 나머지 제한, 총 ROM의 18%에 따라 최대 8 주에 아직도 분명 했다 (P < 0.001).
뻣 뻣 함
후속 날 0, 우리가 초기에 비해 총 토크 13.3 Nmm의 증가 발견 (P < 0.001); 8.9 Nmm 외부 (P =.002)와 4.4 Nmm 내부적으로 (P < 0.001), 외부 회전 토크에 138.8% 증가 결과로, 159.6% 증가 내부 회전 토크, 149.2%의 총 전반적인 토크를 증가. 후속 주 8, 우리 발견 1.4 ± 0.2 총 측정된 토크 Nmm 기준 보다 더 높은 (P = 0.115), 외부 토크 0.6 ± 0.1 Nmm 증가 (P = 0.369) 내부 토크의 0.7 ± 0.2 Nmm 증가 (P = 0.036). 이 토크 증가 10% 외부와 25.7% 내부적으로 전반적인 17.9% 증가 나타냅니다. 수술 후 주 3의 처음부터, 강성 향상 plateaued.
더 결과
그림 2A에서 보듯이 그대로 그룹 캡슐과 대 퇴 골 머리와 정상적인 세포 조직의 관절 표면 사이의 적절 한 구분 표시. 또한, 정상적인 세포 조직 또한 윤 활 조직과 관절 연골에 관찰 되었다. 그러나, 수술 고정된 그룹을 보여줍니다 capsular 유착의 증거는 갑의 열 등 한 측면에서 공동. 또한, 주변 조직을 감소 공동 공간 (그림 2B)와 어깨 캡슐 선도 그대로 어깨에 비해 밀도가 높은 것 처럼 보인다. Fibronectin에 대 한 스테인드 조각 계약된 외과 그룹 (그림 2B)에 증가 capsular 두께 표시 합니다. 건강 한 컨트롤 (그림 2A)에 비해. 이 발견 이전 계약 합동 동원 정지10 의 동물 모델에 보고 문학 이며 적절 한 contracture 모델의 생성을 지 원하는.
그림 1: 장치 테스트. 스카풀라의 측면 가장자리와 완; 단단히 전달 2 꼰 폴리에스터 봉합 공동 갑의 동원 정지 (A) (B) ROM 및 수동 어깨 역학;의 측정에 대 한 사용자 지정 장치 a) 스테퍼 모니터입니다. B의 구성 된 센서 어셈블리) 반응 토크 센서, 그리고 c) 방향 센서. d)는 팔 클램프입니다. 11갑 공동 외부 회전 (C) 내부 또는 (D) 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 2: 상 박 골의 머리의 코로나 조각. 이미지는 fibronectin (IHC) 40 X 확대에서 얻은 대 한 스테인드. 눈금 막대 = 200 µ m. (A) 건강 한 통제. (B) 외과 제어 합니다. 빨간색 화살표는 공동 capsular 두께 설명합니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 3: 모두 건강 하 고 수술 제한 쥐 갑 관절에 대 한 정규화 된 토크 대 운동의 범위. 내부 회전 긍정적인, 외부 회전 부정적으로 표시 됩니다. 음영 처리 된 영역 표시는 95% 신뢰 구간 (CI). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
이 연구는 갑 공동의 내부 고정을 통해 어깨의 접착성 capsulitis의 쥐 모델을 제공합니다. 게다가, 그것은 고정 제거 후 최소 8 주 동안 총 ROM의 확장된 감소를 보여준다. 다른 시간 지점에서 ROM에 변경 계산 하려면 측정 동물 특정 기준선에 비교 되었다. 반대로, 칸 노 외. 10 변경 비보 전 ROM을 결정 하기 위하여 동물의 모든에 대 한 표준화 된 토크를 사용.
