JoVE Encyclopedia of Experiments
Mikrobiyoloji
0 görüntüleme • 3:01 dk • November 28th, 2025
Genetik olarak değiştirilmiş bakteri hücreleri içeren tüplerle başlayın. Her bakteri, çeşitli enzimleri kodlayan yüksek kopyalı fosmidler taşır.
Tüpleri çeşitli hücre içi enzimlerin ekspresyonunu kolaylaştırmak için sarsıntı ile inkübe yapın.
Test tüpüne hedef enzime özgü bir substrat ekleyin ve kontrol tüpüne eşit hacimde tampon ekleyin.
Sallama ile kuluçka yapın. Substrat hücrelere girer ve hedef enzimler onu yararak floresan bir ürün üretir.
Kontrol tüpünü önceden kalibre edilmiş bir akış sitometresine yükleyin.
Her hücre lazer ışınından geçerken ışık saçılır. Tek hücreleri tanımlamak için bir saçılım grafiki oluşturun; bu hücreler kümelerden daha az ışık saçır.
Hücre kümelerini hariç tutun ve tek hücrelerin floresan sinyalini çizerek temel floresansı oluşturun.
Floresans sinyalini ölçmek için substratla işlenmiş tüpü akış sitometresine yerleştirin.
Substratla tedavi edilen hücrelerde kontrol hücrelerine kıyasla artan floresans sinyali, hedef enzim ekspresyonunu doğrular.
İlgilenen metagenomik enzimleri taramak için, sıralanmış hücreleri 37 derece Celsius ve 200 RPM'de kuluçka altına alın, OD600 0,5'e ulaşana kadar. Sonra hücre içi fosmid kopya sayısını artırmak için 1 mikrolitre kopya indüksiyon çözeltisi ekleyin.
37 derece Celsius ve 250 RPM'de üç saat sonra, 0,5 mililitre hücre ile uygun substrat 14 mililitrelik yuvarlak tabanlı bir tüpte birleştirilir ve 100 mikromolar nihai konsantrasyon elde edilir. Daha sonra kontrol ve deneysel örnekleri 37 derece Celsius ve 200 RPM'de üç saat daha kuluçka için.
Örnekler titrerken FACS makinesi parametrelerini az önce gösterildiği gibi ayarlayın. Sonra, her numuneden 5 mikrolitre hücre, 1 mililitre PBS içeren 5 mililitrelik yuvarlak tabanlı tüplere ekleyin. Sonra, örnek hücrelerini yükleyin ve olay hızını saniyede 1000 ila 3000 olay olarak ayarlayın.
Log ölçekli ileri saçılma alanı ile log ölçekli yan saçılma alanı grafiki oluşturun ve R1 saçılım kapısını singlet olayı bakteri hücrelerini kapsayacak şekilde ayarlayın. Sonra, log ölçekli ileri saçılım ile log ölçekli FITC alanı saçılım grafiki oluşturulur ve negatif hücrelerin %0,1'inden azının tespit edilmesi için bir R2 sıralama kapısı ayarlanır. Şimdi, örnek tüpünü yükleyin ve gerektiğinde olay hızını saniyede 1000 ila 3000 olaya ayarlayın.
Bu makale, hedef enzim ekspresyonunu belirlemek amacıyla genetiği değiştirilmiş bakteriyel hücrelerin akış sitometrisi kullanılarak taranmasına yönelik bir yöntemi açıklamaktadır. İşlem, hücrelerin spesifik substratlar ile inkübe edilmesini ve enzim aktivitesini doğrulamak için floresan sinyallerinin analiz edilmesini içerir.
Bu yöntem, genetiği değiştirilmiş bakteriyel hücrelerde enzim ekspresyonunun yüksek kapasiteli tespitini sağlayarak, enzim keşif programlarındaki erken aşama hedef doğrulamasını destekler. Substrat döngüsünü akış sitometrisi ile ayrıştırılabilir floresan okumalarına bağlayarak, fonksiyonel enzim aktivitesini değerlendirmek için nicel, tek hücre çözünürlüğü sunar. Bu yaklaşım, saflaştırma veya karakterizasyon için yapılan sonraki yatırımlardan önce fenotipik çıktıyı doğrulayarak hedef belirleme sürecindeki riskleri azaltır.
Bu yöntem, biyokimyasal karakterizasyondan önce enzim ekspresyonunu fonksiyonel olarak doğrulayarak, kütüphane taraması ile öncül bileşik tanımlama arasını doldurur ve erken keşif iş akışına entegre olur.
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
Son güncelleme: 29 Ağustos 2026