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Multiplex detección de bacterias en el complejo de muestras clínicas y ambientales utilizando oligonucleótidos de acoplamiento de microesferas fluorescentes

Immunology and Infection

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Summary

Se describe un método multiplex para la detección de microorganismos en una muestra utilizando oligonucleótidos junto perlas fluorescentes. Amplificación de todos los organismos dentro de una muestra se hibridó con un panel de cuentas, junto sonda. Un instrumento Luminex o Bio-Plex se utiliza para consultar cada cuenta para el tipo de cuentas y la señal de hibridación.

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Dumonceaux, T. J., Town, J. R., Hill, J. E., Chaban, B. L., Hemmingsen, S. M. Multiplex Detection of Bacteria in Complex Clinical and Environmental Samples using Oligonucleotide-coupled Fluorescent Microspheres. J. Vis. Exp. (56), e3344, doi:10.3791/3344 (2011).

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Abstract

La vaginosis bacteriana (VB) es un síndrome recurrente polimicrobiana que se caracteriza por un cambio en la "normal" microbiota de Lactobacillus dominado por una microbiota dominado por una serie de especies bacterianas, incluyendo Gardnerella vaginalis, Atopobium vaginas, y 3.1 los demás. Esta condición se asocia con una serie de resultados negativos para la salud, incluyendo la adquisición del VIH 4, y puede ser difícil de manejar clínicamente 5. Además, el diagnóstico de vaginosis bacteriana se ha basado en el uso de la tinción de Gram de los frotis de hisopado vaginal que se califican en diversos criterios numéricos 6,7. Si bien este diagnóstico es sencillo, barato y bien adaptado a entornos con recursos limitados, que pueden sufrir de problemas relacionados con las interpretaciones subjetivas y no le da un perfil detallado de la composición de la microbiota vaginal 8. Los recientes esfuerzos de secuenciación profunda han revelado una microbiota rico, diverso, con la vaginaclaras diferencias entre las muestras tomadas de las personas que son diagnosticadas con BV en comparación con los individuos que se consideran normales 9,10, lo que ha dado como resultado la identificación de una serie de posibles objetivos para el diagnóstico molecular de la BV 11,12. Estos estudios han proporcionado una gran cantidad de información útil, pero la secuencia no es profundo y práctico como un método de diagnóstico en un entorno clínico. Recientemente hemos descrito un método para rápidamente el perfil de la microbiota vaginal en un formato multiplex utilizando oligonucleótidos, junto con la detección de perlas fluorescentes en una plataforma Luminex 13. Este método, como el actual la tinción de Gram basada en métodos, es rápido y sencillo, pero añade la ventaja adicional de la explotación del conocimiento molecular derivados de estudios de secuenciación en el diseño de la sonda. Por lo tanto, este método proporciona una forma de perfil de los microorganismos más importantes que están presentes en una muestra vaginal que se puede utilizar para diagnosticar BV con una alta especificidad y sensibilidad de un borradorared con tinción de Gram, mientras que el suministro de información adicional sobre la presencia y abundancia de especies de una manera semi-cuantitativa y rápida. Este método múltiple se puede ampliar mucho más allá del alcance de los actuales ensayos de PCR cuantitativa a organismos particulares, que actualmente se limita a 5 ó 6 pruebas diferentes en una sola muestra 14. Es importante destacar que el método no se limita a la detección de bacterias en muestras vaginales y pueden ser fácilmente adaptados al perfil rápidamente casi cualquier comunidad microbiana de interés. Por ejemplo, recientemente hemos comenzado a aplicar esta metodología para el desarrollo de herramientas de diagnóstico para su uso en plantas de tratamiento de aguas residuales.

Protocol

Este método fue utilizado en la investigación publicada en Dumonceaux et al. J. Clin. . Microbiol 47, 4067-4077, doi: 10.1128/jcm.00112-09 (2009).

Un diagrama esquemático que representa el procedimiento general se presenta en la Figura 1.

1. Bolas de acoplamiento

Esto describe los métodos que se utilizan para el acoplamiento de sondas de oligonucleótidos de poliestireno cuentas Luminex (ver Tabla 2). Los volúmenes se adaptó ligeramente para la evaluación de nuevas sondas de captura a modo de prueba, estos volúmenes se indican entre paréntesis.

