结合单分子操纵和成像蛋白-DNA相互作用的研究

Biology

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Summary

在这里,我们描述了仪器和方法,用于检测单荧光标记的蛋白质分子与悬浮两层光学俘获微球之间的单个DNA分子的相互作用。

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Monico, C., Belcastro, G., Vanzi, F., Pavone, F. S., Capitanio, M. Combining Single-molecule Manipulation and Imaging for the Study of Protein-DNA Interactions. J. Vis. Exp. (90), e51446, doi:10.3791/51446 (2014).

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Abstract

Introduction

单分子(SM)的技术有了很大的发展,在过去三十年来克服一些传统的,本体溶液测量1-3的限制,需要作出回应。单一生物分子的操纵创造了机会,以测量生物聚合物4的机械性能和控制的蛋白-蛋白5和蛋白质-DNA相互作用6,7的机械参数。 SM荧光检测,另一方面,代表一个非常灵活的工具用于研究蛋白质的活性在体外体内 ,导致定位和跟踪单分子与纳米精度的可能性。通过仪器的点扩散函数与SM图像的拟合,实际上,可以实现定位与精度主要取决于信号噪声比(SNR)和达到约一纳米8,9的限制。这些方法找到强大应用在马达蛋白的动力学的研究,以及对底层中的DNA结合蛋白的目标搜索的扩散过程。确定扩散常数为DNA序列上的目标函数,停留时间和精确地测量在一维扩散事件探索了DNA的长度的能力,代表一个功能强大的工具,蛋白质-DNA相互作用动力学的研究和调查的特定目标的搜索机制。

最近,这两种技术的结合,产生了新一代实验装置10-14实现同时操控的生物基质(如肌动蛋白丝或DNA分子)的相互作用伙伴酶检测/定位(例如肌凝蛋白或DNA结合蛋白)。这些技术的优点主要停留在施加机械控制被困聚合物的可能性,从而ENA金光闪闪的相互作用动力学与力或力矩的研究。此外,该方法允许从表面为止测量的生化反应,避免了经典的SM的方法, 即,需要对所研究的分子固定在表面上(玻璃载玻片或微球体)的主要限制之一。

两个单分子技术的结合需要克服几个技术难题,所产生的主要是从机械稳定性和足够的信噪比(SNR)(特别是当需要定位以纳米精度)15的要求。特别地,耦合SM荧光检测用光学镊子,噪声的降低时,并从捕获红外激光器16和生化缓冲液的生物复合物的装配和实验测量11的性能的控制漂白是最重要的。在这里,我们描述了方法,用于执行成功测量双套色/ SM荧光定位设置。该方法被示出与含有特定了LacI结合序列( 例如,运营商)乳糖阻遏蛋白(了LacI)的荧光标记(用Atto532)和检测到的,因为它结合到DNA分子(两个光学镊子之间的残留)的例子。我们证明在检测了LacI的DNA和扩散约束力沿其在目标搜索过程中轮廓的方法的有效性。该方法适用于DNA序列和DNA结合蛋白中的任意组合,以及与其他系统(微管或肌动蛋白丝和马达蛋白与它们进行交互)。

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Protocol

1,光镊设置与纳米稳定性

实验装置必须提供两个光镊在低于1%的捕集激光器的纳米级和强度波动指向稳定性。这些条件结合,将确保在典型的拉哑铃纳米稳定性(1 PN -几十PN的),陷阱刚度(0.1 PN /纳米)和测量带宽(图像采集速度为20秒-1)。该实验装置的方案, 如图1所示。

