Summary
Ингибиторы контрольных точек являются важными мишенями при разработке методов борьбы с раком. В настоящем докладе представлена новая противораковая вакцина PDL1-Vaxx на основе пептида PDL1, которая индуцирует выработку нейтрализующих поликлональных антител, блокирующих образование комплекса PD-1/PDL1. В этой работе также подробно описана разработка и тестирование флуоресцентного анализа на основе шариков для анализа этой активности.
Abstract
Ингибирование рецепторов контрольных точек (PD-1, PD-L1 и CTLA-4) моноклональными антителами показало большую пользу в клинических исследованиях для лечения онкологических больных и стало основным подходом в современной иммунотерапии рака. Тем не менее, только подгруппа пациентов реагирует на иммунотерапию моноклональными антителами в контрольных точках. Поэтому необходимо срочно разрабатывать новые терапевтические стратегии против рака. Была разработана новая противораковая вакцина PDL1 (лиганд запрограммированной смерти 1) с аминокислотами 130-147, связанными с пептидом MVF («беспорядочный» Т-клеточный белок слияния вируса кори) через GPSL-линкер. Доклинические испытания показали, что эта вакцина PDL1 (PDL1-Vaxx) эффективно стимулирует высокоиммуногенные антитела у животных. Животные, иммунизированные PDL1-Vaxx, демонстрируют снижение опухолевой нагрузки и более высокие показатели выживаемости в различных моделях рака у животных. Механизмы действия указывают на то, что антитела, вызванные вакциной, ингибируют пролиферацию опухолевых клеток, индуцируют апоптоз и блокируют взаимодействие PD-1/PD-L1. В данной статье представлен анализ на основе магнитных шариков, в котором используется система анализа потока с двумя репортерами для оценки взаимодействия PD-1/PD-L1 и его блокады антителами к PDL1, вырабатываемыми против PDL1-Vaxx.
Introduction
В Т-клетках, В-клетках и внутриклеточных контрольных точках иммунной системы сигнальные пути регулируют иммунную активность. Некоторые раковые клетки защищают себя от иммунной атаки, стимулируя контрольные точки-мишени, которые подавляют иммунную функцию и способствуют выживанию и пролиферации опухолей. Иммунотерапия онкологических заболеваний путем ингибирования контрольных точек использует антитела для нацеливания и блокировки сигнальных контрольных точек и, таким образом, восстановления противоопухолевых функций иммунной системы 1,2,3. Высокоэффективные противораковые препараты в настоящее время включают моноклональные антитела ниволумаб, которые нацелены на белок запрограммированной смерти 1 (PD-1)4, и атезолизумаб, который нацелен на лиганд запрограммированной смерти 1 (PD-L1)5. Такой подход показал большой клинический успех в лечении онкологических больных. Тем не менее, клиническая полезность существующих стратегий ингибирования контрольных точек смягчается нежелательными явлениями и резистентностью к лечению, особенно при терапии одним препаратом6. При лечении рака срочно требуется сочетание иммунотерапии и более эффективных терапевтических стратегий с меньшей токсичностью 1,3,6.
За последние 30 лет лаборатория доктора Каумайя разработала пептидные противораковые вакцины и связанные с пептидами агенты для терапии рака, некоторые из которых находятся в стадии клинических испытаний 1,2,7,8,9,10,11,12,13,14 . Например, в клинических испытаниях B-Vaxx в сочетании с комбинированной иммунотерапией HER-2 показала преимущества для пациентов в отношении метастатических и/или рецидивирующих солидных опухолей12. Новейшими противораковыми вакцинами лаборатории являются PD1-Vaxx 2,13 и PDL1-Vaxx14, которые показали большие преимущества в доклинических исследованиях, особенно при комбинированном лечении. Вакцина PD1-Vaxx завершила клинические испытания с повышением дозы в США и Австралии. PD1-Vaxx будет сочетаться с атезолизумабом в исследовании фазы 1b, которое начнется в мае 2023 года. Этот отчет посвящен оценке способности антител, индуцированных PDL1-Vaxx, блокировать взаимодействие PD-1/PD-L1.
Противораковая вакцина PDL1-Vaxx представляет собой новую эпитопную вакцину на основе В-клеточного пептида с аминокислотами PD-L1 130-147, связанными с неразборчивым пептидом слияния Т-клеточного вируса кори (MVF) через пептидный линкер GPSL. Доклинические исследования показали, что PDL1-Vaxx обладает высокой иммуногенностью, стимулируя выработку противораковых антител на различных животных моделях, продлевает выживаемость и снижает опухолевую нагрузку14. Эти антитела, вырабатываемые против пептида PD-L1, могут успешно блокировать взаимодействие PD1/PD-L1, что приводит к противоопухолевой активности. В этом отчете представлен анализ, который анализирует блокаду образования комплекса PD1/PD-L1 антителами, индуцированными PDL1-Vaxx, с использованием формата на основе магнитных шариков с двойным репортерным считыванием на приборе для проточной цитометрии.
Protocol
1. Подготовка эксперимента
ПРИМЕЧАНИЕ: Подробная информация обо всех реагентах/оборудовании, упомянутых на этом этапе, приведена в таблице материалов.
- Получить рекомбинантный человеческий PD-1 (rhPD-1; полигистидин-меченый). Перед использованием восстановите лиофилизированный rhPD1 стерильно-фильтрованным фосфатно-солевым буфером (PBS), pH 7,4.
- Получить биотинилированный рекомбинантный человеческий PD-L1 (rhPD-L1). Перед использованием восстановите лиофилизированный rhPD-L1 стерильной деионизированной водой.
- Получить реагент для детекции R-фикоэритрина, конъюгированный стрептавидин-конъюгированным (SAPE). Храните все растворы SAPE в защищенном от света месте при температуре холодильника (т.е. 2-8 °C).
- Получите флуоресцентно окрашенные магнитные микросферы (диаметр 6,5 мкм, полистирол с вложенным магнетитом) и набор для соединения шариков15 (если используется, см. таблицу материалов). Ковалентное связывание с микросферами требует сульфо-NHS (сульфо-N-гидросукцинимида) и EDC (N-[3-диметиламинопропил]-N′-этилкарбодиимида гидрохлорида).
ПРИМЕЧАНИЕ: Наборы магнитных шариков поставляются с любой из 500 уникальных флуоресцентных меток, что позволяет идентифицировать и дифференцировать их от различных наборов шариков16. Гранулы предлагаются в концентрациях 2,5 × 106 шариков/мл и 12,5 × 106 шариков/мл. Храните шарики в защищенном от света месте при температуре холодильника (т.е. 2-8 °C). Не замораживайте суспензии бортиков. - Получение положительных и отрицательных контрольных антител и антител вторичного обнаружения, меченных Brilliant Violet 421 (BV421). Храните все флуоресцентно-сопряженные молекулы в защищенном от света месте.
