מכויל דגם מלקחיים של חוט השדרה דחיסת פגיעה

* These authors contributed equally
Medicine
JoVE Journal
Medicine
AccessviaTrial
 

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

McDonough, A., Monterrubio, A., Ariza, J., Martínez-Cerdeño, V. Calibrated Forceps Model of Spinal Cord Compression Injury. J. Vis. Exp. (98), e52318, doi:10.3791/52318 (2015).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

פציעות דחיסה של חוט השדרה העכברי הן מודלים של בעלי חיים רבי ערך לחקר פגיעה בעמוד השדרה חוט (SCI) וטיפול משובי השדרה. מודל המלקחיים המכויל של פגיעת דחיסה הוא עלות נוחה, נמוכה, ומודל חיה מאוד לשחזור לSCI. אנחנו השתמשנו בזוג מלקחיים שונה בהתאם לשיטה שפורסמה על ידי Plemel et al. (2008) לדחוס רוחבי של חוט השדרה עד למרחק של 0.35 מ"מ. בסרטון הזה, אנו מראים laminectomy גב לחשוף את חוט השדרה, ואחרי דחיסה של חוט השדרה עם המלקחיים שונה. בסרטון, אנחנו גם לטפל בבעיות הקשורות לטיפול בחיות מעבדה משותק. מודל פגיעה זו מייצר עכברים שמפגינים ירידת ערך בתחושה, כמו גם פונקציה של תנועה hindlimb לקויה. יתר על כן, שיטה זו של פגיעה מייצרת סטיות עקביות בפתולוגיה של SCI, כפי שנקבע על ידי שיטות immunohistochemical. לאחר שצפה הווידאו הזהאיו, צופים צריכים להיות מסוגלים לקבוע את הציוד הדרוש ושיטות לייצור SCI של חומרות שונות בעכבר למחקרים על SCI ו / או טיפולים שנועדו למתן ירידת ערך לאחר פציעה.

Introduction

מודלים של בעלי החיים של SCI הם כלים רבי ערך להערכת היעילות של פרדיגמות טיפוליות שנועדו למתן נזק כתוצאה מטראומה לחוט השדרה. מתוך הכרח ניסיוני, מודלים אלה חייבים לספק גירעונות לשחזור ובהתנהגויות של תנועה חושיות, להיות מתכווננת לייצר פציעות ברמות שונות של חומרה, ולהוכיח כי חומרת פציעה בקורלציה עם התואר של חסר נוירולוגים שנצפה. ישנם שלושה סוגים עיקריים של SCI עם תכונות שונות של פציעה: חיתוך רוחב, חבלה, ודחיסת 1. בקצרה, פציעת חיתוך רוחב הוא חתך לחוט השדרה, פגיעת חבלה נובעת מכוח קצר, מוקד פנה לחוט השדרה הגבי, ופציעת דחיסה מתרחשת כאשר כוח פוגעני מוחל על חוט השדרה, ויכולה להיות גם מכונה פציעה למחוץ 2.

פציעות חיתוך רוחב מלאים קליניות נדירות בבני אדם 3, ואילו חבלהפציעות דחיסת ד נפוצות יותר. פציעת הדחיסה מייצרת תוצאה דומה למה שמצא בSCI אדם הנגרם על ידי, למשל, דחיסת גידול או כוחות דחיסה פוגעניים אחרים, ויכולה להתבצע באמצעות מערך פשוט של כלים. פציעות חבלה ודחיסה דומות שבשניהם כוח דחיסה ושניהם יש תכונות פתולוגיים דומות, כגון חוסר ארגון cytoarchitectonic, ולעורר תגובות אנדוגני דומות לפציעת 1,4. מודל פציעת החבלה בדרך כלל מפעיל כוח זה לחוט השדרה הגבי באמצעות מנגנון מיוחד באופן דומה למקרים של בני אדם SCI כתוצאה מנעיץ של עמוד השדרה 2,5,6. בניגוד לכך, יכולות להיות שנוצרו על ידי דחיסת פציעות מגוון רחב של שיטות הפעלת כוח dorsally או רוחבי. שיטות של פגיעת דחיסה כוללות מכוילות מלקחיים 7, קליפים פרצה 2, או הצבת משקל ישירות על חוט השדרה 8. יתרון שלקטעים מפרצת הוא שהם מסוגלים לספק כמויות שונות של כוח 9. השיטה של הוספת משקולות למשטח הגבי של חוט השדרה ישירות 8 דורשת משקל כדי להיות במקום במשך 10 דקות, באופן דרסטי להגדיל את אורכו של ניתוח וכתוצאה מכך חוסר עקביות בשל מיקום של המשקל והתנועה עקב הנשימה של בעלי חיים. בשל גודלו הקטן של עכברים, הצבת בעלי חיים במנגנונים מיוחדים שנועדו לשימוש בחולדות, כגון impactors לפציעות חבלה, עלולים להיות קשה או לגרום לפציעות עולות בקנה אחד 7. עם זאת, עכברים זמינים במגוון רחב של זנים מהונדסים, שלא כמו בעלי חיים גדולים יותר כגון חולדות או ארנבות, כי הם מאוד שימושיים עבור מחקר SCI.