  1. 光镊设计和施工15,17:
    1. 安装与激活隔离器的光学平台,实验设备,以减少机械振动。安装在弹性体隔振器的显微镜的结构来吸收噪声和显微镜结构的机械共振。
    2. 插入一个光隔离器,在俘获激光的路径附近的激光源,于r得出的随机波动的幅度,由于光反馈。
    3. 降低捕集激光尽可能的路径长度和包围在一个密封的盒子的整个路径,以减少由于空气流和湍流激光指点波动。
    4. (:YAG激光器,1064纳米波长的Nd)分为两束正交的偏振通过分割一个单一的近红外激光源产生双光镊。不要使用分时陷阱,因为它们所造成的哑铃振荡张力下12。
    5. 使用由直接数字频率合成器(DDS中)驱动声光偏转器(1AOD及第2AOD)允许(至少)一个陷阱和DNA张力精确调节精细动作。 DDS中可以更好的陷阱稳定性比压控振荡器(VCO)。
    6. 插入两个象限检测器光电二极管(QDPs)在冷凝器中的后焦面检测的捕获珠亚纳米精度的位置。
  2. 检查强度F.在显微镜入口俘获激光的luctuations是在1%以下通过使用光电二极管带带宽比图像采集的速率较大。
  3. 检查两个捕获激光指向稳定性:
    1. 制备硅珠在磷酸盐缓冲液的稀释:20微升的硅石珠粒(1.54微米,10%的固体)在1ml丙酮中,超声处理30秒,旋涡简单地说,离心2分钟,在19000×g下。悬浮在1毫升丙酮和重复洗。重悬在1ml的50mM磷酸缓冲液,洗2次,最后悬浮于100μl的50mM磷酸盐缓冲液中。
    2. 校准光镊与硅珠:通过将盖玻片用双胶带(约60微米厚)载玻片制备流通池。流程1毫克/毫升BSA,并等待3分钟。流动硅珠稀释1 / 1,000磷酸盐缓冲液和密封流室与硅脂。在每个陷阱陷阱一胎圈和校准使用的功率谱法18陷阱。 制备硅珠在乙酸异戊酯及硝化纤维素:稀释20微升的硅石珠粒(1.54微米,10%的固体)在1ml丙酮中,超声处理30秒,旋涡简单地说,离心2分钟,在19000×g下。悬浮在1毫升丙酮和重复洗。重悬在1ml乙酸戊酯和洗涤2次。最后重悬他们在乙酸异戊酯的0.1%硝化纤维素溶解在乙酸异戊酯。
    3. 差价2微升的使用第二盖玻片(24×60毫米)溶解在乙酸戊酯+ 0.1%硝酸纤维素到盖玻片(24 x 24毫米)的表面1.54微米直径的硅珠。通过使用两片双面胶带来创建一个流动池附着在盖玻片到显微镜载玻片上。填充流动池用50mM磷酸盐缓冲液和用硅酮油脂封住它。
    4. 图片1硅珠在明显微镜在2000倍的放大倍率。视野应该是7×5微米,在768×576像素的收购,从而使图像珠的直径为190,第ixels。补偿热漂移与反馈软件,如在参考文献17中 ,计算出坐标位置的图像的质心和z的衍射环和校正漂移运动的压电阶段以纳米精度或更好。
    5. 重叠左阱与胎圈中心的中心(从QDP在xy信号电平必须是相同的校准过程中测量的)和测量位置的噪声和其从QDP标准偏差。重复测量的正确陷阱。

2,单分子定位在纳米精度

  1. 荧光显微镜的设计和施工15,19
    1. 使用高量子效率和电子倍增CCD来达到所需的纳米定位精度高的信号 - 噪声比。
    2. 选择光学器件来获得的图像的像素尺寸〜80纳米(例如,图像放大率〜200X为16微米的照相机的像素大小)。这是sufficiently小到忽略了定位误差,由于像素化8,但足够大,收集了相当数量的每个像素的光子。
    3. 作为激发源,可使用激光光是非偏振的(通过穿过非偏振保持光纤)或圆偏振(通过穿过λ/ 4波片),以最大限度地提高单一发色团的激发,而不管其方向如何。
    4. 选择发射带通滤波器,可有效切断两者激发和捕捉激光灯。注:在我们的实验中,我们标记了蛋白质Atto532染料和使用集中在600nm与100nm的带宽的带通滤波器的排放。

3,微流体

为了实现缓冲的交流与'哑铃'组装, 单个DNA分子的两个光学微被困之间的固定,一个定制的层流多通道的精确控制系统必须开发。这是由液流腔,一个压力容器和压力控制系统( 图2)组成。

