Summary
本研究では、吸入チャンバー内で全身からシリカを吸入する珪肺症ラットモデルを確立する技術について述べる。珪肺症のラットは、ヒトの珪肺症の病理学的過程を、簡単で費用対効果の高い方法で、再現性に優れた方法で厳密に模倣することができました。
Abstract
珪肺症の主な原因は、職業環境でのシリカの吸入です。解剖学的および生理学的にいくつかの違いがあるにもかかわらず、げっ歯類モデルはヒトの珪肺症を研究するための不可欠なツールであり続けています。珪肺症の場合、古典的な病理学的プロセスは、新たに生成された石英粒子の吸入を介して誘導可能である必要があり、これは人間の職業病を特異的に誘発することを意味します。この研究は、珪肺症の病理学的動的進化プロセスを確立し、効果的に模倣する技術について説明しました。さらに、この技術は手術を伴わずに良好な再現性を示しました。吸入曝露システムは、呼吸性粒子吸入に関する毒物学研究に製造、検証、および使用されました。重要なコンポーネントは次のとおりです:(1)気流コントローラーで調整されたバルク乾式SiO2粉末発生器。(2)最大3匹の成体ラットを収容できる0.3m3の全身吸入暴露チャンバー。(3)酸素濃度、温度、湿度、圧力をリアルタイムで調整するための監視および制御システム。(4)検査技師と環境を保護するためのバリアおよび廃棄物処理システム。要約すると、本プロトコルは全身からの吸入を報告し、吸入チャンバーは、死亡率が低く、損傷が少なく、保護が強化された、信頼性が高く、合理的で再現性のあるラット珪肺モデルを作成しました。
Introduction
シリカの吸入によって引き起こされる珪肺症は、中国で最も深刻な職業病であり、毎年の職業病報告総数の80%以上を占めています1。珪肺症の病因は明確であり、予防および制御できますが、有効な治療法はありません2。多くの薬剤が基礎研究で有効であることが証明されていますが、臨床効果は不正確です3,4。したがって、珪肺症の病理学的および生理学的メカニズムはまだ調査する必要があります。
多くの研究では、ラットまたはマウスの気管にシリカを1回だけ注入して、珪肺症の病因を調査しています5,6。これらのげっ歯類の珪化モデルは短期間で得ることができましたが7、これらの方法には動物の外傷や高い死亡率などの課題がありました。いくつかの研究では、貯蔵されたシリカを肺に注入して非特異的な肺反応を誘発することが含まれていましたが、マウスの珪質性結節については言及されていません8。さらに、急性珪肺症とは別に、職業環境でのシリカへの慢性的な曝露は、肺の炎症を有意に低下させ、肺のアポトーシス促進マーカーではなく抗アポトーシスマーカーのレベルを上昇させました9。したがって、珪肺症の病因をさらに調査するには、信頼性が高く、合理的で再現性のある動物モデルが必要です。
本研究では、全身からのシリカ吸入、吸入室内の空気送達粒子、空気送達シリカ発生器、全身チャンバー、および廃棄物処理システムで構成される珪肺症患者の疾患プロセスを模倣する方法について述べる。この方法はシンプルで操作が簡単で、珪肺症の病理学的動的進化プロセスを効果的に模倣します。また、珪肺症の多くの可能なメカニズムおよび病因は、この方法を使用して特定される10,11,12。提案されたプロトコルは、珪肺症研究の関連分野でのさらなる調査に役立つことが期待されています。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
すべての動物実験は、米国国立衛生研究所の実験動物のケアと使用に関するガイドに従って実施され、華北科技大学の倫理委員会によって承認されました(プロトコルコードLX2019033および承認の2019-3-3)。3週齢の雄のWistarラットを本研究に使用しました。すべてのネズミは、木の削りくずで固定されたケージに入れられました。動物は12時間/12時間の明暗サイクルで維持され、餌と水が 自由に与えられました。追跡実験は、適応摂食の1週間後に実施されました。
1.動物の調製
- 到着したら、すべてのラットを特定の病原体フリー(SPF)部屋に収容します。
