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Bioengineering

マウス角膜と結膜のライブイメージングのためのカスタム多光子顕微鏡プラットフォーム

Published: May 17, 2020 doi: 10.3791/60944
Automatic Translation
1, 1, 2,3, *1,3,4,5, *6,7
1Department of Biomedical Engineering, National Taiwan University, 2Institute of Pharmacology, College of Medicine, National Taiwan University, 3Molecular Imaging Center, National Taiwan University, 4Department of Dermatology, National Taiwan University Hospital, and College of Medicine, 5Research Center for Developmental Biology and Regenerative Medicine, National Taiwan University, 6Department of Ophthalmology, Chang Gung Memorial Hospital, 7College of Medicine, Chang Gung University
* These authors contributed equally

Summary

ここでは、生きたマウス眼球表面イメージング用の多光子顕微鏡プラットフォームを紹介します。蛍光トランスジェニックマウスは、細胞核、細胞膜、神経線維および毛細血管を眼表面内で可視化します。コラーゲン構造に由来する非線形第二高調波生成信号は、間質アーキテクチャにラベルフリーイメージングを提供します。

Abstract

従来の組織学的解析および細胞培養システムは、生体内の生理学的および病理学的ダイナミクスを完全にシミュレートするには不十分である。多光子顕微鏡(MPM)は、生体内の細胞レベルでの生物医学的研究のための最も一般的なイメージングモダリティの1つとなっており、利点は、高解像度、深部組織の浸透および最小限の光毒性を含む。私たちは、カスタマイズされたマウスアイホルダーと生体内で眼表面をイメージングするための立体的なステージを備えたMPMイメージングプラットフォームを設計しました。二重蛍光タンパク質レポーターマウスは、細胞核、細胞膜、神経線維、および眼表面内の毛細血管の可視化を可能にします。多光子蛍光シグナルに加えて、第2高調波発生(SHG)を同時に取得することで、コラーゲン間質アーキテクチャの特性解析が可能になります。このプラットフォームは、角膜や結膜を含む眼表面全体にわたって正確な位置を持つ生体内イメージングに使用できます。

Introduction

角膜や結膜を含む眼表面構造は、外部の障害から他のより深い眼組織を保護します。角膜は眼の透明な前部であり、眼に光を向ける屈折レンズとしても、防護壁としても機能する。角膜上皮は角膜の最外層であり、表面細胞、翼細胞および基底細胞の別個の層から成っている。角膜のストロマは、角質細胞を埋め込んだ洗練されたコラーゲン状のラメラで構成されています。角膜内皮は、平らな六角形細胞の単層であり、そのポンプ機能1を通じて比較的脱水状態で角膜間質を保つことによって角膜の透明性を維持する上で重要な役割を有する。リンブスは角膜と結膜との境界を形成し、角膜上皮幹細胞2の貯留部である。高血管化結膜は粘液と涙を作り出すことによって目を潤滑するのに役立つ 3.

角膜表面構造の細胞ダイナミクスは、従来、組織学的解析またはインビトロ細胞培養によって研究されており、in vivo細胞ダイナミクスを十分にシミュレートできない可能性があります。非侵襲的なライブイメージングアプローチは、したがって、そのようなギャップを埋めることができます。高解像度、最小限の光ダメージ、より深いイメージング深さを含むその利点のために、MPMは,生物学的研究4、5、6、7、85,6の多様4な分野で強力なモダリティとなっています。7,8角膜イメージングの場合、MPMは細胞内NAD(P)Hに由来する内在性自己蛍光からの細胞情報を提供する。フェムト秒レーザースキャン下での非中心対称型I型コラーゲン繊維に由来する第2高調波発生(SHG)信号は、追加の染色手順9を伴わないコラーゲン間質構造を提供する。以前は、私たちや他のグループは、動物やヒトの角膜,,99、10、11、12、13、14、1510,11のイメージングのためにMPMを15利用してきました。13,1412

