Summary

Samtidiga mätningar av intracellulära kalcium och membranpotentialen i nyligen isolerade och intakt mus Cerebral endotel

Published: January 20, 2019
doi:

Summary

Här finns protokoll för (1) nymalen isolera intakt cerebral endotelceller ”rör” och (2) samtidiga mätningar av endothelial kalcium och membranpotential som under endotel-derived hyperpolarisering. Dessutom tillåter dessa metoder för farmakologiska trimning av endotelceller kalcium och elektrisk signalering som enskilda eller interaktiva experimentella variabler.

Abstract

Cerebrala artärer och deras respektive mikrocirkulationen leverera syre och näringsämnen till hjärnan via blod flöde förordningen. Endotelceller linje lumen av blodkärl och kommando förändringar i vaskulär diameter som behövs för att möta den metaboliska efterfrågan av nervceller. Primära endothelial-beroende signalvägar av hyperpolarisering av membranpotentialen (Vm) och kväveoxid normalt i drift parallellt att medla vasodilatation och därmed öka blodflödet. Även om integrerad att samordna vasodilatation över flera millimetrar av vaskulär längd, har komponenter av endotel-derived hyperpolarisering (EDH) varit historiskt svårt att mäta. Dessa komponenter i EDH medför intracellulära Ca2 + [Ca2 +]jag ökar och efterföljande aktivering av små – och mellanliggande konduktans Ca2 +-aktiverade K+ (SKCa/IKCa) kanaler.

Här presenterar vi en förenklad illustration av isoleringen av färska endotel från mus cerebrala artärer; samtidiga mätningar av endothelial [Ca2 +]jag och Vm med Fura-2 fotometri och intracellulära skarpa elektroder, respektive; och en kontinuerlig superfusion av saltlösningar och farmakologiska agenter under fysiologiska betingelser (pH 7,4, 37 ° C). Bakre cerebrala artärer från Circle of Willis avlägsnas den bakre kommunicera och basilaris artärerna. Enzymatisk nedbrytning av rengjorda posterior cerebral arteriell segment och efterföljande sönderdelning underlättar borttagning av adventitia, perivaskulär nerver och glatta muskelceller. Resulterande posterior cerebral arteriell endothelial ”tuber” säkras sedan i Mikroskop och granskas med hjälp av en kamera, fotomultiplikatorn röret, och en till två elektrometrar medan under kontinuerlig superfusion. Sammantaget kan denna metod samtidigt mäta förändringar i endotel [Ca2 +]jag och Vm i diskreta cellulära platser, förutom att sprida EDH genom gap-junctions upp till millimeters avstånd längs intakt endotelet. Denna metod förväntas ge en hög genomströmning analys av hjärnfunktionerna endothelial underliggande mekanismer av blod flödesreglering i normal och sjuka hjärnan.

Introduction

Blodflödet i hela hjärnan regleras samordningen av vasodilatation bland cerebrala artärer och arterioler i vaskulär nätverk1. Endothelial celler som kantar cerebral motstånd artärer kommando förändringar i vaskulär diameter som behövs för att möta den metaboliska efterfrågan av nervceller1,2,3. I synnerhet under endotel-derived hyperpolarisering (vanligen kallas EDH), intracellulära Ca2 + ([Ca2 +]jag) och elektrisk signalering i endotelceller samordna vasodilatation bland endothelial celler och deras omgivande glatta muskelceller genom gap-junctions för arteriell avkoppling4. Fysiologiska inledandet av EDH sekventiellt innebär stimulering av Gq-kopplade receptorer (varandra), en ökning i [Ca2 +]jag, och aktivering av endotel små – och intermediate-Ca2 +-aktiverade K+ (SKCa/IKCa) kanaler till hyperpolarize cerebral endotelceller membranet potential (Vm)5,6,7. Således, det intima förhållandet mellan endotelceller [Ca2 +]jag och Vm är integrerad till blod flödesreglering och oumbärlig för hjärt- och cerebrovaskulär funktion6,8. Hela den breda litteraturen, har många studier rapporterat en sammanslutning av vaskulär endotelial dysfunktion med utvecklingen av kroniska sjukdomar (t.ex. hypertoni, diabetes, hjärtsvikt, kranskärlssjukdom, kronisk njursvikt, perifer artärsjukdom)9,10, som visar betydelsen av att studera endotelfunktion i såväl fysiologiska som patologiska förhållanden.