- 健康なラットを無作為に2つのグループ(n = 10)に分けます:純粋な空気を吸入する対照ラットとシリカを吸入する珪肺症のラット。
2. シリカ調製
注意: 人体が吸い込むシリカ粉塵は、肺を損傷する可能性があります。したがって、手術中はオーバーオール、医療用手袋、保護マスク(N95)を着用する必要があります。
- 各曝露の前に、シリカ粒子( 材料表を参照)を瑪瑙モルタルで1.5時間研磨します。これは、破砕したばかりの石英は、熟成した石英13よりも多くの活性酸素種を生成し、直径1〜5μmのシリカが最も病原性が高いためです。
- 粉砕後、電子天秤でシリカ(30g)を秤量し、ガラス容器に入れ、電気加熱式送風乾燥機( 材料表参照)で180°Cで6時間焼成し、シリカ粒子の表面から病原体を除去します。
3. ラットへのシリカ曝露
- 注入装置と市販の発電機システム( 材料表を参照)を接続し、シリカ(30 g)を発電機に入れます。接続パイプラインが正常か、電源コードが接続されているか、電源が正常かを確認してください。
- スプレータワーと排ガス処理装置の加湿器の水位( 材料表を参照)を手動で確認し、水が不足している場合(標準ラインに達していない場合)は水を追加します。
- 排ガス処理装置のスプレー塔に水道水を入れ、加湿器に蒸留水を入れます(図1)。
- 排ガス排出装置( 材料表参照)と空気源スイッチをONにして、シールドキャビネット内が負圧状態になっているか確認してください。
- 吸入室下の混合液、粉体混合、純気体流量制御弁、排水排出弁が閉じていることを確認します。
- 合計10匹のラットを吸入チャンバーに入れ( 材料表を参照)、吸入コンパートメントと遮蔽されたキャビネットのドアを閉じます。
- インストルメントパネルまたはコンピュータで次の実験パラメータを設定します。 キャビネット圧力:-50〜-30 Pa;酸素濃度:21%;キャビネット温度:26-30°C;湿度:30%-70%;ダストエントリー速度:2.0-2.5 mL / min;そしてキャビネットの塵の集中:60 ± 5 mg/m3。
注意: 実験中は、実験データと機器の状態を継続的に観察してください。機器の故障アラームは、タイムリーな処理を促しました。- 各動物を1日3時間、週5日間継続的にシリカに曝露し、対照群の動物に純粋な空気を吸入させます。
- 実験が終了したら、混合ガス流量制御バルブを閉じ、純ガス流量バルブを開きます。純粋なガスを吸入チャンバーに連続的に注入します。
注:本研究では、吸入室内の有毒ガスが完全に置換されるまで、純粋なガス流(7.0〜7.5 m3 / h)を少なくとも20分間注入しました。- 純粋な気流バルブを閉じ、ドアを開けて、ネズミを取り出し、病原体のいない部屋に送り返します。
- ラットラックと枝管のコンポーネントを順番に取り外し、シンクに置いて清掃します。すすぎ後、自動洗浄バルブを閉じ、ハッチを開けます。
- 内壁を清潔な布で拭くか、純粋なガスをオンにしてタンクを乾かします。最後に、消毒を行います。75%エタノールで洗浄および消毒した後、排気ゲートを閉じ、できるだけ早く吸入キャビンのドアを少し開いて水分を蒸発させ、吸入キャビン内を乾燥した状態に保ちます。
- 実験中のシリカ濃度の安定性を確保するために、製造元の指示( 材料表を参照)に従って、週に2回、包括的な大気サンプラーを使用してキャビネット内のシリカ濃度をチェックします。サンプリングの前に大気サンプラーを校正してください。
- 重量測定には、デジタルシングルパン分析天びんを使用します。計算されたシリカ濃度は65mg/m3 であった(図1 および 表1)。
注:シリカの吸収の前後にろ紙の重量を量ります。シリカの濃度は、以下の式12を用いて算出した:
ここで、W2 = サンプリング後のろ紙の重量、W1 = サンプリング前のろ紙の重量、V = 空気の体積。
- 重量測定には、デジタルシングルパン分析天びんを使用します。計算されたシリカ濃度は65mg/m3 であった(図1 および 表1)。
4. 肺組織の獲得と固定
- ペントバルビタール(100 mg / kg体重)とリドカイン(4 mg / kg体重)の腹腔内注射によりラットを安楽死させます。.心拍の喪失による死を評価する14.