  1. 流动池的准备
    请注意:用于单分子实验的蛋白-DNA相互作用的流动腔室具有优选4的入口和1个出口,以允许多达4个并行缓冲流,每一个都含有实验所需的不同部件中的一个:球,DNA荧光标记的蛋白,并且成像缓冲器。在流动通道的组件的分离允许哑铃的高效装配。此外,成像通道是有用的,以避免背景荧光扩散的蛋白质,并获得所需的DNA结合蛋白具有几个纳米的数量级的精确定位的高的信号 - 噪声比。
    1. 钻头直径为1mm的孔,在显微镜载玻片(76×76×1毫米)用金刚石尖,以创建4个入口和一个出口。
    2. 清洁日Ë显微镜载玻片,用乙醇和居中端口与O形环插入并在包围通道孔滑动的粘合环。它是基本在此步骤中要戴手套避免指纹,这会扰乱胶合处理。
    3. 夹紧NanoPorts是在滑动,并将其放置在预热至180℃下进行1小时,以允许完全附着的烘箱。
    4. 绘制流动池的轮廓图案在一张纸上。渠道应该是〜3mm宽和匹配的显微镜载片上的孔的位置。
    5. 广场上的两片封口膜上方的绘图,并用手术刀做锐利和连续切削沿绘制轮廓。去除形成的任何突起。弃下封口膜层,它只是用来保证一个干净的支持。
    6. 放置含所附NanoPorts是在金属支撑倒置显微镜载玻片。
    7. 小心地将封口膜腔轮廓与孔,确保日在石蜡膜不管闲事腔室的入口和出口。
    8. 盖上清洁显微镜的盖玻片(62 X 56 X0.15毫米),小心地取出围绕室内多余的封口膜。
    9. 将两个热块,预先在120℃下加热,在流动池的顶部施加在其上恒定的压力。让封口膜融化约25分钟。
  2. 蓄压器和缓冲容器
    蓄压应有机玻璃(或类似),并允许六个缓冲容器住宿。具有至少两个额外的缓冲容器的可能性提高了仪器的灵活性。注被困气泡的透明容器和管道大大有助于流动系统操作和故障排除。无菌且一次性鲁尔锁定尖端注射器(2.5ml)中,从该柱塞之前已经去除,是良好的缓冲容器中,并允许与所述入口管的连接方便。确保与蓄压器,必需以获得平滑且稳定的流动条件内的空气体积相比较的总流体体积是小的。
    1. 连接切断阀的缓冲容器,在实验过程中打开或关闭的缓冲流的出口。
    2. 安装在显微镜舞台上的流动池。连接的截止阀的流动腔室进气口与聚醚管(内径〜150微米)和凸缘接头。加入〜3厘米氟化乙烯丙烯管(内径〜500微米)的管和流动池的NanoPort组件之间的连杆。这一步是必要的,以减少在腔室入口的缓冲液流,以避免在玻璃的流动池或NanoPort脱离的破损。使用大内径的管子单独,另一方面,将需要的生物样品的庞大体积。
    3. 流室的出口连接到在大气压下的开放Falcon管中。这管用作处置流出的流动室的缓冲液中。
  3. 压力控制系统
    1. 构建一个能够精细地调节压力储层内的空气压力的压力控制系统。这可以通过使用两个计算机控制的电磁阀,另一个连接到0.5个大气压的压力源(压缩机),第二个大气压力下进行。电磁阀反复打开约7毫秒,以增加或减少压力的线,直到所期望的值为止。注意:这个方法是改编自卡洛斯·布斯塔曼特20,并产生更平滑的流比使用步进电机注射泵21。
    2. 通过添加自定义编写的软件控制的压力传感器来监控有效压力施加在蓄压器。典型的工作压力为20毫巴的哑铃组件和200毫巴用于清洗流动系统部件的数量级。

    4,尾矿的DNA与生物素标记的脱氧胞苷三磷酸(生物素的dCTP)

    该DNA分子应长于1​​微米,以促进下流动和锚定到被困珠及其扩展。此外,长的DNA可以防止捕获红外光照射的DNA结合蛋白。这是一个特殊的意义,因为红外光的吸收,从激发生色结果增加了漂白。请注意:在本研究中,该DNA分子是3.7微米长。该分子包含的主要运营商O1一式三份,每两个辅助运营商,O2和O3的一个副本。这些序列被插入到该分子的中间,从而导致从捕获珠子和红外激光束大致等距离。