Vaskulära endotel är integrerad produktion av hyperpolarisering, vasodilatation och vävnadsperfusion och således undersökning av dess infödda cellulära egenskaper är avgörande. Som en allmän studie modell, har beredning av arteriell endothelial tube musmodell publicerats före för skelettmuskulaturen11,12, gut13, lung14, och nyligen det hjärna6. Studier av samtidiga [Ca2 +]jag och Vm mätningar har i synnerhet publicerats för skelettmuskulaturen arteriell endotel15,16 liksom lymfatiska kärl endotel17. Utöver primära studier utnyttjar metoden endothelial tube, kan en omfattande översyn av dess fördelar och nackdelar8 konsulteras för att avgöra om detta experimentella verktyg är lämpligt för en särskild studie. En fördel är i korthet att de viktiga fysiologiska komponenterna av endotelceller funktion lagras (t.ex., Ca2 + tillströmning och intracellulära release, hyperpolarisering av Vm upp till Nernst potential för K+ via SKCa/IKCa aktivering och endotel intercellulära koppling via gap föreningspunkter) utan störande faktorer såsom perivaskulär nerv input, glatt muskulatur spänningskänsliga kanal funktion och kontraktilitet, cirkulation av blod och hormonella influenser8. Däremot används ofta cell kultur metoder införa betydande förändringar i morfologi18 och ion kanal uttryck19 på ett sätt som avsevärt kan fördunkla jämförelser till fysiologiska observationer bestäms ex vivo eller in-vivo. Begränsningar inkluderar en bristande integration med andra väsentliga komponenter för att reglera blodflödet, till exempel muskulatur och begränsad flexibilitet i en experimentell schema, som denna modell testas optimalt inom 4 h intakt vaskulär segmentet isolering från djur.

Byggnad från en tidigare video protokollet författad av Socha och Segal12 och senaste experimentella utvecklingen i interimistiska6,15,16, Visa vi härmed isolering av färska endotel från bakre cerebrala artärer och samtidiga mätningar av endothelial [Ca2 +]jag och Vm med Fura-2 fotometri och intracellulära skarpa elektroder, respektive. Dessutom medför detta experiment kontinuerlig superfusion av saltlösningar och farmakologiska agenter under fysiologiska betingelser (pH 7,4, 37 ° C). Vi valde den bakre cerebral artären, som ger den isolerade endotel med strukturella integritet (celler tillsammans genom gap föreningspunkter) och tillräckliga dimensioner (bredd ≥ 50 µm, längd ≥300 µm) som är mottaglig för intra- och intercellulära signalering längs och bland endotelceller. Studier av den gnagare bakre cerebral artären är väsentligen representerade i litteraturen och dessutom omfatta undersökning av grundläggande endothelial signalering mekanismer, vaskulär utveckling/åldrande och patologi20, 21 , 22. denna experimentella ansökan förväntas ge en hög genomströmning analys av cerebral endotelfunktion (och dysfunktion) och därmed möjliggör betydande framsteg i förståelsen av blod flödesreglering i hela åldrande och utveckling av neurodegenerativa sjukdomar.

Protocol

Innan du utför följande experimenten, kontrollera att alla djurvård använder och protokoll är godkända av institutionella djur vård och använda kommittén (IACUC) och utförs i enlighet med National Research Council’s ”Guide för skötsel och användning av Försöksdjur” (8: e upplagan, 2011) och riktlinjerna som anländer. Den IACUC vid Loma Linda University har godkänt alla protokoll som används för detta manuskript för manliga och kvinnliga C57BL/6 möss (ålder: 3-30 mo).<…

Representative Results

Den schematiska demonstrationen av det protokoll som beskrivs ovan är visas i bifogade figurer. En hjärna som isolerats från en ung vuxen manlig C57BL/6N mus (5 månader) visas i figur 1A. Bakre cerebrala artärer är omsorgsfullt isolerade från den Circle of Willis, tas bort utan bindväv och skuren i segment (figur 1B-D). Från delvis smält arteriell segment, intakt endotel röret produceras och säkrade p…

Discussion

Mot bakgrund av senaste utvecklingen6,15,16,17visar vi nu metoden för att isolera mus cerebral arteriell endotel i förberedelse för samtidig mätning av [Ca2 +] jag och Vm underliggande EDH konsekvent för ~ 2 timmar vid 37 ° C. Även om det är tekniskt svårt, kan vi mäta cell till cell koppling samt (se referens6, figur 1). På s?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Charles Hewitt för utmärkt tekniskt bistånd samtidigt fastställa utrustning och förnödenheter som behövs för de aktuella protokollen. Vi tackar Drs. Sean M. Wilson och Christopher G. Wilson, från LLU Center för Perinatal biologi, för att ge oss en ytterligare inverterade mikroskopet och elektrometer, respektive. Denna forskning har stötts av National Institutes of Health grant R00-AG047198 (EJB) och nya fakultetsmedel för start-up Loma Linda University School of Medicine. Innehållet ansvarar enbart för författarna och representerar inte nödvändigtvis officiella ståndpunkter av National Institutes of Health.