שיטת Plemel של שימוש במלקחיים מכוילים כדי לדחוס את חוט השדרה יוצרת SCI לשחזור ברמה גבוהה של התאמה בין חומרת פגיעה וחסרת נוירולוגי 7. מודל SCI כירורגית זהנוצר באמצעות זוג מס '5 המלקחיים דומון שונה שיתקיים בנפרד במרחק שהוגדר על ידי שני אפוקסי המתכת או מכשול אחר כדי למנוע את הסגירה מלאה. מרווח מהונדס הדבר מבטיח כי המלקחיים יהיו תמיד קרובים לרוחב מסוים בניתוחים מרובים ועל ידי משתמשים שונים. יתרונה של השיטה הוא שPlemel חומרים כדי לייצר את המלקחיים מכוילים ניתן לרכוש בקלות והורכבו במעבדה ללא צורך בציוד מיוחד. מלקחיים אלה יכולים לעמוד סבבים רבים של מעוקר ועיקור, וחוסר מנגנון נפרד, מגושם מייעל ניתוחים.

בסרטון הזה אנחנו מדגימים את השימוש כירורגית של זוג מלקחיים מכוילים על חוט השדרה העכבר כדי ליצור פגיעת דחיסה. אנחנו גם לענות על חששות ייחודיים הקשורים לטיפול בחיות מעבדה כבל נפצע בעמוד השדרה כדי לשפר את איכות חייהם לאחר ניתוח ולהפחית את התמותה.

Protocol

נהלי כל החיה ושיטות טיפול בבעלי החיים צריכים להיות מאושרים על ידי הוועדה מוסדי הטיפול בבעלי חיים ושימוש של המוסד (IACUC).