    1. 混合1皮摩尔线性DNA 3'-末端与60皮摩尔生物素14的dCTP的,4微升的5X末端转移酶(TDT)缓冲液(1M氢CAcodylate,125毫摩尔Tris,0.05%(体积/体积)的Triton X-100,5mM的氯化钴(pH为7.2,在25℃))和1.5微升末端转移酶和DDH 2 O的以20微升的总体积。在37℃下将混合物15分钟。这将导致增加每脱氧核糖核酸末端可达60个核苷酸。请注意,DNA的3'-突出端尾和更高的效率比凹或平端。
    2. 纯化用离心柱或酚/氯仿抽提和随后的乙醇沉淀尾的DNA,从末端转移酶反应缓冲液除去氯化钴。
    3. 纯化后,可将DNA贮存在4℃几周或在-20℃下的时间较长,但避免反复冻融和再冻结。

    5,标记蛋白质的巯基与ATTO532

    通过半胱氨酸残基的修饰标签必须不改变蛋白质的活性。为了克服这个问题,我们使用了了LacI突变,LacIQ231C,whicħ携带只是每单体一个半胱氨酸的位置231。该突变体保留了野生型和化学修饰,在位置231的相同特征已被证明不与蛋白质稳定性22干涉。注:我们与ATTO532马来酰亚胺标记的蛋白质。

    1. 确保该蛋白溶解在缓冲液中的pH值范围从7.0至7.5,并用浓度为2〜10毫克/毫升。注意:在这些实验中,了LacI溶于磷酸钾0.3米,5%葡萄糖,pH为7.5(缓冲液A)。
    2. 溶解三(2 -羧乙基)膦盐酸盐(TCEP)至100毫克/毫升的最终浓度在H 2 O。 TCEP的解决方案必须在使用前新鲜制作。
    3. 混合100微升3μLTCEP和涡仔细的蛋白质。
    4. N,N二甲基甲酰胺(DMF)中的染料溶解到10毫克/毫升的最终浓度在低光条件下工作。涡街至完全溶解。
    5. 反应英里X:添加33微升染料与蛋白质+ TCEP和涡流小心。快速旋转,以收集尽可能多的解决方案成为可能。
    6. 在20℃下孵育在摇床(转速8000rpm)的反应混合物中进行2小时(或在4℃CO / N),避光。
    7. 溶解L-谷胱甘肽还原(GSH)至100毫克/毫升的最终浓度在H 2 O。加入3微升至反应混合物中,并孵育在摇床上以8000 rpm离心15分钟。 GSH将停止反应阻断的巯基的反应性。
    8. 使用标准的凝胶过滤柱,透析或旋转浓缩纯化标记蛋白。请注意:在这些实验中,标记了LacI使用10kDa的截止旋转浓缩器进行纯化。
      1. 具有最多12个1ml缓冲液A的稀释该反应混合物,将其应用到集中器装置,和离心机它在8000 XG,1小时,4℃。因此,标记了LacI浓缩至约500微升的最终体积和过量的染料传递膜中的FLOW-通过。丢弃的流量通过,并重复步骤5.8.1至少三次。
    9. 划分标记蛋白成小分装并储存于-80℃。避免反复冻融。

    6,组合式光学捕获和单分子荧光成像实验

    1. 加入1 ml缓冲液A到缓冲容器和应用200毫巴压力清洗连接管和流动池。最大化的结合蛋白对DNA,在这里和在以下步骤中扩散,缓冲液A可以被替换为低离子强度缓冲液中。注意:在这些实验中,我们使用TBE 0.5倍。
    2. 检查是否有空气气泡的存在,这可能会扰乱流动的光滑度。在出口管轻轻一捺,将有助于消除任何残留的气泡。
    3. 降低压力到20毫巴,并确认所有的通道和管是从气泡清楚,在所有信道相似的速度在缓冲流。
    4. 准备样品300微升的最终体积:链亲和素包被聚苯乙烯珠1.87微米; 20日下午线性DNA,生物素化的根据第4两个四肢;根据第5条300分了LacI四聚体标记ATTO532。
    5. 每个样品加入到注射器的容器中以下列顺序之一:在所述第一信道,DNA与成像缓冲器只(缓冲液A +氧清除剂系统),并在第四个信道的标记蛋白,第二,第三信道的珠子。
    6. 转流上,在200毫巴下进行3分钟,让样品到达的流路内。然后将压力降低到20毫巴。
    7. 而成像在明视场照明的第一信道,开关上的两个光学镊子和捕捉在每个阱的聚苯乙烯珠粒。
    8. 快速移动到所述第二信道,以避免其他珠落入陷阱。注意,在到达该DNA信道是由珠流动的末端容易引人注目。
    9. 使用邻NE AOD,移动一个陷阱(珠)来回于另一胎圈的附近,以允许流动延伸的DNA中的两个光学捕获的珠之间的连接。当形成的DNA哑铃,静态珠开始以下的积极来回移动的陷阱的胎圈的运动。
    10. 快速移动到缓冲通道,并关闭缓冲液流。执行力-延伸曲线分析4,23-25 ​​验证单个DNA分子的存在。如果多于一个的分子存在( 焓,提高力-延伸曲线的相位发生在长度大于该DNA轮廓长度短),则丢弃该哑铃并从步骤6.7重新开始。
    11. 一旦获得单个DNA哑铃,打开流量再次与移动哑铃的蛋白通道。切换到宽视场荧光显微镜监测标记-了LacI与DNA的相互作用。关闭流并开始采集。

