Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Medicine
Click here for the English version

Medicine

En protokol for Roux-en-Y gastrisk bypass hos rotter ved hjælp af lineære hæftemaskiner

Published: August 21, 2021 doi: 10.3791/62575
Automatic Translation
1, 1, 2, 1, 1, 3, 1
1Department of Surgery, University of Alberta, 2Faculty of Medicine and Dentistry, University of Alberta, 3Department of Medicine, University of Alberta

Summary

Roux-en-Y gastrisk bypass (RYGB) udføres til behandling af fedme og diabetes. De mekanismer, der ligger til grund for RYGB's effektivitet, er imidlertid ikke fuldt ud forstået, og undersøgelser er begrænset af tekniske vanskeligheder, der fører til høj dødelighed i dyremodeller. Denne artikel indeholder instruktioner om, hvordan rygb udføres hos rotter med høje succesrater.

Abstract

Roux-en-Y gastrisk bypass (RYGB) udføres almindeligvis til behandling af svær fedme og type 2 diabetes. Men mekanismen for vægttab og metaboliske ændringer er ikke godt forstået. Flere faktorer menes at spille en rolle, herunder reduceret kalorieindtag, nedsat næringsstofabsorption, øget mæthed, frigivelse af mæthedsfremmende hormoner, skift i galdesyremetabolismen og ændringer i tarmmikrobiotaen.

Rygb-modellen for rotter udgør en ideel ramme for undersøgelse af disse mekanismer. Tidligere arbejde på musemodeller har haft en høj dødelighed, der spænder fra 17 til 52%, hvilket begrænser deres vedtagelse. Rottemodeller demonstrerer mere fysiologisk reserve til kirurgisk stimulus og er teknisk lettere at vedtage, da de giver mulighed for brug af kirurgiske hæftemaskiner. En udfordring med kirurgiske hæftemaskiner er imidlertid, at de ofte efterlader en stor mavepose, som ikke er repræsentativ for RYGB hos mennesker.

I denne protokol præsenterer vi en RYGB-protokol hos rotter, der resulterer i en lille gastrisk pose ved hjælp af kirurgiske hæftemaskiner. Ved hjælp af to hæftemaskine brande, der fjerner formaven af rotten, får vi en mindre gastrisk pose svarende til den, der følger en typisk menneskelig RYGB. Kirurgisk hæftning resulterer også i bedre hemostase end skarp division. Derudover indeholder rottens formave ingen kirtler, og fjernelsen af den bør ikke ændre RYGB's fysiologi.

Vægttab og metaboliske ændringer i RYGB-kohorten var signifikante sammenlignet med den falske kohorte med betydeligt lavere glukosetolerance efter 14 uger. Desuden har denne protokol en fremragende overlevelse på 88,9% efter RYGB. De færdigheder, der er beskrevet i denne protokol, kan erhverves uden tidligere mikrokirurgisk erfaring. Når denne procedure er mestret, vil den være et reproducerbart værktøj til undersøgelse af RYGB's mekanismer og virkninger.

Introduction

Fedme og type 2 diabetes er blevet verdensomspændende epidemier1. Selv om medicinsk vægttab kan forbedre diabetes hos patienter, dem med svær diabetes drage størst fordel af fedmekirurgi. Bariatrisk kirurgi har vist sig at være sikker og effektiv ved vægttab og forbedring eller helbredelse af type 2 diabetes2,3, selv hos personer med langvarig sygdom4. Metaboliske bariatriske procedurer, såsom den nuværende guldstandard Roux-en-Y gastrisk bypass (RYGB) kirurgi, fremkalde hurtige og vedvarende forbedringer i glukosehomøostase og samtidig reducere behovet for diabetisk medicin5,6,7.