2008 년, Sarver 외. 17 비 외과 외부 고정에서 발생 하는 어깨의 관절 경직에 보고. 그들의 연구 높아졌습니다 일시적인 관절 경직의 동원 정지 그리고 어깨, 치료 후 후속 주 8에 의해 확인 되었다. 그러나, 현재 연구에서 우리가 찾지 못했습니다 토크와 각도, 오히려 한 다항식 적합 (그림 3) 사이의 선형 관계. 또한, 우리만 발견 내부 회전, 평가 하는 동안 초기에 비해 관절 경직에 통계적으로 유의 한 차이 강성에 25.7% 증가 동원 정지의 8 주 후 유지.
우리는 그들의 자신의 내부 제어로 각 동물에 대 한 기준선 ROM 및 강성 측정 사용. 동물18사이의 가능한 변화를 감안할 때, 내부 제어 같은 동물의 contralateral 어깨를 사용 하 여 내부 타당성을 증가 하 고 필요한 동물의 수를 줄이는 데 도움이 됩니다.
우리의 연구 결과의 한계 중 하나는 ROM을 측정 하는 데 사용 하는 기구는 견 갑 골 안정화 하지 않습니다입니다. 그러나, 쥐의 견은 인간에서 보다 더 많은 상승 회전 더 비스듬히 지향. 부정사 위치에 쥐를 갖는 제어 해야 합니다 이론적으로 견 갑 골 기울이기에 대 한 견 갑 골 테스트 지 그의 회사 격판덮개에 달려있다. 연구의 추가 제한은 우리만 회전 내부 및 외부-회전 자동 공동의 평가입니다. 이건 납치, 굴곡, 그리고 오버 헤드 활동 철저 한 외부 고정 또는 제한 우리 보다 다른 시스템을 필요로 하는 scapulothoracic ROM 테스트 중 공동의 요구는 사실 때문에 분할.
병 인 및 치료 접착성 capsulitis inadequately 이해 하 고 있습니다. 병 인에 그것은 그것이 고통에 시달리 고 갑 운동1,,311제한 캡슐의 contracture 표시 되었습니다. 또한, 그것은 따라서 contracture10를 일으키는 관절 섬유 증에서 발생 하는 염증 성 트리거는 제안 되었습니다. 우리의 쥐 모델 기본 contracture의 초기 염증 성 모욕을 모방 수 없습니다, 하지만 그럼에도 불구 하 고, 그것은 적절 하 게 접착성 capsulitis는 pathologic 변경10,19의 특성 활동을 복제 합니다. 이 모델은 ROM에 증가 관절 경직, 어깨 contracture에 대 한 현재 및 잠재적인 치료 치료의 종합 평가 대 한 수 있도록 지속적인 감소를 호출 합니다.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
없음
Acknowledgments
저자가이 프로젝트에 대 한 재정 지원을 제공 하기 위한 씨와 부인 톰과 필리스 Froeschle를 인정 하 고 싶습니다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Sprague-Dawley rats | Charles River Laboratories, Wilmington, MA, USA | 250-300 g | |
| Surgical tool: | |||
| Injection needle | BD 1' 30 guage | ||
| Needle holder | |||
| 5% isoflurane | |||
| 2% isoflurane | |||
| Nose cone | |||
| Skalpel and skalpel holder | No. 11 scalpel | ||
| Curved hemostat forceps | |||
| Staright hemostat forceps | |||
| Tissue retractor | |||
| Toothed tissue forceps | |||
| Plain tissue forceps | |||
| Dissecting scissors | |||
| Suture scissors | |||
| Skin clip applicator | Any standard staples for wound closure | ||
| Immobilization material | Ethicon | No. 2-0 braided polyester ethibond suture was used for immobilization | |
| Other materials: | |||
| Costumized device for ROM: 1)Sensor assembly, 2)pivoting axle, 3)arm clamp | Assembly that is described in relaxin paper and adhesive capsulitis paper | ||
| Orientation sensor (part of sensor assembly) | MicroStrain Inc., Williston, VT, USA | 3DM-GX3-15 | |
| Reaction torque sensor (part of sensor assembly) | Futek Inc., Irvine, CA, USA | TFF400 | |
| Stepper Motor | SparkFun Electronics, Niwot, CO 80503 | https://www.sparkfun.com/products/13656 | |
| Microcontroller | Torino, Italy). | Arduino UNO, R3 | |
| MATLAB code | MATLAB 7.13.0.564, Natick, Ma, USA | ||
| Weight Scale | Ohaus |
References
- Bunker, T. D. Time for a new name for 'frozen shoulder'. British medical journal. 290 (6477), 1233-1234 (1985).
