Summary

प्यूपल चरणों के दौरान विकासशील ड्रोसोफिला एपिथेलिया में ऊतक अभिविन्यास और विकास गतिशीलता का इमेजिंग और विश्लेषण

Published: June 02, 2020
doi:

Summary

यह प्रोटोकॉल ड्रोसोफिला पेट एपिथेलिया में सेल ओरिएंटेशन और ऊतक वृद्धि की गतिशीलता के इमेजिंग और विश्लेषण के लिए डिज़ाइन किया गया है क्योंकि फल मक्खी कायापलट से गुजरती है। यहां वर्णित कार्यप्रणाली को ड्रोसोफिला या अन्य मॉडल जीवों में विभिन्न विकासात्मक चरणों, ऊतकों और उपकोशिकीय संरचनाओं के अध्ययन के लिए लागू किया जा सकता है।

Abstract

बहुकोशिकीय जीवों के भीतर, परिपक्व ऊतक और अंग अपने घटक कोशिकाओं की स्थानिक व्यवस्थाओं में उच्च क्रम प्रदर्शित करते हैं। संवेदी एपिथेलिया द्वारा एक उल्लेखनीय उदाहरण दिया जाता है, जहां एक ही या विशिष्ट पहचान की कोशिकाओं को सेल-सेल आसंजन के माध्यम से अत्यधिक संगठित प्लानर पैटर्न दिखाते हुए एक साथ लाया जाता है। कोशिकाएं एक ही दिशा में एक-दूसरे के साथ संरेखित होती हैं और बड़ी दूरी पर समकक्ष ध्रुवता प्रदर्शित करती हैं। परिपक्व एपिथेलिया का यह संगठन मॉर्फोजेनेसिस के दौरान स्थापित किया गया है। यह समझने के लिए कि परिपक्व एपिथेलिया की प्लानर व्यवस्था कैसे प्राप्त की जाती है, वीवो में विकास के दौरान उच्च स्थानिक निष्ठा के साथ सेल अभिविन्यास और विकास गतिशीलता को ट्रैक करना महत्वपूर्ण है। स्थानीय-से-वैश्विक संक्रमणों की पहचान और विशेषता के लिए मजबूत विश्लेषणात्मक उपकरण भी आवश्यक हैं। ड्रोसोफिला पिल्ला ओरिएंटेड सेल आकार परिवर्तनों का मूल्यांकन करने के लिए एक आदर्श प्रणाली है जो एपिथेलियल मॉर्फोजेनेसिस अंतर्निहित है। प्यूपल विकासशील एपिथेलियम स्थिर शरीर की बाहरी सतह का गठन करता है, जिससे अक्षुण्ण जानवरों की दीर्घकालिक इमेजिंग की अनुमति होती है। यहां वर्णित प्रोटोकॉल को वैश्विक और स्थानीय दोनों स्तरों पर वैश्विक और स्थानीय दोनों स्तरों पर सेल व्यवहार की छवि और विश्लेषण करने के लिए डिज़ाइन किया गया है क्योंकि यह बढ़ता है। वर्णित पद्धति को अन्य विकासात्मक चरणों, ऊतकों, उपकोशिकीय संरचनाओं, या मॉडल जीवों पर कोशिका व्यवहार की इमेजिंग के लिए आसानी से अनुकूलित किया जा सकता है।

Introduction

अपनी भूमिकाओं को प्राप्त करने के लिए, एपिथेलियल ऊतक पूरी तरह से अपने सेलुलर घटकों के स्थानिक संगठन पर भरोसा करते हैं। अधिकांश एपिथेलिया में, कोशिकाओं को न केवल एक सटीक कोबलस्टोन परत बनाने के लिए एक दूसरे के खिलाफ पैक किया जाता है बल्कि वे शरीर की कुल्हाड़ियों के सापेक्ष खुद को उन्मुख करते हैं।

सटीक ऊतक संगठन का कार्यात्मक महत्व संवेदी एपिथेलिया में स्पष्ट है, जैसे कशेरुकी आंतरिक कान और रेटिना। पहले मामले में, बाल और सहायक कोशिकाएं ध्वनि और गति1,,2जैसे यांत्रिक आदानों को कुशलतापूर्वक समझने के लिए एक विशिष्ट अक्षीय दिशा में संरेखित होती हैं। इसी तरह, रेटिना3द्वारा इष्टतम ऑप्टिकल गुणों को प्राप्त करने के लिए फोटोरिसेप्टर सेल स्थानिक संगठन आवश्यक है। इस प्रकार उचित शारीरिक कार्य के लिए कोशिका की स्थिति और अभिविन्यास का स्थानिक नियंत्रण विशेष प्रासंगिकता है।

