Summary
ここでは、動物の孵卵器でマーモセットの子育て方法を紹介します。この方法は、マーモセットの乳児の生存率を大幅に向上させ、異なる出生後の環境で育った同様の遺伝的背景を持つマーモセットの乳児の発達を研究する機会を提供します。
Abstract
コモンマーモセット(Callithrix jacchus)は、小型で社会性の高い新世界ザルで、繁殖率が高く、生物医学および神経科学研究のための有力な非ヒト霊長類モデルであることが証明されています。一部の女性は三つ子を出産します。しかし、親が全員を育てることはできません。この子育てを救うために、私たちは生まれたばかりのマーモセットを手で育てる方法を開発しました。このプロトコルでは、食品の処方、給餌時間、温度と湿度の構成、および手で育てられた乳児のコロニー環境への適応について説明します。この手飼育法は、マーモセット児の生存率を大幅に向上させ(手飼育なし:45%、手飼育あり:86%)、異なる出生後環境で育った同様の遺伝的背景を持つマーモセット児の発達を研究する機会を提供します。この手法は実用的で使いやすいため、一般的なマーモセットを扱う他の研究室にも適用できると期待しています。
Introduction
一般的なマーモセット(Callithrix jacchus)は、中南米を原産地とする小型の樹上性新世界ザルです。生物医学研究におけるマーモセットの使用は、他の非ヒト霊長類(NHP)と比較して、体のサイズが小さい、飼育下での取り扱いと繁殖が容易、妊娠期間が短い、性成熟が早い、人獣共通感染症のリスクが低いなど、いくつかの重要な利点があるため、過去数十年で急速に成長しました1,2,3,4,5,6 .コモンマーモセットは、ヒトと脳の構造や脳機能が似ており、豊かなレパートリーで発声し、豊かな感情を持った社会性の高い行動を示します。これは、感覚処理に関する研究7,8,9,10,11,12,13,14、音声コミュニケーション15,16,17,18,19、脊髄損傷のモデル20など、さまざまなタイプの神経科学研究のための説得力のあるNHPモデルです,21,22,23、パーキンソン病24,25,26,27,28、加齢性疾患29。他のNHPと比較して、コモンマーモセットは比較的高い繁殖率を有しており、これはトランスジェニック修飾に有用である可能性がある30,31,32。この霊長類は、薬理学、血管造影、病原体および免疫研究でも広く使用されています33,34,35,36,37,38,39。しかし、マーモセットの供給は、特に中国では非常に限られており、急速に高まる科学研究のニーズを満たすことができません。
マーモセットのコロニーでは、成体動物には1日に1回か2回給餌され、いくつかの施設では幼体マーモセットの餌を変えている40。一般的に、乳児マーモセットは通常、父親や年長の兄弟の体をしっかりとつかんで毎日の世話をし、ミルクのために1日に数回母親に手渡されます。一部のメスのマーモセットは三つ子を出産しますが、この場合、1人または2人の乳児はミルクが不足しているため生き残ることができません。また、保育経験が足りないなどの理由で乳児の世話をしない親もいます。これは多くの研究室にとって大きな損失です。いくつかの研究では、飼育下での成体マーモセットの栄養管理方法が報告されています40,41,42 さまざまな主要栄養素組成、ビタミン、ミネラルを含む食品や調製粉乳、および濃縮のためのさまざまな給餌プロトコル(マッシュ、ゲル化、精製、または缶詰)2,41。以前の研究では、マーモセットの三つ子43の共同飼育方法が報告されており、養育者は1日に1頭の乳児を連れて行き、一日中手で与え、翌日に別の三つ子と交換します。この方法では、乳児を親の世話にすることができますが、毎日親の体から乳児をつかむには経験豊富な養育者が必要であり、労働集約的です。これまでのところ、新生マーモセットの詳細な段階的な手育て方法を報告した研究はありません。
本研究の目標は、マーモセットの開発に関心のあるが、リソースが限られている人に手作業による飼育方法を提供することです。以前の共同養育方法43とは対照的に、現在の方法は、乳児の家族への迷惑が少なく、習得しやすい代替方法である。本稿では、母乳育児の基本ルールと5年間の実践に基づいて、餌の準備、給餌の時間表、孵卵器の温度と湿度の構成、および子牛のコロニー環境への適応を含む、マーモセット児の飼育方法について説明します。
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Protocol
すべての実験手順は、浙江大学の動物使用およびケア委員会によって承認され、国立衛生研究所(NIH)のガイドラインに従っています。
1. 住宅と畜産44
- コロニールームを12時間:12時間の昼/夜サイクル、温度26〜28°C、相対湿度45%〜55%に設定します。
- 2〜6歳でオスとメスのマーモセットをペアにし、十分なスペースと24時間換気システムを備えた新鮮な空気を備えたケージ(850 mm x 800 mm x 800 mm)で保持します。
- ケージ内に休憩板、ブランコ、止まり木、ハンモックを用意します。
- マーモセットのペアに、シリアル、卵、サツマイモ、蜂蜜、果物、野菜、ミールワームなど、真水と30〜40gの餌を1日2回与えます。