Efter RYGB sker glukosehomøostaseforbedring hurtigt og er uafhængig af vægttabet8. To store teorier er blevet foreslået at forklare de metaboliske ændringer i forbindelse med diabetes remission, der opstår efter metabolisk kirurgi. For det første postulerer bagguthypotesen, at højere koncentrationer af ufordøjede næringsstoffer efter bypass når tarmens distale tarm, hvilket øger frigivelsen af hormoner som GLP-1. På den anden side antyder foreguthypotesen, at omgåelse af den proksimale tarm reducerer udskillelsen af anti-incretinhormoner. Begge disse virkninger kan føre til tidlig forbedring af glukosemetabolismen9.

Dyremodeller har potentialet til at være et effektivt værktøj til at studere disse mekanismer. En væsentlig hindring for at udnytte muse- eller rottemodeller er imidlertid de tekniske vanskeligheder ved at udføre disse procedurer. De fleste undersøgelser har været baseret på muse- ellerrottemodellerne 10,11,12. Musemodeller har været vanskelige, da musemaven er for lille til at bruge hæftemaskineenheder11, og dødeligheden er uacceptabelt høj, fra 17 til 52%13. Hos rotter forbliver nogle protokoller teknisk vanskelige at udføre på grund af kompleks ligation af gastriske fartøjer, før maven divideres12,14. Andre modeller deler maven ved hjælp af en hæftemaskine, men efterlader en stor pose, der ikke er i overensstemmelse med stillingen RYGB menneskelige anatomi11. I denne model giver vi detaljerede instruktioner om, hvordan man udfører RYGB ved hjælp af lineære hæftemaskiner i en rottemodel, hvilket resulterer i en gastrisk pose mere i overensstemmelse med den menneskelige anatomi. Samlet set var denne procedure forbundet med fremragende overlevelsesrater og metaboliske resultater.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Protokollerne for dyrefoder blev godkendt af Health Science Animal Care and Use Committee ved University of Alberta (AUP00003000). Se figur 1 for et diagram, der viser RYGB-anatomien.

