Summary
Roux-en-Y gastric bypass (RYGB) utförs för att behandla fetma och diabetes. Mekanismerna bakom RYGB:s effekt är dock inte helt förstådda, och studierna begränsas av tekniska svårigheter som leder till hög dödlighet i djurmodeller. Den här artikeln innehåller instruktioner om hur du utför RYGB hos råttor med hög framgångsgrad.
Abstract
Roux-en-Y gastric bypass (RYGB) utförs ofta för behandling av svår fetma och typ 2-diabetes. Mekanismen för viktminskning och metaboliska förändringar är dock inte väl förstådd. Flera faktorer tros spela en roll, inklusive minskat kaloriintag, minskad näringsabsorption, ökad mättnad, frisättning av mättnadsfrämjande hormoner, förändringar i gallsyrametabolism och förändringar i tarmfloran.
Råttan RYGB-modellen presenterar ett idealiskt ramverk för att studera dessa mekanismer. Tidigare arbete med musmodeller har haft hög dödlighet, från 17 till 52%, vilket begränsar deras antagande. Råttmodeller visar mer fysiologisk reserv till kirurgiska stimulanser och är tekniskt lättare att anta eftersom de möjliggör användning av kirurgiska häftapparater. En utmaning med kirurgiska häftapparater är dock att de ofta lämnar en stor magpåse som inte är representativ för RYGB hos människor.
I detta protokoll presenterar vi ett RYGB-protokoll hos råttor som resulterar i en liten magpåse med kirurgiska häftapparater. Med hjälp av två häftapparatbränder som tar bort råttans skogsomach får vi en mindre magpåse liknande den efter en typisk mänsklig RYGB. Kirurgiska häftning resulterar också i bättre hemostas än skarp uppdelning. Dessutom innehåller råttans skogsomach inga körtlar och dess avlägsnande bör inte ändra RYGB: s fysiologi.
Viktminskning och metaboliska förändringar i RYGB kohorten var betydande jämfört med sham kohorten, med betydligt lägre glukos tolerans vid 14 veckor. Dessutom har detta protokoll en utmärkt överlevnad på 88,9% efter RYGB. De färdigheter som beskrivs i detta protokoll kan förvärvas utan tidigare mikrokirurgisk erfarenhet. När den har behärskats kommer denna procedur att ge ett reproducerbart verktyg för att studera mekanismerna och effekterna av RYGB.
Introduction
Fetma och typ 2-diabetes har blivit världsepidemier1. Även om medicinsk viktminskning kan förbättra diabetes hos patienter, gynnas de med svår diabetes mest av bariatrisk kirurgi. Bariatrisk kirurgi har visat sig vara säker och effektiv vid viktminskning och förbättra eller bota typ 2 diabetes2,3, även hos dem med långvarig sjukdom4. Metabola bariatriska förfaranden, såsom den nuvarande guldstandard Roux-en-Y gastric bypass (RYGB) kirurgi, inducera snabba och ihållande förbättringar av glukos homeostas samtidigt minska behovet av diabetiker mediciner5,6,7.
Efter RYGB sker glukoshomeostasförbättring snabbt och är oberoende av viktminskningen8. Två stora teorier har föreslagits för att förklara de metaboliska förändringar i samband med diabetes eftergift som uppstår efter metabolisk kirurgi. Först postulerar hindguthypotesen att högre koncentrationer av osmälta näringsämnen efter bypass når den distala tarmen vilket förbättrar frisättningen av hormoner som GLP-1. Å andra sidan föreslår foreguthypotesen att kringgå proximal tarm minskar utsöndring av anti-inkrementellhormoner. Båda dessa effekter kan leda till tidig förbättring av glukosmetabolism9.