  1. Retire 1-etil-3-(3-dimethylamiopropyl) carbodiimida HCl (EDC) en polvo de -20 ° C y caliente desecador a temperatura ambiente.
  2. Volver a suspender las microesferas por sonciation en un baño de ultrasonidos baño de agua durante 20 segundos, luego agitación unos 20 segundos.
  3. Transferencia de 400 l (100 l) de microesferas a un tubo Eppendorf (esto corresponde a 5x10 6 o 1,25 x10 6 microesferas). Luminex recomienda el uso de tubos de microcentrífuga de baja proteína vinculante (por ejemplo, tubos Eppendorf LoBind proteína, número de catálogo 0030 108.094) para evitar que las cuentas desacoplado se pegue a los tubos y de interferir con la recuperación de cuentas. No hemos encontrado se trata de un problema con estándar tubos de microcentrífuga de polipropileno, que suelen utilizar (por ejemplo, número de catálogo VWR 87003-298).
  4. Pellet a 14000 xg durante 1 minuto. Retire y deseche el sobrenadante.
  5. Resuspender las microesferas en 50 l (12,5 l) de 0,1 a temperatura ambiente M 2 - (N-morfolino) etanosulfónico (MES) de pH 4,5.
  6. Prepare una solución fresca de la EDC en 10 mg / ml en el agua.
    1. Preparar a menos de 1 ml de esta solución por un peso de 5-10 mg de EDC en una escala de análisis, a continuación, añadir agua hasta 10 mg / ml.
  7. Añadir 1 nmol de 5'-amino de oligonucleótidos de captura de C12 modificado (Tabla 2) de microesferas y mezclar mediante agitación. 1 nmol es de 5 l de 200 M oligonucleótidos.
  8. Añadir 2,5 l de solución fresca EDC a las micro y mezclar mediante agitación durante 5 segundos.
  9. Incube a temperatura ambiente durante 30 minutos en la oscuridad.
  10. Deseche la solución EDC (paso 1.6) y preparar una nueva muestra de 10 mg / ml EDC en el agua que el anterior (paso 1.6).
  11. Añadir otro l 2.5 de nuevo solución de la EDC a las microesferas y agitar durante 5 segundos.
  12. Incube a temperatura ambiente durante 30 minutos en la oscuridad.
  13. Lave las cuentas mediante la adición de 1 ml de 0,02% de Tween 20. Vortex (opcional ultrasonidos durante 20 segundos también) para volver a suspender las cuentas.
  14. Centrífuga 14.000 xg 1 minuto. Retire y deseche el sobrenadante.
  15. Lave las cuentas de nuevo por la adición de 1 ml de sulfato de sodio 0,1% dodecilsulfato (SDS). Vortex (opcional ultrasonidos durante 20 segundos también) para volver a suspender las cuentas.
  16. Centrífuga 14.000 xg 1 minuto. Retire y deseche el sobrenadante.
  17. Volver a suspender las cuentas de 100 l (25 l) de Tris-EDTA (TE) buffer [10 mM Tris-Cl pH 8,0, 1 mM EDTA, pH 8,0].
  18. Enumerar las cuentas en un hemocitómetro o contador Coulter para determinar la concentración de valores.
  19. Prepare una mezcla maestra de microesferas mediante la dilución de cada cuenta a una concentración final de 100 bolas / l en buffer TE. Piscina junto cuentas correspondientes a los complejos deseados de la prueba (por ejemplo, para un ensayo de 10 complejos, mezcla de 10 cuentas diferentes, junto a una concentración final de 100/μl de cada cuenta).
  20. Guarde el Master Mix microesferas a 4 ° C en la oscuridad. La mezcla puede ser almacenado durante meses si se mantiene en estas condiciones.

2. Chaperonina 60 universal, objetivo (cpn60 UT) la producción de amplificación y la generación de cadenas simples.

  1. Generar cadena de la polimerasa (PCR) de productos para cada muestra. Incluir el fosforotioato y establecer biotina modificado cebador 5 '(Tabla 1). Ver Tabla 3 para el volumen de la mezcla y la concentración.
  2. Inmediatamente después de la PCR se ha completado, añadir 2 l (20 unidades) de T7 exonuclease a cada tubo de PCR (el buffer de PCR será suficiente para la reacción T7). Incubar la reacción a temperatura ambiente (~ 22-25 ° C) durante 40 minutos.
  3. Al final de esta incubación, añadir 12,5 l de 0,5 M de etileno diamino tetraacético (EDTA), pH 8,0 y mezclar. Esto da un total de ~ 64.5μl de una sola cadena de productos PCR.