1. Roux-en-Y gastrisk bypass

  1. Forberedelse af dyr og operativ opsætning
    1. En uge før operationen, give rotterne med oral rehydrering terapi og flydende kost ud over deres faste kost og vand til at akklimatisere dem til denne nye kost.
    2. Hurtige rotter med kun adgang til vand i 12-18 timer før operationen.
      1. Sørg for, at rotterne er fastspændt på en hævet trådplatform, så de ikke kan forbruge strøelsesmateriale.
    3. Intravenøse rotter med subkutan lang buprenorphin vedvarende frigivelse (SR) ved en dosis på 1 mg/kg umiddelbart før operationen.
    4. Autoklave alle kirurgiske instrumenter, håndklæder og gardiner.
    5. Rengør driftsfladen, varmepuden og bedøvelseskup med 70% ethanol.
    6. Opsæt driftsfladen med et fungerende mikroskop, bedøvelsesmaskine og forsyninger på en måde, der er ergonomisk for driftskirurgen.
    7. Brug en temperaturreguleret varmepude og sæt den til 37 °C.
    8. Placer en steril drapering eller håndklæde over varmepuden.
    9. Fyld et sterilt konisk rør på 50 mL med 0,9% saltvand.
  2. Bedøvelse og forberedelse
    1. Fremkalde anæstesi ved hjælp af 4% isoflurane som pr tidligere etablerede protokoller15.
    2. Tryk på bagfoden på alle fire lemmer for at sikre, at der ikke er nogen smerterespons.
    3. Kontroller, om der er tilstrækkelig anæstesi og åndedrætsfrekvens efter hvert 5. minut.
    4. Påfør smøremiddel på begge øjne for at forhindre tørring.
    5. Barber hår fra maven.
    6. Rengør maven med en povidone-jodopløsning. Lad opløsningen tørre og skifte til sterile handsker.
    7. Drapere rotten med en åbning i draperingen for at udsætte maven.
    8. Placer instrumenter, suturer, vatpinde og en 10 mL sprøjte på et sted, der giver nem adgang under proceduren.
  3. Median laparotomi
    1. Lav et 3 cm snit i den øvre midterlinje i maven ved hjælp af en skalpel, lige under xyphoidprocessen som et vartegn.
    2. Brug saks, opdele fascia og peritoneum, med omhu for at bo midterlinjen på linea alba for at reducere blødning fra rectus abdominus. Hvis der er blødning, skal du kontrollere det med termisk eller elektrokauteri.
  4. Mobilisering af maven
    1. Brug to våde vatpinde, stumpt dissekere gastriske vedhæftede filer.
    2. Når du støder på tætte vedhæftninger, skal du bruge termisk cautery til at opdele gastriske vedhæftede filer med omhu for at undgå at ætse maven. Skarpt opdele ledbåndet mellem maven og tilbehør lever lap at reducere risikoen for lever rive med mave mobilisering.
    3. For større blodkar, især på den korte mavearterier, ligate ved hjælp af 6-0 polypropylen sutur.
    4. Opret et vindue på højre distale side af spiserøret, men proksimale til venstre mavearterie. Sørg for, at en vatpind kan nå ind i dette område efterfølgende. Maven er tilstrækkeligt mobiliseret, når det kan eksteriørs uden for maven.
  5. Identificere og opdele jejunum
    1. Identificer Treitz' ledbånd ved at følge jejunum proximally, indtil det observeres, at det er vedhæftet den tværgående mesocolon.
    2. Mål 7 cm distally, identificere et sted mellem mesenteriske fartøjer, og dividere tarmen med mikro saks. Undgå Peyer's patches, når dividere tarmen. Pas på kun at opdele tarmen og ikke mesenteriet.
    3. Placer en ren, saltvand gennemblødt svamp før dividere tarmen for at minimere forurening.
    4. Kontroller for tilstedeværelsen af et lille krydsningsfartøj i mesenteriet ved grænsen til tyndtarmen og del dette med cautery for at undgå blødning.
    5. Fortsæt med at opdele mesenteriet 1 cm mod den mesenteriske base.
    6. Identificer det proksimale og distale jejunum. Placer det proksimale jejunum under en våd gaze på rottens højre og distale jejunum til venstre for rotten.
  6. Hæftning af maven
    1. Sæt en 45 mm lineær skæreklassiker med 3,5 mm hæftehøjde over formavens hvide linje for at skabe en mindre pose. Vent i 10'ere, før hæftemaskinen affyres.
    2. Placer trykket ved hjælp af gaze på hæftelinjerne i 1 min for at sikre hemostase. Hvis hemostasis ikke opnås med tryk alene, blødning langs korte linje er oversewn ved hjælp af 6-0 polypropylen tal på otte suturer.
    3. Udfør en anden korte brand over maven ind i vinduet skabt tidligere. Vent i 10'ere, før hæftemaskinen affyres. Trykket holdes langs hæftelinjen for at sikre hemostase, og oversewing kan være nødvendig.