特定の細胞集団に蛍光タンパク質を示すトランスジェニックマウスラインは、細胞生物学において、発達、組織恒常性、組織再生、発がんなど様々な研究に広く用いられている。我々は、角膜99、10、毛包10および表皮10の生体内イメージングに蛍光タンパク質で標識されたトランスジェニックマウス株を10MPMで用いた。TdTomatoとEGFPでタグ付けされた細胞核を有する二重蛍光マウス株は、R26R-GR(B6;129-Gt(ROSA)26Sortm1Ytchn/J、#021847)16および16mT-mG(GT(ROSA26)ACTB-tdTomato-EGFP、#00767617)ACTB-tdTomato-EGFP17R26R-GRトランスジェニックマウスラインは、H2B-EGFP融合遺伝子およびmCherry-GPIアンカーシグナル融合遺伝子を含む二重蛍光タンパク質レポーター構築物を含み、Gt(ROSA)26Sor遺伝子に挿入される。mT-mGトランスジェニック株は、細胞膜標的tdTomatoおよびEGFP蛍光クレレポーターマウスである。Cre組み換えの前に、tdTomato蛍光発現を有する細胞膜タンパク質は、様々な細胞に広く存在している。このトランスジェニックマウス株は、Cre励起なしでtdTomatoで核-EGFPと膜を可視化することを可能にします。2匹の雌(R26R-GR+/+)と1匹の雄(mT-mG+/+)トランスジェニックマウスを共に飼育し、実験に十分なマウスを産生した。R26R-GR +--;mT-mG+/-+/-遺伝子型、二重蛍光マウス株を有する彼らの子孫は、この研究で使用された。+/-前述の99,1010のような1つの蛍光レポーターマウスラインと比較して、この二重蛍光レポーターマウス株は、画像化時間の取得を50%短縮します。

本研究では、イメージングプラットフォームとデュアル蛍光トランスジェニックマウスを用いて、眼表面のインビボイメージングに関する詳細な技術プロトコルを段階的に説明する。

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Protocol

すべての動物実験は、国立台湾大学の施設動物管理使用委員会(IACUC)とチャンガン記念病院によって承認された手順に従って行われました。

1. 多光子顕微鏡のセットアップ

  1. 水浸漬20x 1.00 NA目標を持つ直立顕微鏡をベースにしたシステムを構築します(図1A)。
  2. Ti:サファイアレーザー(調整可能な波長)を励起源として使用してください。EGFPの場合は880 nm、tdTomatoの場合は940 nmのレーザー出力波長を設定します(図1A)。
  3. SHG/EGFPとEGFP/tdTomatoの分離のための2つの二色性ミラー(495 nmおよび580 nm)を含める(図1A)。スペクトルは、SHG信号を分離し、バンドパスフィルタ434/17nm、510/84nmおよび585/40nmによってEGFPおよびtdTomatoを分離する(図1A)。
  4. 画像品質を最適化し、光の漂白や組織の損傷を避けるために、レーザーパワーを、角膜イメージング用約35mW、四肢用50mWに設定します。レーザーが光学系を通過する前に、レーザーパワーを測定します。サンプルの正確なレーザーパワーは約8-9 mWです。完全な顕微鏡設計を 図 1Aに示します。
    メモ:レーザーパワーの上限は、光の漂白や組織の損傷を避けるために70 mWに設定されています。

2. ライブイメージングのための動物の準備

  1. 実験には8-12週齢のマウスを使用してください。全身麻酔用に50-80mg/kgのタイルアミンHClとゾラゼパムHClを筋肉内に注入する。つまみで離脱反射への応答の欠如を確認します。安定した呼吸数のモニタリングを可能にするためには、十分な麻酔が重要です。
    注:8週以上のマウスは眼球が成熟しているため、お勧めします。
  2. 加熱されたステージで麻酔下にマウスを置き、温度監視プローブをアヌスに挿入します。
    注意:プローブは、ヒーターの過熱や熱中症の誘導を避けるために、空気にさらされることなく肛門腔に完全に挿入する必要があります。

