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Article de méthode

Deux approches cytométriques en flux de détection de surface de ligand NKG2D pour distinguer les cellules souches des sous-populations en vrac dans la leucémie myéloïde aiguë

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DOI :

10.3791/61803

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21 février 2021

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* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Nous présentons deux protocoles de souillure différents pour la détection du ligand NKG2D (NKG2DL) dans les échantillons humains primaires de leucémie myéloïde aiguë (AML). La première approche est basée sur une protéine de fusion, capable de reconnaître tous les ligands connus et potentiellement encore inconnus, tandis que le second protocole repose sur l’ajout de plusieurs anticorps anti-NKG2DL.

Résumé

Dans le même patient, l’absence de l’expression de surface des ligands de NKG2D (NKG2DL) a été montrée pour distinguer des sous-populations leucémiques avec des propriétés de cellules souches (soi-disant cellules souches leucémiques, LSCs) des cellules leucémiques de contrepartie plus différenciées qui manquent de potentiel d’initiation de la maladie bien qu’elles portent des mutations génétiques spécifiques de leucémie semblables. Les NKG2DL sont des auto-molécules biochimiquement très diversifiées de type CMH de classe I. Les cellules saines dans des conditions homéostatiques n’expriment généralement pas NKG2DL à la surface cellulaire. Au lieu de cela, l’expression de ces ligands est induite lors de l’exposition au stress cellulaire (par exemple, transformation oncogène ou stimuli infectieux) pour déclencher l’élimination des cellules endommagées par la lyse par les cellules immunitaires exprimant les récepteurs NKG2D telles que les cellules tueuses naturelles (NK). Fait intéressant, l’expression de surface de NKG2DL est sélectivement supprimée dans les sous-populations de LSC, permettant à ces cellules d’échapper à la surveillance immunitaire médiée par NKG2D. Ici, nous présentons une analyse côte à côte de deux méthodes différentes de cytometry d’écoulement qui permettent la recherche sur l’expression de surface de NKG2DL sur des cellules cancéreuses c.-à-d., une méthode impliquant l’identification de pan-ligand et une méthode impliquant la souillure avec des anticorps multiples contre des ligands simples. Ces méthodes peuvent être utilisées pour séparer les sous-populations cellulaires négatives viables de NKG2DL ayant des propriétés putatives de cellules souches cancéreuses de NKG2DL non-LSC positives.

Introduction

Les cellules NK sont des effecteurs importants du système immunitaire inné qui peuvent reconnaître et éliminer les cellules malignes ou les cellules saines stressées (par exemple, par une infection virale) sans stimulation antigénique préalable1. Ce processus est étroitement régulé par un répertoire complexe de récepteurs activants ( tels que les récepteurs de cytotoxicité naturelle (RCN), NKG2D et CD16 - et de récepteurs inhibiteurs qui sont largement représentés par des récepteurs tueurs de type immunoglobuline (KIRs)2. La liaison des KIRs aux molécules humaines de classe I de l’antigène leucocytaire (HLA) sur les cell....

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Protocole

Des échantillons de patients ont été prélevés après approbation du Comité d’examen éthique des Hôpitaux universitaires de Bâle et de Tuebingen.

1. Biotinylation de la protéine de fusion NKG2D

REMARQUE: Cette étape est effectuée avec un kit de biotinylation (voir la table des matériaux) conformément aux instructions du fabricant. Cette étape du protocole doit être effectuée au moins 24 h avant la coloration. La protéine de fusion NKG2D biotinylée doit être conservée à -20 °C.

  1. Décongeler à la fois la biotine, ainsi que les tubes protéiques de fusion NKG2D à température ambiante (RT).
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Résultats

Les deux protocoles présentés ici permettent l’enrichissement d’AML LSC par des analyses cytométriques en flux utilisant CD34, un marqueur connu de LSC17,en combinaison avec l’expression de surface de NKG2DL en utilisant la reconnaissance pan-ligand ou la coloration avec des anticorps groupés contre des ligands individuels. Dans la figure 1, nous montrons que les échantillons analysés de laM sont positifs pour CD34 et NKG2DL, mais qu’il existe également des sous-popul.......