- 実験終了時に、右下肺、腎臓、肝臓、脾臓、骨を4%パラホルムアルデヒドで少なくとも24時間固定し、パラフィンに埋め込み、5μmの切片に切断します7,15。
5. ヘマトキシリンとエオシン(H&E)の染色
- パラフィン切片をキシロール( 材料表参照)で2回、各10分間16で脱パラフィンし、100%エタノール、95%エタノール、90%エタノール、80%エタノール、70%エタノール、蒸留水で各3分間再水和する。
- 切片をヘマトキシリン( 材料表参照)で5分間染色し、次に切片を水10で洗浄する。
- 切片を2%塩酸アルコールに入れ、色が青に変わるまで蒸留水に入れます。
- 切片をエオシンで1分間染色し、95%エタノールで脱水し、キシレンで透明にし、中性ガムで密封し、光学顕微鏡で観察する12。
6. 免疫組織化学的染色
- 定期的にパラフィン切片を水で洗ってください。
- 抗原を高圧(60 kPa)および高温(100°C)で80秒間暴露した後、内因性ペルオキシダーゼ遮断薬(3%)で15分間ブロッキングして、内因性ペルオキシダーゼを除去します7。
- CD68に対する抗体(CD68 4 μLを396 μLの抗体希釈液に1:200希釈で添加、 材料表を参照)とサンプルを4°Cで一晩インキュベートします。
- サンプルを二次抗体(HRP標識ヤギ抗マウスIgGポリマー、 材料表参照)と37°Cで30分間インキュベートした後、1x PBSでサンプルを洗浄します。
- 3,3-ジアミノベンジジン(DAB; 材料表を参照)による免疫反応性を可視化します。DABを組織に塗布した後、光学顕微鏡10で組織の染色を観察する。
注:染色時間は、組織の染色時間に応じて数秒から数分まで変化しました。切片を水に浸すことにより、染色手順を中止した。この研究では、組織の褐色染色はCD68の陽性発現を表していました。すべての抗体を1x PBSで希釈しました。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
提案手法を用いて、ラットにおける珪肺症の潜在的なメカニズムと病因を調査しました。吸入チャンバーの概略図を図1に示す。チャンバーは、前述のように、空気供給式シリカ発生器、全身チャンバー、および廃棄物処理システムで構成されていました17。肺機能、血清および肺の炎症因子のレベル、コラーゲン沈着、および筋線維芽細胞の分化は、以前の研究で報告されています10,18,19。miRNA、lncRNA、mRNAの発現差は、以前の報告20,21,22で報告されています。前述のマルチバッチ試験では、シリカ曝露後に死亡したラットはありませんでした。
珪肺症のラットの古典的な病理学的特徴は、以前に要約されました23。珪質性結節は、シリカ含有マクロファージで構成されていました。図2は、珪肺症のラットにおけるコラーゲン沈着を示しています。偏光レンズは、マクロファージ中のシリカを明らかにしました。図3は、CD68の免疫組織化学的染色による珪質性結節の動的進化を示しています。他の代替マーカーには、誘導性一酸化窒素合成酵素またはアルギナーゼ-124が含まれていた。前述のように、23週間シリカに曝露されたラットは、珪質性結節におけるコラーゲン沈着、過ヨウ素酸-シッフ陽性染色、および肺機能障害を含む、目に見える観察可能な病変を示しました。一方、他の臓器(心臓、脾臓、肝臓)では、対照ラットと珪肺症ラットの間に形態学的差異は見られませんでした(図4)。シリカに24週間曝露されたラットの腎臓では、近位尿細管に軽度の変性変化が見られました。異常な骨代謝は、以前の研究で十分に文書化されています10,17。全体として、これらの研究は、提案されたプロトコルがヒトの珪肺症の進行をうまく模倣できることを強調しました。
図1:露光制御装置の概略図。 (A)空気供給式シリカ発生装置。(B)全身チャンバー。(C) インストルメントパネル。(d)露光制御装置。(E)すべてのコンポーネントが組み立てられ、作業器具が形成されます。チャンバーは、空気供給式シリカ発生器、全身チャンバー、および廃棄物処理システムで構成されています。(F、G)空気検出器。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。
図2:珪肺症ラットにおけるH&E染色とコラーゲン沈着。 シリカに2週間および24週間曝露したラットのH&E染色。ラットの肺胞構造はまだ無傷であり、肺胞壁は2週間のシリカ吸入後に厚くなった。ラットの肺胞構造は消失し、24週間のシリカ吸入後に線維症の広い領域が形成されました。シリカ粒子をラットの肺葉(2週目と24週目)に捕捉し、ラットのコラーゲン線維(24週目)を偏光顕微鏡で観察した。スケールバー:50 μm。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。
