В этом исследовании мы представляем метод визуализации в режиме реального времени с использованием конфокальной микроскопии для наблюдения за клетками, двигамися в направлении поврежденных тканей путем инкубации ex vivo с кохлеарным эпителием, содержащим орган Корти.
Для изучения влияния мезенхимальных стволовых клеток (MSC) на регенерацию клеток и лечение, этот метод отслеживает миграцию MSC и морфологические изменения после совместной культуры с кохлеарной эпителием. Орган Корти был обездвижен на пластиковой крышке, нажав на часть мембраны Рейсснера, генерируемую во время вскрытия. MSCs ограничивается стеклянный цилиндр мигрировали в сторону кохлеарного эпителия, когда цилиндр был удален. Их преобладающая локализация наблюдалась в модиоле органа Корти, выровненном в направлении, аналогичном нервному. Тем не менее, некоторые MSCs были локализованы в области лимбуса и показали горизонтально удлиненной формы. Кроме того, миграция в область волосяных клеток была увеличена, и морфология MSCs изменилась на различные формы после лечения канамицина. В заключение, результаты этого исследования показывают, что кокультура MSCs с кохлеарной эпителия будет полезна для развития терапии через трансплантацию клеток и для исследований регенерации клеток, которые могут изучить различные условия и факторы.
Потеря слуха может происходить врожденно или может быть вызвана постепенно несколькими факторами, включая старение, наркотики и шум. Потеря слуха часто трудно лечить, потому что это очень сложно восстановить нарушенную функцию, как только волосковых клеток, ответственных за слух повреждены1. По данным Всемирной организации здравоохранения, 461 миллион человек во всем мире, по оценкам, имеют потерю слуха, что составляет 6,1% населения мира. Из тех, кто с потерей слуха, 93% взрослых, и 7% детей.
Был предпринят ряд подходов к лечению потери слуха; в частности, перспективным методом лечения стал подход к регенерации с использованием MSC. Когда ткань повреждена, MSCs естественно выпущены в кровеносную систему и мигрируют к месту ушиба где они выделяет различные молекулы для того чтобы сформировать микроокноронику которая способствуетрегенерации 2. Следовательно, важно разработать метод лечения поврежденных тканей путем миграции внешне имплантированных MSCs к целевым органам и их последующей секрециимолекул,которые вызывают мощную иммунную регуляцию, ангиогенез и анти-апоптоз для повышения восстановления поврежденной функцииклеток 3,4,5.
Процесс самонаведения, в котором MSCs мигрируют в поврежденные ткани может быть наиболее важным препятствием для преодоления. MSCs имеют системный механизм самонаведения с последовательными шагами привязывания / прокатки, активации, ареста, трансмиграции / диапедез, имиграция 6,7,8. В настоящее время предпринимаются усилия по выявлению путей совершенствования этих шагов. Различные стратегии, в том числе генетическая модификация, инженерия поверхности клеток, в пробирке грунтовки, и магнитное руководство,были протестированы 6,7. Кроме того, было предпринято несколько попыток содействовать защите и регенерации слуховых волосковых клеток путем самонаведения MSCs к месту повреждения улитки. Тем не менее, отслеживание MSCs in vivo является трудоемким и трудоемким и требует высокоспециализированныхнавыков 9.
Для решения этой проблемы был разработан метод наблюдения за самонаведением MSC в улитке через промежуточную конфокаловую микроскопию, которая фотографирует миграцию клеток в течениенескольких часов (рисунок 1). Он был разработан в начале 20-говека и в последнее время стал мощным инструментом для изучения миграции конкретных клеток.
Рисунок 1: Графический абстрактный. (A) После того, как расчлененный орган Корти прилипает на пластиковой крышке с использованием типсов, крышки помещаются на 35-мм стеклянное дно конфокальной микроскопической тарелки, и (B) стеклянный цилиндр расположен. (C) После заполнения внутренней части стеклянного цилиндра со средним, (D) GFP помечены MSCs со средним добавляются тщательно за пределами цилиндра. (E) После инкубации на ночь, (F) стеклянный цилиндр удаляется, и изображения принимаются с конфокального микроскопа. Аббревиатуры: GFP – зеленый флуоресцентный белок; MSCs и мезенхимальные стволовые клетки. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Тщательно изучена трансплантация MSC в поврежденные участки для содействия регенерации поврежденных клеток, и терапевтический эффект очевиден. Трансплантация и последующая дифференциация MSCs, как сообщается, восстановить слух у крыс с потерей слуха, вызванной 3-нитропропионовой<sup class="x…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана научно-исследовательскими грантами (NRF-2018-R1D1A1B07050175, HURF-2017-66) от Национального исследовательского фонда (NRF) Кореи и Исследовательского фонда Халлымского университета.
10X PBS Buffer | GenDEPOT | P2100-104 | |
4% Formalin | T&I | BPP-9004 | |
Ampicillin | sigma | A5354-10ml | |
BSA | sigma | A4503-100G | |
confocal dish | SPL | 200350 | |
confocal microscope | ZEISS | LSM800 | |
coverslip | SPL | 20009 | |
DMEM/F12 | Gibco | 10565-018 | |
Fetal Bovine Serum | Thermo Fisher scientific | 16140071 | |
Fluorsheild with DAPI | sigma | F6057 | |
Forcep | Dumont | 0508-L5-P0 | |
HBSS | Thermo Fisher scientific | 14065056 | |
HEPES | Thermo Fisher scientific | 15630080 | |
N2 supplement | Gibco | 17502-048 | |
Phalloidin-iFluor 647 Reagent | abcam | ab176759 | |
Stage Top Incubator | TOKAI HIT | WELSX | |
Strain C57BL/6 mouse messenchymal stem cells with GFP | cyagen | MUBMX-01101 | |
Triton X-100 | sigma | T8787 |