1. הכנת כירורגי

  1. להרכיב את כל כלים הדרושים כירורגית וריאגנטים: מלקחיים, מספריים ונה, roungeurs, מפשק, אזמלים, מספריים, תפרים, סיכות עור, Q-טיפים, מלח סטרילית, ספוגים כירורגית, וisoflurane. הכן וחיטוי חבילה של כלים כירורגיים מלאה לפני הניתוח. אם ביצוע ניתוחים על עכבר יותר מפעם אחת, להכין וחיטוי חפיסה אחת של כלים לכל בעל חיים, או חיטוי חפיסה אחת של מכשירי ניתוח ולעקר עם מעקר כלי בין ניתוחים. בדרך כלל, חבילה אחת של כלים מעוקרים ניתן להשתמש בעד 5 עכברים אם נעשה שימוש בכלי terilizer חרוז זכוכית כדי לנקות כלים (לאחר 5 חיות הכלים חייבים להיות מחדש לנקות ולחטא היטב לפני השימוש) ב- בין ניתוחים. אנא בדוק עם מנהל IACUC המקומי לinstitutiעל הנחיות ספציפיות.
  2. לעקר את שדה הניתוח עם מגבוני אלכוהול איזופרופיל 70%. הגדר את הווילאות כירורגית כדי להבטיח שדה סטרילי נשמר במהלך ניתוח.
  3. לשקול כל עכבר לפני הניתוח. לנהל מינון של 0.05 מ"ג / קילוגרם משקל גוף של עצירות, תת עורי.
  4. להרדים את החיה על ידי מתן isoflurane במינון של 4% בחדר האינדוקציה של מכונה isoflurane.
  5. ברגע שבעלי החיים הוא בהרדמה, להחיל משחה לעיניים על מנת למנוע התייבשות, להגדיר את החיה על כרית חימום על 37 מעלות צלזיוס, ולהבטיח כי ראשו של העכבר ממוקם כראוי בחרוט ההרדמה. (הערה: השתמש במקור חימום שלא לגרום לכוויות תרמיים, כלומר, שמיכת מים במחזור, בקבוק מים חם, או שוות ערך..) בשלב זה לנהל מינון של 2% isoflurane לבעלי החיים.
  6. לגלח את פני השטח הגבי של העכבר, כ 1 סנטימטר סביב מיקום החתך המיועד.
  7. לחטא את החתך שלITE על ידי שטיפה עם מגבוני אלכוהול איזופרופיל 70%, ולאחר מכן עם תמיסת יוד (10% Povidone-יוד, 1% יוד זמינה). חזור 3 פעמים.

2. הגבי Laminectomy

  1. לפני ביצוע חתך, להבטיח כי בעל החיים הוא מורדם כראוי על ידי בדיקת רפלקסים בשיטת קמצוץ הבוהן או זנב.
  2. עושה חתך לאורך עמוד השדרה הגבי עם אזמל וסכין, ולאחר מכן לבדוק רפלקסים שוב. קשת בגב כדי לעזור כראוי לדמיין ציוני דרך, כגון גבולות בין החוליות.
  3. חותך דרך העור. הכנס מפשק להחזיק עור וfascia חזרה מחוט השדרה. נקה את הרקמה משני צדי עמוד השדרה כדי לחשוף את השרירים המכסים את עמוד השדרה.
    הערה: המנתח צריך להיות מוכר עם ציוני דרך אנטומי. לדוגמא, הזווית הנחותה של עצם השכמה מתכתבת עם T7. חלקיו העליונים של העקומה הטבעית של עמוד השדרה של העכבר הוא T12 ויכול לשמש כנקודת התייחסות.
  4. עם pתאורת רופר, לקבוע את הרווח בין החוליות. מצא את הקצה האחורי של T10 ולחתוך שרירים וfascia בניצב לשטח הדיסק הבין חולייתי. לחתוך מספיק כדי לחשוף את lamina התהליך והאחורי spinous של T10.
  5. בעזרת זוג המלקחיים 5 קנס היטה דומון #, להסיר חלק מהרקמה מlamina ותהליך spinous לחשוף רסיס קטן של חוט השדרה. בעת צורך, להשתמש במלקחי רקמות לייצב את עמוד השדרה.
  6. בצע את laminectomy ידי הוספת צד אחד של זוג מספריים ונה הקטנה בצד דורסולטרלי של החוליה ורק מתחת לlamina.
    1. הפוך חיתוכים קטנים, זהירים לחתוך את הצד לרוחב של lamina השדרה. ודא שאין לחץ מוחל על חוט השדרה.
    2. חזור על פעולה בצד השני.
    3. להפעיל לחץ עדין לעצור דימום במידת צורך עם Q-קצה או ספוג כירורגית, נזהר שלא יפעיל לחצו על חוט השדרה.
      הערה: הכן את קצף ג'לספוג בתמיסת מלח סטרילית במקרה שצרכי דימום להיות בשליטה.
    4. ברגע שהחתכים שנעשו, להרים את היבט הגב של החוליה ועדינות לנקות את כל קבצים מצורפים רקמות. השתמש באמצעי מתאים לשליטה בדימום במידת צורך.