注:獣医師と実験者は、病気の人がすぐに診断され、治療されるように、少なくとも1日に1回は動物施設を検査する必要があります。
2.マーモセットの赤ちゃんの誕生前の準備
- 妊娠中のマーモセットの世話
注:受胎時期は触診によって診断され(通常、胚期の開始から10〜20日後)、動物被験者の生殖歴も参照しました。- 繁殖ペアに広いスペースを提供し、人間の邪魔を最小限に抑えます。
- 繁殖ペアにミールワーム、卵、ヨーグルト、ドライフルーツなどの追加の餌を与えて、雌の栄養を確保します。
- 妊娠中のマーモセットの世話をし、頻繁にチェックして、分娩の準備をしてください。
注:マーモセットの妊娠期間は4.3日±148日と推定されています45。
- 動物用保育器(855 mm [W] x 470 mm [L] x 440 mm [H])、紙おむつパッド(M / Lサイズ)、おしりふき、ぬいぐるみ(図1A)、おもちゃローラー(図1B)、クライミングフレーム(図1B)、毛布(10 cm х 10 cm、図1C)、および電子体重計(精度0.2 g、図1F)を準備します。
注意: 動物の吊り下げを避けるために、ぬいぐるみにはループ構造がないようにしてください。 - 食品および給餌器具の準備
- 乳児用調製粉乳(生後0〜12か月に適しています)、ベビーライスペースト(生後0〜6か月に適しています)、電気湯沸かし器、ビーカー(100 mL)、加熱パッド、プラスチック製の計量皿(80 mm x 80 mm x 22 mm、図 1D)、滅菌遠心チューブ(50 mL)、使い捨て滅菌シリンジ(1〜5 mL)、静脈内注射器(カスタムメイドの栄養乳首用)(図1E)、 綿棒(80〜100 cm)。
注:給餌用のニップルを作るには、シリンジに取り付けられた静脈内注射器の端から1cmのところに切り込みを入れます(図1E)。
- 乳児用調製粉乳(生後0〜12か月に適しています)、ベビーライスペースト(生後0〜6か月に適しています)、電気湯沸かし器、ビーカー(100 mL)、加熱パッド、プラスチック製の計量皿(80 mm x 80 mm x 22 mm、図 1D)、滅菌遠心チューブ(50 mL)、使い捨て滅菌シリンジ(1〜5 mL)、静脈内注射器(カスタムメイドの栄養乳首用)(図1E)、 綿棒(80〜100 cm)。
- 記録帳票作成
- 各乳児マーモセットについて、名前、生年月日、出生時体重、両親などの基本情報、頭囲や尾の長さなどのその他の関心のある基本情報、繁殖日時などの繁殖情報、餌の摂取量(mL)、排便状態(はい/いいえ、 硬い/緩い)、およびインキュベーターの温度と湿度。
注:通常、体重は1日2回、最初の食事の前と最後の食事の前に1回測定および記録されます。
- 各乳児マーモセットについて、名前、生年月日、出生時体重、両親などの基本情報、頭囲や尾の長さなどのその他の関心のある基本情報、繁殖日時などの繁殖情報、餌の摂取量(mL)、排便状態(はい/いいえ、 硬い/緩い)、およびインキュベーターの温度と湿度。
図1:インキュベーター内のアイテムと給餌ツールと付属品の写真 。 (A)ぬいぐるみ。(B)玩具ローラーとクライミングフレーム。(c)毛布;(d)プラスチック製の計量皿。(e)静脈内注射器およびカスタムメイドの栄養ニップルを備えた注射器。(f)電子スケール。(G)個人用保護具を着用した介護者。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。
3.手による育ての手順
- 期日前に部屋を掃除して滅菌してください。
- 次亜塩素酸または75%エチルアルコールを床とテーブルにスプレーし、30秒間放置してからテーブルを拭き、床をモップで拭きます。
- インキュベーターの温度を35°C、湿度を40%に設定します。通常、 表1 に示すように、乳児マーモセットの基本温度要件をシミュレートするために、出生後14日目(P14)の前に、インキュベーターの温度を35°Cに保ち、P15以降は3日ごとに0.5°Cずつ温度を下げます。コロニーの湿度に近く、乳児の毛皮を乾いた状態に保つ保育器内の湿度を40%〜45%に保ちます。
- 使い捨ておむつパッドをタイル状にして、インキュベーターのシャーシを覆います。
- 乳児のストレスを最小限に抑えるために、大人のマーモセットを模倣する傾向がある乳児マーモセットを導入する前に、保育器に毛布とぬいぐるみを数枚入れます。
注:毛布とぬいぐるみは、使用前に1日間繁殖ペアのホームケージに入れられます。 - マーモセットの赤ちゃんを保育器に入れ、ホームケージで親から引き離されたら、ぬいぐるみの上に置きます。
注:社会的孤立を避け、動物福祉に則り、一般的には2頭の乳児を一緒に選んで育てます。- 給餌前に滅菌された個人用保護具(PPE、 図1G)を着用してください。
- 毛布を2枚35°Cに温めます。
- マーモセットの赤ちゃんを温かい毛布でそっと抱きしめ、動物の体重を出生時体重として求めます。
- 乳児マーモセットを温かい毛布で保育器に移します。
- 手順2.4で説明したように、記録を取ります。
- 食材をブレンドし、マーモセットに餌を与えます。
- 50 mLの滅菌遠心チューブに50°Cの沸騰水30 mLに5gの粉ミルク5gを溶かします。