図3:CD68の免疫組織化学的染色によって検出された珪質結節の動的進化。 (A)曝露時間が長くなるにつれて(2週間から24週間)、珪質結節の面積は徐々に増加し、隣接する珪質結節は徐々に大きな結節に融合しました。(B)シリコン団塊のパターン。スケールバー:50 μm。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。
図4:対照ラットおよび珪肺症ラットの肺、腎臓、肝臓、脾臓、骨のH&E染色。 (A)対照ラットの肺、腎臓、肝臓、脾臓、骨のH&E染色。スケールバー:1 mm。 (B)対照ラットの肺、腎臓、肝臓、脾臓、および骨のH&E染色。スケールバー:50μm。対照ラットと比較して、シリカに曝露されたラットでは、さまざまなサイズの複数の線維性病変が形成されました。腎臓、肝臓、脾臓に対照ラットと珪肺症ラットの間に有意差は認められなかったが、珪肺症ラットでは骨量減少が認められた。(C)珪肺症のラットの肺、腎臓、肝臓、脾臓、骨のH&E染色。スケールバー:1 mm。 (D)珪肺症ラットの肺、腎臓、肝臓、脾臓、骨のH&E染色。スケールバー:50 μm。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。
| 測定時間(分) | ボリューム(L) | W1 (グラム) | W2 (グラム) | 濃度(mg/m3) |
| 10 | 460 | 0.40 | 0.43 | 65.22 |
| 20 | 923 | 0.40 | 0.46 | 65.01 |
| 30 | 1404 | 0.40 | 0.49 | 64.1 |
表1:全身チャンバー内のシリカの濃度。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
珪肺症の主な原因として、シリカは成形において決定的な役割を果たします。じん肺患者が吸入するシリカ粒子は、機械的切断によって生成された新鮮な遊離シリカ粒子です。シリカは、新たに切断された粒子表面に直接、またはマクロファージに対するその効果を通じて間接的に活性酸素種を生成することができる25。したがって、シリカ粒子の粉砕は非常に重要です。提案されたプロトコルでは、シリカを瑪瑙モルタルで90分以上粉砕して、より細かく、より不規則にし、表面積を増やしました。報告されているように、結晶性シリカ26 の空中濃度は0.05 mg / m3以上でなければなりません。ただし、このプロトコルには、不正確な粉塵濃度の問題がある可能性があります。粉塵濃度の不確実性は、主に粉塵濃度監視システムが組み込まれていないことに関連していました。実際のシリカ濃度は、ダストキャビネットに入るSiO2 の質量とガス流量を使用して計算しました。SiO2 の体積は、実際にキャビネットに入るSiO2 の質量ではなく、回転板の速度に基づいていました。したがって、この問題に対する解決策は、週に2回チャンバー内のシリカの量をチェックして、ラットが毎回同じ量のシリカにさらされていることを確認するか、ダストチャンバーに濃度測定装置を設置することでした。
(1)ラットの気道はヒトの気道とは異なるため、被ばく線量とその生物学的影響の関係は近似的である。(2)粉塵濃度の不確実性が存在した。(3)特別な機器の購入が必要な方法。(4)ダストチャンバーの容積と粉塵に感染したラットの数は限られていた。(5)マウスの珪肺症モデルは、マウスの気道が狭く、シリカダストが肺に沈着しないため、構築できませんでした。また、マウスモデルの方が安価で、トランスジェニックマウスやKOマウスの作製も容易でした。
珪肺症動物モデルの従来の構築には、主に気管支注入とSiO2の吸入の2つの方法が含まれていました。気管支注射では、死亡率は灌流用量と密接に関連しており、侵襲的手術は必然的に追加の副次的損傷を引き起こしました27。気管内注射モデルを置き換えるために、一部の学者は、吸入用の超音波アトマイズシリカ懸濁液を使用して珪肺症モデルを確立しました28。しかし、超音波霧化では、霧化後の空気中のシリカ濃度を制御できず、再現性が悪く、このモデリング法では典型的な線維性病変を形成することができませんでした。もう1つの経済的で実用的で効果的なモデルは、マウス点鼻モデル29であったが、この方法は液体シリカを気管に注入するものであり、それを吸入するほど良くはなかった。曝露制御装置は、吸入室内のシリカが均等に分散され、データが正確であり、粉塵室内の粉塵分布が均一になるように、複数の空気取り入れシステムを有する。したがって、テスト環境は長期間安定しており、関連するパラメータはいつでも観察および記録されました。
動物の疾病モデルを確立する意義は、病原性因子によって引き起こされる疾病や傷害の病理学的過程を可能な限り模倣することです。したがって、優れた動物モデルは、人間の病気に限りなく近いものです。シリカを吸入曝露することにより、ラットはダストチャンバー内の病原性シリカ粒子を自由に吸入することができました。また、毎週および毎日の曝露セッションは、じん肺作業員の労働時間を完全に模倣しました。このモデリング手法を用いて、ラットの珪肺症における上皮間葉転換、転移成長因子シグナルの活性化、マクロファージの活性化、老化関連シグナルの活性化などの病態変化を同定しました。結果の一部はヒトサンプルで確認された18。最近では、この方法による珪肺症の進化における動的な病理学的変化についても研究し始めています23。