3. דחיסת חוט השדרה

  1. באמצעות roungeurs או מלקחיים laminectomy, להבטיח שהצדדים לרוחב של חוט השדרה הם ללא עצם בחוליות, כך שהמלקחיים מכוילים לפציעת הדחיסה יכולים למקם בכל צד של חוט השדרה. זרועות של המלקחיים חייבים להיות מסוגלים להיות ממוקם בתוך החלל האפידורלי בצדדים סמוכים של חוט השדרה וקצות המלקחיים חייבים להיות מסוגל להגיע לקומה של תעלת השדרה.
    1. ודא שהנראות של חוט השדרה היא טובות.
  2. מקם דומון # המכויל 5 מלקחיים בערך באמצע של המקטע החשוף של חוט השדרה. נזכיר כי הנשק של הכוחps חייב להיות ממוקם בתוך החלל האפידורלי בצדדים סמוכים והטיפים חייבים לגעת ברצפה של תעלת השדרה כדי ליצור פציעות לשחזור.
  3. לדחוס בזהירות את חוט השדרה עד מפרידי להתחבר. להחזיק במקום למשך 15 שניות.
  4. משחרר בעדינויות את כוח הדחיסה ולהסיר את המלקחיים מכוילים מחוט השדרה. יש להשתמש בתמיסת מלח סטרילית כדי להחזיר הומאוסטזיס לפני הפצע סגור.

סגירת 4. פצע

  1. תפר בזהירות את שכבת השריר מעל חוט השדרה, נזהר שלא לשבש או תפעילו לחצו על חוט השדרה.
  2. השתמש באחת תפרים או סיכות כדי לסגור את העור על הפצע.
  3. אם משתמש בהרדמת גז, מתחיל להתחדד / לכבות את ההרדמה.
  4. נהל 0.1 מיליליטר של צלצולים לקטט למשקל גוף 10 גרם לעזור חשבון להתייבשות במהלך הניתוח ולאחר הניתוח, כאשר בעלי החיים הוא רדום ומתאוששים מהפציעה. הפתרון צריך להיות warmeד לטמפרטורת גוף לפני הזריקה.
  5. מניחים את העכבר בכלוב ללא מצעים. הכלוב צריך לנוח על גבי כרית חימום (כמתואר ב1.1.5) באופן שמאפשר לי מחצית משטח הכלוב להיות על הכרית, ואילו המחצית השנייה נחה על דלפק RT, על מנת לתת לי אפשרויות אקלים עכבר ברגע שהיא אמבולטורי. תשמור על מנת להבטיח כי "כלוב ההתאוששות" ממוקם בסביבה שקטה. באופן הדוק לפקח על בעלי החיים עד שהוא שב להכרתו, בו בזמן בעכבר ניתן להעביר לכלוב רגיל עם מצעים.

טיפול 5. לאחר ניתוח

  1. לאחר הניתוח, לנהל מינון של 0.05 מ"ג / קילוגרם משקל גוף עצירות תת עורי כל 12 שעות במשך 3 הימים הראשונים שלאחר ניתוח, ולאחר מכן לפי צורך לנהל סימפטומים של כאב.
  2. לנהל מינון של צלצולים לקטט (0.1 מיליליטר לכל תת עורי משקל גוף 10 g) ל3 הראשונים - 5 ימים לאחר ניתוח. תן מנה זו אם / כאשרimal מתחיל להפגין סימנים של התייבשות מחוץ לתקופת זמן הראשונית הזה.
  3. באופן ידני להביע את שלפוחית ​​השתן של בעלי החיים באמצעות תמרון Crede פעמיים ביום. בעדינות למשש את הבטן של החיה כדי לאתר את שלפוחית ​​השתן, ולאחר מכן להפעיל לחץ כלפי מטה עדין עד השלפוחית ​​ריקה.
    1. אם שלפוחית ​​השתן אינה ריקה או השתן הוא עקוב מדם או מעונן, לנהל 50 מ"ג / קילוגרם משקל גוף על ידי של Baytril לבעלי החיים באמצעות הזרקת interperitoneal במשך 10 ימים.
  4. צג בעלי חיים לסימנים של autophagy, התייבשות, ואובדן מוגזם במשקל (יותר מ 20% ממשקל גוף). אם בעל חיים חווים כל התופעות הללו יש להתייעץ עם וטרינר באופן מיידי בכל הקשור לאפשרויות טיפול, או להרדימו באופן אנושי הבא הנחיות IACUC.
    1. בהתחשב בכך שהניידות עשויה להיות מוגבלת מייד לאחר ניתוח, לנקוט את הצעדים הדרושים כדי להפוך לבעלים-חיים בטוחים גישה למזון ומים. טרום ארוז מזון רטוב, כמו גםהידרוג'ל של, יכול להיות זמין לבעלי חיים במקרים אלה.