- Выполняйте все реакции связывания в пробирках с низким содержанием белка и все реакции анализа в 96-луночных микротитровальных планшетах с низким содержанием белка с круглым дном. Запечатайте планшеты одноразовой клейкой пленкой или пластиковыми крышками для 96-луночных микропланшетов для этапов инкубации анализа. Используйте магнитный пластинчатый сепаратор для иммобилизации шариков на этапах промывки.
ПРИМЕЧАНИЕ: Система анализа потока с двумя репортерами имеет три лазера: (1) один, который идентифицирует и количественно определяет флуоресценцию, специфичную для набора шариков (канал классификации); (2) тот, который обнаруживает и количественно определяет флуоресценцию специфичного для мишени фикоэритрина (ПЭ) (Reporter Channel 1; возбуждение 532 нм, «оранжевое» излучение 565-585 нм); и (3) тот, который обнаруживает и количественно определяет специфичную для мишени флуоресценцию BV421 второго целевого аналита (Reporter Channel 2; возбуждение 405 нм, «синий» излучение 421-441 нм).
2. Соединение rhPD-1 с магнитными шариками
ПРИМЕЧАНИЕ: Соединяемый белок не должен содержать бычьего сывороточного альбумина (BSA), азида натрия, глицина, глицерина, трис(гидрокси-метил)аминометана (Tris) или аминосодержащих добавок и должен быть суспендирован в PBS при pH 7,4. Доступен коммерческий комплект муфт, который включает в себя все необходимые реагенты и буферы, описанные в настоящем документе (см. таблицу материалов).
- Выньте все связующие реагенты из холодильника и дайте им уравновеситься до комнатной температуры (RT, 18-22 °C) в течение 20-30 минут.
- Ресуспендируйте исходные микросферы путем кратковременного вихряния, ультразвуковой обработки или вращения (15 минут при 15-30 об/мин), согласно информационному листу продукта.
- Переложите 1 × 106 магнитных шариков в пробирку микроцентрифуги с низким содержанием белка объемом 1,5 мл (см. таблицу материалов).
- Промывка шариков с 100 мкл активационного буфера15: 0,1 М2PO4 (одноосновный), pH 6,2.
ПРИМЕЧАНИЕ: Сопряжение также может быть выполнено с использованием предварительно сконфигурированного комплекта для сопряжения, который включает 0,1 М 2-морфолиноэтансульфоновая кислота (MES), pH 6,0, в качестве альтернативного буфера активации и связывания (см. Таблицу материалов).- Поместите пробирку с шариками в магнитный сепаратор на 1-2 минуты.
ПРИМЕЧАНИЕ: В качестве альтернативы гранулы можно разделить микроцентрифугированием при ≥8 000 × г в течение 1-2 минут. - Отсасывайте надосадочную жидкость пипеткой из иммобилизованных магнитом или гранулированных шариков, при этом пробирка все еще находится в магнитном сепараторе.
- Извлеките пробирку микроцентрифуги из магнита и добавьте 80 мкл буфера связи (см. Таблицу материалов).
- Осторожно встряхните реакционную трубку и обрабатывайте ультразвуком в течение 20 с, чтобы диспергировать шарики.
- Поместите пробирку с шариками в магнитный сепаратор на 1-2 минуты.
- Активируйте шарики с помощью sulfo-NHS и EDC.
ПРИМЕЧАНИЕ: Исходный раствор sulfo-NHS составляет 50 мг/мл, растворенный в активационном буфере. Исходный раствор EDC также составляет 50 мг/мл, растворенный в активационном буфере. Как активационный буфер, так и влага в атмосфере вызывают деградацию EDC. Не рекомендуется использовать хранящееся решение EDC. Приготовьте достаточное количество свежего EDC-раствора перед этапом и используйте его сразу же, когда раствор будет готов. Выбросьте излишки EDC-раствора.
ВНИМАНИЕ: EDC вызывает сильное раздражение глаз и раздражает дыхательные пути и кожу.- Добавьте 10 мкл sulfo-NHS в пробирку с микрофугой, содержащую промытые и активированные гранулы.
- Добавьте 10 мкл исходного раствора EDC в пробирку с микрофугой, содержащую гранулы и сульфо-NHS.
- Защитите светочувствительные микросферы от света и вращайте на вращателе в течение 20 минут при 15-30 об/мин, при RT (18-22 °C). В качестве альтернативы трубка может оставаться неподвижной на этапе активации, если ее осторожно вихрять для перераспределения шариков с интервалом в 10 минут.
- Смойте излишки реагентов сцепления с бортов.
- Поместите пробирку с активированными шариками в магнитный сепаратор на 1-2 минуты.
- Отсасывайте надосадочную жидкость с помощью пипетки из магнитных или гранулированных шариков, при этом пробирка все еще находится в магнитном сепараторе.
- Извлеките пробирку микроцентрифуги из магнита и добавьте 100 мкл активационного буфера.
- Осторожно встряхните реакционную трубку, чтобы рассеять шарики.
- Повторите шаги 2.6.1-2.6.4 еще два раза, чтобы в общей сложности выполнить три стирки. В конце промывки гранулы будут суспендированы в 100 мкл активационного буфера в приблизительной концентрации 10 × 106 шариков/мл.
- Соедините пептид rhPD-1 с активированными шариками.
- Добавьте 390 мкл активационного буфера в пробирку, содержащую активированные шарики, чтобы довести общий объем суспензии шарика до 490 мкл.
- Добавьте 1 мкг пептида PD-1 к активированной суспензии гранул, добавив 10 мкл раствора пептида PD-1 (1 мг/мл, растворенный в PBS) в пробирку, содержащую активированные шарики.
- Кратковременно встряхните пробирку микроцентрифуги, чтобы равномерно распределить PD-1 и активированные шарики.
- Инкубируют шарики с ПД-1 в течение 2 ч в темноте при РТ (18-22 °С) при вращении (15-30 об/мин).
- Промойте бусины дважды (2 раза) с использованием пробирного буфера (PBS-TBN: 1x PBS, pH 7,4 + 0,1% BSA + 0,05% Tween-20 + 0,05% NaN315).
- Поместите пробирку с активированными шариками в магнитный сепаратор на 1-2 минуты.
- Отсасывайте надосадочную жидкость пипеткой из иммобилизованных магнитом или гранулированных шариков, при этом пробирка все еще находится в магнитном сепараторе.
- Извлеките пробирку микроцентрифуги из магнита и добавьте 100 мкл активационного буфера.
- Осторожно встряхните реакционную трубку, чтобы рассеять шарики.
- Повторите шаги 2.8.1-2.8.4 еще один раз, чтобы выполнить в общей сложности две стирки. В конце промывки гранулы будут суспендированы в 100 мкл активационного буфера в концентрации 10 ×10 6 шариков/мл.