  7. Gastrojejunostomi
    1. Lav en gastrotomi umiddelbart efter hæftning af maven. Forsinkelser i dette kan forårsage mave-distension og aspiration som maven er diskontinuerlig efter den anden mave korte.
    2. Brug en 11-blades skalpel, skabe en gastrotomi på distal pose. Ekspres maveindhold gennem gastrotomien. Dette er vigtigt for at forhindre mave-distension og aspiration. Forlænge denne gastrotomi ved hjælp af mikrosaks til ca. 5 mm. Gastrotomien er lavet stor nok til, at vatpinden bare passer igennem.
    3. Mobilisere distale ende af jejunum støder op til gastrotomi og sted sådan, at mesenteriet ikke er snoet.
    4. Mens suturering af anastomose, sikre, at tarmen holdes fugtig ved at dække det med saltvand-gennemblødt gaze og genanvende saltvand regelmæssigt.
    5. Brug 6-0 polydioxanon eller polypropylen sutur, placere et ophold sutur på ringere margin af anastomose og forsigtigt trække sig tilbage ved hjælp af et snuptag. Slips med tre knob.
    6. Placer et ophold sutur på den overlegne margen af anastomose og forsigtigt trække sig tilbage ved hjælp af et snuptag. Bind med seks knob.
    7. Sutur den forreste side af anastomose på en kontinuerlig måde, idet bider 1 mm bred og 1 mm fra hinanden med omhu for at undgå at tage bagsiden.
    8. Når suturen har nået den ringere ophold sutur, binde disse sammen med yderligere seks knob.
    9. Når den forreste side er færdig, flip tarmen og maven over og passere ringere ophold sutur gennem mesenteric defekt. Anvend snappen igen, og træk den ringere tilbage.
    10. For den bageste side af anastomose, sted fuld tykkelse afbrudt 6-0 suturer, 1 mm bred, og fordelt 1 mm fra hinanden, med omhu for at undgå at tage bagsiden. Disse er bundet med seks knob hver.
      BEMÆRK: Den forreste side af anastomose er sutureret i en kontinuerlig måde, mens den bageste side sker i en afbrudt måde. Dette forhindrer potentiel forsnævring eller stenose forbundet med en kontinuerlig omkreds lukning.
    11. Kontroller lækagen ved forsigtigt at skubbe luminalt indhold hen over anastomose. Hvis der er områder med lækage, skal du forsigtigt forstærke dem med afbrudte suturer. Pas på at undgå at tage bagvæggen, når du forstærker med ekstra suturer.
  8. Jejunojejunostomi
    1. Fra gastrojejunostomien måles 20 cm distally.
    2. Opret en jejunotomi på den antimesenteriske side ved hjælp af 11-blades skalpel. Undgå at gøre jejunotomy over Peyer's patches.
    3. Udvid denne jejunotomi ved hjælp af mikro saks, således at det er den samme størrelse som biliopancreatic lemmer. Sørg for, at en vatpind bare passer ind.
    4. Placer biliopancreatic lemmer sådan, at der ikke er nogen vridning af mesenteriet.
    5. Udfør anastomose på samme måde som gastrojejunostomi med 6-0 ophold suturer på de overlegne og ringere sider. Den forreste side udføres med kontinuerlige suturer, mens den bageste side udføres med afbrudte suturer.
    6. Sørg for, at tarmen holdes fugtig med saltvand under denne anastomose.
    7. Kontroller for lækage ved forsigtigt at skubbe luminalt indhold gennem anastomose. Hvis der er områder med lækage, forstærke dem med afbrudt suturer.
  9. Flyt tarm og mave
    1. Sørg for, at der ikke er nogen vridning af posen, rest mave eller lever. Sørg for, at den venstre lap af leveren er forreste til maven og ikke fanget bag posen, da dette kan forårsage kompressiv lever iskæmi.
    2. Placer tarmen i maven i sin naturlige position, så der ikke er nogen vridning.
  10. Lukning af mave
    1. Luk fascia med 3-0 polyglactin på en kontinuerlig måde. 3-0 polydioxanon kan også anvendes.
    2. Luk huden med 2-0 silke på en kontinuerlig måde.
  11. Bedøvelse fremkomst
    1. Reducer isoflurane til nul, men fortsæt supplerende ilt.
    2. Administrere en lokalbedøvelse som en splash blok til indsnittet.
    3. 10 mL subkutan 5% dextrose i normal saltvand (D5NS) i det subkutane væv bag nakken.
    4. Placer en elizabethansk rotte krave, før rotten er helt vågen. Pas på at passe det stramt, men ikke for stramt til at forårsage ubehag.
      BEMÆRK: Halsbåndet holdes på indtil dag 5 for at forhindre sårdesår.