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Representative Results

在一个成功的实验中,一个(或多个)标记的蛋白质经受装订沿着DNA分子( 图3A)/解除绑定和/或单维扩散。沿所述DNA分子的蛋白质的定位允许的动力学参数的量化的DNA序列的功能。当缓冲液条件引起的一维扩散被施加,所以能够追随蛋白的轨迹,并确定,例如,扩散系数D 1D。

单点的精确位置,在每一帧,可通过用二维高斯函数拟合的点扩散函数(PSF),或者,处理大型数据集,具有更快速,近期公布的算法时(径向确定对称中心,RSC)26,27。后者的方法确定的图像的最大径向对称的点,实现本地化的精度,其为通常的高斯拟合媲美。在博个的情况下,跟踪可以通过MATLAB例程可以自由27被访问来实现。

图3A显示了一个典型的实验中,其中单个了LacI分子沿非特异性DNA序列扩散而另一个了LacI分子特异性地结合到一个操作者,位于该DNA分子的中心的记波图。 图3B示出的两个位置了LacI分子沿连接两个陷阱(X)的中心的方向(使用RSC得到),作为时间的函数。从分子沿DNA分子扩散的位置,我们计算出的均方位移(MSD)在不同的时间间隔,根据下面的等式:

式(1) (1)

其中N是测量位置的总数,n为衡量指标去˚F ROM 1到N。在壳体的纯单维布朗扩散,在MSD成正比至nΔt(其中,Δt为两个连续的帧,在我们的实验中100毫秒之间的时间间隔),具有斜率等于扩散系数的两倍(MSD(N,N)的 = 2D 1nΔt) 图4示出了在MSD比nΔt积为分子沿DNA的扩散。该蛋白质的扩散系数可以从MSD的比nΔt曲线线性拟合可以容易地获得。注意,当n增加 ,用于从式计算MSD的点数。 1因此降低。在MSD的评估误差从而与正增加。因为这个原因,我们选择了限制我们分析到n = N / 4。这是无论如何比N / 10被许多实验室相当大的价值。

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图1实验装置包括:卤素灯(H),电容器(C),样品(S),压电转换器(XY和Z),目标(O),低倍率摄像头(CCD 200X)和高-magnification相机(CCD 2000倍)用于纳米的稳定反馈(BS为50:50分束器立方体)。连光学镊子插入并从显微镜的通过分色镜(D2和D3)和光轴萃取包括:Nd:YAG激光器(1,064 nm)的光隔离器(OI),λ/ 2波片,偏振分束器立方体(PBS)中,声光偏转器(AOD),1064纳米的干涉滤波器(F1和F2),象限检测器光电二极管(QDP)。通过模拟 - 数字转换器(ADC)被收购的QDPs信号,并阐述了FPGA板。两个定制的直接数字频率合成器(DDS)开车1AOD及第2AOD控制陷阱“的位置。数字输入输出板(DIO)的控制孔连接到压缩机(0.5大气压)和常压(0个大气压),分别为两个电磁阀(V1和V2)。由LabVIEW软件通过压力计(PM)监测的压力容器(C1)内的压力和自动打开两个阀中的一个,以达到所需的压力水平。激发荧光是由重复的Nd规定:YAG激光(532纳米)和投射电子图像乘以相机(EMCCD)。 M是一个可移动的镜子,F3发射滤光片。 请点击这里查看该图的放大版本。