Materials

Glucose Sigma-Aldrich (St. Louis, MO, USA) G7021
NaCl Sigma S7653
MgCl2 Sigma M2670
CaCl2 Sigma 223506
HEPES Sigma H4034
KCl Sigma P9541
NaOH Sigma S8045
ATP Sigma A2383
HCl ThermoFisher Scientific (Pittsburgh, PA, USA) A466250
Collagenase (Type H Blend) Sigma C8051
Dithioerythritol Sigma D8255
Papain Sigma P4762
Elastase Sigma E7885
BSA Sigma A7906
Propidium iodide Sigma P4170
DMSO Sigma D8418
Fura-2 AM dye Invitrogen, Carlsbad, CA, USA F14185
Recirculating chiller (Isotemp 500LCU) ThermoFisher Scientific 13874647
Plexiglas superfusion chamber  Warner Instruments, Camden, CT, USA RC-27
Glass coverslip bottom (2.4 × 5.0 cm) ThermoFisher Scientific 12-548-5M
Anodized aluminum platform (diameter: 7.8 cm)  Warner Instruments PM6 or PH6
Compact aluminum stage  Siskiyou, Grants Pass, OR, USA 8090P
Micromanipulator Siskiyou  MX10
Stereomicroscopes  Zeiss, NY, USA Stemi 2000 & 2000-C
Fiber optic light sources  Schott, Mainz, Germany & KL200, Zeiss Fostec 8375
Nikon inverted microscope Nikon Instruments Inc, Melville, NY, USA Ts2
Phase contrast objectives  Nikon Instruments Inc  (Ph1 DL; 10X & 20X)
Fluorescent objectives  Nikon Instruments Inc 20X (S-Fluor), and 40X (Plan Fluor)
Nikon inverted microscope Nikon Instruments Inc Eclipse TS100
Microsyringe pump controller (Micro4 )  World Precision Instruments (WPI), Sarasota, FL, USA SYS-MICRO4
Vibration isolation table Technical Manufacturing, Peabody, MA, USA  Micro-g
Amplifiers Molecular Devices, Sunnyvale, CA, USA Axoclamp 2B & Axoclamp 900A
Headstages  Molecular Devices HS-2A & HS-9A
Function generator  EZ Digital, Seoul, South Korea FG-8002
Data Acquision System Molecular Devices, Sunnyvale, CA, USA Digidata 1550A
Audible Baseline Monitors Ampol US LLC, Sarasota, FL, USA  BM-A-TM
Digital Storage Oscilloscope Tektronix, Beaverton, Oregon, USA  TDS 2024B
Fluorescence System Interface, ARC Lamp + Power Supply, Hyperswitch, PMT Molecular Devices, Sunnyvale, CA, USA IonOptix Systems
Temperature Controller   Warner Instruments TC-344B or C
Inline Heater  Warner Instruments SH- 27B
Valve Controller  Warner Instruments VC-6
Inline Flow Control Valve Warner Instruments  FR-50
Electronic Puller  Sutter Instruments, Novato, CA, USA P-97 or P-1000 
Microforge Narishige, East Meadow, NY, USA  MF-900
Borosilicate Glass Tubes (Trituration) World Precision Instruments (WPI), Sarasota, FL, USA 1B100-4
Borosilicate Glass Tubes (Pinning) Warner Instruments G150T-6
Borosilicate Glass Tubes (Sharp Electrodes) Warner Instruments GC100F-10
Syringe Filter (0.22 µm)   ThermoFisher Scientific 722-2520
Glass Petri Dish + Charcoal Sylgard Living Systems Instrumentation, St. Albans City, VT, USA DD-90-S-BLK
Vannas Style Scissors (3 mm & 9.5 mm) World Precision Instruments 555640S, 14364
Scissors 3 & 7 mm blades Fine Science Tools (or FST), Foster City, CA, USA Moria MC52 & 15000-00
Sharpened fine-tipped forceps  FST Dumont #5 & Dumont #55