Djurmodeller har potential att vara ett kraftfullt verktyg för att studera dessa mekanismer. En stor barriär för att använda mus- eller råttmodeller är dock den tekniska svårigheten att utföra dessa procedurer. De flesta studier har förlitat sig på mus- ellerråttmodeller 10,11,12. Musmodeller har varit svåra eftersom musmagen är för liten för att användahäftapparatenheter 11, och dödligheten är oacceptabelt hög, från 17 till 52%13. Hos råttor är vissa protokoll fortfarande tekniskt svåra att utföra på grund av komplex ligatur av magkärl innan magendelas 12,14. Andra modeller delar magen med en häftapparat men lämnar en stor påse som inte överensstämmer med inlägget RYGB human anatomi11. I den här modellen ger vi detaljerade instruktioner om hur man utför RYGB med linjära häftapparater i en råttmodell vilket resulterar i en magpåse mer i linje med den mänskliga anatomin. Sammantaget var detta förfarande associerat med utmärkt överlevnad priser och metabola resultat.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Djuranvändningsprotokollen godkändes av Health Science Animal Care and Use Committee vid University of Alberta (AUP00003000). Se bild 1 för ett diagram som visar RYGB-anatomin.
1. Roux-en-Y gastric bypass
- Beredning av djur och operativ inställning
- En vecka före operationen, ge råttorna oral rehydreringsterapi och flytande kost utöver deras fasta kost och vatten för att acklimatisera dem till denna nya kost.
- Snabba råttor med endast tillgång till vatten i 12-18 timmar före operationen.
- Se till att råttorna är fastade på en upphöjd trådplattform så att de inte kan konsumera strömaterial.
- Injicera råttor med subkutan lång buprenorfin ihållande frisättning (SR) med en dos på 1 mg/kg omedelbart före operationen.
- Autoklav alla kirurgiska instrument, handdukar och draperier.
- Rengör arbetsytan, värmedynan och bedövningsnoskonen med 70% etanol.
- Ställ in operationsytan med ett fungerande mikroskop, bedövningsmaskin och förnödenheter på ett sätt som är ergonomiskt för operationskirurgen.
- Använd en temperaturreglerad värmedyna och ställ in på 37 °C.
- Placera ett sterilt draperi eller handduk över värmedynan.
- Fyll ett 50 ml sterilt koniskt rör med 0,9% saltlösning.
- Bedövning och beredning
- Inducera anestesi med 4% isofluran enligt tidigare fastställda protokoll15.
- Tryck på bakfoten på alla fyra extremiteterna för att säkerställa att det inte finns något smärtsvar.
- Kontrollera om det finns tillräcklig anestesi och andningsfrekvens efter var 5:e minut.
- Applicera smörjmedel på båda ögonen för att förhindra torkning.
- Raka håret från buken.
- Rengör buken med en povidone-jodlösning. Låt lösningen torka och byt till sterila handskar.
- Drapera råttan med en öppning i draperiet för att exponera buken.
- Placera instrument, suturer, bomullspinne och en 10 ml spruta på en plats som gör det enkelt att komma åt under proceduren.
- Median laparotomi
- Gör ett 3 cm snitt i bukens övre mittlinje med en skalpell, strax under xyphoidprocessen som landmärke.
- Använd sax, dela fascian och peritoneum, var noga med att stanna mittlinjen på linea alba för att minska blödningen från rectus abdominus. Om det finns blödning, kontrollera det med termisk eller elektrocautery.
- Mobilisera magen
- Använd två våta bomullspinne, dissekera trubbigt magtillbehör.
- När du stöter på täta vidhäftningar, använd termisk cautery för att dela magtillbehör med försiktighet för att undvika att cauterizing magen. Dela ligamentet mellan magen och tillbehörsleverloben kraftigt för att minska risken för leverskada med magmobilisering.
- För större blodkärl, särskilt vid de korta magartärerna, ligate med 6-0 polypropylen sutur.
- Skapa ett fönster på höger distala sida av matstrupen men proximalt till vänster magartär. Se till att en bomullspinne kan nå in i detta område bak till ytan. Magen mobiliseras tillräckligt när den kan exteriöriseras utanför buken.
- Identifiera och dela jejunum
- Identifiera ligamentet av Treitz genom att följa jejunum proximally tills observera det är fäst vid tvärgående mesocolon.
- Mät 7 cm distally, identifiera en plats mellan mesenterikärl och dela tarmen med mikrosax. Undvik Peyers fläckar när du delar tarmen. Var noga med att bara dela tarmen och inte mesenteri.
- Placera en ren, saltlösning blötsvamp innan du delar tarmen för att minimera förorening.
- Kontrollera om det finns ett litet korsningskärl i tarmen vid gränsen till tunntarmen och dela detta med cautery för att undvika blödning.
- Fortsätt att dela mesenteri 1 cm mot den mesenteriiska basen.