2. Fingeret kirurgi

BEMÆRK: Sham kirurgi udføres svarende til RYGB, men ingen anastomoses udføres.

  1. En gastrotomi er skabt og derefter lukket med 6-0 polydioxanone eller polypropylen suturer.
  2. En jejunotomi er skabt 7 cm distal til ledbåndet i Treitz og derefter lukket med 6-0 polydioxanone eller polypropylen suturer.

3. Postoperativ pleje

  1. Postoperativ pleje
    1. Husrotter individuelt og hold dem på hævede trådplatforme, indtil fast mad genindføres for at forhindre forbrug af strøelse og luminal obstruktion.
      BEMÆRK: Postoperativ kost genoptages gradvist, da ødem ved gastrojejunostomien kan forårsage obstruktion med tidlig genoptagelse af fast kost.
    2. Undersøg fødderne dagligt, mens rotter er på hævede trådplatforme for eventuelle hudforandringer.
    3. Hold rotter på vand og oral rehydrering terapi kost for de første 72 timer.
    4. Administrere 10 mL D5NS hver 12. time i de første 72 timer.
    5. Der gives subkutan kortvirkende buprenorphin ved 0,01 mg/kg, hvis rotter synes at have smerter. Rat Grimace Scale bruges til at vurdere for smerter16.
    6. På postoperativ dag 3 tilsættes gnaver flydende kost. Fortsæt med at give vand og oral rehydrering terapi.
    7. På postoperativ dag 5 skal du genstarte fedtfattig kost. Fortsæt med at give vand og flydende kost. Fjern den elizabethanske krave.
    8. På postoperativ dag 7 skal flydende kost afbrydes.
    9. Fjern hud suturer på postoperativ dag 10-14.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Dyr og stalde
36 wistar-hanrotter blev anbragt parvis og fik tilført 60% steril gnaver med højt fedtindhold fra seks uger(figur 2). Ved 16 ugers alder gennemgik de RYGB eller falsk kirurgi. Efter den første postoperative uge blev rotter genoptaget på en diæt med højt fedtindhold. Halvdelen af rotterne blev aflivet efter 2 uger efter operativt, og den anden halvdel blev aflivet efter 14 uger efter brug.

Dødelighed
I alt overlevede 33 (91,7%) rotter til det planlagte slutpunkt for undersøgelsen. Alle rotter, der gennemgår tidlig aktiv dødshjælp, gennemgik obduktion af en dyrlæge. To rotter blev aflivet inden for 24 timer. En RYGB havde aspiration pneumonitis og en fingeret rotte havde fascial dehiscence med usalvageable tarm. En anden RYGB rotte blev aflivet på to uger på grund af anastomotic lækage fra gastrojejunostomi. I alt overlevede 88,9% af RYGB-rotterne for at studere slutpunktet.

Kropsvægt
Rotter, der gennemgik RYGB, havde en lavere postoperativ vægt end falske rotter. Figur 3 viser absolutte vægte for rotter efter drift, mens figur 4 viser postoperativ procentvis vægtændring, som var statistisk signifikant på alle tidspunkter efter drift. Efter 14 uger havde rotter, der havde RYGB, en gennemsnitlig procentvis vægtændring på 6,4%, mens rotter med falsk kirurgi havde 23,7% (p = 0,0001).

Test af intraperitoneal glukosetolerance
Faste blodsukker var ikke signifikant forskellig mellem nogen af kohorterne. Området under kurven var imidlertid betydeligt lavere i RYGB sammenlignet med fingeret efter 13 uger (18,1 vs. 23,8 mmol-h/L, p=0,046, figur 5), men var det samme for RYGB vs sham efter 1 uge (20,8 vs. 23,3 mmol-h/L, p=0,68).

Figure 1
Figur 1: Roux-en-Y gastrisk bypass anatomi Klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 2
Figur 2:Præoperativ absolut vægt på fedtfattig kost; RYGB, Roux-en-Y gastrisk bypass Klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 3
Figur 3:Postoperativ absolut vægt på fedtfattig kost; RYGB, Roux-en-Y gastrisk bypass Klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 4
Figur 4:Ændring i den procentvise vægt på fedtfattig kost; RYGB, Roux-en-Y gastrisk bypass Klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 5
Figur 5:Intraperitoneal glukosetolerancetest i gastrisk bypass vs. sham efter 13 uger. RYGB, Roux-en-Y gastrisk bypass Klik her for at se en større version af dette tal.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

RYGB indebærer oprettelse af en lille gastrisk pose (mindre end 30 mL) og skabelse af et biliopancreatic lem og et Roux-lem(figur 1). Hos mennesker er galdehavsbenet typisk 30 til 50 cm og transporterer sekreter fra maverester, lever og bugspytkirtel. Roux-lemmerne er typisk 75 til 150 cm lange og er den primære kanal for indtaget mad. Den fælles kanal er den resterende tyndtarm distal til, hvor de to lemmer tiltræder, og er, hvor størstedelen af fordøjelsen og absorptionen opstår, da bugspytkirtelenzymer og galde blandes med indtaget mad17.