このシンプルで低コスト、そして簡単に再現可能なプロトコルは、珪肺症の発生率が世界で復活しているときにも非常に重要です30。100 mg 石英/m3 への 8 週間の吸入暴露後、シリカの 20% が 6 か月後および 12 か月後にラットの肺に残存しました31。また、研究者らは、同様の装置を装着した動物がどの程度空気を吸い込んだり吐き出したりできるかを調べました。動物が吸入したガスの濃度はわずかに変化した32。このプロトコルは、例えば、マイクロコンピュータ断層撮影法と組み合わせて珪肺症のダイナミックな進化を観察したり、トランスクリプトームデータベースと組み合わせて珪肺症の病理学的プロセスを検証したり、新しい抗炎症および抗線維化全身療法を検証したりすることで、依然として大きな期待を寄せています。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
著者らは、利益相反がないことを宣言します。
Acknowledgments
この研究は、中国国家自然科学基金会(82003406年)、河北省自然科学基金会(H2022209073年)、河北省教育部科学技術プロジェクト(ZD2022127年)から資金提供を受けました。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Air detector (compressive atmospheric sampler) | Qingdao Xuyu Environmental Protection Technology Co. LTD | ||
| Anatomical table | No specific brand is recommended. | ||
| Antibody of CD68 | Abcam | ab201340 | |
| DAB | ZSGB-BIO | ZLI-9018 | |
| Electric heating air-blowing drier | Shanghai Yiheng Scientific Instrument Co., LTD | ||
| Electronic balance | OHRUS | ||
| Embedding machine | leica | ||
| Exhaust gas discharge device | HOPE Industry and Trade Co. Ltd. | ||
| Generator systems | HOPE Industry and Trade Co. Ltd. | ||
| Gloves (thin laboratory gloves) | The secco medical | ||
| Hematoxylin and eosin | BaSO Diagnostics Inc. | BA4025 | |
| HOPE MED 8050 exposure control apparatus | HOPE Industry and Trade Co. Ltd. | ||
| Inhalation chamber | HOPE Industry and Trade Co. Ltd. | ||
| Injection syringe | No specific brand is recommended. | ||
| Light microscope | olympus | ||
| Object slide | shitai | ||
| PV-6000 (HRP-conjugated goat anti-mouse IgG polymer) | Beijing Zhongshan Jinqiao Biotechnology Co. Ltd | s5631 | |
| Silicon dioxide | Sigma-Aldrich | ||
| Slicing machine | leica | RM2255 | |
| Waste gas treatment device | HOPE Industry and Trade Co. Ltd. | ||
| Wet box | Cooperative plastic Products Factory | ||
| Xylol | Tianjin Yongda Chemical Reagent Co., LTD |
References
- Li, J., et al. The burden of pneumoconiosis in China: an analysis from the Global Burden of Disease Study. BMC Public Health. 22 (1), 1114 (2019).