- Identifiera det proximala och distala jejunumet. Placera det proximala jejunumet under en våt gasväv till höger om råttan och det distala jejunumet till vänster om råttan.
- Häftning av magen
- Sätt i en 45 mm linjär skärhäftare med 3,5 mm häfthöjd över skogsomachens vita linje för att skapa en mindre påse. Vänta i 10 s innan du avfyrar häftapparaten.
- Placera trycket med gasväv på häftklammerlinjerna i 1 minut för att säkerställa hemostas. Om hemostas inte uppnås enbart med tryck, översyss blödning längs häftklammerlinjen med 6-0 polypropylenfigur på åtta suturer.
- Utför en andra häftklammerbrand över magen in i fönstret som skapats tidigare. Vänta i 10 s innan du avfyrar häftapparaten. Tryck hålls längs häftklammerlinjen för att säkerställa hemostas, och översydd kan behövas.
- Gastrojejunostomi
- Gör en gastrotomi omedelbart efter att ha häftat magen. Förseningar i detta kan orsaka magdistension och aspiration eftersom magen är diskontinuerlig efter den andra magklammern.
- Använd en 11-bladig skalpell och skapa en gastrotomi vid den distala påsen. Express maginnehåll genom gastrotomin. Detta är viktigt för att förhindra magdistension och aspiration. Förläng denna gastrotomi med mikrosaxen till ca 5 mm. Gastrotomin är tillräckligt stor för bomullspinnespetsen bara för att passa igenom.
- Mobilisera den distala änden av jejunum intill gastrotomin och placera så att mesenteri inte vrids.
- Medan du sutulerar anastomosen, se till att tarmen hålls fuktig genom att täcka den med saltlösningsdränkt gasväv och applicera saltlösning regelbundet.
- Använd 6-0 polydioxanon eller polypropylen sutur, placera en vistelse sutur vid den sämre marginalen av anastomosen och försiktigt dra tillbaka med ett snäpp. Knyt med tre knop.
- Placera en stay sutur vid anastomosens överlägsna marginal och dra försiktigt tillbaka med ett snäpp. Knyt med sex knop.
- Suturera anastomosens främre sida på ett kontinuerligt sätt och ta bett 1 mm breda och 1 mm från varandra med försiktighet för att undvika att ta baksidan.
- När suturen har nått den sämre vistelse suturen, bind dessa tillsammans med ytterligare sex knop.
- När den främre sidan är klar, vänd tarmen och magen över och passera den sämre vistelse sutur genom den mesenteriiska defekten. Applicera snäppet igen och dra tillbaka underlägset.
- För den bakre sidan av anastomosen, placera full tjocklek avbruten 6-0 suturer, 1 mm bred och försald 1 mm från varandra, varsamt för att undvika att ta baksidan. Dessa är bundna med sex knop vardera.
OBS: Den främre sidan av anastomosen sutureras på ett kontinuerligt sätt medan den bakre sidan görs på ett avbrutet sätt. Detta förhindrar potentiell striktur eller stenos i samband med en kontinuerlig omkrets stängning. - Kontrollera läckaget genom att försiktigt trycka på luminalinnehållet över anastomosen. Om det finns områden med läckage, förstärk dem noggrant med avbrutna suturer. Var noga med att undvika att ta bakväggen när du förstärker med extra suturer.
- Jejunojejunostomi
- Från gastrojejunostomy, mät 20 cm distally.
- Skapa en jejunotomy på den antimesenteriska sidan med hjälp av 11-bladskalpellen. Undvik att göra jejunotomin över Peyers plåster.
- Utöka denna jejunotomy med mikrosax, så att den är lika stor som gallans bukspottskörtel. Se till att en bomullspinne bara passar in.
- Placera den biliopancreatic lem så att det inte finns någon vridning av mesenteri.
- Utför anastomosen på samma sätt som gastrojejunostomin med 6-0 vistelse suturer på de överlägsna och sämre sidorna. Den främre sidan utförs med kontinuerliga suturer medan den bakre sidan utförs med avbrutna suturer.
- Se till att tarmen hålls fuktig med saltlösning under denna anastomos.
- Kontrollera läckaget genom att försiktigt trycka luminalinnehållet genom anastomosen. Om det finns områden med läckage, förstärk dem med avbrutna suturer.