ПРИМЕЧАНИЕ: Буфер для анализа/промывки может быть изготовлен без азида натрия (консерванта), если буфер также не используется в качестве среды хранения. - Храните шарики, связанные rhPD-1, в темноте в холодильнике при температуре 2-8 °C, если они не используются немедленно. Гранулы, связанные с белками, стабильны до 18 месяцев.
3. Оценка успешного соединения rhPD-1 с шариками
ПРИМЕЧАНИЕ: Микросферы, связанные с rhPD-1, вступают в реакцию с биотинилированным rhPD-L1, последний из которых обнаруживается путем инкубации с SAPE с последующей оценкой на проточном цитометре. Это подтверждает как успешное связывание PD-1 с магнитными шариками, так и функциональное взаимодействие между белками rhPD-1 и rhPD-L1.
- Создать серию серийных разведений биотинилированного рПД-L1 в PBS-TBN (исходный раствор рПД-L1 составляет 1 мг/мл). Окончательный диапазон концентраций rhPD-L1, который необходимо протестировать, составляет от 8 мкг/мл до 313 пг/мл. Создайте объемы 150 мкл каждого разведения rhPD-L1: 50 мкл на каждую реакцию и две реакции на условие, а также достаточный избыток для компенсации потерь при пипетировании.
- Маркируйте пробирки для разведения rhPD-L1 как 8 мкг/мл, 4 мкг/мл, 2 мкг/мл, 1 мкг/мл, 0,5 мкг/мл, 0,25 мкг/мл, 0,125 мкг/мл, 0,063 мкг/мл и 0,031 мкг/мл. Пробирка 0 мкг/мл (только PBS-TBN) служит контролем no-PD-L1.
- Предварительно загрузите 150 мкл PBS-TBN во все маркированные пробирки для разведения rhPD-L1.
ПРИМЕЧАНИЕ: Самая высокая конечная концентрация rhPD-L1 для тестирования составляет 8 мкг/мл, а rhPD-L1 будет разбавлен 1:1 при добавлении в реакционную смесь, поэтому пробирка для разведения с маркировкой «8 мкг/мл» относится к конечной концентрации и фактически содержит 16 мкг/мл rhPD-L1. Этикетки на всех пробирках для разведения указывают конечную концентрацию rhPD-L1 после добавления в реакцию. - Создайте разбавление rhPD-L1 с самой высокой концентрацией (16 мкг/мл). Это двухступенчатое 62,5-кратное разведение исходного раствора rhPD-L1 в дозе 1 мг/мл (1000 мкг/16 мкг = 62,5).
- Смешайте 84 мкл PBS-TBN с 16 мкл исходного раствора rhPD-L1 (1 мг/мл, т. е. 1 000 мкл) в пробирке для микроцентрифуги. Это 6,25-кратное разведение, а результирующая концентрация составляет 160 мкг/мл rhPD-L1.
- В пробирке с маркировкой «8 мкг/мл» смешайте 270 мкл PBS-TBN с 30 мкл разведения rhPD-L1, полученного на предыдущем этапе (160 мкг/мл). Это 10-кратное разведение, а результирующая концентрация фактически составляет 16 мкг/мл. Маркировка пробирки «8 мкг/мл» указывает на его конечную концентрацию после добавления в реакцию.
- Перелейте 150 мкл разведения rhPD-L1, созданного на этапе 3.1.3 («8 мкг/мл»), в пробирку «4 мкг/мл», закройте крышку пробирки микроцентрифуги и кратковременно перемешайте раствор.
- Повторяйте шаг 3.1.4 последовательно до тех пор, пока не будет завершена серия разведения rhPD-L1. После создания все пробирки от «8 мкг/мл» до «0,063 мкг/мл», а также контрольная пробирка 0 мкг/мл должны содержать 150 мкл раствора, а последняя пробирка, «0,031 мкг/мл», должна содержать 300 мкл раствора. Таким образом, создается достаточный объем каждого разведения для тестирования 50 мкл каждого биотинилированного разведения rhPD-L1 в повторяющихся реакциях, при этом остается достаточный избыток для компенсации потерь при пипетировании.
- Подсчитайте количество шариков, связанных с rhPD-1, с помощью гемоцитометра17.
- Разбавьте исходные гранулы, связанные с rhPD-1, до 5 × 104 шариков/мл, с объемом, достаточным для 2 500 шариков/50 мкл/реакция.
- Вмешайте 5 × 104 шариков/мл суспензии rhPD-1 и пипетку 50 мкл суспензии в каждую меченую/картированную лунку 96-луночного микротитрового планшета с круглым дном так, чтобы для каждого тестируемого разведения rhPD-L1 были созданы дублирующиеся лунки.
- Добавьте 50 мкл каждой биотинилированной пробирки для разведения rhPD-L1, созданной на этапе 3.1, в соответствующие лунки на планшете микротитра.
- Накройте планшет с микротитрами одноразовой фольгой или пластиковым клейким герметиком для пластин и инкубируйте планшет в течение 1 ч в темноте при RT (18-22 °C) на орбитальном шейкере (600 об/мин).
- Смойте излишки биотинилированного rhPD-L1 с шариков.
- Перенесите запечатанную пластину из орбитального шейкера в магнитный сепаратор пластин на 2 минуты, чтобы обездвижить шарики.
- Осторожно снимите герметик для клейкой пластины, убедитесь, что магнит и микротитровая пластина надежно соединены друг с другом, переверните пластину и вылейте надосадочную жидкость в раковину или контейнер для биологически опасных жидких отходов, если это необходимо. Аккуратно, но быстро постучите перевернутой пластиной по подушке из впитывающей бумажной ткани, чтобы удалить оставшуюся надосадочную жидкость.
- Извлеките микротитровую пластину из сепаратора магнитных пластин и пипеткой 150 мкл PBS-TBN в каждую лунку.
- Поместите незапечатанную пластину на магнитный сепаратор на 2 минуты, чтобы обездвижить шарики.
- Убедитесь, что магнит и микротитровая пластина надежно соединены друг с другом, переверните планшет и вылейте надосадочную жидкость в раковину или контейнер для биологически опасных жидких отходов, если это необходимо. Аккуратно, но быстро постучите перевернутой пластиной по подушке из впитывающей бумажной ткани, чтобы удалить оставшуюся надосадочную жидкость.
- Повторите шаги промывки пластин 3.7.3-3.7.5 два раза, в общей сложности три промывки по 150 мкл PBS-TBN каждая. Убедитесь, что в конце последнего этапа промывки в лунках не осталось надосадочной жидкости. Работайте неуклонно, чтобы не допустить высыхания обездвиженных шариков на дне колодца.
- Добавьте реагент SAPE Detection.
- Разбавьте исходный раствор SAPE в PBS-TBN до рабочей концентрации 6 мкг/мл. Подготовьте достаточный объем рабочего раствора SAPE, чтобы все реакционные лунки могли принимать 100 мкл/лунку с достаточным запасом для компенсации потерь при пипетировании.