- The Lancet Respiratory Medicine. The world is failing on silicosis. The Lancet. Respiratory Medicine. 7 (4), 283 (2019).
- Li, T., Yang, X., Xu, H., Liu, H. Early identification, accurate diagnosis, and treatment of silicosis. Canadian Respiratory Journal. 3769134, (2022).
- Adamcakova, J., Mokra, D. New insights into pathomechanisms and treatment possibilities for lung silicosis. International Journal of Molecular Sciences. 22 (8), 4162 (2021).
- Li, Y., et al. Thalidomide alleviates pulmonary fibrosis induced by silica in mice by inhibiting ER stress and the TLR4-NF-κB pathway. International Journal of Molecular Sciences. 23 (10), 5656 (2022).
- Zhang, E., et al. Exosomes derived from bone marrow mesenchymal stem cells reverse epithelial-mesenchymal transition potentially via attenuating Wnt/β-catenin signaling to alleviate silica-induced pulmonary fibrosis. Toxicology Mechanisms and Methods. 31 (9), 655-666 (2021).
- Li, S., et al. N-Acetyl-Seryl-Asparyl-Lysyl-Proline regulates lung renin angiotensin system to inhibit epithelial-mesenchymal transition in silicotic mice. Toxicology and Applied Pharmacology. 408, 408 (2020).
- Walters, E. H., Shukla, S. D. Silicosis: Pathogenesis and utility of animal models of disease. Allergy. 76 (10), 3241-3242 (2021).
- Langley, R. J., Mishra, N. C., Peña-Philippides, J. C., Hutt, J. A., Sopori, M. L. Granuloma formation induced by low-dose chronic silica inhalation is associated with an anti-apoptotic response in Lewis rats. Journal of Toxicology and Environmental Health, Part A. 73 (10), 669-683 (2010).
- Jin, F., et al. Ac-SDKP Attenuates activation of lung macrophages and bone osteoclasts in rats exposed to silica by inhibition of TLR4 and RANKL signaling pathways. Journal of Inflammation Research. 14, 1647-1660 (2021).
- Xu, H., et al. A new anti-fibrotic target of Ac-SDKP: inhibition of myofibroblast differentiation in rat lung with silicosis. PloS One. 7 (7), e40301 (2012).
- Li, S., et al. Ac-SDKP increases α-TAT 1 and promotes the apoptosis in lung fibroblasts and epithelial cells double-stimulated with TGF-β1 and silica. Toxicology and Applied Pharmacology. 369, 17-29 (2019).