- Flytta tarmen och magen
- Se till att det inte finns någon vridning av påsen, kvarvarande magen eller levern. Se till att leverns vänstra lob är främre mot magen och inte fångad bakom påsen eftersom detta kan orsaka komprimeringslever ischemi.
- Placera tarmen i buken i sin naturliga position så att det inte finns någon vridning.
- Buken stängning
- Stäng fascian med 3-0 polyglactin på ett kontinuerligt sätt. 3-0 polydioxanon kan också användas.
- Stäng huden med 2-0 silke på ett kontinuerligt sätt.
- Anestesi uppkomst
- Minska isofluran till noll men fortsätt extra syre.
- Administrera ett lokalt bedövningsmedel som ett stänkblock till snittet.
- Administrera 10 ml subkutan 5% dextros i normal saltlösning (D5NS) i den subkutana vävnaden bakom halsen.
- Placera en elisabetansk råttkrage innan råttan är helt vaken. Var noga med att passa den snyggt men inte för hårt för att orsaka obehag.
OBS: Kragen hålls på till dag 5 för att förhindra sårskada.
2. Skenkirurgi
OBS: Sham kirurgi utförs på samma sätt som RYGB, men inga anastomoser utförs.
- En gastrotomi skapas och stängs sedan med 6-0 polydioxanon eller polypropylen suturer.
- En jejunotomy skapas 7 cm distala till ligamentet i Treitz och sedan stängs med 6-0 polydioxanon eller polypropylen suturer.
3. Postoperativ vård
- Postoperativ vård
- Husråttor individuellt och håll dem på upphöjda trådplattformar tills fast mat återinförs för att förhindra konsumtion av sängkläder och luminal obstruktion.
OBS: Postoperativa kost återupptas gradvis som ödem vid gastrojejunostomy kan orsaka obstruktion med tidig återupptagande av fast kost. - Inspektera fötterna dagligen medan råttor är på upphöjda trådplattformar för eventuella hudförändringar.
- Håll råttor på vatten och oral rehydrering terapi diet under de första 72 h.
- Administrera 10 ml D5NS var 12:e timme under de första 72 timmar.
- Administrera subkutan kortverkande buprenorfin vid 0, 01 mg/kg om råttorna verkar ha ont. Rat Grimace-skalan används för att bedöma för smärta16.
- På postoperativ dag 3, tillsätt gnagare flytande diet. Fortsätt att ge vatten och oral rehydreringsbehandling.
- På postoperativa dag 5, starta om fettrik kost. Fortsätt att tillhandahålla vatten och flytande kost. Ta bort elizabethanska kragen.
- På postoperativa dag 7, avbryta flytande kost.
- Ta bort hudsuturer på postoperativa dag 10-14.
- Husråttor individuellt och håll dem på upphöjda trådplattformar tills fast mat återinförs för att förhindra konsumtion av sängkläder och luminal obstruktion.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Djur och inhysning
36 hanråttor från Wistar var inhysta i par och matades med 60 % steril gnagardiet med hög fetthalt från sex veckors ålder (figur 2). Vid 16 veckors ålder genomgick de RYGB eller sham kirurgi. Efter den första postoperativa veckan återupptogs råttor på en fettrik diet. Hälften av råttorna avlivades vid 2 veckor postoperativa och den andra hälften avlivades vid 14 veckor postoperativa.
Dödlighet
Totalt överlevde 33 (91,7%) råttor till det planerade studiemåttet. Alla råttor som genomgår tidig dödshjälp genomgick obduktion av en veterinär. Två råttor avlivades inom 24 timmar. En RYGB hade strävan pneumonitis och en bluff råtta hade fascial dehiscence med osalvageable tarm. En annan RYGB råtta avlivades vid två veckor på grund av att anastomotic läcka från gastrojejunostomy. Totalt överlevde 88,9% av RYGB råttor för att studera effektmått.
Kroppsvikt
Råttor som genomgår RYGB hade en lägre postoperativ vikt än falska råttor. Figur 3 visar absoluta vikter för råttor postoperativt medan figur 4 visar postoperativa procentuella viktförändringar som var statistiskt signifikanta vid alla tidpunkter postoperativt. Vid 14 veckor hade råttor som hade RYGB en genomsnittlig procentuell viktförändring på 6,4% medan råttor med skenkirurgi hade 23,7% (p = 0,0001).
