Neuroscience
This content is Open Access.
The JoVE video player is compatible with HTML5 and Adobe Flash. Older browsers that do not support HTML5 and the H.264 video codec will still use a Flash-based video player. We recommend downloading the newest version of Flash here, but we support all versions 10 and above.
If that doesn't help, please let us know.
Een implanteerbaar systeem voor chronische in vivo elektromyografie
Chapters
Summary April 21st, 2020
Please note that all translations are automatically generated.
Click here for the English version.
Hier gepresenteerd is een protocol voor de productie van een implanteerbaar systeem voor in vivo chronologische registratie van opgeroepen en spontane elektromyografische potentialen. Het systeem wordt toegepast op het onderzoek naar reinnervation van laryngeale spieren na zenuwletsel.
Transcript
Dit systeem kan worden gebruikt voor de productie van een eenvoudig, economisch en implanteerbaar systeem voor de lange termijn opname van opgeroepen of spontane elektromyografische potentialen. Het belangrijkste voordeel van dit systeem ten opzichte van conventionele chronische EMG-opnamesystemen is dat de looddraden zijn opgerold en bestand zijn tegen breuk of verstoring in het wakker bewegende dier. De belangrijkste toepassing van deze techniek is het onderzoeken van de specificiteit van de renovatie van laryngeale spieren in aanwezigheid van elektrische conditioneringstherapie om synkinese te voorkomen.
Deze technologie kan ook worden toegepast op andere neuromusculaire systeem waarvoor chronische zenuwstimulatie en / of EMG-opname in wakker bewegende dieren nodig is. De invoering van de procedure zal Shan Huang, een onderzoek assistent professor van otolaryngologie in mijn lab. Voordat u een RLN stimulus elektrode manchet, snijd 170 centimeter lengte van Teflon-gecoate multi-filament type 316 roestvrij staaldraad voor elke manchet en gebruik een coiling apparaat om de draden coil in 12 centimeter lange veren.
Indien nodig, rek de veer om de lengte voor elke implantaat site te verhogen. Laat drie millimeter van het ene uiteinde en 10 millimeter van het andere uiteinde van elk opgerolde lood recht en de-isoleren elk uiteinde. Dan soldeer een vergulde koperen vrouwelijke pin in de drie millimeter einde van elke opgerolde lood.
Om de zenuw manchet voor te bereiden, snijd een vijf millimeter segment van silicium buis uit een rol van buizen. Gebruik onder de operatiemicroscoop een 25-meter hypodermische naald om 1,5 millimeter van de binnenwand door de buizenwand te prikken. Vul het 10 millimetereind van één lood in de punt van de naald op en trek de naald terug om het ont geïsoleerde gedeelte in de buis te deponeren.
Buig het kale draadeind buiten de buis terug en draai de draad op het lood op het punt van binnenkomst in de buis om het lood aan de buis te verankeren. Om het tweede lood 1,5 millimeter van het tegenovergestelde uiteinde van de buis te plaatsen, lijnt u het punt van binnenkomst uit op dat van het eerste lood. Gebruik de naald om de muur te doorboren en schuif de schacht in de buurt van de binnenwand tegenover de eerste lood.
Vul de naald met het ont geïsoleerde 10 millimeter-uiteinde en verwijder de naald. De twee stimulus elektroden moeten een 45 graden V-vorm die de zenuw zal straddle om de huidige levering door de zenuw van de anode naar de kathode te waarborgen. Gebruik een gebogen schaar om een S-vormige spleet te maken in de buiswand tegenover de elektrodepunten van binnenkomst en gebruik een gebogen microchirurgische naald om een lengte van 6-0 monofilament niet-onabsorbbare hechting in de manchetwand aan elk uiteinde in te voegen.
Combineer een klodder van medische kwaliteit type A siliconen gel met zijn oplosmiddel in een Eppendorf buis en meng op een vortex mixer. Breng de gel prep met behulp van een 30-eenheid insulinespuit om alle blootgestelde kale draad buiten de manchet opnieuw te isoleren. Om een SLN stimulus elektrode manchet voor te bereiden, monteer de manchet zoals net aangetoond met behulp van een kleinere diameter buis.
Om een PCA EMG opnameelektrode voor te bereiden, monteer je een opgerold lood voor de PCA spierelektrode en soldeer je een vrouwelijke pin op drie millimeter eind van het lood, zoals aangetoond. Gebruik een 25-meter naald om het 10 millimeter uiteinde van de PCA spier lood in te voegen in het puntje van een diepe hersenstimulatie elektrode en buig het einde van de lood om een haak te vormen. Knip vervolgens de lead vast om in totaal vijf millimeter opnamelengte te bieden.
Om een huidrecipiënt voor te bereiden voor het interfacing van de verbindingen tussen de elektroden en de externe apparatuur, snijd twee 17,5 millimeter stukken elk met acht gaatjes van een enkele rij vrouwelijke pin strip connector en gebruik schuurpapier om de externe oppervlakken van elk stuk ruw. Gebruik fenol om de geschuurde stukken aan elkaar te lijmen in een rookkap en plaats de resulterende dubbele rij connector in een container van 60-80 graden water in de rookkap gedurende 30 minuten. Terwijl de lijm verhardt, snijd een 25,6 millimeter voorplaat van de strip.
Boor een gat in het midden van de voorplaat. Vergroot het gat met een boorpers en scalpel om een rechthoekig gat van 5,4 bij 17,4 millimeter midden in de voorplaat te maken. Afwerking en vierkant van de hoeken van het gat met een bestand.