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Discussion

Ici, nous présentons deux méthodes cytométriques de flux qui peuvent détecter l’expression de surface de NKG2DL sur les cellules primaires humaines d’AML. Nous montrons que les deux méthodes de détection peuvent être utilisées en conjonction avec d’autres colorations d’anticorps (par exemple, la détection de l’expression de CD34). Des taches similaires peuvent également être effectuées sur d’autres types de cellules primaires et lignées cellulaires.

Nous avons récemment montré que l’absence de.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Cette étude a été soutenue par des subventions du Fonds national suisse de la recherche scientifique (179239), de la Fondation de lutte contre le cancer (Zuerich), de la Fondation Wilhelm Sander au CL (2019.042.1) et de la Fondation Novartis pour la recherche médico-biologique à C.L. En outre, ce projet a reçu un financement du programme de recherche et d’innovation Horizon 2020 de l’Union européenne dans le cadre de la convention de subvention Marie Skłodowska-Curie n° 765104. Nous remercions le Centre de cytométrie en flux de Bâle pour son soutien.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
7-amminoactinomycine D (7-AAD)InvitrogenA1310Colorant de viabilité
96 plaque de puits U fondSarstedt83392550096 Plaque de puits pour notre cytomètre en flux
APC Souris Anti-Humaine cd34BD 555824Détection d’anticorps CD34
RRID : AB_398614
Albumine sérique bovinePanReac AppliChemA1391,0050Composant de la coloration tampon
Acide éthylènediaminetétraacétiqueRoth8043.1Composant du tampon de coloration Sérum de
veau fœtal (FCS)BioConcept2-01F10-IComposant du milieu RPMI supplémenté
FlowJo 10.2BD/Logiciel permettant l’analyse des données pour l’expérience de cytométrie en flux
Chèvre- anti-lapin IgG (H+L) Alexa Fluor 488Thermo ScientificA21222Anticorps secondaire détectant les anticorps primaires pour MICA et MICB
RRID : AB_1037853
Protéine chimère humaine NKG2D Fc, CFR& D1299-NK-050Protéine de fusion détectant tous les NKG2DLs
RRID :
Human ULBP-1 AnticorpsR& DAF1380Détection d’anticorps ULBP1
RRID : AB_354765
Anticorps humains ULBP-2/5/6R& DAF1298Détection d’anticorps ULBP2/5/6
RRID : AB_354725
Anticorps humain ULBP-3R& DAF1517Détection d’anticorps ULBP3
RRID : AB_354835
MICA Anticorps polyclonauxThermo ScientificPA5-35346Détection d’anticorps MICA
RRID : AB_2552656
MICB Anticorps polyclonauxThermo ScientificPA5-66698Détection d’anticorps MICB
RRID : AB_2663413
Kit de biotinylation d’anticorps en une étape 1 bandelette, pour 8 réactionsMiltenyibiotec130-093-385Kit de biotinylation pour la protéine de fusion NKG2DL
Phosphate Salinetamponné Sigma AldrichD8537-500MLComposant du tampon de coloration
Lapin anti-chèvre IgG (H+L) Alexa Fluor 488Thermo ScientificA11034Anticorps secondaire détectant les anticorps primaires pour les ULBPs
RRID : AB_2576217
Rainbow Étalonnage Particules (8 pics) 3.0 umSpherotech Inc.RCP-30-20APerles utilisées pour l’entretien des appareils de cytométrie en flux
Milieu RPMISigma AldrichR8758-500MLMilieu de culture cellulaire
RayBright Perles de compensation universellesRaybiotech137-00013-100Perles utilisées pour créer la matrice de compensation
Streptavidine, R-Phycoérythrine Conjuguée (SAPE) - 1 mg/mLInvitrogenS866Etape consécutive pour la détection de la protéine de fusion biotinylée NKG2DL

Références

  1. Topham, N. J., Hewitt, E. W. Natural killer cell cytotoxicity: how do they pull the trigger. Immunology. 128 (1), 7-15 (2009).
  2. Campbell, K. S., Hasegawa, J. Natural killer cell biology: an update and future directions. The Journal of Allergy and Clini....

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Réimpressions et autorisations

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