Intraperitoneal glukostolerans testning
Fasta blodglukos var inte signifikant annorlunda mellan någon av kohorterna. Området under kurvan var dock betydligt lägre i RYGB jämfört med sham vid 13 veckor (18,1 vs 23,8 mmol-h/L, p=0,046, figur 5) men var detsamma för RYGB vs sham vid 1 vecka (20,8 vs 23,3 mmol-h/L, p=0,68).
Bild 1:Roux-en-Y gastric bypass anatomi Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 2:Preoperativ absolut vikt på fettrik kost; RYGB, Roux-en-Y gastric bypass Klicka här för att se en större version av den här figuren.
Figur 3: Postoperativ absolut vikt på fettrik kost; RYGB, Roux-en-Y gastric bypass Klicka här för att se en större version av den här figuren.
Figur 4: Postoperativ procentuell viktförändring på fettrik kost; RYGB, Roux-en-Y gastric bypass Klicka här för att se en större version av den här figuren.
Figur 5:Intraperitoneal glukostoleranstestning vid gastric bypass vs sham vid 13 veckor. RYGB, Roux-en-Y gastric bypass Klicka här för att se en större version av den här figuren.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
RYGB innebär att man skapar en liten magpåse (mindre än 30 ml) och skapandet av en biliopancreatic lem och en Roux lem (Figur 1). Hos människor är gallans bukspottskörtel vanligtvis 30 till 50 cm och transporterar sekret från magrester, lever och bukspottkörtel. Roux-lemmen är vanligtvis 75 till 150 cm lång och är den primära kanalen för intag av mat. Den gemensamma kanalen är den återstående små tarmdistala till där de två extremiteterna går med och är där majoriteten av matsmältningen och absorptionen uppstår, eftersom bukspottskörtelenzymer och gallblandning med intagen mat17.
Mekanismen för viktminskning i RYGB är multimodal. Den lilla magpåsen minskar matintaget genom mekanisk begränsning. Bypassen resulterar i en malabsorptiv komponent eftersom en betydande del av tunntarmen inte absorberar kalorier och näringsämnen. På senare tid, studier har visat att tarmhormoner spelar en betydande roll i viktminskning efter RYGB samt. Dessa är främst genom ghrelin, peptid-YY, kolecystokinin (CCK) och GLP-1 hormonvägar18.
Råttmodeller ger en kraftfull metod för att studera mekanismerna bakom både vikt och metaboliska effekter av RYGB. I detta dokument presenterar vi ett RYGB-protokoll som har låg dödlighet med betydande viktminskning och metabola effekter. När operatören blev bekant med tekniken tog proceduren cirka 90 minuter att utföra. Protokollet kan också ändras med längre biliopancreatic och Roux lem längder för att potentiellt öka viktminskning och metabolisk effekt. Dessutom är det tekniskt mer genomförbart än andra modeller eftersom det tillåter användning av kirurgiska häftapparater för att uppnå hemostas och minimera operativ tid. Modeller som förlitar sig på skarp delning av magen utan häftning resulterar ofta i högre dödlighet på grund av betydande blodförlust. De tekniska färdigheter som krävdes för att utföra förfarandet var relativt lätta att förvärva, och eleverna kunde bekvämt utföra förfarandet efter cirka fem till tio icke-återvinningsförfaranden.
Ett av de kritiska stegen i detta protokoll är att begränsa blodförlusten under mobilisering av magen. Noggrann användning av termisk cautery i kombination med sutur ligatur kärl är viktigt. Det är också viktigt att utföra minst hälften av anastomosens omkrets på ett avbrutet sätt. Detta förhindrar överdriven striktring vid anastomoserna. Dessutom är det viktigt att kontrollera läckor eftersom dessa kan leda till sepsis och död. Innan buken stängs är det viktigt att leverns vänstra lob placeras i sin naturliga, främre position och att det inte finns någon rotation i tarmen eller magen eftersom detta kan leda till visceral ischemi.