6. הערכת נזק לרקמות כתוצאה מדחיסת פגיעה

  1. להרדים בעלי חיים כמתואר בשלבים 1.4 ו -1.5. בדוק עומק ההרדמה על ידי קמצוץ הבוהן ורפלקסים הרף קרנית ניטור. כאשר בעלי החיים הוא חסר רגישות לגירויים, המשך לשלב 6.2.
  2. בצע זלוף intracardial 10.
    1. לחשוף את חלל החזה ולהכניס מחט לתוך החדר השמאלי. לשטוף את נוזלים קיימים עם 20 - 30 מיליליטר פוספט קר כקרח שנאגרו (PBS) ואחריו 15 - 25 מיליליטר של paraformaldehyde קר כקרח 4% (PFA).
  3. הסר את חוט השדרה.
    1. חותך את עור הגב בעמוד השדרה ולסלק את כל רקמה עודפת המקיפה את אורכו של עמוד השדרה.
    2. טור ושדרת בלו לחתוך כל רקמה שנותרה. רמת בפועל של laminectomy וiניתן לאשר njury על ידי ספירת צלעות.
    3. השתמש במספרי vanna ומלקחיים כדי לתפוס חלקים קטנים של עמוד השדרה בכיוון הזנב למקורי. תמשיך לחתוך את הכבל עד חשוף מספיק כדי לאפשר הסרה בטוחה. ויזואליזציה של מיקום החיתוך והתהליך ניתן להקל באמצעות stereoscope.
  4. הנח רקמת חוט השדרה PFA 4%. לאפשר לרקמות להודעה תיקון-בפתרון זה למשך 24 שעות על 4 מעלות צלזיוס.
  5. רקמת Cryoprotect ידי דוגרים בסוכרוז 30% למשך 24 שעות על 4 מעלות צלזיוס.
  6. להטביע רקמות באוקטובר בקצרה, לקחת רקמה מ-30% הדגירה סוכרוז ולהסיר כל פתרון עודף. הנח את הרקמה לתוך cryomold מלא OCT ודגירה עבור שעה 1 על 4 מעלות צלזיוס.
    1. להסיר עובש מ4 ° C, לאשר נטייה כיוונית של הרקמה, לשים את התבנית בצלחת שטוחה של 2-methylbutane (טרום צונן עבור שעה 1 על קרח יבש) ולאפשר אוקטובר לביסוס לחלוטין. שמור על קרח יבש, אם משתמש באופן מיידי או stoמחדש ב -80 ° C.
  7. חותך את הרקמה לתוך 20 מיקרומטר חלקי sagittal באמצעות cryostat. רקמת הר ישירות על גבי שקופיות. חנות ב -20 ° C עד שימוש.
  8. בצע כתם Hematoxylin ו Eosin (H & E).
    1. בקצרה, רעננותם הרקמה (5 דקות, 2 פעמים), כתם עם Hematoxylin (2.5 דקות), ולשטוף עם מים (1 דקות, 2 פעמים).
    2. דגירה רקמה ב -50% ולאחר מכן 70% אתנול (3 דקות כל אחד), כתם עם Eosin (45 שניות), ומייבש על ידי דגירה ב 90% (5 שניות), 95% (5 שניות), 100% אתנול (2 דקות) , וisopropanol (2 דקות).
    3. ברור עם קסילן (5 דקות, 3 פעמים).
      הערה: צביעת H & E תשתנה עם עובי רקמה ספציפי ותנאים. לכן, תקינה נדרשת לפני שתמשיכי עם דגימות רקמות ניסיוניות.
  9. לכסות רקמה עם רצועה דקה של Permount (~ 100 מיקרומטר) וcoverslip. לחץ כלפי מטה על כל הצדדים של coverslip להבטיח חלוקה נכונה של נוזל. בואו שקופיות יבשות O / N.
  10. Visualize סעיפי רקמות באמצעות תמונות מיקרוסקופ וללכוד דיגיטליות באמצעות התוכנה המצורפת.