References

  1. Longden, T. A., Hill-Eubanks, D. C., Nelson, M. T. Ion channel networks in the control of cerebral blood flow. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 36 (3), 492-512 (2016).
  2. Chen, B. R., Kozberg, M. G., Bouchard, M. B., Shaik, M. A., Hillman, E. M. A critical role for the vascular endothelium in functional neurovascular coupling in the brain. Journal of the American Heart Association. 3 (3), e000787 (2014).
  3. Iadecola, C., Yang, G., Ebner, T. J., Chen, G. Local and propagated vascular responses evoked by focal synaptic activity in cerebellar cortex. Journal of Neurophysiology. 78 (2), 651-659 (1997).
  4. Bagher, P., Segal, S. S. Regulation of blood flow in the microcirculation: role of conducted vasodilation. Acta Physiologica (Oxford, England). 202 (3), 271-284 (2011).
  5. Garland, C. J., Dora, K. A. EDH: endothelium-dependent hyperpolarization and microvascular signalling. Acta Physiologica (Oxford, England). 219 (1), 152-161 (2017).
  6. Hakim, M. A., Buchholz, J. N., Behringer, E. J. Electrical dynamics of isolated cerebral and skeletal muscle endothelial tubes: Differential roles of G-protein-coupled receptors and K+ channels. Pharmacology Research & Perspectives. 6 (2), e00391 (2018).
  7. Marrelli, S. P., Eckmann, M. S., Hunte, M. S. Role of endothelial intermediate conductance KCa channels in cerebral EDHF-mediated dilations. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 285 (4), H1590-H1599 (2003).
  8. Behringer, E. J. Calcium and electrical signaling in arterial endothelial tubes: New insights into cellular physiology and cardiovascular function. Microcirculation. 24 (3), (2017).
  9. Endemann, D. H., Schiffrin, E. L. Endothelial dysfunction. Journal of the American Society of Nephrology. 15 (8), 1983-1992 (2004).
  10. Rajendran, P., et al. The vascular endothelium and human diseases. International Journal of Biological Sciences. 9 (10), 1057-1069 (2013).
  11. Socha, M. J., Hakim, C. H., Jackson, W. F., Segal, S. S. Temperature effects on morphological integrity and Ca2+ signaling in freshly isolated murine feed artery endothelial cell tubes. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 301 (3), H773-H783 (2011).
  12. Socha, M. J., Segal, S. S. Isolation of microvascular endothelial tubes from mouse resistance arteries. Journal of Visualized Experiments. (81), (2013).
  13. Ye, X., Beckett, T., Bagher, P., Garland, C. J., Dora, K. A. VEGF-A inhibits agonist-mediated Ca2+ responses and activation of IKCa channels in mouse resistance artery endothelial cells. The Journal of Physiology. , (2018).
  14. Norton, C. E., Segal, S. S. Calcitonin gene-related peptide hyperpolarizes mouse pulmonary artery endothelial tubes through KATP channel activation. American Journal of Physiology-Lung Cellular and Molecular. , (2018).
  15. Behringer, E. J., Segal, S. S. Membrane potential governs calcium influx into microvascular endothelium: integral role for muscarinic receptor activation. The Journal of Physiology. 593 (20), 4531-4548 (2015).
  16. Behringer, E. J., Segal, S. S. Impact of Aging on Calcium Signaling and Membrane Potential in Endothelium of Resistance Arteries: A Role for Mitochondria. The Journal of Gerontology, Series A: Biological Sciences and Medical Sciences. 72 (12), 1627-1637 (2017).
  17. Behringer, E. J., et al. Calcium and electrical dynamics in lymphatic endothelium. The Journal of Physiology. 595 (24), 7347-7368 (2017).
  18. Simmers, M. B., Pryor, A. W., Blackman, B. R. Arterial shear stress regulates endothelial cell-directed migration, polarity, and morphology in confluent monolayers. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiolog. 293 (3), H1937-H1946 (2007).
  19. Sandow, S. L., Grayson, T. H. Limits of isolation and culture: intact vascular endothelium and BKCa. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 297 (1), H1-H7 (2009).
  20. Diaz-Otero, J. M., Garver, H., Fink, G. D., Jackson, W. F., Dorrance, A. M. Aging is associated with changes to the biomechanical properties of the posterior cerebral artery and parenchymal arterioles. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 310 (3), H365-H375 (2016).
  21. Kochukov, M. Y., Balasubramanian, A., Abramowitz, J., Birnbaumer, L., Marrelli, S. P. Activation of endothelial transient receptor potential C3 channel is required for small conductance calcium-activated potassium channel activation and sustained endothelial hyperpolarization and vasodilation of cerebral artery. Journal of the American Heart Association. 3 (4), (2014).
  22. Zhang, L., Papadopoulos, P., Hamel, E. Endothelial TRPV4 channels mediate dilation of cerebral arteries: impairment and recovery in cerebrovascular pathologies related to Alzheimer’s disease. British Journal of Pharmacology. 170 (3), 661-670 (2013).
  23. Socha, M. J., Domeier, T. L., Behringer, E. J., Segal, S. S. Coordination of intercellular Ca2+ signaling in endothelial cell tubes of mouse resistance arteries. Microcirculation. 19 (8), 757-770 (2012).

Play Video

Cite This Article
Hakim, M. A., Behringer, E. J. Simultaneous Measurements of Intracellular Calcium and Membrane Potential in Freshly Isolated and Intact Mouse Cerebral Endothelium. J. Vis. Exp. (143), e58832, doi:10.3791/58832 (2019).

View Video