3. 眼表面の生画像化のための目保持

  1. 眼表面のライブイメージングの場合、ヘッドホルダーを安定させるヘッドホルダーと眼ホルダーの2つの部分からなるカスタム設計のステレオタックスマウスホルダーを使用して、まぶたを後退させ、眼表面全体を露出させます(図1B-D)。
  2. 耳の棒を外部聴覚の肉に挿入し、ヘッドホルダーの3点固定を維持する(図1B,D)。
  3. 局所的に塩水に0.4%オキシブプロカイン塩酸塩の溶液を適用し、眼表面を麻酔するために3分間放置します。
  4. 眼球が適切な手動眼瞼引き込みによって突き出されていることを確認してください。さもなければ、眼球の虚血および出血が起こり得る。
  5. 眼のホルダーのポリエチレンチューブのループを眼瞼のマージンに沿って慎重に配置し、眼表面を露出させます。ポリエチレンチューブのループで覆われた先端を持つ5番目のデュモン鉗子で構成された眼球を安定させます(図1C,D)。
  6. 眼球を安定した状態に保つために、眼ホルダーの遠位鉗子のノブを使用してスクリュー鉗子を取り付けます(図1D)。
  7. 角膜表面に1.338の屈折率を持つアイジェルを浸漬媒体として塗布し、1時間ごとに眼表面の水分を維持します。さらに、眼ゲルの定期的な塗布は、イメージング中に角膜での曇りを避けます。
  8. 中央角膜から周辺領域まで角膜表面全体を横切ってイメージングするために、ステッパー電動ステージにロックされたホルダーで眼球を回転させます(図1C,D)。
    注意: 過剰な量と不十分な量のアイジェルは、イメージング中の画像の品質に影響を与える可能性があります。したがって、表面を定期的に湿らせ続けるために1時間ごとに目ゲルを補うことがイメージングにとって重要である。

4. Zシリアル画像の取得

注: ドロップモーションのアーティファクトを減らすには、すべてのスタックの最初と最後のスライドを設定します。

  1. 画像を撮影する前に、水銀光源でターゲットフィールドを画像化します。
  2. ソフトウェアをオンにするには、顕微鏡ソフトウェアのシンボルをクリックします。
  3. 正しいPMTゲインとデジタルゲインを選択して、眼表面の細胞構造を可視化します。
  4. 最初のスライドと最後のスライドを設定して、スタックを取得します。
  5. z ステップとして、イメージ解像度と z ステップの数値を入力します (例: 512 x 512 および 1 μm)。
  6. Z シリアル イメージを収集するには、[ スタート] ボタンをクリックします。
  7. 同じ領域でライブ画像を2回取得し、最初はSHG/EGFP信号収集用の880 nmの励起で、EGFP/tdTomato信号収集の940 nm励起で2番目に撮影します。
    注: 2 つのスタックの組み合わせでは、3 チャンネルイメージを提供します。画像解像度とスキャン形式のサイズはそれぞれ512 x 512ピクセルと157 μm x157 μmでした。

5. 画像処理と3D再構成

  1. Z シリアル イメージをフィジー ソフトウェア18に読み込みます。
  2. バックグラウンドノイズを低減するためにフィジーのプラグイン 中央値3Dフィルタ を選択します。
  3. フィジーのパッケージ アンシャープマスクフィルタ を選択して、画像をシャープにします。
  4. 画像の品質を自動的に最適化するには、明るさ/コントラストの[自動]をクリックします。
  5. Z シリアル イメージをエクスポートできるようにイメージシーケンスとしてイメージを保存します。
  6. ボリュームレンダリングを使用して3D再構築のために商用ソフトウェア(例えば、Avizo lite)にzシリアル画像をロードします。
  7. すべてのMPM画像において、EGFP、tdTomato、およびSHG信号をそれぞれ擬似緑、赤、シアン色で示します。
  8. スナップショットによって3D構造の画像をキャプチャします。

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Representative Results

このライブイメージングプラットフォームを使用して、マウスの眼表面を細胞レベルで可視化することができる。眼表面の個々の単一細胞を可視化するために、細胞膜に発現する核およびtdTomatoに発現するEGFPを有する二重蛍光トランスジェニックマウスを用いた。コラーゲンが豊富な角膜間質は、SHG信号によって強調された。

角膜上皮において、表在細胞、翼細胞および基底細胞(図2)を可視化した。二重蛍光トランスジェニックマウスでは、基底層から角膜および四肢上皮の両方の表面層に単一細胞をマッピングすることができた(図2)。六角形の表在細胞を観察した(図2の白い矢印)。基底層から外層に向かう核間の間隔も核間の間隔も角膜上皮では増加した(図2)。tdTomato蛍光の細胞質シグナルは、ゴルジ装置を含む膜タンパク質が豊富な細胞内小胞系、小胞体が翼細胞に散乱したことを示した(図2)。