Representative Results

ביצענו laminectomy על 12 עכברים (25 - 30 גרם) כפי שתואר לעיל, ואחרי לחיצות חוט השדרה ברמה של 0.25 מ"מ (n = 4), מ"מ 0.35 (n = 4) ו0.55 מ"מ (n = 4). אנחנו הקרבנו בעלי חיים בשלוש (n = 6) ושבע (n = 6) שלאחר ימי פציעה על ידי זלוף intracardiac. חוט השדרה הוסר מעמוד השדרה, והרקמה הוכנה ומעובד כפי שתוארה לעיל. תמונות של חוט השדרה כולו צולמו במיקרוסקופ הדיגיטלי Leica EZ4 ותוכנות נלוות. תמונות של חלקי עמוד השדרה נלקחו בהגדלה 2X באמצעות מיקרוסקופ דיגיטלי אולימפוס וליווי תוכנה.

מצאנו כי דחיסת חוט השדרה מייצרת פציעה עם המוקד באתר של הדחיסה (איור 1). ההשפעות של הפגיעה להאריך כמה מילימטרים בכיוונים מקורי ואת הזנב. חומרת הפציעה גדלה ככל שהמרחק בין מפרידי ירד (0.25 מ"מ> 0.35 מ"מ>0.55 מ"מ, איור 2). שלושה ימים לאחר הדחיסה היו דם במוקד של הפציעה ואזורים סמוכים שלא להציג 7 ימים לאחר פציעה. לחיצות 0.25 מ"מ ו -0.35 מ"מ מיוצרות חלל, אך לא המודל 0.55 מ"מ. לאחר 7 ימים, הגב וחומר לבן הגחון ירד במידה רבה בגודל במוקד, ארגון חומר האפור היה מעוות מאוד, וcavitation היה עקשן. שינויי cytoarchitectonical אלו מתורגמים למנוע ושינויים חושיים בהתנהגות בעלי החיים הוערך באמצעות בדיקות מתאימות כגון באסו עכבר Scale לפונקציה של תנועה ושיער וכלוריד אתיל בדיקות פון פריי לתפקוד חושי כפי שהראינו בפרסומים קודמים 8.

איור 1
איור 1. נציג תמונות של חוט השדרה שלם לפני וafפציעת ter. חוט השדרה לאחר דחיסת 0.35 מ"מ חוט שדרה שלם (). (ב). חצים מצביעים על גבול של פגיעה. כוכבית indentifies מוקד של פציעה. D = הגבי, L = רוחב. בר סולם:. 0.50 מ"מ אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 2
איור 2. נציגי תמונות של חוט השדרה עכבר לפני ואחרי פציעת דחיסה ברוחב דחיסה שונה. סעיף sagittal של חוט השדרה שליטה (א). סעיף עטרה במוקד של פציעת 0.35 מ"מ SCI 7 ימים לאחר דחיסה (dpi) (ב). (C, E, G) סעיפי sagittal של חוט שדרה 3 dpi לרוחב של 0.25 , חוט השדרה 0.35 או 0.55 מ"מ. (D, F, H) סעיפי sagittal של H & E מוכתמתסעיף 7 dpi לרוחב של 0.25, 0.35 או 0.55 מ"מ. כוכבית indentifies מוקד של פציעה. כל החלקים מוכתמים עם H & E. D = הגבי, L = רוחב. בר סולם:. 1.25 מ"מ אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