图2
图2(A)流系统图。压力控制系统是由一个压力测量仪(PM)和两个电磁阀V1和V2连接构成编到压缩机在0.5个大气压(PRS)和环境压力(ATM),分别为。 X1和X2表示的3路连接器。阀的开口被精细地调整,以达到在带4的缓冲容器中的压力储存器C1的所需的压力。每个入口管包括设置在所述多通道流动室的入口开/关阀的独立。所述出口管连接到废液容器C2放置在环境压力。附图不按比例绘制。(B)中的多通道流室的示意图。四个层流分别转位官能化聚苯乙烯珠的DNA分子,成像缓冲器和标记的蛋白质。两个小珠捕获的双光学镊子和移动到该DNA通道,以允许它们之间的DNA锚定于。在缓冲通道中进行的DNA力 - 延伸分析,以验证单个DNA分子的存在,并且只是后来,将DNA温育中的蛋白质通道。插图显示了麦格尼fication最后的分子结构,准备在缓冲通道单分子成像。图纸不按比例。 请点击这里查看该图的放大版本。

图3
图3定位单了LacI分子的拉伸DNA分子相互作用的(A)的记波图的纵轴表示的x坐标,平行于该DNA分子,而水平轴是时间(100毫秒采集时间)(乙对了LacI分子时间)X位置。分子的立场得到了RSC确定。在100毫秒的曝光时间和1.25×10 -2W¯¯厘米被获取的图像-2 EXCI塔季翁激光强度。 请点击这里查看该图的放大版本。

图4
图4图解MSD的随时间变化的单一了LacI分子沿拉伸的DNA分子扩散的 MSD从图3B(红色)表示的位置的记录进行计算。扩散系数D 1D,从图中所示的数据的线性回归获得,为0.030±0.002微米2-1。

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Discussion

在过去的十年中,单分子操纵和成像技术已经看到在空间和时间分辨率方面很大的进步。的操纵和成像技术的组合是在的强大工具的基础,现在允许一个单一的生物聚合物的机械条件,如DNA,RNA或细胞骨架细丝的控制,和单一的蛋白质同时定位与同一聚合物相互作用。控制困聚合物的机械条件是特别感兴趣的。事实上,在活细胞中,核酸被连续经历引起相互作用的酶和蛋白质的机械应力;同样的,相互作用的蛋白质和分子马达组成的复杂网络的张力调节细胞骨架上的细丝。另一方面,有可能以检测和精确定位的蛋白质与核酸相互作用,使分子间的相互作用的测量作为其口服的函数沿所述DNA或RNA序列sition。

组合单分子操纵和成像技术,需要仔细设计的实验装置和所述生物构建体。光陷阱,必须提供稳定的支撑,保证了悬浮聚合物的纳米级的稳定性。这种稳定性可以通过精心隔离从机械噪声的众多来源的实验装置,并通过最小化激光指向和振幅波动到达。光陷阱精确(分处)运动正在使用1AOD及第2AOD由DDS中推动实现的。在这里,我们说明了一步一步的协议进行优化,并在纳米级的检查光镊“的稳定性。

耦合到一个EMCCD相机简单的宽视场落射荧光显微镜被用于定位单发色团与悬浮的聚合物相互作用。我们的实验测定法仅限于长DNA或RNA分子(≥6千碱基),以确保空间的隔离赌注吐温该俘获激光束与荧光探针。事实上,与可见激光激发的近红外激光捕获的叠加将导致发色团的增强漂白由于近红外光的吸收,而发色团是处于兴奋状态16。哑铃组件是采用多通道流动的细胞,为我们提供了详细的描述可以更好地获得另一个棘手的过程。我们指出如何优化缓冲流,以及如何避免产生气泡,它可以以其他方式严重影响了实验。我们所描述的协议用于标记DNA末端用生物素,它是使用链霉亲和涂层的珠粒所需哑铃组件,和协议蛋白标记。最后,我们说明一步一步的操作来执行,其中拉伸DNA分子上的一个单一的乳糖阻遏分子的结合与扩散定量实验。