コラーゲン質間質の中で、星状角膜細胞は、二重蛍光トランスジェニックマウスにおける膜標的性tdTomato蛍光によって概説された(図3および図4の黄色の矢印)。コラーゲン間質に埋め込まれた角質細胞は、内皮細胞よりも緩やかに間隔を空けた。さらに、角膜間質における薄い分岐神経も、膜ターゲティングtdTomato信号(図3の白い矢印)によって可視化された。角膜内皮細胞の単層は、ハニカムパターンに連結された比較的均質な六角形の形状を示した(図4の白い矢印)。四肢上皮は上皮細胞の1~2層で構成された(図5)。二重蛍光レポータートランスジェニックマウス株はまた、我々は、結膜内の毛細血管を画像化することを可能にしました (図6A).毛細血管の3Dアーキテクチャは血管内皮を概説することによって再構築された(図6B,6C)。

Figure 1
図1:MPMと回転マウスホルダーの設定
(A) MPM の設定。(B)マウスホルダーのデザイン。マウスホルダーは、回転ヘッドホルダーとアイホルダーで構成されています。(C)マウスアイホルダーのデザイン。眼ホルダーは、角膜と結膜を露出させるためにプラスチックループでまぶたを引き込む。ヘッドホルダーとアイホルダーは、ステージ上で(B)をねじ込み、眼表面の正確で制御可能な回転とイメージングを可能にします。(D) 目ホルダーによる角膜イメージング用生きたマウスの写真。 この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。

Figure 2
図2:二重蛍光トランスジェニックマウスにおける角膜上皮の生画像化。
角膜上皮は、層ごとに画像化し、表在細胞、翼細胞、および基底細胞を含む。表面的なセルは白い矢印でマークされます。スケールバー= 50 μm(Z =上皮の上面からの深さ(μm))。 この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。

Figure 3
図3:角膜間質のライブイメージング。
角膜間質の中で、角質細胞(黄色の矢印)と神経線維(白い矢印頭)は、コラーゲン質素(疑似青色色)に埋め込まれた。スケールバー= 50 μm この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。

Figure 4
図4:中央角膜における角膜内皮の生撮像
六角角膜内皮細胞の単層(白矢印)。スケールバー= 50 μm この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。

Figure 5
図5:四肢上皮の生画像化
二重蛍光トランスジェニックマウスにおける四肢上皮の生画像は、空胞体核を示した。スケールバー= 50 μm この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。

Figure 6
図6:結膜における血管網の生画像化と3次元再構成
(A)結膜間質の毛細血管を可視化した。スケールバー= 50 μm(B) 商用ソフトウェアを用いて行うキャピラリーネットワークの3D再構成スケールバー= 50 μm(C,D)パネルBに示す画像の拡大された3Dビューは、毛細血管(白と黄色の矢印)を概説した蛍光血管内皮細胞。パネルC = 6.26 μm、パネルD= 10 μmのスケールバー。この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。

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Discussion

このカスタム構築されたMPMイメージングプラットフォームは、コントロールソフトウェアを用いて、皮膚10、毛包10および眼表面9、10を含むマウス上皮10器官の生体内イメージングに9使用された(図1A)。10プロジェクトの開始以来、様々な実験のための光学部品を変更する柔軟性のために、カスタム構築システムが使用されました。このイメージング方法は、商用MPM製品に汎用性があります。本プロトコルは、MPM撮像プラットフォームによるマウス眼球表面の生体内イメージングの詳細な方法を説明する。ステレオタキシックマウスホルダー(図1B)を用いて、眼表面全体にわたって異なる領域を可視化することができました。正確な位置決め機能により、指定された領域の時間的な細胞の動的変化を監視することができます。

マウス角膜MPMイメージングのいくつかの研究は、生体内で報告されていますが、20,21,22例えば、長期間にわたって連続的なイメージングを達成するために克服する必要があるいくつかの技術的な制限があります。目の表面20への比較的限られたアクセスを用いて生体内での角膜イメージング用に設計されたプラスチック製のアイカップと比較して、私たちの眼ホルダーは眼球を完全に露出させるだけでなく、眼表面全体を対物レンズにアクセス可能にします(図1C)。