3. La hibridación de una sola cadena de productos PCR de bolas de poliestireno junto oligonucleótidos.

  1. Precalentar el instrumento a 60 ° C para mantener la temperatura de hibridación durante los análisis. Encienda el calentador de la plataforma utilizando el software del instrumento y asegúrese de usar el calentador de bronce que se ajuste a la placa de PCR de estilo que contiene la mezcla de grano híbrido.
  2. Volver a suspender las microesferas Mix Master (paso 1,20) con una pipeta, dispense una cantidad adecuada en un tubo Eppendorf, tapar el tubo, y ultrasonidos en un baño de agua sonicador durante 2 minutos. Por otra parte, para garantizar la coherencia absoluta en grano resuspension, la mezcla maestra de microesferas pueden ser resuspendidas por agitación e pipeteo, entonces sonicación de arriba, luego dispensar la cantidad deseada en un tubo de polipropileno Eppendorf.
  3. Prescindir de 17 l de una sola cadena de productos PCR (paso 2.2) en los pocillos correspondientes de un bajo perfil-96-así Vaina placa PCR (Tabla 2). Añadir 33 l de mezcla resuspendido, cuenta sonciated a cada pocillo. Cubra con una cubierta de silicona (Tabla 2) y golpear suavemente.
  4. Colocar la placa en el termociclador con un programa de: 95 ° C durante 5 min, 60 ° C durante 10 min, 60 ° C espera, 60 ° C durante 5 minutos, al final. Iniciar el programa.
  5. Hacer nuevas estreptavidina-ficoeritrina (SA-PE) la solución, usted tendrá 25 l por pocillo (hacer varios pozos adicionales). Haga SA-PE mediante la dilución de la solución de archivo SA-PE (1 mg / ml) de 1:50 a 20 mg / ml con cloruro de tetrametilamonio 1x (TMAC) buffer (TMAC 3 M, 0,1% Sarkosyl, 50 mM Tris-HCl, pH 8,0 , 4 mM EDTA, pH 8,0).
  6. Cuando el termociclador llega a los 60 ° C mantener el paso,abrir la tapa, quitar la silicona y añadir SA-PE directamente la solución a cada pocillo (no tomar la placa del termociclador). Vuelva a colocar la cubierta de silicona, cierre la tapa del termociclador y reanudar el programa.
  7. Cuando el programa está completo, tome el plato y rápidamente la transferencia a la máquina BioPlex de leer. La placa debe ser leído en 10 minutos. Leer a los 60 ° C; asegurarse de que el BioPlex ha sido precalentada a esta temperatura. Asegúrese de que la altura de la sonda se ha ajustado para dar cabida a la placa utilizada, tal como se describe en el manual del usuario del instrumento utilizado.
  8. De precisión de cuentas y detección de la señal, la configuración de la puerta de la BioPlex se debe establecer en función del tipo de microesferas que se utiliza. Perlas de poliestireno BioRad requieren una configuración de puerta de 4,335-10,000 mientras microesferas magnéticas requieren un ajuste de 5,000-25,000. También existe la opción de ejecutar la placa con el ajuste de alta PMT que aumenta el valor de ganancia reportero. Esto lo puedoUMENTAR la intensidad de las señales de menor sin embargo, es importante incluir un control negativo apropiado como señal de fondo también se incrementará.

4. Los resultados representativos:

Uno de nuestros objetivos en el desarrollo y la aplicación de este ensayo fue que sea lo más sencilla y ágil posible. Por lo tanto, optimizar la crítica post-amplificación de los pasos, incluyendo el tiempo de tratamiento T7 exonucleasa y el tiempo de hibridación con el fin de desarrollar un análisis que se puede completar en un plazo razonable. Como se muestra en la Figura 2, el tratamiento T7 de la amplificación es esencial para la generación de señales, como la mayoría de las sondas había poca señal o no con el tratamiento T7 corto o no. La señal de un aumento lineal hasta aproximadamente 40 minutos, momento en que el aumento de la señal de frenado. No hay degradación de la señal se observó incluso a las 2 horas de tiempo de tratamiento T7, lo que indica que la modificación fosforotioato de los cebadores es muy eficaz en la prevención de targedegradación t cadena como se describe 15. Hemos elegido 40 minutos para el tiempo de tratamiento T7 para minimizar el tiempo del protocolo general, sino que se desprende de la Figura 2A que el tratamiento T7 puede continuar durante mucho más tiempo. También se determinó el efecto del tiempo de hibridación en la generación de señales (Figura 2B) y encontró que 10 minutos era suficiente para la máxima señal, ya que ningún nuevo aumento de la señal se observó incluso después de 4 horas de la hibridación. Por lo tanto, una etapa de hibridación 10 minutos fue elegido de nuevo para reducir al mínimo el tiempo de ensayo general. Con estos resultados en mente, y con técnicas rápidas de extracción de ADN, como InstaGene (Bio-Rad), el ensayo general que incluye la extracción de ADN, PCR y análisis de Luminex se puede realizar en 4-5 horas.

