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Injection intraductrice de lapin

 
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Injection intraductrice de lapin : Livraison localisée de la solution d’intérêt dans la glande mammaire de lapin

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Une injection intraductrice est utilisée pour fournir des traitements localisés à travers les conduits des glandes mammaires. Tout d’abord, placez un lapin anesthésié face au côté ventral vers le haut sur une table pour la procédure. Localiser les trayons à injecter et essuyer la zone avec de l’alcool.

Chargez une seringue avec une quantité appropriée de solution saline stérile et insérez l’aiguille, côté biseauté vers le haut, sur le côté de la tétine. Injecter la solution saline pour une meilleure visualisation des ouvertures ductal. Ensuite, soulevez la tét et insérez soigneusement l’aiguille à pointe émoussée pour cannuler le conduit. Chargez la seringue avec une solution d’intérêt à injecter.

Maintenant, verrouillez doucement la seringue sur le moyeu de l’aiguille et injectez lentement la solution pour éviter tout dommage dû à la pression. L’injection dans la tét fournirait directement la solution à la glande mammaire de lapin. Dans le protocole suivant, nous administrerons un agent de contraste pour visualiser les conduits de la glande mammaire en utilisant la technique d’injection intraductale dans un modèle de lapin.

Pour commencer cette procédure, rasez soigneusement l’abdomen caudal d’un lapin anesthésié dans la zone autour des troisième et quatrième paires de trayons inguinaux. Avec la majorité des cheveux enlevés, appliquer la crème d’épilation sur les zones rasées, et 10 minutes après l’application enlever la crème à l’aide d’une serviette en papier humide mouillé avec de l’eau chaude. Essuyez ensuite la zone avec des tampons de gaze imbibés d’alcool pour nettoyer le site d’injection. Placez le lapin sur son dorsum dans une auge en forme de V tapissée d’une couverture d’eau chaude recirculation et d’un tampon absorbant.

Pour préparer l’agent de contraste, reconstituez-le selon les instructions du fabricant, puis secouez doucement le flacon pour mélanger. L’agent de contraste utilisé ici est stable à température ambiante pendant quatre à six heures après la reconstitution. Localiser les troisième et quatrième paires de trayons inguinaux à injecter. Chargez ensuite 0,2 millilitres de solution saline stérile de 0,9 % dans une seringue de tuberculine de 1 millilitre à verrouillage Luer avec une aiguille de calibre 22. Jetez l’aiguille de calibre 22 une fois que la solution saline est dans la seringue et remplacez-la par une aiguille stérile de calibre 25.

Ensuite, essuyez doucement la zone avec 85% d’alcool d’isopropyle sur un tampon de gaze. Avec le biseau de l’aiguille vers le haut et la seringue parallèle au corps de l’animal, insérez l’aiguille dans le côté de la tétine et injectez lentement 0,1 à 0,2 millilitres de solution saline, pour permettre une meilleure visualisation des ouvertures ductales. Par la suite, chargez 0,2 millilitres de solution d’injection dans une seringue à tuberculine de verrouillage de 1 millilitre.

Tenez doucement la tétronée avec le pouce et l’index et soulevez-la légèrement pour l’injection intraductrice. Tout en maintenant la position levée de la tét, cannulate soigneusement le conduit d’intérêt à l’aide d’une aiguille à pointe émoussée de calibre 25. Après cannulation, tordez doucement la seringue Luer-lock sur le moyeu de l’aiguille d’infusion à pointe émoussée jusqu’à ce qu’elle soit verrouillée en place. Soulevez la tét et injectez la solution lentement pour minimiser les dommages potentiels causés par le déplacement rapide des fluides à l’intérieur du conduit.

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