Discussion

הבחירה של מודל SCI חשובה בתכנון ניסויים כדי לקבוע את יעילותם של טיפולים למקרים של בני אדם SCI. ניסויים מסוג זה מחייבים מודל חיה שהוא מאוד לשחזור להגביל השתנות שעלולה לגרום לנתונים חד-משמעיים. הם צריכים גם להיות רלוונטיים קליניים כדי להעריך את מצבו של האדם שהם דוגמנות בצורה מדויקת. לשם כך, בחירת פציעת דחיסה או contusive על חיתוך רוחב היא יותר רלוונטי מבחינה קלינית 3. עם זאת, impactors ומנגנוני ירידה במשקל לפציעות חבלה דורשים השימוש במכונות יקרות ומסובכות. בניגוד לכך, מודל המלקחיים המכויל של SCI מנצל שונה מלקחיים כי הם קלים להרכבה מחומרי מעבדה משותפות, והניתוח דורש צעד נוסף אחד בלבד לאחר laminectomy גב סטנדרטי לחשוף את חוט השדרה. עם זאת, חסרון אחד של שימוש בשיטה זו הוא שהכח הדחיסה מיושם תמיד רוחבי ולא dorsally, כנתפס לרוב במקרים קליניים בבני אדם של 9 SCI, ופציעות דחיסה שנוצרו בשיטה להשפיע במידה מקורי, זנב גדולה יותר של רקמה מאשר דגמי חבלה 1,2. מודל זה הודגם על ידי מחוללי הטכניקה, ואותנו, כדי ליצור SCI שחזור 7,11, והוא גם מתאים לגודל של עכברים. יתר על כן, מודל פגיעה זו מאפשר לבעלי חיים כדי להיות מוערכים לאחר טיפולי ניתוח וטיפוליים באמצעות מספר רב של בדיקות התנהגותיות, כגון באסו העכבר Scale לתנועה ובדיקת שיער פון פריי, כדי לוודא שקבוצה של בעלי חיים חולקות את אותה חומרת פציעה ו7,11-13 גירעונות נוירולוגיות. גם אותם טכניקות ניתן להשתמש כדי להעריך את היעילות של טיפולים שניתנים לבעלי חיים במהלך לימודי חקירה, עמידה בקריטריונים הכלליים למודלים של בעלי חיים המשמשים להערכת טיפולים לSCI 2,7.

השיטה של ​​ייצור המלקחיים מכויליםים למודל פציעה הוא פשוט ויכול להיות מושלם עם מגוון רחב של שיטות שונות. אנחנו השתמשנו בשיטת spacer 11, כפי שפורסמה על ידי 7 Plemel, וגם שינינו מלקחיים באמצעות בורג קטן, אשר לא רק מספק שיטה קלה יותר ליצירת מכשיר הדחיסה, אלא גם מאפשר לרבגוניות בהתאמת רוחב הדחיסה הסופית, של תועלת למחקרים השוואתיים. מגוון רחב של אפשרויות ביצירת המלקחיים הוא כמעט בלתי מוגבל, כל עוד spacer (ים) לספק אמצעי יציב של תמיד סגירת המלקחיים לאותו המרחק והוא יכול לעמוד מעוקר ועיקור. השיטות הניתוחיות המתוארות בסרטון הזה הן מאוד לשחזור פני משתמשים, עם זאת יש צורך לנקוט בזהירות בעת ביצוע laminectomy ותפירה של בעלי החיים לאחר ההליך שבוצע כך שחוט השדרה אינו סובל כל כוחות דחיסה נוספים שעשויים להגדיל את חומרת הפציעה ולבלבל את הניסויים עתידיים. עם אימון ותרגול נכונים, מודל המלקחיים המכויל של פגיעת דחיסה הוא גם מתאים לביצוע SCI בעכברים המחקים מקרים קליניים שנצפו בבני האדם 2,3,7. בשל הקלות של יצירת מלקחיים, ייצור עכברים בדרגות שונות של חומרת פציעה ניתן לעשות זאת בקלות. זה יהיה יתרון גדול להתבוננות השפעות גנטיות על SCI בדרגות שונות של חומרה בעכברים מהונדסים וכן הערכת היעילות של השתלות תאי גזע בעכברים. רוב המחקרים בספרות בוצעו על חולדות בשל גודלם, אשר בדרך כלל עושה ניתוחים קלים יותר לביצוע. עם זאת השיטה שפורסמה על ידי Plemel et al. 7 ותוארה על ידי בסרט הזה צריכה לאפשר SCI להתבצע על עכברים בקלות ושחזור גדולים.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Isoflurane machine Smiths Medical PM, Inc VCT302
Isoflurane Phoenix Pharmaceutical NDC: 66794-013-25
Dissecting Scope Seiler Precision Microscopes SSI 202/402
Germinator-500 (tool sterilizer) Thomas Scientific 3885A20
Puralube (eye ointment) Dechra NDC 17033-211-38
Scalpel handle (#3) Fine Science Tools 10003-12
Scalpel blade (#11) Fisher Scientific  08-914B
Retractor (Colibri) Fine Science Tools 17000-03
Friedman Pearson roungeur Fine Science Tools 16021-14
Vanna (Castroviejo) scissors Roboz RS-5658
Tissue forceps Fine Science Tools 11029-14
Laminectomy forceps (Dumont #2) Fine Science Tools 11223-20
Dumont #5 forceps Fine Science Tools 11252-20
Stapler Fine Science Tools 12031-07
Staples (wound clips) Reflex7 203-1000
Sutures Henry Schein 101-2636
Needles (30 G x ½) BD Biomedical 305106
Syringe (1 ml) BD Biomedical 309659
Baytril (enrofloxacin) Bayer NADA 140-913
Buprenex (buprenorphine) Cardinal Health NDC 12496-0757-1