- Извлеките микротитровую пластину из магнитного пластинчатого сепаратора.
- Добавьте 100 мкл рабочего раствора SAPE в каждую реакционную лунку и повторно суспендируйте промытые шарики с помощью пипетирования.
- Запечатайте 96-луночный планшет с микротитром с помощью фольги или пластикового клейкого герметика для пластин и инкубируйте в течение 1 ч в темноте при RT (18-22 °C) на орбитальном шейкере при 600 об/мин.
- Извлеките микротитровую пластину из инкубатора, перенесите ее в магнитный сепаратор пластин для иммобилизации шариков, снимите герметик для клейких пластин и трижды промойте шарики 150 мкл PBS-TBN, как описано в шагах 3.7.3-3.7.5.
- После удаления окончательной промывки извлеките пластину из магнитного пластинчатого сепаратора и повторно суспендируйте шарики в 100 мкл PBS-TBN на лунку.
- Проанализируйте результаты.
- Прочтите табличку на приборе для анализа потока (см. Таблицу материалов), чтобы определить медианную интенсивность флуоресценции (MFI) каждой реакции, используя следующие настройки прибора: объем аспирации = 50 мкл; минимальное количество бусин = 100 бусин; настройка таймаута = 40 с; литник = 7 000-17 000; режим работы = Один репортер. Повторяющиеся скважины выполняются для каждого условия, и два выходных значения MFI для каждого условия усредняются перед выполнением дальнейших вычислений данных и построения графиков.
ПРИМЕЧАНИЕ: Значение MFI для каждого разведения должно показывать концентрационно-зависимое связывание, указывая на приемлемую эффективность связывания rhPD-1 с шариками и подтверждая хорошее взаимодействие рекомбинантных белков PD-1/PD-L1.
- Прочтите табличку на приборе для анализа потока (см. Таблицу материалов), чтобы определить медианную интенсивность флуоресценции (MFI) каждой реакции, используя следующие настройки прибора: объем аспирации = 50 мкл; минимальное количество бусин = 100 бусин; настройка таймаута = 40 с; литник = 7 000-17 000; режим работы = Один репортер. Повторяющиеся скважины выполняются для каждого условия, и два выходных значения MFI для каждого условия усредняются перед выполнением дальнейших вычислений данных и построения графиков.
4. Блокирующий анализ PD-L1 на основе магнитных шариков PD-1/PD-L1
ПРИМЕЧАНИЕ: Этот анализ оценивает блокирующую активность растворимых медиаторов (например, анти-PDL1-пептидных антител) на рекомбинантные взаимодействия PD1/PD-L1. Вкратце, биотинилированный rhPD-L1 предварительно инкубируют с антителами, вырабатываемыми у кроликов после различных инокуляций пептидов PDL1-Vaxx. Затем смесь антител rhPD-L1 + анти-PDL1 захватывают с помощью магнитных шариков, связанных с rhPD-1, а связывание rhPD-L1 с шариками, связанными с rhPD-1, количественно определяют путем добавления стрептавидина-ПЭ. Сигнал флуоресценции ПЭ обратно коррелирует с блокирующей активностью исследуемых антител/ингибиторов PDL1. Связывание антител к пептиду к PDL1 оценивается одновременно путем связывания вторичного антитела к кролику (для антител к пептиду PDL1) или к человеку (для контрольных антител) и путем оценки флуоресценции BV421 во втором канале прибора. Этапы анализа наглядно представлены на рисунке 1.
- Подготовьте серию тестовых антител с двукратным серийным разведением, включая поликлональные антитела-кандидаты, индуцированные PDL1-Vaxx, антитела с отрицательным контролем (трастузумаб, герцептин, гуманизированное моноклональное антитело против HER2) и положительное контрольное антитело (атезолизумаб; гуманизированное моноклональное антитело против PDL1 IgG1). Для каждой реакции будет использоваться 25 мкл назначенного разведения антител, поэтому показанные объемы достаточны для выполнения каждой реакции в двух лунках для каждого условия (т. е. 50 мкл на условие), с некоторым избытком, остающимся для компенсации потерь при пипетировании.
- Для каждого индуцированного вакциной антитела к PDL1-пептиду и контрольного антитела убедитесь, что диапазон конечных концентраций антител составляет от 1000 мкг/мл до 8 мкг/мл. Приготовьте исходные растворы всех антител в концентрации 2000 мкг/мл.
- Для каждого антитела пометьте пробирки для разведения как 1 000 мкг/мл, 500 мкг/мл, 250 мкг/мл, 125 мкг/мл, 63 мкг/мл, 31 мкг/мл, 16 мкг/мл и 8 мкг/мл и укажите название антитела. Для каждого антитела также добавьте пробирку «0 мкг/мл», которая будет использоваться только в транспортном средстве (PBS-TBN).
ПРИМЕЧАНИЕ: При добавлении в реакционную смесь концентрация антител будет разбавлена 1:1. Пробирки для разведения антител помечены как конечная концентрация антител после добавления в реакцию и фактически содержат в два раза больше антител, чем на этикетке. - Добавьте 75 мкл PBS-TBN во все пробирки для разведения антител с маркировкой «500 мкг/мл» и ниже, включая контрольные пробирки «0 мкг/мл», предназначенные только для транспортных средств.
- Для каждого антитела пипетку 150 мкл из 2 000 мкг/мл исходного раствора в соответствующую пробирку с маркировкой «1 000 мкг/мл». Это будет использоваться для всех последующих разведений для каждого антитела.
- Для каждого антитела создайте полную серию разведений, перенося пипеткой 75 мкл из пробирки «1000 мкг/мл» в пробирку со следующим меньшим разведением в серии (т.е. «500 мкг/мл»). Закройте только что готовую пробирку для разведения, кратковременно встряхните ее и продолжайте построение серии разведения, перенося 75 мкл из пробирки «500 мкг/мл» в пробирку «250 мкг/мл». Повторяйте эту схему до тех пор, пока не будет произведено последнее разведение «8 мкг/мл» для всех антител.
ПРИМЕЧАНИЕ: В завершенной серии разведения для каждого антитела должен быть объем 75 мкл для всех пробирок, кроме самого низкого разведения, 8 мкг/мл, который должен содержать объем 150 мкл. Для каждой реакции будет использоваться 25 мкл разведения антител, поэтому этих объемов достаточно для выполнения каждой реакции в дублирующих лунках для каждого условия (т. е. 50 мкл на каждое состояние), с дополнительным для компенсации потерь при пипетировании.
- Поместите 25 мкл разбавленных антител в специально отведенные лунки 96-луночного микротитрового планшета.
- Разбавляют биотинилированный rhPD-L1 до рабочей концентрации 4 мкг/мл в PBS-TBN в объеме, достаточном для включения 25 мкл в дублирующиеся лунки на условие (т. е. 50 мкл на состояние) с дополнительным количеством для компенсации потерь при пипетировании.