En una nota de precaución, el nivel de agregación de las cuentas de poliestireno durante una ejecución de Luminex o BioPlex puede tener un gran impacto en la eficiencia de la prueba. El software BioPlex mostrará el nivel de agregación de cuentas, que ocurre cuandomás de un cordón se detecta en la ruta de láser y los resultados en la exclusión de la señal de hibridación de los agregados. Agregación de cuentas aparente también puede ser causada por cualquier partícula que no es el tamaño adecuado para una sola cuenta, e incluso puede ser causada por las burbujas de aire. En cualquiera de estos eventos, la señal de los agregados de cuentas, burbuja de aire o de partículas se descarta. En la mayoría de los casos, nos encontramos con que la agregación de cuentas es mínima (Figura 3) y el nivel previsto de 100 eventos de conteo para cada cuenta es fácil de alcanzar. Ocasionalmente, sin embargo, las cuentas muestran un incremento moderado (Figura 3B) o grave (Figura 3 C) nivel de agregación. En estos casos, ya que la mayoría de los datos se descartan, el instrumento puede tener problemas para llegar a 100 eventos por tipo de cuentas y los resultados pueden ser cuestionables. El paso de ultrasonidos (paso 3.2) tiene la intención de minimizar la agregación de cuentas. Además, el almacenamiento de las cuentas como una mezcla de microesferas maestro diluida (paso 1,20) puede ayudar. Hemos notado que TMAC excluir de la hybribuffer dization - añadiendo que el diluyente SA-PE en su lugar (paso 3.5) - ayuda a reducir la agregación de cuentas. Por otra parte, aunque no he probado esto, las cuentas más recientes magnética disponible en Luminex o BioRad se cree que mostrar una menor tendencia a agregarse.

Los resultados de la aplicación de un conjunto complejo de 5 Luminex objetivo G. vaginalis, A. Vaginas, L. Iners, L. Crispatus, y L. gasseri junto con los correspondientes Gram frotis vaginal hisopo se muestran en la Figura 4. Estas muestras fueron tomadas de un solo individuo en múltiples momentos. En el momento 0, la persona fue diagnosticada con la VB basado en la tinción de Gram (Figura 4) y los resultados de Luminex de esta misma muestra (Figura 4) muestran que de los organismos representados en la matriz, G. vaginalis fue más frecuente, mientras que A. Vaginas y L. Iners también fueron positivos. Nueve días después, el individuo todavía estaba BV positivo y el signal de G. vaginalis había aumentado considerablemente, mientras que A. Vaginas y L. Iners todavía positivo. Es importante destacar que, después de este tiempo el individuo comenzó a hacer la transición a una microbiota normal como bacilos Gram positivos se detecta en las manchas (Figura 4), ​​mientras que la señal de G. vaginalis disminuyó y la señal de L. Iners aumentado (Figura 4B). Por nuestra definición original de BV con este método (muestras positivas de G. vaginalis y / o A. Vaginas fueron considerados positivos BV) 13, este individuo fue positivo BV en todos los tiempos, aunque la tinción de Gram no pudo detectar G. vaginalis en los puntos de tiempo de estos dos últimos. Con el método de Luminex se describe aquí, las tendencias pueden ser fácilmente comparado con los métodos basados ​​en la secuenciación, y los resultados de la prueba de Luminex general corroborar la tinción de Gram 13, mientras que proporcionar información adicional sobre la identidad de organismo y de la abundancia.