Wanneer de lijm is gedroogd, steek de rand van de dubbele rij connector met de grotere diameter gaten in het rechthoekige gat van de voorplaat totdat het wordt gespoeld met de voorplaat oppervlak. Gebruik fenol om de connector aan de voorplaat te hechten en plaats de montage in 60-90 graden water. Wanneer het fenol is gehard, boor een gat van 1,3 millimeter in elke hoek van de voorplaat en aan elke kant van de voorplaat halverwege elk uiteinde.
Snijd een 15 millimeter lange buis van gebreide polyester graft en gebruik een hypodermische naald om roestvrijstalen draden draad door de muur op drie posities 3,8 millimeter uit elkaar langs de lengte van de graft om de buis vast te stellen aan de montage. Plaats even gesprede inkepingen in elke hoek van de connector om de draden tegen het montageoppervlak te verankeren en gebruik tang om de uiteinden van elke draad te draaien om de buis aan de assemblage te klemmen. Maak vervolgens een permanente markering op de polyester patch aan de ene kant van de recipiënt.
Maak een middellijn nek incisie van de schildklier inkeping naar manubrium. Na het blootstellen van de inferieure grens van het cricoïde kraakbeen in een verdoofd hond, plaats de stimulus manchet op elk van de bilaterale SLNs en RLNs en gebruik de bijgevoegde hechtingen om de lippen van elke manchet te sluiten. Gebruik een biopsie punch om een vier millimeter kraakbeen venster te maken aan elke kant van het voorste oppervlak van de schildklier kraakbeen en bloot de laterale aspecten van zowel de thyroarytenoid laterale cricoarytenoid spiercomplexen.
Plaats de weerhaak van elke EMG-opnameelektrode in het TA LCA-complex met behulp van een naald van 23 meter en hecht de polyesterpatch op het cricoïde kraakbeen in elk van de vier hoeken. Plaats de diepe hersenstimulatie elektrode met zijn metgezel haak draad EMG opname elektrode onder de PCA spier aan elke kant en gebruik een endoscoop om te bevestigen dat de stimulatie produceert een vocale vouw ontvoering voor elk kanaal. Gebruik 4-0 niet-onabsorbare hechtingen om de diepe hersenstimulatie elektroden te verankeren aan de cricoïde kraakbeen met behulp van een anker dat sloten op het lood.
Steek alle draad leidt van de zenuwstimulatie EMG opname elektroden in de recipiënt via hun vrouwelijke pinnen met behulp van een invoeggereedschap gevormd uit een hemostat. Gebruik botcement om het inferieure oppervlak van de recipiënt te verzegelen om de lodenpenverbindingen te isoleren. Wanneer het cement is uitgehard, plaatst u de recipiënt aan het rostrale uiteinde van de middellijnincisie en hecht u de recipiënt aan onderhuidse weefsels via de polyester rok.
Geef vervolgens de hechtingen door de voorplaatgaten om de huidrand aan de recipiënt te bevestigen. Hier wordt een representatieve EMG-opname weergegeven van een van de basislijnsessies met de RLN's intact. In een opname van de PCA-spier produceert RLN-stimulatie een stimulusartefact gevolgd door een groot opgeroepen EMG-potentieel.
In een opname van het thyroarytenoid laterale cricoarytenoid spiercomplex produceert SLN stimulatie een stimulusartefact dat wordt gevolgd door een korte latentie monosynaptische spierrespons en een langere latentie polysynaptische reflex glottische sluitingsreactie. In deze opname kunnen uitbarstingen van spontane EMG-activiteit worden opgenomen uit de PCA-spier tijdens normale inspiraties. Deze inspiratoire EMG-activiteit neemt toe in de loop van de levering van kooldioxide bij een lagere veegsnelheid.
Er is geen inspiratoire innervatie van de thyroarytenoid laterale cricoarytenoid spiercomplex dus geen inspiratory potentials moeten worden gedetecteerd van deze spieren. Deze technologie is aangepast om de effecten van elektrische conditionering op de re-innervation specificiteit van konijn gezichtsspieren en ook de atrofie van de atrofie van de aging rat tongspieren te onderzoeken.
Related Videos
You might already have access to this content!
Please enter your Institution or Company email below to check.
has access to
Please create a free JoVE account to get access
Login to access JoVE
Please login to your JoVE account to get access
We use/store this info to ensure you have proper access and that your account is secure. We may use this info to send you notifications about your account, your institutional access, and/or other related products. To learn more about our GDPR policies click here.
If you want more info regarding data storage, please contact gdpr@jove.com.
Please enter your email address so we may send you a link to reset your password.
We use/store this info to ensure you have proper access and that your account is secure. We may use this info to send you notifications about your account, your institutional access, and/or other related products. To learn more about our GDPR policies click here.
If you want more info regarding data storage, please contact gdpr@jove.com.
Your JoVE Unlimited Free Trial
Fill the form to request your free trial.
We use/store this info to ensure you have proper access and that your account is secure. We may use this info to send you notifications about your account, your institutional access, and/or other related products. To learn more about our GDPR policies click here.
If you want more info regarding data storage, please contact gdpr@jove.com.
Thank You!
A JoVE representative will be in touch with you shortly.
Thank You!
You have already requested a trial and a JoVE representative will be in touch with you shortly. If you need immediate assistance, please email us at subscriptions@jove.com.
Thank You!
Please enjoy a free 2-hour trial. In order to begin, please login.
Thank You!
You have unlocked a 2-hour free trial now. All JoVE videos and articles can be accessed for free.
To get started, a verification email has been sent to email@institution.com. Please follow the link in the email to activate your free trial account. If you do not see the message in your inbox, please check your "Spam" folder.