ПРИМЕЧАНИЕ: В этой работе биотинилированный rhPD-L1 в концентрации 4 мкг/мл привел к получению примерно 50% максимального сигнала MFI, измеренного при более ранней оценке сопряжения, и был использован для анализа блокады PD-1/PD-L1. - Добавьте 25 мкл биотинилированного rhPD-L1 (4 мкг/мл) в каждую реакционную лунку, накройте микротитровую пластину фольгой или пластиковой клейкой пломбой и инкубируйте при RT (18-22 °C) в течение 1 ч при встряхивании на орбитальной пластинчатой шейкере при 600 об/мин.
- Разбавьте гранулы, связанные rhPD-1, до 50 000 шариков/мл с достаточным объемом для 50 мкл/лунка (2 500 шариков на лунку) плюс дополнительно для компенсации потерь при пипетировании.
- Извлеките 96-луночную реакционную пластину микротитра из шейкера и снимите клейкое уплотнение.
- Добавьте 50 мкл смеси гранул rhPD-1 в каждую лунку.
- Запечатайте планшет и инкубируйте в течение 1 ч в темноте при RT (18-22 °C) на орбитальном шейкере при 600 об/мин.
- Перенесите запечатанную пластину из орбитального шейкера в магнитный сепаратор пластин на 2 минуты, чтобы обездвижить шарики.
- Осторожно снимите герметик для клейкой пластины, убедитесь, что магнит и микротитровая пластина надежно соединены друг с другом, переверните пластину и сбросьте надосадочную жидкость. Осторожно постучите перевернутой пластиной по подушке из впитывающей бумажной ткани, чтобы удалить излишки надосадочной жидкости.
- Смойте излишки реагентов с шариков.
- Извлеките микротитровую пластину из магнитного пластинчатого сепаратора и добавьте 150 мкл PBS-TBN в каждую лунку.
- Поместите микротитровую пластину на магнитный пластинчатый сепаратор на 2 минуты, чтобы обездвижить шарики.
- Убедитесь, что магнит и микротитровая пластина надежно соединены друг с другом, переверните планшет и сбросьте надосадочную жидкость. Осторожно постучите перевернутой пластиной по подушке из впитывающей бумажной ткани, чтобы удалить излишки надосадочной жидкости.
- Повторите шаги промывки пластин 4.11.1-4.11.3 два раза, в общей сложности три промывки PBS-TBN. Убедитесь, что реагент SAPE приготовлен (см. ниже) перед удалением окончательного (третьего) промывочного раствора.
- Добавьте реагент для обнаружения SAPE.
- Разбавляют исходный раствор SAPE до рабочей концентрации 6 мкг/мл в PBS-TBN; сделать достаточный объем для 100 мкл/лунку, плюс дополнительно для компенсации потерь при пипетировании.
- Добавьте 100 мкл/лунку рабочего раствора SAPE в каждую реакционную лунку и ресуспендируйте гранулы путем пипетирования.
- Запечатайте планшет и инкубируйте в течение 1 ч в темноте при RT (18-22 °C) на орбитальном шейкере при 600 об/мин.
- Сцедите излишки SAPE из реакции.
- Перенесите запечатанную пластину из орбитального шейкера в магнитный сепаратор пластин на 2 минуты, чтобы обездвижить шарики.
- Осторожно снимите герметик клейкой пластины, убедитесь, что магнит и микротитровая пластина надежно соединены друг с другом, переверните пластину и сбросьте надосадочную жидкость. Осторожно постучите перевернутой пластиной по подушке из впитывающей бумажной ткани, чтобы удалить надосадочную жидкость, содержащую излишки SAPE.
- Смойте излишки SAPE с бусин.
- Извлеките микротитровую пластину из держателя магнитной пластины.
- Добавьте 150 мкл PBS-TBN в каждую лунку, чтобы повторно суспендировать шарики.
- Поместите микротитровую пластину на магнитный пластинчатый сепаратор на 2 минуты, чтобы обездвижить шарики.
- Убедитесь, что магнит и микротитровая пластина надежно прилегают друг к другу, переверните планшет и сбросьте надосадочную жидкость. Осторожно постучите перевернутой пластиной по подушке из впитывающей бумажной ткани, чтобы удалить излишки надосадочной жидкости.
- Выполните два дополнительных этапа промывки с PBS-TBN, чтобы в общей сложности получить три стирки, повторив шаги 4.15.1–4.15.4. Перед удалением последнего (третьего) промывочного раствора подготовьте конгугированные BV421 вторичные антитела к обнаружению (следующий этап).
- Добавьте вторичные антитела, конгугированные BV421.
- Разбавьте BV421-конгугированный античеловеческий IgG (для обнаружения гуманизированных контрольных антител) и BV421-конгугированный антикроличий IgG (для обнаружения поликлональных антител, индуцированных PDL1-Vaxx) (см. таблицу материалов) в соотношении 1:400 в буфере для промывки/анализа в объемах, достаточных для использования 100 мкл/лунка каждого из них, с дополнительными для компенсации потерь при пипетировании.
- Добавьте 100 мкл разбавленного BV421-конъюгированного античеловеческого IgG или BV421-конъюгированного антикроличьего IgG в соответствующие лунки.
- Запечатайте планшет и инкубируйте в течение 1 ч в темноте при RT (18-22 °C) на орбитальном шейкере при 600 об/мин.
- Сцеживание избыточных вторичных антител, конъюгированных с BV421, из шариков.
- Перенесите запечатанную пластину из орбитального шейкера в магнитный сепаратор пластин на 2 минуты, чтобы обездвижить шарики.
- Осторожно снимите герметик клейкой пластины, убедитесь, что магнит и микротитровая пластина надежно соединены друг с другом, переверните пластину и сбросьте надосадочную жидкость. Осторожно постучите перевернутой пластиной по подушке из впитывающей бумажной ткани, чтобы удалить надосадочную жидкость, содержащую избыток вторичных антител, конъюгированных с BV421.
- Смойте излишки конъюгированных BV421 вторичных антител из шариков.
- Добавьте 150 мкл PBS-TBN в каждую лунку, чтобы повторно суспендировать шарики.
- Поместите микротитровую пластину на магнитный пластинчатый сепаратор на 2 минуты, чтобы обездвижить шарики.
- Убедитесь, что магнит и микротитровая пластина надежно прилегают друг к другу, переверните планшет и сбросьте надосадочную жидкость. Осторожно постучите перевернутой пластиной по подушке из впитывающей бумажной ткани, чтобы удалить излишки надосадочной жидкости.
- Выполните три дополнительных этапа стирки с PBS-TBN, чтобы в общей сложности выполнить четыре стирки, повторив шаги 4.19.1–4.19.3.