注:出生後の年齢が異なれば、必要なフードレシピも異なります。 表2 には、P1からP60までの出生後の年齢における乳児用調製粉乳、米ペースト、および水のさまざまな投与量が含まれています。.投与量は通常1日で十分です。最初の食事の前に材料をブレンドし、残りの食品は4°Cの冷蔵庫で保管してください。食事ごとに食品を30〜35°Cに加熱します。 - 1 mLのシリンジで1 mLの食品を取り、カスタムメイドの栄養ニップルでシリンジに蓋をします。
注: 表2を参照して、適切なサイズのシリンジを選択してください。 - 加熱パッドで食品の温度を30〜35°Cに保ちます。
- 授乳前に手を温め、保育器の中で片手に暖かい毛布を持った乳児マーモセットをそっと抱きしめます。
- 乳児マーモセットの頭を介護者の握る手の親指と人差し指でそっと保持しながら、乳児マーモセットの口に哺乳乳首を入れ、一定速度でゆっくりと餌を注射器から押し出します。
注意: マーモセットの赤ちゃんが飲み込むよりも速く食べ物を押さないでください。速く押すと、鼻から喉に食べ物が出てくる窒息を引き起こす可能性があります。これは肺炎などの病気を引き起こし、死に至ることさえあります。餌があふれてしまうと、マーモセットの赤ちゃんは苦労します。これが発生した場合は、給餌をやめ、動物の顔から食べ物を注意深く拭き取ってください。マーモセットが正常に動作し始めた後も給餌を続けます。
- 50 mLの滅菌遠心チューブに50°Cの沸騰水30 mLに5gの粉ミルク5gを溶かします。
- マーモセットの赤ちゃんが適量の餌を摂取した後、ぬるま湯で綿棒で肛門を拭くと、肛門がきれいになり、排便が促進されます。
- 動物を数分間観察し、動物の移動と排便を確認します。
- 給餌時間、食物摂取量(mL)、排便状態(はい/いいえ、硬い/ゆるい)、およびインキュベーターの温度と湿度を記録します。
注意: 乳児が冷えたり怪我をしたりしないように、計量中は乳児マーモセットを暖かい毛布で包んでください。 - 固形の糞便を拾うか、新しい使い捨ておむつパッドに交換して、インキュベーターのシャーシを清潔に保ちます。
- P50の前に、ステップ3.3〜3.7に従って乳児マーモセットを給餌し、表 2に示す食品成分の投与量および給餌時間と頻度を使用する。
- P50以降、マーモセットの仔児は通常、自発的に食べる準備ができています。
- 注射器の代わりにプラスチック製の計量皿を使用してください。食品材料を皿に直接混ぜて食品を準備します。金額については表 2 を参照してください。
- 餌皿をインキュベーターに入れ、ひっくり返った場合に備えて底を固定します。数分間観察して、マーモセットの赤ちゃんが餌を食べていることを確認します。最初の数回は、動物を餌皿に誘い込み、口が餌に数回触れるように誘導することで、動物が自発的に食べるように導きます。
注意: 動物の鼻が食べ物に触れないようにしてください。通常、動物は1日で自発的に食べることを学びます。
4.マーモセットの幼魚がコロニーに戻る前の順応
注:通常、マーモセットの赤ちゃんが自分で食べられるようになったら、手づくりは終わります。マーモセットコロニーのホームケージに戻す前に、いくつかの適応手順を実行する必要があります。
- マーモセットの赤ちゃんを動物の保育器から鳥かごに似た小さなケージ(45 cm x 45 cm x 40 cm)に移動します。各小さなケージに水筒(50 mL)を掛けます。
- マーモセットの子魚が入った小さなケージをコロニーに移し、家族のケージの近くに配置します。
- プラスチック製の計量皿で乳児マーモセットに1週間別々に給餌し、コロニー全体用に準備された毎日のレシピに従って餌を混ぜます。
- 1日1回、体重と排便状況を記録します。
5. 家族のケージに戻るマーモセットの赤ちゃん
注:小さなケージで7〜10日間生活した後、幼魚マーモセットは通常、コロニー環境によく適応し、それ以上の不安を示さなくなります。
- 朝、マーモセットの赤ちゃんを家族のケージに戻します。
- 少なくとも15分間動物を観察して、家族と新規参入者の間で噛みついたり、喧嘩したり、追いかけたりしていないことを確認してください。
注意: 噛んだり、喧嘩したり、追いかけたりした場合は、できるだけ早く乳児を他の乳児から離してください。そして、別の日にもう一度乳児を家族に戻すようにしてください。障害が再び発生した場合は、別の家族を選択して里親にします。子育ての経験が豊富な家族グループは、里親の第一選択です。ぬいぐるみを新しいケージに入れて、家族が受け入れない場合は、子ザルに同行させます。 - マーモセットの稚魚に別々に餌を与えるのをやめ、コロニーの餌を使って餌を与え始めます。
- マーモセットの子が家族のケージに戻った後、1週間はマーモセットの活動に細心の注意を払ってください。
- 2日ごとにマーモセットの赤ちゃんの体重を測定し、記録します。体重が減ったら、家族のケージで注射器で余分な栄養食品を与えます。
- コロニーのマーモセットと同様に、幼いマーモセットに毎日の世話をします。
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Representative Results
