Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.
You will only be able to see the first 2 minutes.
The JoVE video player is compatible with HTML5 and Adobe Flash. Older browsers that do not support HTML5 and the H.264 video codec will still use a Flash-based video player. We recommend downloading the newest version of Flash here, but we support all versions 10 and above.
If that doesn't help, please let us know.
تحليل نقل الميتوكوندريا ومورفولوجيا في الخلايا العصبية الجذعية المستحثة البشرية متعددة القدرات المشتقة من الخلايا الجذعية في الشلل النصفي التشنجي الوراثي
Chapters
Summary February 9th, 2020
Please note that all translations are automatically generated.
Click here for the English version.
ويشارك ضعف نقل الميتوكوندريا ومورفولوجيا في مختلف الأمراض العصبية التنكسية. يستخدم البروتوكول المقدم الخلايا العصبية الجذعية المشتقة من الخلايا الجذعية المستحثة لتقييم نقل الميتوكوندريا والمورفولوجيا في الشلل النصفي التشنجي الوراثي. يسمح هذا البروتوكول بتوصيف الاتجار بالميتوكوندريا على طول المحاور وتحليل مورفولوجيا ها ، مما سيسهل دراسة الأمراض العصبية.
Transcript
الخلل في الميتوكوندريا يكمن وراء العديد من الأمراض العصبية. بروتوكولنا يوفر أداة هامة لدراسة ديناميات الميتوكوندريا في محاور عصبية، وتسهيل دراسة الأمراض العصبية التي تنطوي على انحطاط عصبي. من خلال الجمع بين وضع العلامات الميتوكوندريا، والتصوير الحي للخلايا وتكنولوجيا الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات، يمكن استخدام بروتوكولنا لتوصيف الاتجار بالميتوكوندريا على طول المحاور البشرية وتحليل الصفات المورفورية الخاصة بها.
ويمكن ملاحظة ضعف في نقل الميتوكوندريا ومورفولوجيا في ثقافات الخلايا الجذعية والنماذج الحيوانية للأمراض العصبية التي توفر أهدافا علاجية محتملة لعلاج هذه الأمراض. بعد يوم خمسة وثلاثين من الثقافة، وفصل الخلايا العصبية التي تم تمييزها من الخلايا الجذعية متعددة القدرات التي يسببها الإنسان إلى مجموعات صغيرة مع 1 ملغ/مل من محلول انفصال الخلايا لمدة دقيقتين عند 37 درجة مئوية. في نهاية الحضانة جمع مجموعات الخلية عن طريق الطرد المركزي وإعادة تعليق بيليه في ملليلتر واحد من NDM.
لوحة حوالي خمس مجموعات من الخلايا في مائة ميكرولتردات من المتوسط في بوليورينيثين واللاكتوز dehydrogenase رفع الفيروس خالية من فيروس انخفاض عامل النمو غشاء الطابق السفلي مصفوفة المغلفة 35 ملليمتر الأطباق القاع الزجاجي. ثم إضافة ملليلتر واحد من NDM تكملها B27، دوري أدينوسين أحادي الفوسفات، عامل النمو مثل الأنسولين، عامل التغذية العصبية المشتقة من الدماغ البشري وعامل التغذية العصبية المستمدة من الخلايا الدبقية إلى كل ثقافة. لتصور الميتوكوندريا على طول محاور عصبية من الخلايا العصبية forebrain وصمة عار الخلايا العصبية مع 50 نانومولار صبغة فلورية حمراء في NDM لمدة ثلاث دقائق في 37 درجة مئوية تليها اثنين من يغسل في NDM الدافئة.
بعد ذلك، ضع الثقافة على خشبة مسرح المجهر المفلور واختر الهدف 40X. في إطار حقل المرحلة تحديد محاور أساس خصائصها المورفولوجية. لتمييز اتجاه حركة الميتوكوندريا على طول المحاور تحديد بوضوح خلايا الخلايا العصبية.
بعد التمييز بين الجسم الخلية ومحور عصبي ضبط وقت التعرض والتركيز من الميتوكوندريا في المحاور والتقاط النقل الميتوكوندريا داخل المحاور كل خمس ثوان لما مجموعه خمس دقائق. لتحليل النقل الميتوكوندريا في ImageJ فتح فيجي وحدد المساعد تنسيقات الحيوي. استخدم مستورد التنسيقات الحيوية لاستيراد الصور الفاصلة زمنيًا لسلسلة tiff وحدد ImageJ القياسي وفتح كل السلسلة.
تحقق من تقسيم القنوات تلقائياً وانقر فوق موافق مع الحرص على ملاحظة رقم الإطار وحجم الصور بالبكسل. بعد ضبط السطوع والتباين لجميع الإطارات 60 استخدام خط مجزأة لرسم خط من جسم الخلية إلى محور عصبي المحطة الطرفية. لإنشاء Kymograph حدد البرنامج المساعد كيموغراف متعددة وحدد عرض الخط.
لقياس المسافة، والقيم الزمنية والسرعة للميتوكوندريا المتحركة المفتوحة tsp050607. txt في البرنامج المساعد وحدات الماكرو. ورسم خط مجزأة على أثر حركة الميتوكوندريا على kymograph من أعلى إلى المنطقة الأدنى.