- После удаления последнего (четвертого) промывочного буфера извлеките микротитровую пластину из магнитного планшетного сепаратора и повторно суспендируйте шарики в 100 мкл PBS-TBN/лунку с помощью пипеттора.
- Проанализируйте результаты.
- Считайте показания таблички на двухрепортерной системе анализа потока, чтобы определить MFI каждой реакции, используя следующие настройки прибора: объем аспирации = 50 мкл; минимальное количество бусин = 100 бусин; настройка таймаута = 40 с; стробирование: 7,000-17,000; режим работы = Dual Reporter.
- При использовании системы с двумя репортерами убедитесь, что Reporter Channel 1 измеряет флуоресценцию оранжевого PE (количество rhPD-L1, прикрепленных к конъюгированным шарикам rhPD-1), а Reporter Channel 2 измеряет флуоресценцию синего BV421 (количество прикрепленных блокирующих антител, связанных с rhPD-L1).
- Запустите дублирующиеся скважины для каждого условия и усредните два выходных значения MFI для каждого условия, прежде чем выполнять дальнейшие вычисления данных и построение графиков.
- Стандартизируйте значение MFI для каждого образца до отрицательного контроля и рассчитайте процент ингибирования для каждого образца:
Ингибирование % = (100 × [МФО отрицательного контроля − МФО выборки])/МФО с отрицательным контролем
ПРИМЕЧАНИЕ: Отрицательные контрольные значения MFI (без ингибирования) являются самыми высокими значениями; связанный сигнал PD-L1 MFI равен 100%, а ингибирование связывания rhPD-L1 с rhPD-1 определено как 0%.
Рисунок 1: Схема двухрепортерного блокадного анализа PD-1/PD-L1. Биотинилированный рекомбинантный человеческий PD-L1 (rhPD-L1) предварительно инкубируют с выбранными антителами PDL1-Vaxx, индуцированными анти-PDL1, а затем соединяют с магнитными шариками, связанными с rhPD-1, чтобы обеспечить образование комплекса контрольных точек PD-1/PD-L1. Затем обнаруживается и маркируется комплексированный rhPD-L1 с добавлением стрептавидин-связанного фикоэритрина (SAPE, оранжевый флуорофор). Антитела против эпитопов PDL1-Vaxx нацелены на rhPD-L1, который интегрировался в rhPD-1, предварительно связанный с магнитными шариками, и они подсвечиваются с помощью вторичного антитела, конъюгированного Brilliant Violet 421 (BV421, синий флуорофор). Как биотинилированные rhPD-L1, которые комплексируются с PD-1 (сигнал PE), так и антитела против PDL1, которые распознают и связывают rhPD-L1 (сигнал BV421), анализируются одновременно с помощью двухрепортерного проточного цитометрического прибора, который опрашивает образцы на наличие обоих флуорофоров в двух отдельных репортерных каналах. Выходные значения для каждого образца представляют собой медианную интенсивность флуоресценции каждого флуорофора. Ингибирование образования комплекса PD1/PD-L1 различными антителами, индуцированными PDL1-Vaxx, затем экстраполируют путем сравнения экспериментальных сигналов с сигналами, полученными с помощью моноклонального антитела с отрицательным контролем, которое не связывается с rhPD-L1 (ингибирование 0%). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.
Representative Results
Анализ позволил точно количественно оценить ингибирование взаимодействия PD-1/PD-L1 четырьмя уникальными поликлональными антителами, вырабатываемыми против пептидов вакцины rhPD-L1, которые изучаются в качестве потенциальных терапевтических агентов для лечения рака. Схема этого анализа представлена на рисунке 1. Количество биотинилированного рПД-L1, которое связывалось с рПД-1-конъюгированными шариками, и ингибирование этого связывания четырьмя кандидатами в антитела, индуцированные PLD1-Vaxx, измеряли в канале Reporter Channel 1 с использованием реагента для обнаружения стрептавидина-ПЭ, который непосредственно связывал рПД-L1 (рис. 2).
Все четыре поликлональных анти-PDL1-пептидных антитела блокировали взаимодействие rhPD-L1 с PD-1, который был иммобилизован на микросферах в различной степени. Процент ингибирования различных антител к пептидам PDL1 варьировал от 48% до 74% при максимальной испытанной концентрации 1000 мкг/мл. Положительное контрольное моноклональное антитело атезолизумаб достигло 92% блокады взаимодействия PD-1/PD-L1 при максимальной испытанной концентрации14 4 мкг/мл (рис. 2). Все экспериментальные антитела к PDL1-Vaxx показали концентрационно-зависимое ингибирование связывания rhPD-L1 с конъюгированными гранулами rhPD-1 по сравнению с трастузумабом, отрицательным контрольным антителом, которое, как ожидалось, не будет взаимодействовать с системой PD-1/PD-L1.
Рисунок 2: Блокада взаимодействия rhPD-L1 с rhPD-1 в сочетании с магнитными шариками антителами к PDL1-пептиду, как показано в новом иммуноанализе на основе флуоресцентных шариков. Рекомбинантный человеческий PD-1 соединяли с магнитными микросферами, а затем гранулы инкубировали с биотинилированным rhPD-L1, который был предварительно инкубирован с различными антителами к PDL1-пептиду. Для связывания биотина и, таким образом, оценки относительного количества rhPD-L1, доступного для связывания с PD-1, использовали реагент для обнаружения стрептавидина-фикоэритрина. Поликлональные антитела, выращенные у кроликов против пептидных вакцин PDL1 (анти-PDL1 [36], анти-PDL1 [50], анти-PDL1 [95] и анти-PDL1 [130]) были протестированы на ингибирующую активность и показали 48%-74% блокаду рекомбинантных взаимодействий PD-1 / PD-L1 при самой высокой протестированной концентрации. В качестве положительного контроля использовали атезолизумаб (другое моноклональное антитело против PDL1). В качестве отрицательного контроля использовали неродственное коммерческое моноклональное антитело трастузумаб (анти-HER2). Эта цифра адаптирована из Guo et al.14. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 3: Сравнительное связывание различных PDL1-Vaxx-индуцированных антител к rhPD-L1 в комплексе с магнитными шариками с покрытием rhPD1. Блестяще-фиолетовое 421-конъюгированное вторичное антитело было использовано для сравнения связывания различных поликлональных анти-PDL1-пептидных антител кроликов к рПД-L1 через шарики, покрытые рПД-1. Синий флуоресцентный сигнал BV421 был зарегистрирован в репортерном канале 2 двухрепортерного прибора; этот сигнал коррелирует с относительной эффективностью связывания экспериментальных антител к PDL1-пептиду. Трастесумаб (анти-HER2), моноклональное антитело, которое нацелено на контрольную точку, отличную от PD-1/PD-L1, использовали в качестве отрицательного контроля. MFI представляет собой среднюю медианную интенсивность флуоресценции шарика, которая была измерена в дублирующих реакционных лунках для каждого состояния. Эта цифра адаптирована из Guo et al.14. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.