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Acknowledgments

我们感谢Gijs Wuite,欧文JG彼得曼,彼得总的帮助,微流体和阿莱西娅Tempestini的帮助,样品制备。这项研究是根据资助协议资金由欧盟第七框架计划(FP7 / 2007-2013)N°284464和意大利外交部,教育,大学和研究外国投资审查委员会2011 RBAP11X42L006,清新汽油在Ricerca 2013 RBFR13V4M2,并在框架该旗舰项目NANOMAX。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Elastomeric isolators Newport Newdamp Choose the appropriate Newdamp elastomer depending on the microscope weight and resonance frequencies
Optical isolator Optics for Research IO-3-YAG-VHP
Nd:YAG laser, 1,064 nm wavelength Spectra-Physics Millennia IR
Acousto-optic deflectors (AODs) A&A optoelectronic DTS-XY 250
Direct Digital Synthesizers Analog Devices
Quadrant detector photodiodes OSI optoelectronics SPOT-15-YAG
DIO and FPGA board National Instruments NI-PCI-7830R
Halogen lamp Schott KL 1500 LCD
Condenser Olympus U-AAC 1.4NA Aplanat Apchromat
Objective Nikon CFI Plan Apochromat 60x 1.2NA water immersion
532 nm laser Coherent Sapphire
CCD 200X and 2000X Hamamatsu  XC-ST70 CE
Electron-multiplied CCD Hamamatsu  C9100-13
Piezo stage with nm-accuracy Physik Instrumente P-527.2CL 
Emission Filter Chroma Technologies 600/100m
Silica beads (1.54 mm) Bangs Laboratories SS04N/5303
Albumin from bovine serum (BSA) Sigma Aldrich B4287
Pentyl acetate  Sigma Aldrich 46022 Flammable liquid and vapor (No 1272/2008)
Nitrocellulose Sigma Aldrich N8267-5EA Flammable solid  (No 1272/2008)
Heat block MPM Instruments Srl M502-HBD with 2 removable blocks; preheated at 120 °C
NanoPort assemblies Upchurch Scientific Inc. N-333
Polyetheretherketone tubing  Upchurch Scientific Inc. 1535
Home-made metallic holder for the assembly of the flow-chamber pressure reservoir made of Plexiglass
Luer lock-tip syringes 2.5 ml Terumo SS 02LZ1
Shut-off valves  Upchurch Scientific, Inc. P-732
Flangeless fittings  Upchurch Scientific, Inc. LT-111
Fluorinated ethylene propylene tubing  Upchurch Scientific, Inc. 1549
Two computer-controlled solenoid valves Clippard, Cincinnati, USA ET-2-H-M5
Pressure transducer Druck LTD PTX 1400
biotin-14-dCTP  Life Technologies 19518-018
Terminal deoxynucleotidyl Transferase (TdT) Thermoscientific EP0161
ATTO532 maleimide Sigma Aldrich 68499
N,N-dimethylformamide (DMF)  Sigma Aldrich 227056 Combustible Liquid, Harmful by skin absorption. Irritant, Teratogen. H226; H303; H312; H316; H319; H331; H360; P201; P261; P280;P305; P351; P338; P311
Tris-(2-carboxyethyl)phosphine hydrochloride (TCEP)  Sigma Aldrich C4706
L-Glutathione reduced (GSH) Sigma Aldrich G4251 Acute toxicity, Oral (Category 5), H303
Amicon Ultra-15, PLQK Ultracel-PL Membrane, 10 kDa cutoff spin concentrators Merck Millipore UFC901024
Streptavidin-coated polystyrene beads 1.87 µm Spherotech, Inc. SVP-15-5