"Figura Figura 1. Esquema del protocolo de Luminex para determinar el perfil de la microbiota de una muestra compleja clínicas o ambientales. El protocolo comienza con el ADN de plantilla que se ha extraído de la muestra de interés. (1) Generar productos PCR de ADN de la plantilla con el capítulo específico de biotina, fosforotioato modificados cpn60 UT PCR, junto con modificar cpn60 UT PCR (Tabla 1), (2) Esto genera un conjunto de productos de PCR en representación de la microbiota con la biotina fosforotioato modificación de una cadena, (3) Resumen del producto de doble cadena PCR con exonucleasa T7, que no pueden degradar la cadena fosforotioato modificado y por lo tanto genera una sola cadena de ADN que se ha modificado en el extremo 5 'con biotina, (4) Pareja bolitas de poliestireno para cada especie cpn60 sondas UT - cada cuenta tiene una única dirección espectral (indicado por el color de cuentas) que idiscernible por el Luminex o instrumento Bio-Plex s; (5) híbridos con el producto una sola cadena PCR generados a partir de la muestra de interés para el conjunto de especies específicas, junto oligonucleótidos cuentas; (6) Añadir estreptavidina-ficoeritrina conjugado que se une a la biotina sola cadena de productos PCR, y actúa como un indicador de la hibridación; (7) Determinar la dirección espectral (bolas de identidad) y la intensidad de la señal de hibridación mediante un instrumento Luminex o Bio-Plex. Por lo menos 100 cuentas se cuenta para cada identidad de cuentas y la intensidad media de fluorescencia (MFI) de la señal de ficoeritrina se presenta como la salida. Hasta 100 tipos diferentes de cuentas se puede evaluar de forma simultánea, sino un ensayo que muestra la discriminación de los tres tipos de cuentas es ilustrado. (8) Cuando el MFI de PCR se replica generados a partir de la misma muestra es significativamente mayor que el control negativo para un determinado grano (una cola de la t-test, p <0,05), la muestra se considera positiva para ese organismo.

Figura 2
Figura 2. Optimización de los parámetros del ensayo Luminex. Cinco diferentes sondas dirigidas a anaerobius Peptostreptococcus se utilizaron con amplicones generados a partir de una plantilla mixta que comprende plásmidos que contienen el clonado cpn60 UT de 20 bacterias se sabe están asociados con la vagina, incluyendo P. anaerobius. (A). Efecto del tiempo de tratamiento T7 exonucleasa. El protocolo descrito anteriormente fue seguido, pero el tiempo de tratamiento con exonucleasa T7 fue variada antes de la hibridación y la intensidad media de fluorescencia (MFI) se determinó para todas las sondas. (B). Efecto del tiempo de hibridación. El protocolo descrito anteriormente fue seguido con una variedad de tiempos de hibridación. Los mismos conjuntos de sondas se utilizan con una amplificación generados a partir de la misma plantilla que en la A y la intensidad media de fluorescencia (MFI) se determinó para todas las sondas.

"> Figura 3
Figura 3. Determinación de la agregación de cuentas el uso de software BioPlex. Tres ejemplos de carreras BioPlex en el que el nivel de agregación de cuentas es (A) aceptable (5%), (B) en el límite (50%); e inaceptable (C) (80%).

Figura 4
Figura 4. Aplicación de un conjunto complejo de 5 Luminex para el diagnóstico BV en muestras secuenciales tomadas de la misma persona. (A). Tinción de Gram diapositivas que muestran los tradicionales de diagnóstico utilizado para evaluar cada muestra para la vaginosis bacteriana. (B). Aplicación de una serie de 5 complejos Luminex preparado y ejecutado tal como se describe en este protocolo para las mismas cuatro muestras se muestra en (A). Objetivos bacteriana cuya IMF señal fue significativamente positivo según nuestra definición (de una cola de la t-test, p <0,05) se señalan con un asterisco (*).

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Discussion

La especificidad de la generación de la señal es de suma importancia, usted debe estar seguro de que la señal observada refleja realmente la detección de amplificación generados a partir de ese organismo. Software como PrimerPlex (Premier Biosoft) pueden ayudar a diseñar las sondas que se hibridan de manera eficiente, pero puede o no hibridizan a las especies no objetivo. Cuando universal de PCR se utilizan como se describe en este protocolo, es importante tener en cuenta que la amplificación generada representa a todos los organismos presentes en la muestra. Es importante, por lo tanto, para analizar las sondas de potencial de la posibilidad de hibridación cruzada mediante la comparación de las secuencias sugeridas por el software de diseño de la sonda a la cpnDB, una base de datos de secuencias cpn60 UT 16, que coinciden con sondas múltiples organismos deben ser evitados si es posible . Además, cuando las sondas específicas potencialmente se identifican, hemos tomado un enfoque de la sonda de validación en el que un complejo, artificial template se prepara correspondiente a la clonación cpn60 UT de una serie de organismos asociados con la microbiota de interés 13. Amplificación se genera a partir de la completa "panel mixto", incluida la plantilla de destino, y la señal se compara con la generada a partir de una plantilla compuesta por el segundo panel de mezcla que no contenga el organismo objetivo cpn60 UT. Las sondas que generan una alta relación señal-ruido (donde la señal es generada por el panel completo y el ruido se genera desde el panel de la plantilla sin objetivo) son seleccionados para su inclusión en el ensayo final. Hemos analizado típicamente 4-5 sondas posible para cada organismo de destino antes de seleccionar uno para su inclusión en la final de serie de Luminex.