Относительные способности четырех экспериментальных PDL1-Vaxx-индуцированных антител-кандидатов связывать rhPD-L1 сравнивали с помощью отдельной системы детектирования (BV421-конъюгированный антикроличий IgG), которая оценивалась по второму репортерному каналу прибора. Эти результаты показали, что все четыре поликлональных антитела к пептиду PDL1 связываются с rhPD-L1 в зависимости от концентрации14 (рис. 3). Антитело к PDL1(130) показало самый высокий сигнал связывания с rhPDL1 из четырех кандидатов на антитела, индуцированные PDL1-Vaxx.
Discussion
Целью иммунотерапии рака, связанной с контрольными точками, является нарушение взаимодействия между белками контрольных точек и их важными лигандами в выживаемости и прогрессировании опухоли2. Эта исследовательская группа активно разрабатывает новые вакцины PD-1 и PD-L1, которые вызывают ответ антител, который нацелен на контрольную точку PD-1/PD-L1 3,8,13,14 и прерывает ее. Ранее были проведены две вариации иммуноферментного анализа (ИФА) для оценки влияния антител к анти-PDL1-пептиду на ингибирование рекомбинантного взаимодействия PD1/PD-L114. (1) В первом варианте rhPD-L1 наносили на микротитровую пластину, а затем инкубировали с разбавленными антителами-кандидатами против PDL1. Ингибирование рекомбинантного взаимодействия PD-1/PD-L1 антителами затем оценивали путем добавления биотинилированного rhPD-1 и количественного определения связывания с иммобилизованным rhPD-L1 с использованием конъюгата стрептавидин-хрен-пероксидазы и колориметрического субстрата. Мы определили это как анализ прямой блокады. (2) Во втором варианте PD-1 наносили на микротитровую пластину. Биотинилированный rhPD-L1 предварительно инкубировали с каждым из поликлональных антител, индуцированных анти-PLD1, в отдельных реакционных пробирках. Затем смеси rhPDL1/анти-PDL1 добавляли в пластинчатые лунки, содержащие иммобилизованный rhPD-1, и давали им вступить в реакцию. Любой рПДЛ1, который реагировал с иммобилизованным рПД-1 в присутствии потенциально блокирующих антител, индуцированных PDL1-Vaxx, выявлялся при последующей инкубации стрептавидин-ГРП и колориметрического субстрата. Мы определили это как анализ обратной блокады.
Обратная блокада рекомбинантного взаимодействия PD-1/PD-L1 антителами к пептиду PDL1 показала ингибирование сигнала (т.е. блокады PD-1/PD-L1) в зависимости от концентрации антител14, в то время как подход с прямой блокадой не дал последовательных результатов (не показан). Для верификации результатов ИФА и исследования блокады взаимодействия PD-1/PD-L1 в жидкой фазе был разработан двухрепортерный блокадный анализ на основе шариков, который устраняет потенциальные проблемы с помехой/доступностью эпитопов связывания, связанные с иммобилизацией рекомбинантных белков на забое скважин. Микросферный анализ напрямую коррелировал с результатами блокады ИФА с помощью обратного блокадного анализа (рис. 2). Кроме того, флуоресцентные иммуноанализы могут обеспечить улучшенную чувствительность анализа и расширенный динамический диапазон по сравнению с колориметрическими ИФА18, и, кроме того, мультиплексный анализ на основе шариков позволяет одновременно выполнять два независимых иммуноферментных анализа в рамках одной реакции. Сульфо-NHS и EDC, используемые для ковалентного связывания микросфер с rhPD-1, могли привести к различиям в производительности, наблюдаемым между анализами прямой и обратной блокады, а также к наблюдаемым различиям в чувствительности между анализами рекомбинантного взаимодействия PD-1/PD-L1 на основе ИФА и гранул Luminex. Необходимы дальнейшие исследования на химическом и молекулярном уровнях для изучения возможных механизмов, ответственных за эти различия.
Как ИФА14, так и анализы на основе шариков показывают, что PDL1-Vaxx-индуцированные антитела к PDL1 могут ингибировать образование комплекса контрольных точек PD1/PD-L1. PDL1-Vaxx на основе пептидов успешно индуцирует антитела к PDL1, которые могут блокировать взаимодействие PD-1/PD-L1. Этот подход может служить новой терапевтической стратегией для лечения рака, что подтверждается доклиническими исследованиями на животных 3,13,14. Запланированные клинические испытания определят эффективность PDL1-Vaxx для иммунотерапии контрольных точек и контроля заболевания у онкологических больных.
Disclosures
Правин Т.. Каумайя является консультантом ООО «Имугене».
Acknowledgments
Авторы благодарят Шерри Данбар, доктора философии, магистра делового администрирования корпорации Luminex (Остин, штат Техас) за поддержку исследований и Мэтью Сильвермана, доктора философии Biomedical Publishing Solutions (Панама-Сити, штат Флорида; mattsilver@yahoo.com) за научную и писательскую помощь. Эта работа была поддержана наградами Правину Т.. Каумайе из Национальных институтов здравоохранения (R21 CA13508 и R01 CA84356) и Imugene Ltd, Сидней, Австралия (OSU 900600, GR110567 и GR124326).