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. McDonough, A., Martinez-Cerdeno, V. Endogenous proliferation after SCI in animal models. Stem Cells Int. 2012, 387513 (2012).
  2. Onifer, S. M., Rabchevsky, A. G., Scheff, S. W. Rat models of traumatic SCI to assess motor recovery. ILAR J. 48, (4), 385-395 (2007).
  3. Bunge, R. P., Puckett, W. R., Becerra, J. L., Marcillo, A., Quencer, R. M. Observations on the pathology of human SCI. A review and classification of 22 new cases with details from a case of chronic cord compression with extensive focal demyelination. Adv Neurol. 59, 75-89 (1993).
  4. Beattie, M. S., et al. Endogenous repair after spinal cord contusion injuries in the rat. Exp Neurol. 148, (2), 453-463 (1997).
  5. Basso, D. M., Beattie, M. S., Bresnahan, J. C. Graded histological and locomotor outcomes after spinal cord contusion using the NYU weight-drop device versus transection. Experimental Neurology. 139, (2), 244-256 (1996).
  6. Krishna, V., et al. A contusion model of severe SCI in rats. J Vis Exp. 78, (2013).
  7. Plemel, J. R., et al. A graded forceps crush SCI model in mice. J Neurotrauma. 25, (4), 350-370 (2008).
  8. Wu, D., Shibuya, S., Miyamoto, O., Itano, T., Yamamoto, T. Increase of NG2-positive cells associated with radial glia following traumatic SCI in adult rats. J Neurocytol. 34, (6), 459-469 (2005).
  9. Namiki, J., Tator, C. H. Cell proliferation and nestin expression in the ependyma of the adult rat spinal cord after injury. Journal of Neuropathology and Experimental Neurology. 58, (5), 489-498 (1999).
  10. Teletin, M., et al. Histopathology in Mouse Metabolic Investigations. Current Protocols in Molecular Biology. 29, (2007).
  11. McDonough, A., Hoang, A. N., Monterrubio, A. M., Greenhalgh, S., Martinez-Cerdeno, V. Compression injury in the mouse spinal cord elicits a specific proliferative response and distinct cell fate acquisition along rostro-caudal and dorso-ventral axes. Neuroscience. 254, 1-17 (2013).
  12. Basso, D. M., et al. Basso Mouse Scale for locomotion detects differences in recovery after SCI in five common mouse strains. J Neurotrauma. 23, (5), 635-659 (2006).
  13. Chaplan, S. R., Bach, F. W., Pogrel, J. W., Chung, J. M., Yaksh, T. L. Quantitative assessment of tactile allodynia in the rat paw. J Neurosci Methods. 53, (1), 55-63 (1994).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.

    Usage Statistics