La definición de un resultado positivo es un tema a considerar. Hemos encontrado que las sondas de diferentes intrínsecamente diferente de señal a ruido, así que nos decidimos por un enfoque en el que un resultado positivo es defied por una prueba estadística muy simple: el estudiante de la t-test (una cola). Un resultado positivo se define mediante la comparación de la IMF de la muestra a los "sin plantilla" de control, y cuando la IMF es significativamente mayor que el control de p <0,05, el resultado se considera positivo para ese organismo. Normalmente dos amplicones generados independientemente son cada prueba por duplicado. Aunque la PCR y los pasos T7 exonucleasa crear alrededor de 64,5 l de una sola cadena de productos PCR (paso 2.3) y sólo 17 l de este se utiliza para la hibridación (paso 3.2), suficiente para tres ensayos de hibridación, que normalmente se analizan los duplicados de dos ampliaciones de dar una réplica técnicos inherentes sin necesidad de utilizar un número excesivo de pozos.

Un aspecto de este ensayo que hemos investigado es el semi-cuantitativo de la naturaleza. La señal de las IMF de una sonda da una buena correlación con la abundancia qPCR determinado de un determinado organismo (coeficiente de correlación de Spearman & rho, = 0,4686, p <0.0001) 13, pero el rango dinámico es limitado, la señal tiende a saturar en los niveles superiores del organismo objetivo, como era de esperar ya que se analiza después de amplificación de PCR punto final de 40 ciclos. Debido a que es semi-cuantitativos, las tendencias en la abundancia de organismos pueden ser monitoreados y patrones observados (mantenimiento de la advertencia en mente con respecto a la saturación de la señal en mayor abundancia). Por ejemplo, la Figura 4 muestra un perfil de la microbiota vaginal de una persona con el tiempo a medida que cambia de BV a la normalidad. Mientras esto ocurre, la señal correspondiente a G. vaginalis (un organismo BV-asociados 17) aumenta y luego disminuye, mientras que en el transcurso del tiempo el control de la señal de L. Iners aumenta. Manchas correspondientes Gram, el actual "patrón oro" para el diagnóstico de BV, muestran un patrón según el cual los bacilos Gram positivos son inicialmente ausente, pero son detectables en momentos posteriores. El método de Luminex tanto identifica los organismos presentes en la muestra y da some información en cuanto a su abundancia relativa. Este tipo de información podría ser utilizada para controlar las muestras de cualquier tipo de tendencias indeseables en la abundancia de los organismos particulares y puede ofrecer esta información para un gran número de organismos al mismo tiempo.

Es importante destacar que este método no se limita a la descripción del perfil de la microbiota vaginal y razonablemente se puede aplicar a cualquier entorno en el que la cuantificación de detección y parcial de una amplia gama de organismos que es deseable. Al aplicar el método a otros ambientes, es importante tener en cuenta la posibilidad de inhibición de la PCR que ocurren, como inhibidores de la PCR comúnmente co-purificar el ADN de muchos entornos de 18 años. En caso de inhibición de la PCR es un problema, la muestra puede ser diluida o purificada con el fin de generar la señal suficiente para este ensayo.

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Disclosures

No hay conflictos de interés declarado.

Acknowledgments

Agradecemos a Alberto Severini y Goleski Vanessa para ayudar con el desarrollo de ensayos y comentarios críticos sobre este manuscrito. Este trabajo fue financiado por la Agencia de Salud Pública de Canadá y el Programa de Asistencia a la Investigación Industrial (National Research Council de Canadá). El apoyo adicional fue obtenida de la Universidad de Saskatchewan Fondo de Publicación.

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Comments

1 Comment

  1. We should prepare one about detection of phytoplasmas ! ;)

    Reply
    Posted by: Edel P.
    May 13, 2014 - 2:45 PM

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