ड्रोसोफिला एक होलोमेटाबोलस कीट है जो कायापलट के माध्यम से अपनी लार्वा शरीर संरचनाओं के पूर्ण परिवर्तन से गुजरती है, जिससे इसके वयस्क ऊतकों को जन्म मिलता है। ड्रोसोफिला पिल्ला विभिन्न गतिशील घटनाओं की नॉनइनवेसिव लाइव इमेजिंग के लिए एक उत्कृष्ट मॉडल है, जिसमें विकासात्मक सेल माइग्रेशन4,सेल डिवीजन और विकास गतिशीलता5,मांसपेशियों का संकुचन6,सेल डेथ7,घाव मरम्मत8और सेल ओरिएंटेशन9शामिल हैं। वयस्क ड्रोसोफिलामें, बाहरी एपिथेलियम उच्च स्तर के आदेश दिखाता है। यह ट्राइहोम (यानी, एकल विशेषण कोशिकाओं से उत्पन्न होने वाले सेल प्रोट्रूशन) की व्यवस्थाओं पर आसानी से मनाया जाता है और फ्लाई के शरीर की सतह10पर संवेदी ब्रिस्टल होते हैं। दरअसल, ट्राइहोम समानांतर पंक्तियों में गठबंधन कर रहे हैं एयरफ्लो11मार्गदर्शन । वयस्क एपिथेलिया का मॉर्फोजेनेसिस और व्यक्तिगत कोशिकाओं की आदेश ित व्यवस्था भ्रूण उत्पत्ति के दौरान शुरू होती है और प्यूपल चरणों के दौरान समापन होती है। जबकि भ्रूण कोशिका विभाजन, इंटरकैलेशन और आकार में सभी ऊतक आदेश12,,13में कमी बदलते हैं, यह विकास के बाद के चरणों में वापस आ जाता है, विशेष रूप से प्यूपल चरणों में, जब फ्लाई परिपक्वता9तक पहुंचती है।

स्थिर ड्रोसोफिला पिल्ला सेल आकार और अभिविन्यास परिवर्तनों का मूल्यांकन करने के लिए एक आदर्श प्रणाली प्रदान करता है। प्यूपल पेट एपिडर्मिस विशेष लाभ प्रस्तुत करता है। जबकि वयस्क सिर, छाती, जननांग और उपांग के अग्रदूत बढ़ते हैं और लार्वा चरणों से पैटर्न हो जाते हैं, हिस्टोब्लास्ट, जो लार्वा एपिडर्मिस में एकीकृत होते हैं, केवल प्यूरीशन14पर बढ़ना और अंतर करना शुरू करते हैं। यह सुविधा ऊतक आदेश की स्थापना में शामिल सभी स्थानिक घटनाओं की ट्रैकिंग को पूरी तरह से9में ट्रैक करने की अनुमति देती है ।

हिस्टोब्लास्ट प्रत्येक प्रकल्पित पेट खंड में गर्भनिरोधक पदों पर भ्रूणीय विकास के दौरान निर्दिष्ट कर रहे हैं। वयस्क के पृष्ठीय पेट के एपिडर्मिस डोरसोपार्श्व रूप से स्थित हिस्टोब्लास्ट घोंसले से प्राप्त होते हैं जो पूर्वकाल और पीछे के डिब्बों में मौजूद होते हैं15,16। जैसे ही हिस्टोब्लास्ट का विस्तार होता है, लार्वा एपिथेलियल कोशिकाओं (एलईसी) की जगह, कॉन्ट्रालेटरल घोंसले पृष्ठीय मिडलाइन पर फ्यूज करते हैं जो एक शंकुदार शीट बनाते हैं17,,18,,19,,20।

यह काम 1) Drosophila pupae के विच्छेदन, बढ़ते, और दीर्घकालिक लाइव इमेजिंग के लिए एक पद्धति का वर्णन करता है, और 2) उच्च स्थानिक संकल्प पर सेलुलर अभिविन्यास और विकास की गतिशीलता का अध्ययन करने के लिए विश्लेषणात्मक तरीके। यहां एक विस्तृत प्रोटोकॉल प्रदान किया गया है, जिसमें प्रारंभिक पिल्ला तैयारी (यानी, मचान और इमेजिंग) से आवश्यक सभी चरणों को विस्तारित करने और दिशात्मकता और अभिविन्यास सुविधाओं के परिमाणीकरण के लिए कवर किया गया है। हम यह भी वर्णन करते हैं कि सेल क्लोन के विश्लेषण से स्थानीय ऊतक गुणों का अनुमान कैसे लगाया जाए। वर्णित सभी चरण न्यूनतम आक्रामक हैं और दीर्घकालिक लाइव विश्लेषण की अनुमति देते हैं। यहां वर्णित तरीकों को आसानी से अनुकूलित किया जा सकता है और अन्य विकासात्मक चरणों, ऊतकों या मॉडल जीवों पर लागू किया जा सकता है।