- Vallyathan, V., Shi, X. L., Dalal, N. S., Irr, W. Generation of free radicals from freshly fractured silica dust. Potential role in acute silica-induced lung injury. The American Review of Respiratory Disease. 138 (5), 1213-1219 (1988).
- Khoo, S. Y., Lay, B. P. P., Joya, J., et al. Local anesthetic refinement of pentobarbital euthanasia reduces abdominal writhing without affecting immunohistochemical endpoints in rats. Lab Anim. 2018 (52), 152-162 (2018).
- Chooi, K. F., Rajendran, D. B. K., Phang, S. S. G., Toh, H. H. A. The dimethylnitrosamine induced liver fibrosis model in the rat. Journal of Visualized Experiments. 112 (112), (2016).
- Valentin, J., Frobert, A., Ajalbert, G., Cook, S., Giraud, M. -N. Histological quantification of chronic myocardial infarct in rats. Journal of Visualized Experiments. 118 (118), (2016).
- Zhang, H., et al. silicosis decreases bone mineral density in rats. Toxicology and Applied Pharmacology. 348, 117-122 (2018).
- Zhang, B., et al. Targeting the RAS axis alleviates silicotic fibrosis and Ang II-induced myofibroblast differentiation via inhibition of the hedgehog signaling pathway. Toxicology Letters. 313, 30-41 (2019).
- Li, S., et al. Silica perturbs primary cilia and causes myofibroblast differentiation during silicosis by reduction of the KIF3A-repressor GLI3 complex. Theranostics. 10 (4), 1719-1732 (2020).
- Gao, X., et al. Pulmonary silicosis alters microRNA expression in rat lung and miR-411-3p exerts anti-fibrotic effects by inhibiting MRTF-A/SRF signaling. Molecular therapy. Nucleic Acids. 20, 851-865 (2020).
- Cai, W., et al. Differential expression of lncRNAs during silicosis and the role of LOC103691771 in myofibroblast differentiation induced by TGF-β1. Biomedicine & Pharmacotherapy. 125, (2020).
- Cai, W., et al. Transcriptomic analysis identifies upregulation of secreted phosphoprotein 1 in silicotic rats. Experimental and Therapeutic. 21 (6), (2021).
- Li, Y., et al. Minute cellular nodules as early lesions in rats with silica exposure via inhalation. Veterinary Sciences. 9 (6), 251 (2022).
- Mao, N., et al. Glycolytic reprogramming in silica-induced lung macrophages and silicosis reversed by Ac-SDKP treatment. International Journal of Molecular Sciences. 22 (18), 10063 (2021).
- Hamilton, R. F., Thakur, S. A., Holian, A. Silica binding and toxicity in alveolar macrophages. Free Radical Biology and Medicine. 44 (7), 1246-1258 (2008).
- Park, R., et al. Exposure to crystalline silica, silicosis, and lung disease other than cancer in diatomaceous earth industry workers: a quantitative risk assessment. Occupational and Environmental. 59 (1), 36-43 (2002).
- Honnons, S., Porcher, J. M. In vivo experimental model for silicosis. Journal of Environmental Pathology, Toxicology and. 19 (4), 391-400 (2000).
- Lakatos, H. F., et al. Oropharyngeal aspiration of a silica suspension produces a superior model of silicosis in the mouse when compared to intratracheal instillation. Experimental Lung Research. 32 (5), 181-199 (2006).
- Li, B., et al. A suitable silicosis mouse model was constructed by repeated inhalation of silica dust via nose. Toxicology Letters. 353, 1-12 (2021).
- Hoy, R. F., Chambers, D. C.
- Davis, G. S. Pathogenesis of silicosis: current concepts and hypotheses. Lung. 164 (3), 139-154 (1986).
- Moss, O. R., James, R. A., Asgharian, B. Influence of exhaled air on inhalation exposure delivered through a directed-flow nose-only exposure system. Inhalation Toxicology. 18 (1), 45-51 (2006).