体重は動物の体の成長の重要な指標であり、このプロトコルではマーモセットの健康状態の指標として使用されます。この研究では、手で飼育された動物の体重は年齢とともに徐々に増加し(図2A、n = 16)、以前の研究46の新生児の体重に類似していた。コロニー内の繁殖家族への攪乱を最小限に抑えるために、コロニー内のマーモセットの子象の体重を毎日測定しませんでした。生後1ヶ月以降に親で育てられた動物の体重を求め、同じ年齢の手で育てられた乳児の体重と比較した。親で育てられた乳児と手で育てられた乳児の間で体重に有意差はなかった(P30、手育て群、52.25 g ± 2.10 g、n = 18;コロニー群、57.34 g ± 2.77 g、n = 7;t = −1.3417、P = 0.1928;P60、手飼育群、91.76 g ± 3.44 g、コロニー群、93.06 g ± 4.68 g;t = −0.2019、P = 0.8424;スチューデントのt検定)(図2B)。
図2:コロニーで手飼育されたマーモセットと親で育てられたマーモセットの体重 。 (A)手で育てられた各乳児の体重。灰色の線は個人の体重を示し、オレンジ色の曲線は母集団の平均を示しています。(B)P30とP60における手で育てられた乳児(オレンジ)と親で育てられた乳児(緑)の体重の比較。灰色の円は個人を表します。データは平均±SEMとして表示されます。 nsは有意差がないことを示します。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。
表 1.動物インキュベーター内の温度の構成。この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。
表2:給餌レシピ。 「食材」の下の列は、1日分の牛乳のレシピを示しています。例えば、産後1〜14日目には、初食前に粉ミルク5gと水30mLを混ぜ、毎回0.5〜1.5mLを摂取して授乳します。「ベビー粉ミルク」と「ライスペースト」の投与量は粉末状です。 この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。
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Discussion
コモンマーモセットは、生物医学および神経科学の研究に非常に有用なNHPモデルです。しかし、マーモセットの資源は限られており、急速に増大するニーズを満たすことができません。本研究では、マーモセット児の生存率を高めるだけでなく、出生後の発達を研究する機会を提供する手飼育方法を開発しました。この手飼育法は実用的で習得しやすいため、一般的なマーモセットを扱う他の研究室にも簡単に適用できます。
いくつかの先天性欠損症は、通常、生後2週間で発症します。これまでに、まぶた、肺、腸、脳に先天性欠損のある新生児マーモセットの症例がいくつか確認されており、P14まで生存することはめったにありません。したがって、P1-14は、手飼育法で飼育できる健康な新生マーモセットを選別するための重要な時期です。また、マーモセットの乳児が過失や母乳不足で親の体から落とされた場合、マーモセットは生き延びることができません。このように、手による飼育は彼らの命を救うのに役立ちます。本研究では、手による飼育を行わない場合の生存率は45%(n=13/29)であったが、手による飼育法を適用した後は86%(n=25/29)に上昇した。
注意すべき重要な点がいくつかあります。介護者は給餌中辛抱強くなければなりません。注射器を速く押しすぎると、乳児マーモセットが飲み込むことができず、窒息やイレウスを引き起こし、動物の呼吸器系や消化器系を損なう可能性があるため、良くありません。ストレスは腸内細菌叢に大きな影響を与える可能性があり、マーモセットの慢性下痢と関連しているため、乳児動物へのストレスを最小限に抑えるために、飼育者は給餌中は穏やかで静かでなければなりません47,48。手をあげている間、マーモセットの赤ちゃんの近くにいるすべての人は、終始穏やかに振る舞わなければなりません。保育器のドアを急いで開けると、突然大きな音がして、乳児を怖がらせ、ストレス反応を引き起こす可能性があります。
体重は動物の健康状態を示す重要な指標であるため、動物の体重を毎日監視する必要があります。栄養不足、過食、栄養失調、または消化不良は、体重の変化によって迅速に検出できます。体重の少ないマーモセットは、骨と胃腸の病気を併発する傾向があることが以前に報告されています49。一般に、乳児マーモセットの体重はP1-5期では一定に保たれ、手飼育法では1日あたり1〜4gずつ徐々に増加した。P5以降、2日間にわたって体重の増加または緩やかな減少が観察されない場合は、飼育者は注意を払い、動物の体温と排泄状況だけでなく、餌の成分を確認する必要があります。この場合、プロバイオティクスを追加すると便利です。
一晩中動物に餌をやる必要はありません。2時間から4時間おきに2時間から4時間おきに乳児マーモセットに給餌を試みたところ、乳児マーモセットの成長を促進しないことがわかりました(データは示していません)。十分な運動不足や過食は、マーモセットの脂質異常症、グルコース代謝の変化、インスリン抵抗性に関連する肥満などのメタボリックシンドロームを誘発する可能性があります50,51,52。乳児は、授乳中や体重測定中、特に生後数日間は暖かく保つ必要があります。風邪をひいた後に下痢をした乳児がいました。下痢は動物の活力を急速に弱め、体重を減らします。