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Buffers | |||
Activation Buffer: 0.1 M NaH2PO4, pH 6.2 | Millipore/Sigma | S3139 | |
Assay/Wash Buffer: PBS-TBN (1x PBS, pH 7.4 + 0.1% BSA + 0.05 % (v/v) Tween-20; 0.05% NaN3) | Millipore/Sigma | P3563 (PBS+Tween20), A7888 (Bovine serum albumin), S8032 (sodium azide) | |
Coupling Buffer: 50 mM 2-morpholinoethanesulfonic acid (MES), pH 5.0 | MilliporeSigma | M2933 | |
Coupling Reagents | |||
1-Ethyl-3-[3-dimethylaminopropyl]carbodiimide hydrochloride (EDC) | ThermoFisher Scientific (Waltham, MA) | 77149 | |
xMAP Antibody Coupling Kit (if desired), includes: | Luminex Corp. (Austin, TX) | 40-50016 | |
EDC, 10 mg | |||
sNHS solution, 250 µL | |||
Activation/Coupling Buffer: 0.1 M 2-morpholinoethanesulfonic acid (MES), pH 6.0 | |||
Wash Buffer: 1x PBS, pH 7.4 + 0.1% BSA + 0.05 % (v/v) Tween-20; 0.05% NaN3 (PBS-TBN) | |||
Sulfo-NHS (N-hydroxysulfosuccinimide) | ThermoFisher Scientific (Waltham, MA) | 24510 | |
Instrumentation and Ancillary Lab Supplies | |||
xMAP INTELLIFLEX (dual-reporter instrument) | Luminex Corp. (Austin, TX) | INTELLIFLEX-DRSE-RUO | |
Low protein-binding round bottom 96-well plate | ThermoFisher Scientific (Waltham, MA) | 07-200-761 | |
Luminex Magnetic Plate Separator (or comparable) | Luminex Corp. (Austin, TX) | CN-0269-01 | |
Luminex Magnetic Tube Separator (or comparable) | Luminex Corp. (Austin, TX) | CN-0288-01 | |
MagPlex Microspheres (magnetic, fluorescent, 6.5-µm-diameter beads) | Luminex Corp. (Austin, TX) | MC-1**** (varies by bead label) | |
Protein LoBind microcentrifuge tubes | ThermoFisher Scientific (Waltham, MA) | 022431081 | |
Peptides, Antibodies, & Detection Reagents | |||
Atezolizumab (humanized anti-PDL1 IgG1 monoclonal antibody), positive control | Genentech/Roche (San Francisco, CA) | n/a (prescription medications) | |
Biotinylated recombinant human PDL1 | Sino Biological (Wayne, PA) | 10084-H49H-B | |
Brilliant Violet 421-congugated donkey anti-human IgG | Jackson Immunoresearch Laboratories Inc. (Westgrove, PA) | 709-675-149 | |
Brilliant Violet 421-congugated donkey anti-rabbit IgG | Jackson Immunoresearch Laboratories Inc. (Westgrove, PA) | 711-675-152 | |
Recombinant human PD-1 (poly-histidine tagged) | Acro Biosystems (Newark, DE) | PD1-H5256 | |
Streptavidin-conjugated R-phycoerythrin (SAPE) | Agilent (Santa Clara, CA) | PJRS34-1 | |
Trastuzumab (Herceptin, humanized anti-HER2 monoclonal antibody), negative control | Genentech/Roche (San Francisco, CA) | n/a (prescription medications) |
References
- Kaumaya, P. T. B-cell epitope peptide cancer vaccines: a new paradigm for combination immunotherapies with novel checkpoint peptide vaccine. Future Oncology. 16 (23), 1767-1791 (2020).
- Pandey, P., et al. Revolutionization in cancer therapeutics via targeting major immune checkpoints PD-1, PD-L1 and CTLA-4. Pharmaceuticals. 15 (3), 335 (2022).
- Guo, L., Overholser, J., Good, A. J., Ede, N. J., Kaumaya, P. T. P. Preclinical studies of a novel human PD-1 B-cell peptide cancer vaccine PD1-Vaxx from BALB/c mice to beagle dogs and to non-human primates (cynomolgus monkeys). Frontiers in Oncology. 12, 826566 (2022).
- Brahmer, J. R., Hammers, H., Lipson, E. J. Nivolumab: Targeting PD-1 to bolster antitumor immunity. Future Oncology. 11 (9), 1307-1326 (2015).
- Shah, N. J., Kelly, W. J., Liu, S. V., Choquette, K., Spira, A. Product review on the Anti-PD-L1 antibody atezolizumab. Human Vaccines & Immunotherapeutics. 14 (2), 269-276 (2018).
- Postow, M. A., Sidlow, R., Hellmann, M. D. Immune-related adverse events associated with immune checkpoint blockade. The New England Journal of Medicine. 378 (2), 158-168 (2018).
- Kaumaya, P. T. A paradigm shift: Cancer therapy with peptide-based B-cell epitopes and peptide immunotherapeutics targeting multiple solid tumor types: Emerging concepts and validation of combination immunotherapy. Human Vaccines & Immunotherapeutics. 11 (6), 1368-1386 (2015).
- Guo, L., Kaumaya, P. T. P. First prototype checkpoint inhibitor B-cell epitope vaccine (PD1-Vaxx) en route to human Phase 1 clinical trial in Australia and USA: Exploiting future novel synergistic vaccine combinations. British Journal of Cancer. 125 (2), 152-154 (2021).
- Dakappagari, N. K., Douglas, D. B., Triozzi, P. L., Stevens, V. C., Kaumaya, P. T. Prevention of mammary tumors with a chimeric HER-2 B-cell epitope peptide vaccine. Cancer Research. 60 (14), 3782-3789 (2000).
- Dakappagari, N. K., et al. Conformational HER-2/neu B-cell epitope peptide vaccine designed to incorporate two native disulfide bonds enhances tumor cell binding and antitumor activities. The Journal of Biological Chemistry. 280 (1), 54-63 (2005).
- Kaumaya, P. T., et al. Phase I active immunotherapy with combination of two chimeric, human epidermal growth factor receptor 2, B-cell epitopes fused to a promiscuous Tcell epitope in patients with metastatic and/or recurrent solid tumors. Journal of Clinical Oncology. 27 (31), 5270-5277 (2009).
- Bekaii-Saab, T., et al. Phase I immunotherapy trial with two chimeric HER-2 B-cell peptide vaccines emulsified in montanide ISA 720VG and Nor-MDP adjuvant in patients with advanced solid tumors. Clinical Cancer Research. 25 (12), 3495-3507 (2019).
- Kaumaya, P. T. P., Guo, L., Overholser, J., Penichet, M. L., Bekaii-Saab, T. Immunogenicity and antitumor efficacy of a novel human PD-1 B-cell vaccine (PD1-Vaxx) and combination immunotherapy with dual trastuzumab/pertuzumab-like HER-2 B-cell epitope vaccines (B-Vaxx) in a syngeneic mouse model. Oncoimmunology. 9 (1), 1818437 (2020).
- Guo, L., Overholser, J., Darby, H., Ede, N. J., Kaumaya, P. T. P. A newly discovered PD-L1 B_cell epitope peptide vaccine (PDL1-Vaxx) exhibits potent immune responses and effective anti-tumor immunity in multiple syngeneic mice models and (synergizes) in combination with a dual HER-2 B-cell vaccine (B-Vaxx). Oncoimmunology. 11 (1), 2127691 (2022).
- Angeloni, S., Das, S., De Jager, W., Dunbar, S. Luminex Corporation. The xMAP® Cookbook, 5th edition. , Available from: https://info.luminexcorp.com/en-us/research/download-the-xmap-cookbook?utm_referrr=https%3A%2F%2Fwww.luminexcorp.com%2F (2022).
- MagPlex® Microspheres Documentation. Product information sheet. Luminex Corporation. , Available from: https://www.luminexcorp.com/magplex-microspheres/#overview (2014).
- Green, M. R., Sambrook, J. Estimation of cell number by hemocytometry counting. 2019 (11), Cold Spring Harbor Protocols. (2019).
- Gibbs, J., Vessels, M., Rothenberg, M. Selecting the Detection System - Colorimetric, Fluorescent, Luminescent Methods for ELISA Assays. Corning Inc. , Available from: https://www.corning.com/catalog/cls/documents/application-notes/CLS-DD-AN-458.pdf (2019).