بعد رسم خط فتح سرعات القراءة من ملعقة صغيرة في المساعد وحدات الماكرو لقراءة السرعات المجزأة المقابلة للخط. المقبل فتح الصورة الأصلية واستخدام أداة خط لرسم خط على طول شريط المقياس. حدد التحليل لقياس طول الخط وتحويل dx الآن ووحدات المسافة من وحدات البكسل إلى ميكرومتر.
ثم قم بتغيير الوقت من البكسل إلى الثواني. لتحليل طول الميتوكوندريا والمساحة داخل المحاور في ImageJ تثبيت تثبيت سقسقة نقطة سفلية المساعد JAR وفتح صورة محور عصبي من الفائدة. تحويل صورة 32 بت إلى ثمانية بت واستخدام أداة خط مجزأة لتتبع محور عصبي.
حدد البرنامج المساعد سفلي مستقيم JAR وتعيين عرض خط خيوط واسعة إلى 50 بكسل. تتبع محور عصبي مرة أخرى لتوليد محور عصبي مستقيم وضبط عتبة الصورة. حدد تحليل مجموعة القياسات التي تناسب حدود القطع الناقص وواصفات الشكل لتعيين القياس واستخدام وظيفة الخط لقياس شريط المقياس في الصورة الأصلية كما هو موضح.
تحت تحليل وتعيين مقياس أدخل المسافة في المسافة بكسل المعروفة ووحدة الطول لتعيين مقياس. ثم حدد العمومية لتعيين إعداد مقياس إلى كافة الصور. وأخيراً حدد تحليل وتحليل الجسيمات لتحديد المنطقة وتحديد نتائج العرض لعرض القياس الناتج.
بعد التمايز في الخلايا العصبية الغلوتاماتيرية التي لا الدماغ يمكن أن تتميز الخلايا من قبل بهم T-B-R واحد وبيتا ثلاثة تعبير علامة tubulin. يلطّخ مع أحمر صبغة فلورسنت ووقت الفاصل تصوير يسمح تقييم النقل المحوري للميتوكوندريا. يمكن أن يظل الميتوكوندريون الواحد ثابتًا أو يتحرك في اتجاه اظرون أو رجعي داخل محور عصبي.
ويمكن تحديد سرعة حركة الميتوكوندريا على طول محور عصبي كما هو موضح. على سبيل المثال باستخدام برامج التحليل المتاحة تجارياً، يتم تخفيض النسبة المئوية للميتوكوندريا المتحركة بشكل كبير في الخلايا العصبية S-P-G-3-A مقارنة بالخلايا العصبية من النوع البري. لتحليل طول منطقة الميتوكوندريا ومحورات محور الارتفاع يمكن تقويمها في برنامج تحليل الصور وتحديدها عن طريق ضبط العتبة.
ويمكن بعد ذلك الحصول على عرض طول محيط منطقة الميتوكوندريا ونسبة العرض إلى الارتفاع من محور الدوران المُستقيم. على سبيل المثال يتم تقليل طول الميتوكوندريا ونسبة العرض إلى الارتفاع بشكل كبير في المحاور العصبية S-P-G 15 مقارنة بـتحكم في المحاور من النوع البري. من المهم تدفئة الوسط وحاضنة المجهر لغسل الخلايا بلطف والسماح للخلايا بالستقر لمدة عشرين دقيقة قبل التصوير.
بعد التصوير الخلية الحية يمكن إصلاح الثقافات واخضاعها للمناعة لفحص التعبير عن البروتينات الأخرى ذات الاهتمام. ومن الصعب دراسة ديناميات الميتوكوندريا في الأعصاب البشرية الحية. هذه التقنية توفر أداة فريدة لدراسة ديناميات الميتوكوندريا وانحطاط الأعصاب في الأمراض العصبية.
Related Videos
You might already have access to this content!
Please enter your Institution or Company email below to check.
has access to
Please create a free JoVE account to get access
Login to access JoVE
Please login to your JoVE account to get access
We use/store this info to ensure you have proper access and that your account is secure. We may use this info to send you notifications about your account, your institutional access, and/or other related products. To learn more about our GDPR policies click here.
If you want more info regarding data storage, please contact gdpr@jove.com.
Please enter your email address so we may send you a link to reset your password.
We use/store this info to ensure you have proper access and that your account is secure. We may use this info to send you notifications about your account, your institutional access, and/or other related products. To learn more about our GDPR policies click here.
If you want more info regarding data storage, please contact gdpr@jove.com.
Your JoVE Unlimited Free Trial
Fill the form to request your free trial.
We use/store this info to ensure you have proper access and that your account is secure. We may use this info to send you notifications about your account, your institutional access, and/or other related products. To learn more about our GDPR policies click here.
If you want more info regarding data storage, please contact gdpr@jove.com.
Thank You!
A JoVE representative will be in touch with you shortly.
Thank You!
You have already requested a trial and a JoVE representative will be in touch with you shortly. If you need immediate assistance, please email us at subscriptions@jove.com.
Thank You!
Please enjoy a free 2-hour trial. In order to begin, please login.
Thank You!
You have unlocked a 2-hour free trial now. All JoVE videos and articles can be accessed for free.
To get started, a verification email has been sent to email@institution.com. Please follow the link in the email to activate your free trial account. If you do not see the message in your inbox, please check your "Spam" folder.