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References

  1. Monico, C., Capitanio, M., Belcastro, G., Vanzi, F., Pavone, F. S. Optical Methods to Study Protein-DNA Interactions in Vitro and in Living Cells at the Single-Molecule Level. International journal of molecular sciences. 14, 3961-3992 (2013).
  2. Tinoco, I., Gonzalez, R. L. Biological mechanisms, one molecule at a time. Genes & development. 25, 1205-1231 (2011).
  3. Capitanio, M., et al. Exploring molecular motors and switches at the single-molecule level. Micr. Res. Tech. 65, 194-204 (2004).
  4. Smith, S. B., Finzi, L., Bustamante, C. Direct mechanical measurements of the elasticity of single DNA molecules by using magnetic beads. Science. 258, 1122-1126 (1992).
  5. Block, S. M., Goldstein, L. S., Schnapp, B. J. Bead movement by single kinesin molecules studied with optical tweezers. Nature. 348, 348-352 (1990).
  6. Wang, M. D., et al. Force and velocity measured for single molecules of RNA polymerase. Science. 282, 902-907 (1998).
  7. Capitanio, M., et al. Ultrafast force-clamp spectroscopy of single molecules reveals load dependence of myosin working stroke. Nat Methods. 9, 1013-1019 (2012).
  8. Thompson, R. E., Larson, D. R., Webb, W. W. Precise nanometer localization analysis for individual fluorescent probes. Biophys J. 82, 2775-2783 (2002).
  9. Yildiz, A., et al. Myosin V walks hand-over-hand: single fluorophore imaging with 1.5-nm localization. Science. 300, 2061-2065 (2003).
  10. Biebricher, A., Wende, W., Escude, C., Pingoud, A., Desbiolles, P. Tracking of single quantum dot labeled EcoRV sliding along DNA manipulated by double optical tweezers. Biophys J. 96, 50-52 (2009).
  11. Candelli, A., Wuite, G. J., Peterman, E. J. Combining optical trapping, fluorescence microscopy and micro-fluidics for single molecule studies of DNA-protein interactions. Physical chemistry chemical physics : PCCP. 13, 7263-7272 (2011).
  12. Capitanio, M., Cicchi, R., Pavone, F. S. Continuous and time-shared multiple optical tweezers for the study of single motor proteins. Optics and Lasers in Engineering. 45, 450-457 (2007).
  13. Harada, Y., et al. Single-molecule imaging of RNA polymerase-DNA interactions in real time. Biophys J. 76, 709-715 (1999).
  14. van Mameren, J., et al. Counting RAD51 proteins disassembling from nucleoprotein filaments under tension. Nature. 457, 745-748 (2009).
  15. Capitanio, M., Maggi, D., Vanzi, F., Pavone, F. Fiona in the trap: the advantages of combining optical tweezers and fluorescence. J Opt A: Pure Appl Opt. 9, s157 (2007).
  16. Dijk, M. A., Kapitein, L. C., Mameren, J., Schmidt, C. F., Peterman, E. J. Combining optical trapping and single-molecule fluorescence spectroscopy: enhanced photobleaching of fluorophores. J Phys Chem B. 108, 6479-6484 (2004).
  17. Capitanio, M., Cicchi, R., Pavone, F. S. Position control and optical manipulation for nanotechnology applications. European Physical Journal B. 46, 1-8 (2005).
  18. Capitanio, M., et al. Calibration of optical tweezers with differential interference contrast signals. Review of Scientific Instruments. 73, 1687-1696 (2002).
  19. Elangovan, R., et al. An integrated in vitro and in situ study of kinetics of myosin II from frog skeletal muscle. J Physiol. 590, 1227-1242 (2012).
  20. Wuite, G. J. L., Davenport, R. J., Rappaport, A., Bustamante, C. An integrated laser trap/flow control video microscope for the study of single biomolecules. Biophysical Journal. 79, 1155-1167 (2000).
  21. Brewer, L. R., Bianco, P. R. Laminar flow cells for single-molecule studies of DNA-protein interactions. Nat Methods. 5, 517-525 (2008).
  22. Rutkauskas, D., Zhan, H. L., Matthews, K. S., Pavone, F. S., Vanzi, F. Tetramer opening in LacI-mediated DNA looping. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106, 16627-16632 (2009).
  23. Marko, J. F., Siggia, E. D. Stretching DNA. Macromolecules. 28, 8759-8770 (1995).
  24. van Mameren, J., et al. Unraveling the structure of DNA during overstretching by using multicolor, single-molecule fluorescence imaging. Proc Natl Acad Sci U S A. 106, 18231-18236 (2009).
  25. Wang, M. D., Yin, H., Landick, R., Gelles, J., Block, S. M. Stretching DNA with optical tweezers. Biophys J. 72, 1335-1346 (1997).
  26. Ma, H., Long, F., Zeng, S., Huang, Z. L. Fast and precise algorithm based on maximum radial symmetry for single molecule localization. Opt Lett. 37, 2481-2483 (2012).
  27. Parthasarathy, R. Rapid, accurate particle tracking by calculation of radial symmetry centers. Nat Methods. 9, 724-726 (2012).

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