重要な色素またはプローブは、細胞20、21、22に標識する蛍光レポーターとして日常的に使用されているが21、22針注射の侵襲性は、生理的恒熱状態または組織再生プロセス中に器官の自然な細胞動態を破壊する可能性がある。,R26R-GRトランスジェニックマウス株は、細胞核中に安定で明るい緑色蛍光タンパク質を発現し、ゴースト繊維23における筋前駆体の細胞ダイナミクスの可視化に用いられている。mT-mGレポータートランスジェニックマウスラインは、ホメオスタシス24における表皮細胞の分化を解析するために使用した。この二重蛍光トランスジェニックマウス株は、単一のレポーター蛍光トランスジェニックマウスラインと比較して、細胞核と細胞膜の両方の細胞構造情報を同時に提供することで、画像取得の時間を半分に短縮しました。マウスホルダを回転させることにより、内皮細胞と血球の両方の扁平核を、二重蛍光トランスジェニックマウス株を用いて血管内腔内で可視化した(図6)。したがって、このトランスジェニックマウスラインは、病理学的角膜新生の鍵となる将来の毛細血管の細胞ダイナミクスを調べるのに使用することができる。また、このin vivoイメージングプラットフォームは、好中球25、ランゲルハンス細胞26、制御性T細胞(Tregs)27およびマスト細胞28などの異なる免疫細胞の蛍光標識によって角膜病理における免疫応答を27探索するためにも使用することができる。

結論として、マウス眼球表面研究のための強力な生体内MPMイメージングプラットフォームを実証した。生きたMPM立体質ステージと特殊蛍光トランスジェニックマウスの組み合わせにより、角膜、四肢、結膜を含む眼表面の細胞外構造をリアルタイムで可視化できます。この生体内イメージングプラットフォームは、眼表面の細胞ダイナミクスを探索するのに役立ち、さらなる開発により、将来的に眼科薬物スクリーニングに使用される可能性があります。

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Disclosures

著者らは、競合する財政的利益はないと宣言している。

Acknowledgments

台湾の科学技術省からの助成金支援に感謝します (106-2627-M-002-034, 107-2314-B-182A-089, 108-2628-B-002-023,108-2628-B-002-023),国立台湾大学病院(NTUH108-T17)、台湾チャンガン記念病院(CMRPG3G1621,CMRPG3G3G1622,CMRPG3G1622,CMRPG3G1622,CMRPG3G1623)。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
AVIZO Lite software Thermo Fisher Scientific Version: 2019.3.0
Bandpass filters Semrock FF01-434/17
FF01-500/24
FF01-585/40
Dichroic mirrors Semrock FF495-Di01-25x36
FF580-Di01-25x36
Galvano Thorlabs GVS002
Jade BIO control software SouthPort Corporation Jade BIO
Oxybuprocaine hydrochloride Sigma O0270000
PMT Hamamatsu H7422A-40
Polyesthylene Tube BECTON DICKINSON 427401
Stereotaxic mouse holder Step Technology Co.,Ltd 000111
Ti: Sapphire laser Spectra-Physics Mai-Tai DeepSee
Upright microscopy Olympus BX51WI
Vidisic Gel Dr. Gerhard Mann Chem-pharm. Fabrik GmbH D13581
Zoletil Virbac VR-2831