握力と体温は、乳児マーモセットの健康状態の主な指標であり、これらは注意深く監視する必要があります。マーモセットの乳児は、餌を与えるときはいつも、毛布や哺乳器の指をつかみます。動物が下痢をすると、握力は通常弱くなります。これが起こったら、エンドウ豆サイズのプロバイオティクスを食品に加え、下痢がなくなるまで3日間、影響を受けた乳児に食事を与える必要があります。下痢が3日以上続く場合は、プロバイオティクスの代わりにモンモリロナイトパウダーを追加する必要があります。対照的に、乳児が便秘の場合は、排便を促進するためにぬるま湯に浸した綿棒で肛門を優しく拭き、必要に応じてラクツロースを使用する必要があります。また、マーモセットの赤ちゃんの体温は通常、人間よりも高いです。動物の体温が通常よりも低い場合、それはしばしば握力の低下に関連していますが、動物の行動を注意深く監視し、それに応じて給餌を調整する必要があります。
マーモセットの赤ちゃんが登り始めたら、ブリーダーの監督のもと、保育器にクライミングフレームとおもちゃのローラーを用意する必要があります。動物は、P25以降、各食事の前後に登山の練習をすることが許可されています。P50では、マーモセットの赤ちゃんはよく登ったりジャンプしたりすることができ、これは自発的な食事の前提条件です。乳児マーモセットは、毛布やぬいぐるみ、紙おむつパッドを噛んで歯ぎしりするのが好きですが、これらは小さなループを形成し、自己絞殺によって生命を脅かす可能性があります。したがって、破れた破片や糸は、怪我や死亡を避けるために迅速に清掃する必要があります。
食欲、活力、環境条件の違いにより、給餌手順がわずかに変更される場合があります。マーモセットの赤ちゃんが十分に丈夫であれば、おそらくP25より前にクライミングの練習を始め、P50より前に自発的な食事を学び、P60より前に家族の元に帰ることさえあるでしょう。その間、インキュベーター内の温度を毎日または2日ごとに0.5°C下げて、子マーモセットが最終的にケージに戻る前にコロニー内の温度と同じ温度に調整できるようにします。マーモセットの仔魚が一定期間食欲不振になる場合は、1食あたりの餌の量を減らし、1日あたりの頻度を増やし、保育器をコロニーよりも長時間暖かく保つ必要があります。今回の研究では、88.9%(n = 16/18)の乳児が生みの親に受け入れられ、11.1%(n = 2/18)が他の家族によって養育され、拒絶された人はいなかった。
異なる家族構成を持つマーモセットの幼体を研究すると、社会的および精神的発達の違いが明らかになります。実際、発達過程における親子間および仲間間の社会的相互作用は、潜在的に社会的脳機能を形作る53,54,55。したがって、1匹か2匹かを手飼育に選ぶかは、実験の目的によって異なります。私たちの研究室では、動物福祉の要求を満たし、より多くの乳児が生き延びるのを助けるために、可能であれば2人の乳児を手作業で育てています。マーモセット三つ子43の共同飼育方法も良い選択です。親との交流が限られている手飼育のマーモセットは、社会的行動の研究のための実験には適さない可能性があります。
結論として、本研究の手飼育法は、P1からP60までの幼魚マーモセットの給餌方法に関する指示を提供します。このプロトコルでは、経験豊富なブリーダーが1匹のマーモセットの仔魚に手作業で給餌するのに~15分かかります。手術が成功するかどうかは、餌の適切な温度と環境、給餌時間と技術、食後の動物の排泄など、複数の要因にかかっています。この方法は実現可能であり、習得も簡単です。5年間の実践により、継続的に最適化されています。この方法は、一般的なマーモセットを扱う他の研究室にも適用できます。
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Disclosures
著者には開示すべき利益相反はありません。
Acknowledgments
著者らは、この原稿の初期版の文法と推敲を編集してくれたMingxuan Liに感謝します。この研究は、中国浙江省自然科学基金会(LD22H090003)の支援を受けました。中国自然科学基金会(32170991および32071097)、STI2030主要プロジェクト2021ZD0204100(2021ZD0204101)および2022ZD0205000(2022ZD0205003);浙江大学脳科学・ブレイン・マシン・インテグレーションのためのMOEフロンティア科学センター。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| animal incubator | RCOM, Korea | MX - BL600N, 855 mm (W) x 470 mm (L) x 440 mm (H) | |
| baby milk powder | Meadjohnson, America | suitable for 0-12 months of age, executive standard - GB25596 | |