Postoperativ vård är avgörande för detta protokoll. Upphöjda trådplattformar krävs under både fasta och postoperativa perioder eftersom förbrukningen av fast material leder till anastomotiska hinder. Det är mycket viktigt att tillhandahålla subkutan vätska eftersom råttorna kanske inte tolererar orala vätskor under den omedelbara postoperativa perioden. Råttorna bör acklimatiseras till oral rehydreringsbehandling och flytande kost eftersom råttor kan undvika nya dieter på grund av associationer med postoperativ smärta. Detta kostprotokoll bidrar till betydande viktminskning under den omedelbara postoperativa perioden i både RYGB och sham kohorter, och vikt återhämtning i sham gruppen tog cirka fem veckor. Strikt efterlevnad av detta postoperativa protokoll är dock avgörande för att minska sjuklighet och dödlighet efter RYGB. Dessutom är frekvent undersökning av råttorna som använder Rat Grimace Scale viktigt för att upptäcka för sjuklighet. I vår studie utvecklade en råtta en sen anastomotisk läcka som snabbt upptäcktes med hjälp av denna skala och tillät tidig dödshjälp för att minska lidandet.
En av fördelarna med denna metod är att det resulterar i en mindre påse genom användning av kirurgiska häftapparater för att minska magblödning. När vi försökte dela magen kraftigt utan häftapparater leder det till överdriven blödning och en mycket högre dödlighet. Detta leder dock också till avlägsnande av skogsomach, och detta kan leda till fysiologiska förändringar som skiljer sig från den hos mänsklig RYGB. Skogsomach är dock unik för gnagare och innehåller inga körtlar, och bör inte orsaka några förändringar i tarmhormoner.
Den viktigaste begränsningen av denna metod är att det kräver två kirurgiska häftapparat omladdningar per råtta, vilket kan vara kostsamt. Utmärkta överlevnadsresultat minskar dock potentiellt kostnaderna genom att kräva färre råttor för en studie, vilket resulterar i bättre utnyttjande av djurhållningsanläggningar, kirurgisk utrustning och forskningspersonal.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Ethicon levererade två 45 mm linjära skärklammer, flera 3,5 mm häftapparat omladdningar och 6-0 polypropylen suturer. Författare har inga andra intressekonflikter att deklarera.
Acknowledgments
Denna studie finansierades av American Society for Metabolic and Bariatric Surgery Research Award. Ethicon levererade vänligt suturer, häftapparater och klämmor. Huvudförfattarens doktorandforskning finansierades av University of Alberta Clinician Investigator Program och Alberta Innovates Clinician Fellowship. Vi vill också tacka Michelle Tran för hennes medicinska illustration av RYGB-anatomin.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 2-0 Silk Sutures | Ethicon | K533 | |
| 3-0 Vicryl Sutures | Ethicon | J219H | |
| 4% Isoflurane | N/A | N/A | |
| 5% Dextrose and 0.9% Sodium Chloride Solution - 1000 mL | Baxter | 2B1064 | |
| 50 mL Conical Centrifuge Tubes | Fisher Scientific | 14-432-22 | |
| 6-0 Prolene Sutures | Ethicon | 8805H | |
| Anesthetic Machine | N/A | N/A | |
| Animal Hair Shaver | N/A | N/A | |
| Betadine Solution | N/A | N/A | |
| Castrojievo Needle Holder with lock 14 cm (smooth curved) | World Precision Instruments | 503258 | |
| ECHELON FLEX Articulating Endoscopic Linear Cutter | Ethicon | EC45A | |
| Economy Tweezers #4 | World Precision Instruments | 501978 | |
| ENDOPATH ETS Articulating Linear Cutter 45mm Reloads | Ethicon | 6R45B | |
| Far Infrared Warming Pad Controller with warming pad (15.2 cm W x 20.3 cm L), pad temperature probe, and 10 disposable, non-sterile sleeve protectors | Kent Scientific | RT-0515 | |
| Large Rat Elizabethan Collar | Kent Scientific | EC404VL-10 | |
| Liquid Diet Feeding Tube (150 mL) | Bio-Serv | 9007 | |
| Liquid Diet Feeding Tube Holder (short adjustable) | Bio-Serv | 9015 | |
| Micro Mosquito Forceps | World Precision Instruments | 500452 | |
| Micro Scissors | World Precision Instruments | 503365 | |
| Mouse Diet, High Fat Fat Calories (60%), Soft Pellets | Bio-Serv | S3282 | |
| No. 11 Blade and Scalpel Handle | N/A | N/A | |
| OPMI Vario Surgical Microscope | ZEISS | S88 | |
| Raised Floor Grid | Tecniplast | GM500150 Raised Floor Grid | |
| Rodent Liquid Diet, Lieber-DeCarli '82, Control, 4 Liters/Bag | Bio-Serv | F1259 | |
| Sodium Chloride Irrigation 0.9% Solution - 500 mL | Baxter | JF7633 | |
| Sterile Cotton Swabs | N/A | N/A | |
| Sterile Drape | N/A | N/A | |
| Sterile Towel | N/A | N/A | |
| Thermal Cautery Unit | World Precision Instruments | 501293 |
References
- World Health Organization. Obesity and Overweight. , Available from: http://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/obesity-and-overweight (2018).
- Courcoulas, A. P., et al. Three-year outcomes of bariatric surgery vs lifestyle intervention for type 2 diabetes mellitus treatment. JAMA Surgery. 15213 (10), 1-9 (2015).
- Ardestani, A., Rhoads, D., Tavakkoli, A. Insulin cessation and diabetes remission after bariatric surgery in adults with insulin-treated type 2 diabetes. Diabetes Care. 38 (4), 659-664 (2015).
- Casella, G., et al. Ten-year duration of type 2 diabetes as prognostic factor for remission after sleeve gastrectomy. Surgery for Obesity and Related Diseases. 7 (6), 697-702 (2011).
- Panunzi, S., De Gaetano, A., Carnicelli, A., Mingrone, G. Predictors of remission of diabetes mellitus in severely obese individuals undergoing bariatric surgery. Annals of Surgery. 261 (3), 459-467 (2015).
- Edelman, S., et al. Control of type 2 diabetes after 1 year of laparoscopic adjustable gastric banding in the helping evaluate reduction in obesity (HERO) study. Diabetes, Obesity and Metabolism. 16 (10), 1009-1015 (2014).
- Mingrone, G., et al. Metabolic surgery versus conventional medical therapy in patients with type 2 diabetes: 10-year follow-up of an open-label, single-centre, randomised controlled trial. The Lancet. 397 (10271), 293-304 (2021).
- Thaler, J. P., Cummings, D. E. Minireview: Hormonal and metabolic mechanisms of diabetes remission after gastrointestinal surgery. Endocrinology. 150 (6), 2518-2525 (2009).
- Mingrone, G., Castagneto-Gissey, L. Mechanisms of early improvement / resolution of type 2 diabetes after bariatric surgery. Diabetes and Metabolism. 35 (6), 518-523 (2009).
- Arapis, K., et al. Remodeling of the residual gastric mucosa after Roux-en-Y gastric bypass or vertical sleeve gastrectomy in diet-induced obese rats. PloS One. 10 (3), 012414 (2015).
- Bruinsma, B. G., Uygun, K., Yarmush, M. L., Saeidi, N. Surgical models of Roux-en-Y gastric bypass surgery and sleeve gastrectomy in rats and mice. Nature Protocols. 10 (3), 495-507 (2015).
- Bueter, M., et al. Roux-en-Y gastric bypass operation in rats protocol. Journal of visualized experiments : JoVE. (64), (2012).
- Stevenson, M., Lee, J., Lau, R. G., Brathwaite, C. E. M., Ragolia, L. Surgical mouse models of vertical sleeve gastrectomy and Roux-en Y gastric bypass: a Review. Obesity Surgery. , (2019).
- Hao, Z., et al. Reprogramming of defended body weight after Roux-En-Y gastric bypass surgery in diet-induced obese mice. Obesity. 24 (3), 654-660 (2016).
- McErlane, S. Adult rodent anesthesia SOP. UBC Animal Care Guidelines. , Available from: https://animalcare.ubc.ca/sites/default/files/documents/ACC-01-2017_Anesthesia.pdf (2017).
- Sotocinal, S. G., et al. The Rat Grimace Scale: a partially automated method for quantifying pain in the laboratory rat via facial expressions. Molecular pain. , 1-10 (2011).
- Elder, K. A., Wolfe, B. M. Bariatric surgery: A review of procedures and outcomes. Gastroenterology. 132 (6), 2253-2271 (2007).
- Lim, R. B. Bariatric procedures for the management of severe obesity: Descriptions. UpToDate. , Available from: https://www.uptodate.com/ (2017).