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References

  1. DelMonte, D. W., Kim, T. Anatomy and physiology of the cornea. Journal of Cataract & Refractive Surgery. 37 (3), 588-598 (2011).
  2. Van Buskirk, E. M. The anatomy of the limbus. Eye (London). 3, Pt 2 101-108 (1989).
  3. Hodges, R. R., Dartt, D. A. Tear film mucins: front line defenders of the ocular surface; comparison with airway and gastrointestinal tract mucins. Experimental Eye Research. 117, 62-78 (2013).
  4. Tan, H. Y., et al. Multiphoton fluorescence and second harmonic generation imaging of the structural alterations in keratoconus ex vivo. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 47 (12), 5251-5259 (2006).
  5. Konig, K. Multiphoton microscopy in life sciences. Journal of Microscopy. 200, Pt 2 83-104 (2000).
  6. Rompolas, P., et al. Spatiotemporal coordination of stem cell commitment during epidermal homeostasis. Science. 352 (6292), 1471-1474 (2016).
  7. Park, S., et al. Tissue-scale coordination of cellular behaviour promotes epidermal wound repair in live mice. Nature Cell Biology. 19 (2), 155-163 (2017).
  8. Xin, T., Gonzalez, D., Rompolas, P., Greco, V. Flexible fate determination ensures robust differentiation in the hair follicle. Nature Cell Biology. 20 (12), 1361-1369 (2018).
  9. Wu, Y. F., et al. Intravital multiphoton microscopic imaging platform for ocular surface imaging. Experimental Eye Research. 182, 194-201 (2019).
  10. Wu, Y. F., Tan, H. Y., Lin, S. J. Long-Term Intravital Imaging of the Cornea, Skin, and Hair Follicle by Multiphoton Microscope. Methods in Molecular Biology. , (2019).
  11. Lo, W., et al. Fast Fourier transform-based analysis of second-harmonic generation image in keratoconic cornea. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 53 (7), 3501-3507 (2012).
  12. Tan, H. Y., et al. Multiphoton fluorescence and second harmonic generation microscopy for imaging infectious keratitis. Journal of Biomedical Optics. 12 (2), 024013 (2007).
  13. Jester, J. V., et al. Four-dimensional multiphoton confocal microscopy: the new frontier in cellular imaging. Oculur Surface. 2 (1), 10-20 (2004).
  14. Morishige, N., et al. Second-harmonic imaging microscopy of normal human and keratoconus cornea. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 48 (3), 1087-1094 (2007).
  15. Hao, M., et al. In vivo non-linear optical (NLO) imaging in live rabbit eyes using the Heidelberg Two-Photon Laser Ophthalmoscope. Experimental Eye Research. 91 (2), 308-314 (2010).
  16. Chen, Y. T., et al. R26R-GR: a Cre-activable dual fluorescent protein reporter mouse. PLoS One. 7 (9), 46171 (2012).
  17. Muzumdar, M. D., Tasic, B., Miyamichi, K., Li, L., Luo, L. A global double-fluorescent Cre reporter mouse. Genesis. 45 (9), 593-605 (2007).
  18. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  19. Masihzadeh, O., Lei, T. C., Ammar, D. A., Kahook, M. Y., Gibson, E. A. A multiphoton microscope platform for imaging the mouse eye. Molecular Vision. 18, 1840-1848 (2012).
  20. Zhang, H., et al. Two-photon imaging of the cornea visualized in the living mouse using vital dyes. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 54 (10), 6526-6536 (2013).
  21. Lee, J. H., et al. Comparison of confocal microscopy and two-photon microscopy in mouse cornea in vivo. Experimental Eye Research. 132, 101-108 (2015).
  22. Ehmke, T., et al. In vivo nonlinear imaging of corneal structures with special focus on BALB/c and streptozotocin-diabetic Thy1-YFP mice. Experimental Eye Research. 146, 137-144 (2016).
  23. Webster, M. T., Manor, U., Lippincott-Schwartz, J., Fan, C. M. Intravital Imaging Reveals Ghost Fibers as Architectural Units Guiding Myogenic Progenitors during Regeneration. Cell Stem Cell. 18 (2), 243-252 (2016).
  24. Mesa, K. R., et al. Homeostatic Epidermal Stem Cell Self-Renewal Is Driven by Local Differentiation. Cell Stem Cell. 23 (5), 677-686 (2018).
  25. Goh, C. C., et al. Real-time imaging of dendritic cell responses to sterile tissue injury. Journal of Investigative Dermatology. 135 (4), 1181-1184 (2015).
  26. Kissenpfennig, A., et al. Dynamics and function of Langerhans cells in vivo: dermal dendritic cells colonize lymph node areas distinct from slower migrating Langerhans cells. Immunity. 22 (5), 643-654 (2005).
  27. Chow, Z., Mueller, S. N., Deane, J. A., Hickey, M. J. Dermal regulatory T cells display distinct migratory behavior that is modulated during adaptive and innate inflammation. Journal of Immunology. 191 (6), 3049-3056 (2013).
  28. Dudeck, A., et al. Mast cells are key promoters of contact allergy that mediate the adjuvant effects of haptens. Immunity. 34 (6), 973-984 (2011).

Tags

バイオエンジニアリング、問題159、角膜、結膜、眼表面、多光子顕微鏡、MPM、生体内イメージング、トランスジェニックマウス
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