| baby rice paste | HEINZ, China | suitable for 0-6 months of age, executive standard - GB10769 | |
| baby wipes | babycare, China | soft | |
| beaker | ShuNiu, China | 100 mL | |
| blankets | Grace, China | 10 cm × 10 cm, soft | |
| climbing frame | WowWee, China | firm and no small circular structures | |
| disposable diaper pads | Hi Health Pet, China | either M or L size | |
| disposable sterile syringe | Cofoe, China | 1 mL, 2.5 mL, 3 mL, 5 mL, 10 mL | |
| electronic scale | YouSheng, China | measuring range from 0 to 6,000 g with precision of 0.2 g | |
| intravenous injector | HD, China | 0.55 mm x 20 mm needle | |
| kettle | FGA, China | warm-keeping kettle 1,500 mL | |
| lactulose | BELCOL, China | to solve constipation | |
| plastic weighing dish | SKSLAB, China | 80 mm x 80 mm x 22 mm, used as a bowl | |
| plush toy | Lebiyou, China | soft | |
| probiotic powder | G-Pet, China | to regulate gastrointestinal environment | |
| sterile centrifuge tube | NEST, China | 50 mL | |
| swab | OYEAH, China | 80 - 100 mm | |
| toy roller | WowWee, China | firm and no small circular structures |
References
- Miller, C. T., et al. Marmosets: A neuroscientific model of human social behavior. Neuron. 90 (2), 219-233 (2016).
- Ross, C. N., Colman, R., Power, M., Tardif, S. Marmoset metabolism, nutrition, and obesity. ILAR Journal. 61 (2-3), 179-187 (2020).
- Kishi, N., Sato, K., Sasaki, E., Okano, H. Common marmoset as a new model animal for neuroscience research and genome editing technology. Development, Growth & Differentiation. 56 (1), 53-62 (2014).
- Prins, N. W., et al. Common marmoset (Callithrix jacchus) as a primate model for behavioral neuroscience studies. Journal of Neuroscience Methods. 284, 35-46 (2017).
- Tokuno, H., Watson, C., Roberts, A., Sasaki, E., Okano, H.
- Hodges, J. K., Henderson, C., Hearn, J. P. Relationship between ovarian and placental steroid production during early pregnancy in the marmoset monkey (Callithrix jacchus). Journal of Reproduction and Fertility. 69 (2), 613-621 (1983).
- Troilo, D., Judge, S. J. Ocular development and visual deprivation myopia in the common marmoset (Callithrix jacchus). Vision Research. 33 (10), 1311-1324 (1993).
- Mitchell, J. F., Leopold, D. A. The marmoset monkey as a model for visual neuroscience. Neuroscience Research. 93, 20-46 (2015).