- Bunker, T. D., Anthony, P. P. The pathology of frozen shoulder. A Dupuytren-like disease. The Journal of bone and joint surgery. British volume. 77 (5), 677-683 (1995).
- Kilian, O., et al. The frozen shoulder. Arthroscopy, histological findings and transmission electron microscopy imaging. Chirurg. 72 (11), 1303-1308 (2001).
- Wang, K., et al. Risk factors in idiopathic adhesive capsulitis: a case control study. Journal of Shoulder and Elbow Surgery. 22 (7), e24-e29 (2013).
- Milgrom, C., et al. Risk factors for idiopathic frozen shoulder. The Israel Medical Association Journal. 10 (5), 361-364 (2008).
- Huang, S. W., et al. Hyperthyroidism is a risk factor for developing adhesive capsulitis of the shoulder: a nationwide longitudinal population-based study. Scientific Reports. 4, 4183 (2014).
- Struyf, F., Meeus, M. Current evidence on physical therapy in patients with adhesive capsulitis: what are we missing. Clinical Rheumatology. 33 (5), 593-600 (2014).
- Song, A., Higgins, L. D., Newman, J., Jain, N. B. Glenohumeral corticosteroid injections in adhesive capsulitis: a systematic search and review. Journal Of Physical Medicine And Rehabilitation. 6 (12), 1143-1156 (2014).
- Schollmeier, G., Sarkar, K., Fukuhara, K., Uhthoff, H. K. Structural and functional changes in the canine shoulder after cessation of immobilization. Clinical Orthopaedics and Related Research. 323 (323), 310-315 (1996).
- Kanno, A., Sano, H., Itoi, E. Development of a shoulder contracture model in rats. Journal of Shoulder and Elbow Surgery. 19 (5), 700-708 (2010).
- Villa-Camacho, J. C., et al. In vivo kinetic evaluation of an adhesive capsulitis model in rats. Journal of Shoulder and Elbow Surgery. 24 (11), 1809-1816 (2015).
- Liu, H., et al. Evaluation of Decalcification Techniques for Rat Femurs Using HE and Immunohistochemical Staining. BioMed Research International. 2017, 9050754 (2017).
- Gonzalez-Chavez, S. A., Pacheco-Tena, C., Macias-Vazquez, C. E., Luevano-Flores, E. Assessment of different decalcifying protocols on Osteopontin and Osteocalcin immunostaining in whole bone specimens of arthritis rat model by confocal immunofluorescence. International Journal of Clinical and Experimental Pathology. 6 (10), 1972-1983 (2013).
- Sanjai, K., et al. Evaluation and comparison of decalcification agents on the human teeth. Journal of Oral and Maxillofacial Pathology. 16 (2), 222-227 (2012).
- Rolls, G. An Introduction to Decalcification. , (2013).
- Burry, R. W. Controls for immunocytochemistry: an update. Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 59 (1), 6-12 (2011).
- Sarver, J. J., et al. After rotator cuff repair, stiffness--but not the loss in range of motion--increased transiently for immobilized shoulders in a rat model. Journal of Shoulder and Elbow Surgery. 17 (1 Suppl), 108S-113S (2008).
- Macbride, M. Variations within Outbred Strains: Know Your Strains and Stocks | Taconic Biosciences. , Available from: https://www.taconic.com/taconic-insights/quality/variations-within-outbred-strains-know-your-strains-and-stocks.html (2016).
- Liu, Y. L., Ao, Y. F., Cui, G. Q., Zhu, J. X. Changes of histology and capsular collagen in a rat shoulder immobilization model. Chinese Medical Journal. 124 (23), 3939-3944 (2011).