Protocol

नोट: इस प्रोटोकॉल को पांच चरणों में विभाजित किया गया है: (1) पिल्ले का मंचन, (2) इमेजिंग के लिए पिल्ले की तैयारी करना, (3) बढ़ते पेट एपिथेलिया की लाइव इमेजिंग, (4) आनुवंशिक मोज़ेक की पीढ़ी, (5) डेटा प्रसंस्करण और वि?…

Representative Results

ऊपर वर्णित प्रोटोकॉल में दीर्घकालिक लाइव इमेजिंग के लिए ड्रोसोफिला प्यूपी की तैयारी और सेल ओरिएंटेशन और पेट एपिडर्मिस की विकास गतिशीलता के विश्लेषण के लिए प्रक्रियाओं को शामिल किया ?…

Discussion

लंबी दूरी का आदेश अधिकांश कार्यात्मक शारीरिक इकाइयों की एक अनिवार्य विशेषता है। मॉर्फोजेनेसिस के दौरान, उच्च लौकिक और स्थानिक परिशुद्धता के साथ लागू जटिल निर्देशों के एकीकरण के माध्यम से आदेश प्राप?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम उपयोगी चर्चाओं के लिए मार्टिन-ब्लैंको प्रयोगशाला के सदस्यों का शुक्रिया अदा करना चाहते हैं । हम एनआईसी टैपन (क्रिक इंस्टीट्यूट, लंदन, यूके), ब्लूमिंगटन स्टॉक सेंटर (इंडियाना, यूएसए विश्वविद्यालय) और फ्लाईबेस (ड्रोसोफिला जीन एनोटेशन के लिए) का भी शुक्रिया अदा करते हैं। फेडरिका मैंगिओन को जेए-सीएसआईसी प्रीडॉक्टोरल फेलोशिप द्वारा समर्थित किया गया था। मार्टिन-ब्लैंको प्रयोगशाला को प्रोग्रामा एस्टटाल डी फोमेंटो डी ला इन्स्टिगासिओन सिटिफिफिका वाई टेक्निका डी एक्सेलेंसिया (BFU2014-57019-P और BFU2017-82876-P) से और Fundación रेमोन एरेस से वित्त पोषित किया गया था।

Materials

Analysis Software ImageJ Analyzing data
Drosophila Atpa::GFP Strains employed for data collection
Drosophila hsflp1.22;FRT40A/FRT40A Ubi.RFP.nls Strains employed for data collection
Dumont 5 Forceps FST 11251-20 1.5 mm diameter for dissection
Glass Bottom Plates Mat Tek P35G-0.170-14-C Mounting pupae for data collection
Halocarbon Oil 27 Sigma-Aldrich 9002-83-9 mounting pupae
Inverted Confocal microscope Zeiss LSM700 Data collection
Stereomicroscope Leica DFC365FX Visualization of the pupae during dissection