- Hung, C. C., et al. Functional MRI of visual responses in the awake, behaving marmoset. NeuroImage. 120, 1-11 (2015).
- Gao, L., Kostlan, K., Wang, Y., Wang, X. Distinct subthreshold mechanisms underlying rate-coding principles in primate auditory cortex. Neuron. 91 (4), 905-919 (2016).
- Gao, L., Wang, X. Subthreshold activity underlying the diversity and selectivity of the primary auditory cortex studied by intracellular recordings in awake marmosets. Cerebral Cortex. 29 (3), 994-1005 (2019).
- Gao, L., Wang, X. Intracellular neuronal recording in awake nonhuman primates. Nature Protocols. 15, 3615-3631 (2020).
- Wang, X., et al. Corticofugal modulation of temporal and rate representations in the inferior colliculus of the awake marmoset. Cerebral Cortex. 32 (18), 4080-4097 (2022).
- Wang, X., et al. Selective corticofugal modulation on sound processing in auditory thalamus of awake marmosets. Cerebral Cortex. 33 (7), 3372-3386 (2022).
- Kajikawa, Y., et al. Coding of FM sweep trains and twitter calls in area CM of marmoset auditory cortex. Hearing Research. 239 (1-2), 107-125 (2008).
- Choi, D., Bruderer, A. G., Werker, J. F., et al. Sensorimotor influences on speech perception in pre-babbling infants: Replication and extension of Bruderer et al. Psychonomic Bulletin & Review. 26 (4), 1388-1399 (2019).
- Eliades, S. J., Miller, C. T. Marmoset vocal communication: Behavior and neurobiology. Developmental Neurobiology. 77 (3), 286-299 (2017).
- Roy, S., Zhao, L., Wang, X. Distinct neural activities in premotor cortex during natural vocal behaviors in a New World primate, the common marmoset (Callithrix jacchus). Journal of Neuroscience. 36 (48), 12168-12179 (2016).
- Simões, C. S., et al. Activation of frontal neocortical areas by vocal production in marmosets. Frontiers in Integrative Neuroscience. 4, 123 (2010).
- Iwanami, A., et al. Transplantation of human neural stem cells for spinal cord injury in primates. Journal of Neuroscience Research. 80 (2), 182-190 (2005).
- Schorscher-Petcu, A., Dupré, A., Tribollet, E. Distribution of vasopressin and oxytocin binding sites in the brain and upper spinal cord of the common marmoset. Neuroscience Letters. 461 (3), 217-222 (2009).
- Bowes, C., Burish, M., Cerkevich, C., Kaas, J. Patterns of cortical reorganization in the adult marmoset after a cervical spinal cord injury. Journal of Comparative Neurology. 521 (15), 3451-3463 (2013).
- Kondo, T., et al. Histological and electrophysiological analysis of the corticospinal pathway to forelimb motoneurons in common marmosets. Neuroscience Research. 98, 35-44 (2015).
- Nash, J. E., et al. Antiparkinsonian actions of ifenprodil in the MPTP-lesioned marmoset model of Parkinson's disease. Experimental Neurology. 165 (1), 136-142 (2000).
- van Vliet, S. A., et al. Neuroprotective effects of modafinil in a marmoset Parkinson model: Behavioral and neurochemical aspects. Behavioural Pharmacology. 17 (5-6), 453-462 (2006).
- van Vliet, S. A., Vanwersch, R. A., Jongsma, M. J., Olivier, B., Philippens, I. H. Therapeutic effects of Delta9-THC and modafinil in a marmoset Parkinson model. European Neuropsychopharmacology. 18 (5), 383-389 (2008).
- Philippens, I. H., t Hart, B. A., Torres, G. The MPTP marmoset model of parkinsonism: a multi-purpose non-human primate model for neurodegenerative diseases. Drug Discovery Today. 15 (23-24), 985-990 (2010).
- Santana, M. B., et al. Spinal cord stimulation alleviates motor deficits in a primate model of Parkinson disease. Neuron. 84 (4), 716-722 (2014).
- Tardif, S. D., Mansfield, K. G., Ratnam, R., Ross, C. N., Ziegler, T. E. The marmoset as a model of aging and age-related diseases. ILAR Journal. 52 (1), 54-65 (2011).
- Sasaki, E., et al. Generation of transgenic non-human primates with germline transmission. Nature. 459, 523-527 (2009).
- Sasaki, E. Prospects for genetically modified non-human primate models, including the common marmoset. Neuroscience Research. 93, 110-115 (2015).
- Park, J. E., Sasaki, E. Assisted reproductive techniques and genetic manipulation in the common marmoset. ILAR Journal. 61 (2-3), 286-303 (2020).