Mekanismen for vægttab i RYGB er multimodal. Den lille mavepose reducerer fødeindtagelsen gennem mekanisk begrænsning. Omfartsvejen resulterer i en malabsorptive komponent som en betydelig del af tyndtarmen er ikke absorbere kalorier og næringsstoffer. For nylig har undersøgelser vist, at tarmhormoner spiller en væsentlig rolle i vægttab efter RYGB så godt. Disse er primært gennem ghrelin, peptid-YY, cholecystokinin (CCK), og GLP-1 hormon veje18.

Rottemodeller giver en kraftfuld metode til at studere mekanismerne bag både vægten og metaboliske virkninger af RYGB. I dette papir præsenterer vi en RYGB-protokol, der har lav dødelighed med betydelige vægttab og metaboliske virkninger. Når operatøren blev fortrolig med teknikken, tog proceduren cirka 90 minutter at udføre. Protokollen kan også ændres med længere biliopancreatic og Roux lemmer længder til potentielt øge vægttab og metabolisk effekt. Desuden er det teknisk mere muligt end andre modeller, da det giver mulighed for brug af kirurgiske hæftemaskiner til at opnå hemostase og minimere driftstiden. Modeller, der er afhængige af skarp opdeling af maven uden hæftning, resulterer ofte i højere dødelighed på grund af betydeligt blodtab. De tekniske færdigheder, der kræves for at udføre proceduren, var relativt lette at erhverve, og eleverne var i stand til komfortabelt at udføre proceduren efter ca. fem til ti ikke-genopretningsprocedurer.

Et af de kritiske trin i denne protokol er at begrænse blodtab under mobilisering af maven. Omhyggelig brug af termisk cautery kombineret med sutur ligation af fartøjer er vigtig. Det er også vigtigt at udføre mindst halvdelen af omkredsen af anastomos på en afbrudt måde. Dette forhindrer overdreven strenghed på anastomoses. Desuden er kontrol af lækager afgørende, da disse kan føre til sepsis og død. Før du lukker maven, er det vigtigt, at leverens venstre lap placeres i sin naturlige, forreste position, og at der ikke er nogen rotation i tarmen eller maven, da dette kan føre til visceral iskæmi.

Postoperativ pleje er afgørende for denne protokol. Hævede trådplatforme er påkrævet i både faste- og postoperative perioder, da forbruget af fast materiale fører til anastomotiske forhindringer. Det er af afgørende betydning at levere subkutan væske, da rotterne muligvis ikke tåler orale væsker i den umiddelbare postoperative periode. Rotterne bør akklimatiseres til oral rehydrering terapi og flydende kost som rotter kan undgå nye kostvaner på grund af foreninger med postoperative smerter. Denne diætprotokol bidrager til et betydeligt vægttab i den umiddelbare postoperative periode i både RYGB- og sham-kohorterne, og vægtgenvinding i sham-gruppen tog omkring fem uger. Streng overholdelse af denne postoperative protokol er imidlertid afgørende for at reducere sygelighed og dødelighed efter RYGB. Derudover er hyppig undersøgelse af rotterne ved hjælp af Rat Grimace Scale vigtig for at opdage sygelighed. I vores undersøgelse udviklede en rotte en sen anastomotisk lækage, som hurtigt blev opdaget ved hjælp af denne skala og gjorde det muligt for tidlig aktiv dødshjælp at reducere lidelser.