References

  1. Gillespie, P. G., Muller, U. Mechanotransduction by hair cells: models, molecules, and mechanisms. Cell. 139, 33-44 (2009).
  2. Deans, M. R. A balance of form and function: planar polarity and development of the vestibular maculae. Seminars in Cellular and Developmental Biology. 24, 490-498 (2013).
  3. Stell, W. K. The structure and morphologic relations of rods and cones in the retina of the spiny dogfish, Squalus. Comparative Biochemistry and Physiology – Part A: Comparative Physiology. 42, 141-151 (1972).
  4. Ninov, N., Chiarelli, D. A., Martin-Blanco, E. Extrinsic and intrinsic mechanisms directing epithelial cell sheet replacement during Drosophila metamorphosis. Development. 134, 367-379 (2007).
  5. Bosveld, F., et al. Mechanical control of morphogenesis by Fat/Dachsous/Four-jointed planar cell polarity pathway. Science. 336, 724-727 (2012).
  6. Puah, W. C., Wasser, M. Live imaging of muscles in Drosophila metamorphosis: Towards high-throughput gene identification and function analysis. Methods. 96, 103-117 (2016).
  7. Teng, X., Qin, L., Le Borgne, R., Toyama, Y. Remodeling of adhesion and modulation of mechanical tensile forces during apoptosis in Drosophila epithelium. Development. 144, 95-105 (2017).
  8. Weavers, H., et al. Systems Analysis of the Dynamic Inflammatory Response to Tissue Damage Reveals Spatiotemporal Properties of the Wound Attractant Gradient. Current Biology. 26, 1975-1989 (2016).
  9. Mangione, F., Martin-Blanco, E. The Dachsous/Fat/Four-Jointed Pathway Directs the Uniform Axial Orientation of Epithelial Cells in the Drosophila Abdomen. Cell Reports. 25, 2836-2850 (2018).
  10. Casal, J., Struhl, G., Lawrence, P. A. Developmental compartments and planar polarity in Drosophila. Current Biology. 12, 1189-1198 (2002).
  11. Wootton, R. How flies fly. Nature. 400, 112-113 (1999).
  12. Zallen, J. A., Wieschaus, E. Patterned gene expression directs bipolar planar polarity in Drosophila. Developmental Cell. 6, 343-355 (2004).
  13. Gibson, M. C., Patel, A. B., Nagpal, R., Perrimon, N. The emergence of geometric order in proliferating metazoan epithelia. Nature. 442, 1038-1041 (2006).
  14. Robertson, C. W. The metamorphosis of Drosophila melanogaster, including an accurately timed account of the principal morphological changes. Journal of Morphology. 59, 351-399 (1936).
  15. Mandaravally Madhavan, M., Schneiderman, H. A. Histological analysis of the dynamics of growth of imaginal discs and histoblast nests during the larval development of Drosophila melanogaster. Wilhelm Roux’s archives of Developmental Biology. 183, 269-305 (1977).
  16. Kornberg, T. Compartments in the abdomen of Drosophila and the role of the engrailed locus. Developmental Biology. 86, 363-372 (1981).
  17. Garcia-Bellido, A., Merriam, J. R. Clonal parameters of tergite development in Drosophila. Developmental Biology. 26, 264-276 (1971).
  18. Roseland, C. R., Schneiderman, H. A. Regulation and metamorphosis of the abdominal histoblasts of Drosophila melanogaster. Wilhelm Roux’s archives of Developmental Biology. 186, 235-265 (1979).
  19. Madhavan, M. M., Madhavan, K. Morphogenesis of the epidermis of adult abdomen of Drosophila. Journal of Embryology and Experimental Morphology. 60, 1-31 (1980).
  20. Bischoff, M., Cseresnyes, Z. Cell rearrangements, cell divisions and cell death in a migrating epithelial sheet in the abdomen of Drosophila. Development. 136, 2403-2411 (2009).
  21. Golic, K. G., Lindquist, S. The FLP recombinase of yeast catalyzes site-specific recombination in the Drosophila genome. Cell. 59, 499-509 (1989).
  22. Xu, T., Rubin, G. M. Analysis of genetic mosaics in developing and adult Drosophila tissues. Development. 117, 1223-1237 (1993).
  23. Fonck, E., et al. Effect of aging on elastin functionality in human cerebral arteries. Stroke. 40, 2552-2556 (2009).
  24. Rezakhaniha, R., Fonck, E., Genoud, C., Stergiopulos, N. Role of elastin anisotropy in structural strain energy functions of arterial tissue. Biomechanics and Modeling in Mechanobiology. 10, 599-611 (2011).
  25. Hammer, &. #. 2. 1. 6. ;., Harper, D. A., Ryan, P. D. PAST: paleontological statistics software package for education and data analysis. Palaeontologia electronica. 4, 1-9 (2001).
  26. Gray, R. S., Roszko, I., Solnica-Krezel, L. Planar cell polarity: coordinating morphogenetic cell behaviors with embryonic polarity. Developmental Cell. 21, 120-133 (2011).
  27. Vogg, M. C., Wenger, Y., Galliot, B. How Somatic Adult Tissues Develop Organizer Activity. Current Topics in Developmental Biology. 116, 391-414 (2016).
  28. Collinet, C., Rauzi, M., Lenne, P. F., Lecuit, T. Local and tissue-scale forces drive oriented junction growth during tissue extension. Nature Cell Biology. 17, 1247-1258 (2015).
  29. Martin-Blanco, E., et al. puckered encodes a phosphatase that mediates a feedback loop regulating JNK activity during dorsal closure in Drosophila. Genes and Development. 12, 557-570 (1998).
  30. Dye, N. A., et al. Cell dynamics underlying oriented growth of the Drosophila wing imaginal disc. Development. 144, 4406-4421 (2017).
  31. Williams-Masson, E. M., Malik, A. N., Hardin, J. An actin-mediated two-step mechanism is required for ventral enclosure of the C. elegans hypodermis. Development. 124, 2889-2901 (1997).
  32. Ferguson, M. W. Palate development. Development. 103, 41-60 (1988).

Play Video

Cite This Article
Mangione, F., Martin-Blanco, E. Imaging and Analysis of Tissue Orientation and Growth Dynamics in the Developing Drosophila Epithelia During Pupal Stages. J. Vis. Exp. (160), e60282, doi:10.3791/60282 (2020).

View Video