- Smith, D., Trennery, P., Farningham, D., Klapwijk, J. The selection of marmoset monkeys (Callithrix jacchus) in pharmaceutical toxicology. Laboratory Animals. 35 (2), 117-130 (2001).
- Smith, T. E., Tomlinson, A. J., Mlotkiewicz, J. A., Abbott, D. H. Female marmoset monkeys (Callithrix jacchus) can be identified from the chemical composition of their scent marks. Chemical Senses. 26 (5), 449-458 (2001).
- Jagessar, S. A., et al. Induction of progressive demyelinating autoimmune encephalomyelitis in common marmoset monkeys using MOG34-56 peptide in incomplete freund adjuvant. Journal of Neuropathology and Experimental Neurology. 69 (4), 372-385 (2010).
- Kap, Y. S., Laman, J. D., 't Hart, B. A. Experimental autoimmune encephalomyelitis in the common marmoset, a bridge between rodent EAE and multiple sclerosis for immunotherapy development. Journal of Neuroimmune Pharmacology. 5 (2), 220-230 (2010).
- Carrion, R., Patterson, J. L. An animal model that reflects human disease: The common marmoset (Callithrix jacchus). Current Opinion in Virology. 2 (3), 357-362 (2012).
- Jagessar, S. A., et al. Overview of models, methods, and reagents developed for translational autoimmunity research in the common marmoset (Callithrix jacchus). Experimental Animals. 62 (3), 159-171 (2013).
- Feng, Z., et al. Biologically excretable aggregation-induced emission dots for visualizing through the marmosets intravitally: Horizons in future clinical nanomedicine. Advanced Materials. 33 (17), 2008123 (2021).
- Goodroe, A., et al. Current practices in nutrition management and disease incidence of common marmosets (Callithrix jacchus). Journal of Medical Primatology. 50 (3), 164-175 (2021).
- Power, M. L., Koutsos, L. Chapter 4 - Marmoset nutrition and dietary husbandry. The Common Marmoset in Captivity and Biomedical Research. Marini, R., Wachtman, L., Tardif, S., Mansfield, K., Fox, J. , Academic Press. Cambridge, MA. 63-76 (2019).
- Gore, M. A., et al. Callitrichid nutrition and food sensitivity. Journal of Medical Primatology. 30 (3), 179-184 (2001).
- Hearn, J. P., Burden, F. J.
- Cao, X., et al. Effect of a high estrogen level in early pregnancy on the development and behavior of marmoset offspring. ACS Omega. 7 (41), 36175-36183 (2022).
- Watakabe, A., et al. Application of viral vectors to the study of neural connectivities and neural circuits in the marmoset brain. Developmental Neurobiology. 77 (3), 354-372 (2017).
- Takahashi, D. Y., et al. The developmental dynamics of marmoset monkey vocal production. Science. 349 (6249), 734-738 (2015).
- Malukiewicz, J., et al. The gut microbiome of exudivorous marmosets in the wild and captivity. Scientific Reports. 12 (1), 5049 (2022).
- Shigeno, Y., et al. Comparison of gut microbiota composition between laboratory-bred marmosets (Callithrix jacchus) with chronic diarrhea and healthy animals using terminal restriction fragment length polymorphism analysis. Microbiology and Immunology. 62 (11), 702-710 (2018).
- Baxter, V. K., et al. Serum albumin and body weight as biomarkers for the antemortem identification of bone and gastrointestinal disease in the common marmoset. PLoS One. 8 (12), e82747 (2013).
- Tardif, S. D., et al. Characterization of obese phenotypes in a small nonhuman primate, the common marmoset (Callithrix jacchus). Obesity. 17 (8), 1499-1505 (2009).
- Wachtman, L. M., et al. Differential contribution of dietary fat and monosaccharide to metabolic syndrome in the common marmoset (Callithrix jacchus). Obesity. 19 (6), 1145-1156 (2011).
- Power, M. L., Ross, C. N., Schulkin, J., Ziegler, T. E., Tardif, S. D. Metabolic consequences of the early onset of obesity in common marmoset monkeys. Obesity. 21 (12), E592-E598 (2013).
- Shimizu, K., et al. Peer-social response in 4 juvenile marmosets represented the emotional development traits depending on family structure. Neuroscience Research. 65, S244 (2009).
- Schultz-Darken, N., Braun, K. M., Emborg, M. E. Neurobehavioral development of common marmoset monkeys. Developmental Psychobiology. 58 (2), 141-158 (2016).
- Gultekin, Y. B., Hage, S. R. Limiting parental feedback disrupts vocal development in marmoset monkeys. Nature Communications. 8, 14046 (2017).