En af fordelene ved denne metode er, at det resulterer i en mindre pose ved hjælp af kirurgiske hæftemaskiner til at reducere maveblødning. Da vi forsøgte at skarpt opdele maven uden hæftemaskiner, det fører til overdreven blødning og en langt højere dødelighed. Dette fører dog også til fjernelse af formaven, og dette kan føre til fysiologiske ændringer, der er forskellige fra de menneskelige RYGB. Men formaven er unik for gnavere og indeholder ingen kirtler, og bør ikke forårsage ændringer i tarmhormoner.

Den vigtigste begrænsning af denne metode er, at det kræver to kirurgiske hæftemaskine genindlæsninger pr rotte, som kan være dyrt. Imidlertid reducerer fremragende overlevelsesresultater potentielt omkostningerne ved at kræve færre rotter til en undersøgelse, hvilket resulterer i bedre udnyttelse af opdrætsfaciliteter, kirurgisk udstyr og forskningspersonale.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Ethicon leverede to 45 mm lineære skæreeksplymerer, flere 3,5 mm hæftemaskiner og 6-0 polypropylen suturer. Forfattere har ingen andre interessekonflikter at erklære.

Acknowledgments

Denne undersøgelse blev finansieret af American Society for Metabolisk og Bariatrisk Kirurgi Research Award. Ethicon leverede allernådigst suturer, hæftemaskiner og klip. Hovedforfatterens ph.d.-forskning blev finansieret af University of Alberta Clinician Investigator Program og Alberta Innovates Clinician Fellowship. Vi vil også gerne takke Michelle Tran for hendes medicinske illustration af RYGB anatomi.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
2-0 Silk Sutures Ethicon K533
3-0 Vicryl Sutures Ethicon J219H
4% Isoflurane N/A N/A
5% Dextrose and 0.9% Sodium Chloride Solution - 1000 mL Baxter 2B1064
50 mL Conical Centrifuge Tubes Fisher Scientific 14-432-22
6-0 Prolene Sutures Ethicon 8805H
Anesthetic Machine N/A N/A
Animal Hair Shaver N/A N/A
Betadine Solution N/A N/A
Castrojievo Needle Holder with lock 14 cm (smooth curved) World Precision Instruments 503258
ECHELON FLEX Articulating Endoscopic Linear Cutter Ethicon EC45A
Economy Tweezers #4 World Precision Instruments 501978
ENDOPATH ETS Articulating Linear Cutter 45mm Reloads Ethicon 6R45B
Far Infrared Warming Pad Controller with warming pad (15.2 cm W x 20.3 cm L), pad temperature probe, and 10 disposable, non-sterile sleeve protectors Kent Scientific RT-0515
Large Rat Elizabethan Collar Kent Scientific EC404VL-10
Liquid Diet Feeding Tube (150 mL) Bio-Serv 9007
Liquid Diet Feeding Tube Holder (short adjustable) Bio-Serv 9015
Micro Mosquito Forceps World Precision Instruments 500452
Micro Scissors World Precision Instruments 503365
Mouse Diet, High Fat Fat Calories (60%), Soft Pellets Bio-Serv S3282
No. 11 Blade and Scalpel Handle N/A N/A
OPMI Vario Surgical Microscope ZEISS S88
Raised Floor Grid Tecniplast GM500150 Raised Floor Grid
Rodent Liquid Diet, Lieber-DeCarli '82, Control, 4 Liters/Bag Bio-Serv F1259
Sodium Chloride Irrigation 0.9% Solution - 500 mL Baxter JF7633
Sterile Cotton Swabs N/A N/A
Sterile Drape N/A N/A
Sterile Towel N/A N/A
Thermal Cautery Unit World Precision Instruments 501293

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. World Health Organization. Obesity and Overweight. , Available from: http://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/obesity-and-overweight (2018).
  2. Courcoulas, A. P., et al. Three-year outcomes of bariatric surgery vs lifestyle intervention for type 2 diabetes mellitus treatment. JAMA Surgery. 15213 (10), 1-9 (2015).
  3. Ardestani, A., Rhoads, D., Tavakkoli, A. Insulin cessation and diabetes remission after bariatric surgery in adults with insulin-treated type 2 diabetes. Diabetes Care. 38 (4), 659-664 (2015).
  4. Casella, G., et al. Ten-year duration of type 2 diabetes as prognostic factor for remission after sleeve gastrectomy. Surgery for Obesity and Related Diseases. 7 (6), 697-702 (2011).
  5. Panunzi, S., De Gaetano, A., Carnicelli, A., Mingrone, G. Predictors of remission of diabetes mellitus in severely obese individuals undergoing bariatric surgery. Annals of Surgery. 261 (3), 459-467 (2015).
  6. Edelman, S., et al. Control of type 2 diabetes after 1 year of laparoscopic adjustable gastric banding in the helping evaluate reduction in obesity (HERO) study. Diabetes, Obesity and Metabolism. 16 (10), 1009-1015 (2014).
  7. Mingrone, G., et al. Metabolic surgery versus conventional medical therapy in patients with type 2 diabetes: 10-year follow-up of an open-label, single-centre, randomised controlled trial. The Lancet. 397 (10271), 293-304 (2021).
  8. Thaler, J. P., Cummings, D. E. Minireview: Hormonal and metabolic mechanisms of diabetes remission after gastrointestinal surgery. Endocrinology. 150 (6), 2518-2525 (2009).
  9. Mingrone, G., Castagneto-Gissey, L. Mechanisms of early improvement / resolution of type 2 diabetes after bariatric surgery. Diabetes and Metabolism. 35 (6), 518-523 (2009).
  10. Arapis, K., et al. Remodeling of the residual gastric mucosa after Roux-en-Y gastric bypass or vertical sleeve gastrectomy in diet-induced obese rats. PloS One. 10 (3), 012414 (2015).
  11. Bruinsma, B. G., Uygun, K., Yarmush, M. L., Saeidi, N. Surgical models of Roux-en-Y gastric bypass surgery and sleeve gastrectomy in rats and mice. Nature Protocols. 10 (3), 495-507 (2015).
  12. Bueter, M., et al. Roux-en-Y gastric bypass operation in rats protocol. Journal of visualized experiments : JoVE. (64), (2012).
  13. Stevenson, M., Lee, J., Lau, R. G., Brathwaite, C. E. M., Ragolia, L. Surgical mouse models of vertical sleeve gastrectomy and Roux-en Y gastric bypass: a Review. Obesity Surgery. , (2019).
  14. Hao, Z., et al. Reprogramming of defended body weight after Roux-En-Y gastric bypass surgery in diet-induced obese mice. Obesity. 24 (3), 654-660 (2016).
  15. McErlane, S. Adult rodent anesthesia SOP. UBC Animal Care Guidelines. , Available from: https://animalcare.ubc.ca/sites/default/files/documents/ACC-01-2017_Anesthesia.pdf (2017).
  16. Sotocinal, S. G., et al. The Rat Grimace Scale: a partially automated method for quantifying pain in the laboratory rat via facial expressions. Molecular pain. , 1-10 (2011).
  17. Elder, K. A., Wolfe, B. M. Bariatric surgery: A review of procedures and outcomes. Gastroenterology. 132 (6), 2253-2271 (2007).
  18. Lim, R. B. Bariatric procedures for the management of severe obesity: Descriptions. UpToDate. , Available from: https://www.uptodate.com/ (2017).

Tags

Medicin Problem 174 Roux-en-Y gastrisk bypass gastrisk bypass metabolisk kirurgi fedmekirurgi rotte
En protokol for Roux-en-Y gastrisk bypass hos rotter ved hjælp af lineære hæftemaskiner
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Dang, J. T., Mocanu, V., Fang, B.,… More

Dang, J. T., Mocanu, V., Fang, B., Laffin, M., Karmali, S., Madsen, K., Birch, D. W. A Protocol for Roux-en-Y Gastric Bypass in Rats using Linear Staplers. J. Vis. Exp. (174), e62575, doi:10.3791/62575 (2021).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter