Dendrimeer gebaseerde ongelijke Nanopatterns naar lokaal controle oppervlak hechting: een methode om directe Chondrogenic differentiatie

Bioengineering

Your institution must subscribe to JoVE's Bioengineering section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!





We use/store this info to ensure you have proper access and that your account is secure. We may use this info to send you notifications about your account, your institutional access, and/or other related products. To learn more about our GDPR policies click here.

If you want more info regarding data storage, please contact gdpr@jove.com.

 

Summary

Een werkwijze te halen Dendrimeer gebaseerde ongelijke nanopatterns waarmee de nanoschaal controle van lokale arginine-glycine-aspartic acid (RGD) oppervlakte dichtheid is beschreven en toegepast op de studie van celdifferentiatie hechting en chondrogenic.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Casanellas, I., Lagunas, A., Tsintzou, I., Vida, Y., Collado, D., Pérez-Inestrosa, E., Rodríguez-Pereira, C., Magalhaes, J., Gorostiza, P., Andrades, J. A., Becerra, J., Samitier, J. Dendrimer-based Uneven Nanopatterns to Locally Control Surface Adhesiveness: A Method to Direct Chondrogenic Differentiation. J. Vis. Exp. (131), e56347, doi:10.3791/56347 (2018).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Cellulaire aanhechting en differentiatie is geconditioneerd door de nanoschaal dispositie van de componenten van de extracellulaire matrix (ECM), met lokale concentraties hebben een grote invloed. Hier presenteren we een methode voor het verkrijgen van grootschalige ongelijke nanopatterns van arginine-glycine-asparaginezuur (RGD)-matiemaatschappij dendrimeren waarmee de nanoschaal controle van lokale RGD oppervlakte dichtheid. Nanopatterns worden gevormd door de oppervlakte adsorptie van dendrimeren van oplossingen op verschillende eerste concentraties en worden gekenmerkt door water contacthoek (CA), X-ray photoelectron spectroscopy (XPS), en scanning probe microscopie technieken zoals Scanning tunneling microscopie (STM) en atomic force microscopie (AFM). De lokale oppervlakte dichtheid van RGD wordt gemeten met behulp van AFM beelden door middel van waarschijnlijkheid contourkaarten van interparticle minimumafstanden en vervolgens gecorreleerd met cel adhesie respons en differentiatie. De methode van de nanopatronen die hier gepresenteerd is een eenvoudige procedure die op een eenvoudige manier om grote oppervlakten kan worden opgeschaald. Het is dus volledig compatibel met de protocollen van de cultuur van de cel en kan worden toegepast op andere liganden die concentratie-afhankelijke effecten op cellen uitoefenen.

Introduction

Hier beschrijven we een eenvoudig en veelzijdig Dendrimeer gebaseerde nanopatronen procedure voor het verkrijgen van cel cultuur oppervlakken waarmee de controle van lokale hechting op nanoschaal. Nanoschaal details voor ECM organisatie zijn gemeld,3 2,1,en de nanopatronen van cel adhesie oppervlakken heeft diepe inzichten in de cellulaire vereisten met betrekking tot hechting4, 5. Experimenten met behulp van micellaire lithografie gebaseerde nanopatterns bleek een drempelwaarde van ongeveer 70 nm voor RGD peptide nanospacing, cel adhesie aanzienlijk wordt vertraagd boven deze waarde6,7,8 ,9. Deze studies ook gewezen op de grotere invloed van lokale dan globale ligand dichtheid op cel adhesie9,10,11.

Tijdens de morfogenese trigger cel interactie met de omgeving de eerste differentiatie gebeurtenissen, die blijven tot uiteindelijke complex weefsel structuren hebben gevormd. In dit kader zijn nanopatterned oppervlakken gebruikt om aan te pakken van de invloed van de eerste celoppervlak interacties op de voedselproductie. Lithografie gebaseerde RGD nanopatterns met een zijdelingse afstand van 68 nm in β-type Ti-40Nb legeringen bijdragen tot het handhaven van de ongedifferentieerde fenotype van cellen van de stam van de niet-begaan12, terwijl RGD nanospacings van tussen 95 en 150 nm de differentiatie van verbeteren mesenchymale stamcellen (MSCs) richting adipogenic/osteogenic13,14,15 en chondrogenic lot16. Ook is zelfassemblerende macromoleculen bewerkt met signalering componenten gebleken direct cel adhesie en differentiatie doordat nanoschaal architecturale regulering van de signalering signalen17. In dit verband is de afzetting van dendrimeren met cel-interactie wordt in hun buitenste bol18,19,20 op oppervlakken gebruikt voor het bestuderen van de cel adhesie21,22, morfologie23,24, en25,26van de gebeurtenissen van de migratie. Echter maakt het gebrek aan oppervlakte karakterisering in deze studies het moeilijk om vast te stellen van de geen correlatie tussen Dendrimeer oppervlak configuratie en cel-respons.

Dendrimeer nanopatterns met vloeistof-achtige orde en gedefinieerde afstand kan worden verkregen wanneer dendrimeren aan lage geladen oppervlakken van oplossingen met lage Ionische sterkte adsorberen. 27 op basis van deze eigenschap, hier presenteren we een methode voor het verkrijgen van grootschalige ongelijke nanopatterns van RGD-matiemaatschappij dendrimeren op lage geladen oppervlakken die de nanoschaal bedienen van lokale RGD oppervlakte dichtheid toestaan. Water contacthoek (CA), X-ray photoelectron spectroscopy (XPS) en scanning probe microscopie technieken (STM en AFM nanopatterns) Toon dat lokale ligand dichtheden wijzigen de eerste Dendrimeer-concentratie in de oplossing kunnen worden aangepast. De lokale RGD oppervlakte dichtheid is gekwantificeerd van AFM beelden door contourkaarten van de waarschijnlijkheid van interparticle minimumafstanden en vervolgens gecorreleerd met cel experimenten. Vergeleken met andere nanopatronen technieken4, Dendrimeer-gebaseerd nanopatronen is eenvoudig en kan gemakkelijk worden opgeschaald naar grote oppervlaktes, is volledig compatibel met cel cultuur toepassingen. Nanopatterns worden gebruikt als bioactieve substraten te evalueren van het effect van de lokale RGD oppervlakte dichtheid op cel adhesie28 en op de chondrogenic-inductie van volwassen menselijke MSCs29. Onze resultaten tonen aan dat RGD Dendrimeer gebaseerde nanopatterns celgroei ondersteunen en dat cel adhesie wordt versterkt door de hoge lokale RGD oppervlakte dichtheden. In de experimenten van de differentiatie begunstigd tussenliggende hechting van de cellen op de verschillende ondergronden MSC condensatie en vroege chondrogenic differentiatie. Vanwege het gemak met welke Dendrimeer perifere groepen kunnen worden gewijzigd, kan de hier beschreven methode worden uitgebreid tot andere ECM-liganden die concentratie-afhankelijke effecten op cellen uitoefenen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. substraat voorbereiding

  1. Gloeien 1.4 x 1.1 cm Au(111) op Mica substraten.
    1. Plaats het Au(111) substraat op een glas-keramiek kookplaat en het gloeien met een butaan vlam voor 3 min. toestaan het substraat afkoelen onder een atmosfeer van argon. Herhaal deze stap voor elke Au(111) substraat.
      Opmerking: Er is Au(111) substraten dient onmiddellijk na gloeien.
  2. Voorbereiding van Poly (L-Lactic Acid) (PLLA)-gecoate glazen substraten.
    1. Knippen en wassen van de dia's van glas.
      1. Microscopie dia's in 18 slides van 1.25 x 1,25 cm met een diamant-tip cutter te snijden. Maak een kleine inspringing op de onderkant van elke dia, zodat de bovenste en onderste zijkanten kunnen later worden onderscheiden.
      2. De dia's grondig wassen met gedeïoniseerd water gevolgd door 96% ethanol. Laten drogen.
    2. Bereid de oplossing van de PLLA 2%.
      1. Meng 200 mg PLLA 10 mL 1,4-dioxaan in een druk buis. Voegen van een roer-bar en de buis strak te sluiten.
      2. Plaats de buis van de druk in een bad van glycerine op een hete plaat bij 60 ° C onder zachte roeren gedurende 24 uur en vervolgens Breng de oplossing over in een flesje van 15 mL glas.
    3. Coating van het glas dia's met de PLLA-oplossing.
      1. Plaats het glas dia's en het flesje met de PLLA-oplossing op een schone warmhoudplaat bij 60 ° C. Zorg ervoor om de dia's naar boven gericht en hen toestaan om te blijven voor ten minste 10 min. te bereiken van de vereiste temperatuur.
      2. Voorbereiding van de spin-coater en stel het programma dat is opgegeven in tabel 1.
      3. Plaats een van de dia's gezicht-omhoog op de spin-coater, met behulp van een vacuümsysteem. Met een pipet van Pasteur, 0,25 mL van de oplossing van de PLLA van toepassing op de dia, ervoor te zorgen dat het gehele oppervlak bedekt is. Voer het programma coating. Herhaal deze stap voor elke dia.

2. Dendrimeer nanopatronen

  1. Voorbereiding van RGD-matiemaatschappij Dendrimeer (RGD-Cys-D1) 28 oplossingen.
    1. Los 5 mg van de Dendrimeer in 6.494 mL gedeïoniseerd water. Dit is oplossing A.
      Opmerking: Gebruik Dendrimeer stockoplossing binnen 6 maanden van voorbereiding.
    2. Bewerk ultrasone trillingen ten oplossing A voor 10 min en bereiden van de oplossingen B en C aanleiding van tabel 2.
    3. Bewerk ultrasone trillingen ten oplossing C gedurende 10 minuten en bereiden van oplossingen, D, E en F aanleiding van tabel 2.
    4. De oplossingen B, C, D, E en F bij 4 ° C bewaren tot gebruik. Oplossing A kan worden achtergelaten bij-20 ° C voor later gebruik.
  2. Nanopatronen van RGD-Cys-D1 dendrimeren op de ondergronden
    1. Steriliseren in de kap van een weefselkweek, de substraten door te bestralen hen met UV-licht voor 13 min.
      Opmerking: Deze stap is alleen nodig wanneer nanopatterned substraten gaat worden gebruikt als cel cultuur substraten. In dit geval het handhaven van de steriele omstandigheden (weefselkweek kap, steriele materialen, oplossingen en technieken) voor de volgende stappen uit.
    2. Plaats elk substraat gezicht-omhoog in de putten van een plaat, afhandeling daarvan voorzichtig met een pincet.
    3. Bewerk ultrasone trillingen ten oplossingenvoor B, C, D, E en F 10 min.
    4. De RGD-Cys-D1 Dendrimeer oplossingen passeren een 0.22-µm diameter filter met behulp van een injectiespuit rechtstreeks in de putjes met de substraten (2 mL/putje). Ten minste drie replica's per Dendrimeer concentratie worden aanbevolen. Sluit en verzegel de plaat en laat het op kamertemperatuur (RT) voor 16 h.
    5. Verwijderen en verwijderen van de oplossingen. Wassen van de substraten met steriel gedeïoniseerd water en droog. Winkel substraten bij 4 ° C.
      Opmerking: Het protocol kan hier worden gepauzeerd.

3. voorbereiding van de controle substraten

Opmerking: Alle stappen zijn uitgevoerd in een steriele weefselkweek kap, en enkel steriele materialen, oplossingen en technieken werden gebruikt. In ieder geval bepalen zes substraten waren gebruikt (drie replica's van de positieve controle) en drie replica's van de negatieve controle.

  1. Steriliseren in de kap van een weefselkweek, de substraten door te bestralen hen met UV-licht voor 13 min.
  2. Controle substraten voor Fibroblast hechting Experiment.
    1. Het gebruik van vlam-gegloeid Au(111) substraten als de negatieve controle. Gold heeft een bekende eiwit-denaturatie effect dat anti-zelfklevende Celeigenschappen28verleent. Bewerk ultrasone trillingen ten alle oplossingen en filteren voordat substraat incubatie.
    2. Voor de positieve controles, onderdompelen vlam-gegloeid Au(111) substraten in een oplossing van PEG RGD gemodificeerde thiol, Ac-Gly-Arg-Gly-Asp-Ser-Asp-NH-ethylene glycol mono-11-mercaptoundecanamide (RGD-PEG-SH)30 en triëthyleenglycol glycol (en) mono-11-mercaptoundecyl ether (PEG-SH) bij een 1:100 molaire verhouding in 96% ethanol voor 16u op RT.
    3. Grondig wassen van substraten in ethanol en droog ze met argon. Winkel substraten bij 4 ° C.
  3. Controle substraten voor Chondrogenesis.
    1. Ongerepte PLLA substraten gebruiken als de negatieve controle. Zonder enige oppervlaktebehandeling toont PLLA slechte interfacing met levende cellen. 31
    2. Voor de positieve controles, 5 mL 0,1 mg/mL fibronectine in-fosfaatgebufferde zoutoplossing (PBS) voor te bereiden en uit te broeden elk substraat PLLA met 1.6 mL van de oplossing van de fibronectine voor 1 h op RT.
    3. Verwijderen en verwijderen de fibronectine oplossing, en wassen van de substraten met PBS. Winkel substraten bij 4 ° C.

4. oppervlakte karakterisering

  1. AFM Imaging
    1. AFM beeldvorming van PLLA substraten voor een ruwheid analyse uitvoeren Aangezien dendrimeren een diameter van 4-5 nm, ruwheid waarden van 1 hebben nm voor de juiste visualisatie van de nanopatterns moet worden verkregen. Ook voeren AFM beeldvorming van de nanopatterns. In beide gevallen voeren AFM in modus in de lucht te onttrekken.
    2. Selecteer een cantilever silicium met een veer constante k = 40 N/m en een resonante frequentie ν = 300 kHz en monteer het op de AFM-apparatuur.
    3. Monteer het monster op het podium van de atomaire kracht Microscoop. Afhankelijk van de opzet van het apparaat, kunnen tuning en imaging specificaties verschillen. Raadpleeg de handleiding van de fabrikant.
    4. Aanpak van het monster met het topje van de Microscoop tot contact.
    5. Selecteer naar image PLLA ruwheid p.a., ten minste vier representatieve gebieden van 20 x 20 µm per substraat uit drie onafhankelijke ondergronden. Dendrimeer nanopatterns van het beeld, kiest u ten minste drie representatieve beelden van 5 × 5 µm per substraat uit drie onafhankelijke ondergronden per voorwaarde (eerste Dendrimeer concentratie in oplossing). Aanpassen om te voorkomen beschadiging van de Dendrimeer laag terwijl beeldvorming, de instelpunt de kracht om op te houden een minimum.
      Opmerking: De keuze van het imaginggebied hangt ook het werkbereik van de piëzo-elektrische scanner. Raadpleeg de handleiding van het instrument in dit verband.
    6. Proces de AFM hoogte beelden door het aanbrengen van elk scan lijn naar polynoom herverdeling van functies met behulp van de propriëtaire software van de fabrikant van het apparaat van de AFM en analyseren die van PLLA voor het berekenen van de oppervlakte ruwheid. Root-mean-square (RMS) analyse kan een geschikte optie bieden.
  2. Lokale RGD oppervlakte dichtheid meting.
    1. De afbeelding drempels voor de verwerkte AFM hoogte beelden te selecteren van de dendrimeren op het oppervlak te verkrijgen.
    2. Bepalen van de standpunten van de deeltjes met behulp van een beeld processing software en ze gebruiken om het verkrijgen van de minimumafstanden interparticle (dmin).
    3. Plot dmin waarden in z aan de overeenkomende posities van het deeltje te verkrijgen van de waarschijnlijkheid contourkaarten voor dmin. Pas de kleurenschaal van de plot te visualiseren van de regio's van de hoogste lokale RGD oppervlakte dichtheid (dmin < 70 nm).
    4. Het kwantificeren van het gebied van de regio's met de hoogste lokale RGD oppervlakte dichtheid met behulp van een beeld processing software. Het gebied van Dendrimeer aggregaten opnemen in de berekening.
  3. STM beeldvorming.
    Opmerking: STM beeldvorming kan worden uitgevoerd alleen voor nanopatterns op de geleidende Au(111) substraten. Metingen zijn gedaan in de lucht.
    1. Plaats het substraat van de nanopatterned, in de monsterhouder van de STM-apparatuur. Controleer de elektrische verbinding tussen monster en houder met een tester.
    2. Etch een tip van de geselecteerde sonde materiaal (dwz. PT 0,8: Ir 0.2) met een diameter die zorgt voor een goede montage op het hoofd van de STM-apparatuur. Etsen kan worden uitgevoerd door handmatige snijden of elektrochemische etsen. 32
      Opmerking: Elektrochemisch etsen maakt meer symmetrische tips.
    3. Tip voor het in het hoofd van de STM-apparatuur monteren en aansluiten van het monster.
    4. "Huidige" in het feedback-kanaal instellen (in dit soort meting, huidige zullen constant door feedback tuning). Pas de bias spanning en huidige instelpunt en scan grootte een goed opgelost om beeld te krijgen zodra de tip is bezig.
      Opmerking: De keuze van het imaginggebied hangt ook het werkbereik van de piëzo-elektrische scanner. Raadpleeg de handleiding van het instrument in dit verband.
    5. Proces de STM topografische beelden door het aanbrengen van elke scanlijn te herverdelen van polynomiale functies met behulp van de propriëtaire software van de fabrikant van het apparaat van de STM.
  4. CA metingen.
    1. Maat CA op de nanopatterned substraten door de sessiele neerzetten op drie verschillende posities op drie onafhankelijke substraten per voorwaarde (eerste Dendrimeer concentratie in oplossing) met een optisch systeem van CA.
    2. Vul de microsyringe met gedeïoniseerd water en stel de parameters in de CA-software voor de productie van 1 µL druppels.
    3. Het monster in het werkgebied plaatst, zodat het oppervlak van het monster duidelijk zichtbaar op de computer voor imaging is.
    4. Verplaats de spuit met de micromanipulator totdat het wordt dicht onder de oppervlakte en afzien van de daling op het oppervlak. Record het beeld onmiddellijk na stabilisatie van de druppel.
      Opmerking: In CA metingen, het is zeer belangrijk om te controleren van vochtigheid om reproduceerbare resultaten te bereiken.
    5. Analyseer de CAs gemeten met de merkgebonden software van de fabrikant van het apparaat CA. De montage methode kan worden aangepast aan de behoeften van de gebruikers. De elliptische montage methode kan een optie zijn.

5. de celkweek

Opmerking: Alle stappen zijn uitgevoerd in een weefselkweek kap, en enkel steriele materialen, oplossingen en technieken werden gebruikt.

  1. Fibroblast hechting Experiment.
    1. Cultuur NIH 3T3 muis embryonale fibroblasten van vroege passages (< 10) bij 37 ° C en 4,6% CO2 sfeer in basale medium met hoge glucose aangevuld met 10% foetale runderserum (FBS), 1% L-glutamine, 1% penicilline-streptomycine en 1% natrium pyruvaat (groeimedium). T75 kolven voor een totale zaaien van 500.000 cellen per maatkolf 10 ml van groeimedium worden aanbevolen.
    2. Verwijder oude medium met een 10 mL pipet om de 2 dagen en vervang met 10 mL vers bereide groeimedium.
    3. De cellen van de cultuur in het groeimedium totdat ze rond de 80% samenvloeiing, dan Verwijder het medium bereikt en voeg 5 mL trypsine per kolf. Om ervoor te zorgen de juiste cel detachement vanaf de onderkant van de kolf, handhaven de trypsine oplossing in contact met de cellen gedurende 5 minuten bij 37 ° C.
    4. Voeg 5 mL groeimedium per kolf en het verzamelen van de cellen in een centrifugebuis. Centrifugeer de cellen bij 470 x g gedurende 5 min. Verwijder het supernatant en resuspendeer de pellet cel in 10 mL groeimedium. Bepaal de concentratie van cellen met behulp van een hemocytometer.
    5. Overdracht van de substraten goed platen niet behandeld voor weefselkweek (niet-aanhanger).
    6. De cellen op de ondergronden bij een dichtheid van 4.000 cellen/cm2 in groeimedium zaad en hen gedurende 4,5 uur bij 37 ° C en 10% CO2 sfeer uit te broeden.
  2. Chondrogenic-inductie van MSCs.
    1. Cultuur van menselijke MSCs van vroege passages (< 5) bij 37 ° C en 4,6% CO2 -sfeer in MSC groeimedium. T75 kolven voor een totale zaaien van 500.000 cellen per maatkolf 10 ml van groeimedium worden aanbevolen.
    2. Medium elke 3 dagen wijzigen (zoals beschreven in 5.1.2).
    3. Trypsinize cellen voordat de samenvloeiing van de 80% is bereikt, en centrifugeren en resuspendeer hen in MSC groeimedium (zoals beschreven in 5.1.3). Bepaal de concentratie van cellen met behulp van een hemocytometer.
    4. Centrifugeer de cellen opnieuw en resuspendeer hen in 10 mL chondrogenesis-inducerende voedingsbodem.
    5. De substraten uit de platen naar nieuwe goed platen niet behandeld voor weefselkweek (niet-aanhanger) overbrengen. De cellen op de ondergronden bij een dichtheid van 3.000 cellen/cm2zaad.
    6. Het chondrogenic medium elke 3 dagen wijzigen (zoals beschreven in 5.1.2).

6. cel fixatie en immunokleuring

Opmerking: De volgende stappen kunnen worden uitgevoerd in niet-steriele omstandigheden.

  1. Verwijder het medium en wassen van de cellen zachtjes met PBS. Corrigeren door toevoeging van een 10% formaline-oplossing voor 20 min aan RT.
  2. Verwijder de formaline en wassen van de cellen met PBS.
  3. Blokkeren de gratis aldehyde-groepen door het toevoegen van een 50 mM-oplossing van ammoniumchloride (NH4Cl) in PBS. Laat de cellen gedurende 20 minuten op RT. verwijderen NH4Cl oplossing en wassen van de cellen met PBS.
    Opmerking: Het protocol kan hier worden gepauzeerd. Monsters in PBS bewaren bij 4 ° C.
  4. Verwijderen van PBS en permeabilize van de cellen door toevoeging van een 0,1% oplossing van saponine in de blokkerende oplossing (1% albumine in PBS) gedurende 10 minuten aan RT. Wash de cellen met PBS en monsters overbrengen in een nieuwe goed plaat.
  5. Incubeer de cellen met een oplossing van primaire antilichamen in de blokkerende oplossing (tabel 3) gedurende 1 uur op RT. Vervolgens de primair antilichaam-oplossing verwijderen en wassen van de cellen met PBS.
  6. Incubeer de cellen met secundaire antilichamen in de blokkerende oplossing (tabel 3) gedurende 1 uur op RT.
    Opmerking: Voorkomen licht blootstelling.
  7. Verwijder de secundair antilichaam-oplossing en wassen van de cellen met PBS en droog.
    Opmerking: Het protocol kan hier worden gepauzeerd. De monsters in PBS opslaan bij 4 ° C in het donker.
  8. Monster montage voor Microscoop observatie: met behulp van een cutter diamant-tip, coverslips gesneden 1,25 cm x 1,25 cm. toepassing 50 µL van microscopie montage van drager op de monsters en bestrijk ze zachtjes met de gesneden coverslips.
  9. Overdracht van de monsters naar een geschikte ontvanger, bedekken met aluminiumfolie en winkel in het donker bij 4 ° C tot observatie.

7. cel Imaging en Data-analyse

Opmerking: Voor ondoorzichtige Au(111) en dikke microslide gebaseerde substraten, een rechtop Microscoop moet worden gebruikt.

  1. Fibroblast hechting Experiment.
    1. Gebruik een epifluorescence Microscoop voorzien van een digitale camera en lage (d.w.z. 10 X) en hoog (dat wil zeggen 40 X) vergroting doelstellingen. Voer metingen in de lucht.
    2. Leg het monster op de celkernen fase en beeld met de 10 X doelstelling met behulp van een ultraviolet excitatie, longpass emissie filter te visualiseren de Hoechst/DAPI vlek.
    3. Afbeelding cel cytoskelet en focale verklevingen (FAs) met 40 X doel selecteren de Microscoop filter die overeenkomt met de overeenkomstige antilichaam fluorescerende specificaties.
    4. Voor FA kwantificering, gebruikt u een beeld processing software voor bekeerling spiegelbeeld voor 8-bits bestanden. Het verwijderen van de beelden van de achtergrond en converteren naar een binair getal door de instelling van een drempel. Berekenen van ten minste 30 beelden per monster en FAs 1 µm2 voor berekening rekening worden gehouden.
  2. Chondrogenic-inductie van MSCs.
    1. Afbeelding van cel condensaten in de eerste stadia van chondrogenic inductie (< 5 dagen) met een rechte epifluorescence Microscoop voorzien van een digitale camera en een lage (d.w.z. 10 X) vergroting doelstelling. Ultraviolet excitatie en longpass emissie filter gebruiken om te visualiseren de Hoechst/DAPI vlek.
    2. Voor het meten van het condensaat gebied, gebruik van een beeldverwerking software, afbeeldingen omzetten in 8-bits bestanden, verwijderen van de achtergrond en selecteer een drempel die wijst op de statistische contour. Bereken de oppervlakte van de deeltjes.
    3. Afbeelding immunostained monsters voor FAs, cytoskelet actine, vezels en kraakbeen-specifieke collageen type II alpha 1 (COL2A1) met een rechtop confocal microscoop bij hoge vergroting (dat wil zeggen 40-60 X). Secties met een representatieve interval (dat wil zeggen 0,5 – 1 µm) verzamelen.
    4. Gebruiken voor het verwerken van de stack, een beeld processing software. Afbeeldingen omzetten in 8-bits bestanden, verwijderen van de achtergrond en binaire maken door het instellen van een drempel. Behandelen van een minimum van drie cel condensaten per voorwaarde van drie onafhankelijke monsters.
    5. Kwantificeren van de proteïne van de FA gebieden van de basale zone van cel condensaten gekleurd en express hen als het overeenkomstige percentage van gebied gedeeld door het aantal celkernen in de afbeelding.
    6. Voor het meten van COL2A1 kleuring, gebruik van de confocal z-projecties en kwantificeren van de som van de geprojecteerde oppervlak (COL2A1 maximumareaal per monster). Normaliseren van de waarde van de gebied verkregen tegen het gebied van de bijbehorende condensaat.

8. kwantitatieve Reverse transcriptie-polymerase Chain Reaction (qRT-PCR) analyse

Opmerking: Om te voorkomen dat RNase besmetting, gebruik van wegwerpbare, steriele plastic consumptieaardappelen en wegwerphandschoenen te dragen tijdens het verwerken van reagentia en RNA. Altijd gebruik van de juiste microbiologische aseptische technieken en een passende decontaminatie oplossing werkoppervlakten en niet-beschikbare items zoals centrifuges en pipetten RNase verontreiniging verwijderen.

  1. Totaal RNA isoleren en het verpulveren in een RNA ontregelt. Behandelen van RNA monsters met DNase en hen omzetten in cDNA met behulp van een cDNA synthese kit.
  2. Voeren qRT-PCR gebruikt inleidingen voor de transcriptiefactor SOX9. Bèta-2-microglobulin (B2M) en ribosomal eiwit L13a (RPL13a) kan worden gebruikt als schoonmaak genen.
  3. Berekenen van de niveaus van de expressie en normaliseren hen tegen de negatieve controle (PLLA).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Presenteren we een nanopatronen methode waarmee oppervlakte hechting worden aangepakt op nanoschaal (Figuur 1). De chemische structuur van RGD-Cys-D1 is afgebeeld in figuur 1A. Dendrimeren waren patroon op elektrisch geleidende oppervlakken van de Au(111) voor hoge resolutie STM karakterisering. Lage Dendrimeer concentraties in oplossing (maximaal 10-5% w/w) gerenderd geïsoleerde dendrimeren van 4-5 nm in diameter (figuur 1B), terwijl het zeer vol Dendrimeer aggregaten gevormd bij hogere concentraties (Figuur 1 c). Oppervlakte karakterisering van de AFM (Cijfers 1 D-G, bovenste rij) bleek dat de oppervlakte verdeling van RGD-Cys-D1 dendrimeren kan worden aangepast als functie van de eerste Dendrimeer-concentratie in de oplossing. Op de kaarten van de contour waarschijnlijkheid voor dminresulteert dit in verschillende lokale RGD nanoschaal dichtheden op het oppervlak (Cijfers 1 D-G, onderste rij).

In cel cultuur experimenten, de celmembraan receptor verschijnsel van ongeveer 10 nm diameter herkend de RGD-volgorde op de periferie van de dendrimeren. Hoewel acht exemplaren van deze reeks per Dendrimeer ontvingen, wisselwerking slechts één Dendrimeer per integrine vanwege zijn omvang (4-5 nm gemeten door STM; Figuur 1B). Dat wil zeggen, voorzien elke Dendrimeer een telpost integrine bindend, waardoor waardoor een directe correlatie van Dendrimeer distributie (zoals gezien in de beelden van de AFM) en de RGD distributie beschikbaar voor cel adhesie. Bovendien bleken geen aanzienlijke variaties in de CA-waarden voor de verschillende nanopattern-configuraties die invloed op cel adhesie29 hebben kunnenverkregen. Deze kenmerken maken Dendrimeer nanopatterns op de geschikte substraten biocompatibel oppervlakken waarlangs moduleren en cel gedrag bestuderen.

Cel adhesie te nanopatterned Au(111) werd getest met fibroblasten binnen de eerste 24 uur van cultuur (figuur 2A) en met MSCs op nanopatterned PLLA (figuur 2B). In beide gevallen, het percentage van ruimte gekleurd voor de FA eiwit paxillin (pax) geleidelijk verhoogd met Dendrimeer concentratie, evenals lokale RGD oppervlakte dichtheid (het percentage van de nanopatterned met dmin onder de drempel van 70-nm voor efficiënte cel adhesie; Tabel 4). Voor een eerste Dendrimeer concentratie van 10-2% w/w en positieve controles, het percentage van ruimte gekleurd voor pax per cel daalde en de correlatie met het percentage van de nanopatterned met dmin < 70 nm was verloren.

Het percentage van oppervlakte bezet door dmin < 70 nm (Figuur 1 d-G onderste regel en tabel 4) is een goede indicatie van lokale RGD oppervlakte dichtheid voor nanopatterns tot 10-5% w/w eerste Dendrimeer concentratie, maar niet die tot 10-2% w/w, te wijten aan Dendrimeer aggregatie. Aggregatie geproduceerd zeer heterogene monsters in termen van de distributie van de ligand, met slechts een klein percentage van het oppervlak met dmin waarden onder de drempel van 70-nm (Figuur 1 d onderste regel en tabel 4). XPS resultaten toonden aan dat deze oppervlakken een globale RGD dichtheid vergelijkbaar met 10-5% w/w presenteren-afgeleid van de nanopatterns28. Deze constatering geeft aan dat de maximale dichtheid van de RGD werd bereikt in de regio's met Dendrimeer aggregaten en dat het percentage van oppervlakte door dmin bezet < 70 nm is niet representatief zijn voor de lokale RGD oppervlakte dichtheid in dit geval.

De observatie dat positieve controles (homogene coatings) met maximale lokale RGD oppervlakte dichtheid deed niet blijkt dat de verwachte toename in cel adhesie kan worden toegeschreven aan een sterische hinder effect. Deze resultaten wijzen erop dat, in vergelijking met de overeenkomstige homogene oppervlakken gebruikte in celkweek, RGD nanopatterns ondersteunen cel adhesie efficiënter. Deze bevinding wijst dus op de relevantie van lokale ligand dichtheid.

Interactie met de omgeving in genuitdrukking leiden tot de eerste cel differentiatie gebeurtenissen en deze kan doorgeven tot de opstelling van de definitieve complex weefsel structuren. Om te beoordelen van de effecten van Dendrimeer nanopatterns op cel adhesie en differentiatie, we gebruikten de chondrogenic inductie van MSCs als een model. Tijdens chondrogenesis is er actieve matrix Remodellerend, die een leerzame rol speelt in de leiding van cellen door de verschillende stadia van de vorming van kraakbeen.

MSCs onderging chondrogenesis op het nanopatterns (Figuur 3). Chondrogenic differentiatie begint met een cel condensatie stap, waarbij cel aanwerving vormen dichte condensaten, de oprichting van cel naar cel communicatie en daarmee gepaard gaande wijzigingen in cel morfologie33. Figuur 3A toont aan dat cel condensatie in alle substraten en dat condensaten opgetreden verhoogd in gebied met toenemende concentraties van Dendrimeer tot 2.5 x 10-8% w/w -het condensaat gebied daalde dan weer voor een Dendrimeer concentratie van 10-2% w/w en voor de positieve controle. De cel condensatie stap in de chondrogenesis vindt plaats via beweging van de actieve cel in plaats van door een toename van de cel proliferatie34. Deze cel beweging is begunstigd door flexibele hechting met de ondergrond: stabiele verklevingen moeten worden gevormd om tractie krachten te verplaatsen van de cel lichaam toe te staan, en op hetzelfde moment, moet deze verklevingen zwak genoeg om cel vrijlating uit het substraat tijdens verkeer. Cel condensatie is begunstigd door een verhoging in lokale RGD oppervlakte dichtheid tot 2.5x10-8% w/w-afgeleid van nanopatterns, met een goede balans tussen cel adhesie en cel verkeer. Voor 10-2 en de positieve controle was de lokale RDG oppervlakte dichtheid te hoog, waardoor afbreuk te doen aan de condensatie-gebeurtenis.

Chondrogenic differentiatie opbrengst van prechondrogenic condenswater: cellen in condensaten meer worden afgerond en begin van de synthese van kraakbeen specifieke markers, zoals de ECM proteïne COL2A1 en de transcriptie factor SOX933, 34 , 35. derhalve substraten met een tussenliggende hechting, ten gunste van de vorming van cel condensaten, bleek hoger COL2A1 kleuring (figuur 3B) en hogere niveaus van SOX9 mRNA uitdrukking (Figuur 3 c).

Onze resultaten wijzen de invloed van cel matrix interacties tijdens de vroege stadia van chondrogenic differentiatie. Dergelijke interacties kunnen gemakkelijk worden aangepakt door middel van Dendrimeer-gebaseerd nanopatterns.

Stap Tijd (s) Snelheid (rpm) Versnelling (rpm/s)
1 5 500 300
2 30 3.000 1.500

Tabel 1: Spinner programmastappen gebruikt jas het glas dia's met de bereide oplossing van PLLA. Een eerste stap van de homogenisering werd gebruikt bij 500 omwentelingen per minuut met een versnelling van 300 rpm/s voor 5 s. gevolgd door een laatste stap bij 3000 t/min met een versnelling van 1500 rpm/s voor 30 s.

Oplossing RGD-Cys-D1 (mg/mL) RGD-Cys-D1 (mg) MQ water (µL)
A 0.77 5 6,494
RGD-Cys-D1 (% w/w) Oplossing een (µL)
B 10-2 779 5,220
C 10-5 0.78 6.000
Oplossing C (µL)
D 2,5 x 10-8 15,0 5,985
E 10-8 6.0 5,994
F 4 x 10-9 2.4 5,998

Tabel 2: Details van de voorbereiding van de RGD-Cys-D1-oplossingen gebruikt. Een stockoplossing van RGD-Cys-D1 dendrimeren werd voorbereid op een eindconcentratie van 0.77 mg/mL (oplossing A), waaruit de oplossingen B en C op 10-2 en 10-5% w/w concentraties werden bereid. Oplossing C met een concentratie van 10-5% w/w van RGD-Cys-D1 Dendrimeer werd gebruikt voor het bereiden van oplossingen D, E en F op de eindconcentraties van 2,5 x 10-8, 10-8 en 4 x 10-9%w/w, respectievelijk.

Naam Volume (µL) Buffer met blokkerend (mL)
Primaire mix Konijn mAb aan pax 65 12.870
Muis mAb aan COL2A1 32,5
Secundaire mix Alexa Fluor 488 geit anti-muis 13 12.961
Alexa Fluor 568 geit anti-konijn 13
Hoechst oplossing 13

Tabel 3: antilichaam oplossing voorbereiding. Het primaire antilichaam mengsel bevatte monoklonaal antilichaam tegen pax geproduceerd in konijn verdund 1:200 in de blokkerende oplossing met monoklonaal antilichaam tegen COL2A1 geproduceerd in muis verdund 1:400 in de blokkerende oplossing. Het secundaire antilichaam mengsel bevatte de cel kernen vlek Hoechst en de secundaire antilichamen geproduceerd in geit tegen muis en konijn respectievelijk (aangeduid met Alexa Fluor 488 en 568 fluorophores, respectievelijk).

Figure 1
Figuur 1 : RGD-Cys-D1 Dendrimeer nanopatronen voor de controle van de nanoschaal van lokale RGD oppervlakte dichtheid. (A) RGD-Cys-D1 Dendrimeer structuur met maximaal acht exemplaren van de cel zelfklevende RGD peptide. Vertegenwoordiger STM beelden (bias = 200 mV, instelpunt = 0.5 NB) van RGD-Cys-D1 nanopatterns op Au(111) van een eerste waterige oplossing van 10-8% w/w (schaal bar = 3 nm, B) en het bijbehorende hoogte-afstand profiel verkregen op de onderbroken regio aangegeven in (B)en (C) van 10-2% w/w tonen Dendrimeer aggregatie (schaal bar = 20 nm). (D-G) Vertegenwoordiger AFM beelden van RGD-Cys-D1 nanopatterns op PLLA verkregen uit de overeenkomstige waterige oplossingen van de Dendrimeer van 10-2%, 2,5 x 10-8%, 10-8%en 4 x 10-9% w/w, respectievelijk (schaal bar = 1 µm). De bijbehorende interparticle minimumafstand (dmin) waarschijnlijkheid contour kaart wordt weergegeven onder elke afbeelding van de AFM, met hoge dichtheid RGD-regio's in het donker rood weergegeven (dmin < 70 nm). Dendrimeren en Dendrimeer aggregaten zijn afgebeeld in zwart-wit voor de duidelijkheid. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 2
Figuur 2 : Cel hechting op de RGD-Cys-D1 nanopatterns. Plot van het percentage van ruimte gekleurd voor de FA eiwit pax per cel voor de cellen in contact met de ondergrond (linkeras) met concentratie van de oorspronkelijke Dendrimeer. Waarden worden vergeleken met de lokale RGD oppervlakte dichtheid (percentage van oppervlakte in de nanopatterns met d-min -waarden onder de drempel van 70 nm) (rechteras) met 100 en 0 percentages die zijn toegewezen aan de positieve (+ control) en negatieve (- besturingselement) besturingselementen, respectievelijk. (A) Fibroblast hechting op Dendrimeer nanopatterns op Au(111) na 4,5 uur van cultuur. (B) MSC hechting op Dendrimeer nanopatterns op PLLA geëvalueerd op dag 1 van de chondrogenic-inductie. Waarden worden gegeven als het gemiddelde met de standaarddeviatie. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

RGD-Cys-D1 (% w/w) Gebied (< dmin = 70 nm) (%) op Au(111) Gebied (< dmin = 70 nm) (%) op PLLA
10-2 5 ± 1 2 ± 2
10-5 97 ± 2
2, 5 x 10-8 65 ± 11 90 ± 2
10-8 25 ± 16 45 ± 7
4 x 10-9 18 ± 11

Tabel 4: Percentage van ruimte met d min waarden onder de 70 nm verkregen voor RGD-Cys-D1 Dendrimeer depositie op Au(111) en op PLLA als een functie van de gebruikte concentraties van initiële Dendrimeer oppervlakken.

Figure 3
Figuur 3 : Chondrogenic differentiatie van MSCs op de RGD-Cys-D1-nanopatterns. (A) condensatie van MSCs gekweekt op RGD-Cys-D1 nanopatterns op PLLA na 5 dagen van chondrogenic-inductie. Vertegenwoordiger epifluorescence beelden van gebeitst celkernen (Hoechst; Schaal bar = 300 µm; bovenste rij) en plot van het gebied van cel condensaten (onderste rij) verkregen op RGD-Cys-D1 nanopatterns van concentraties van de verschillende initiële Dendrimeer. Differentiatie opbrengst van cel condensatie stap met de expressie van specifieke chondrogenic markers: (B) Percentage van de ruimte van het COL2A1 kleuring genormaliseerde met de oppervlakte van het condensaat van de cel uit de overeenkomstige confocal z-projecties na 5 dagen van chondrogenic inductie verkregen. (C) relatieve SOX9 mRNA uitdrukking (tegen negatieve controle) na 3 dagen van chondrogenic-inductie. Waarden worden gegeven als het gemiddelde met de standaarddeviatie in (B) en (C). Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Tijdens de ontwikkeling van het beschreven protocol, moet een aantal kritische stappen worden overwogen. De eerste heeft betrekking op de karakterisering van het nanopattern met scanning probe microscopie technieken. Om te visualiseren de nanopatterns, moet het oppervlak waar de patronen is geproduceerd ruwheid waarde lager is dan de gemiddelde diameter van de dendrimeren, dat ongeveer is 4 tot 5 nm gemeten door STM (figuur 1B). Ook, het moet worden rekening gehouden met dat hoge resolutie STM beeldvorming beperkt tot geleidende substraten, in dit geval Au(111) is. Eventuele opheffing van het polymeer uit de hoeken van de dia na de spin-coating kan worden gerectificeerd met behulp van biocompatibel lijm.

Dendrimeer nanopatronen is een proces via welke om gecontroleerd lokale cel hechting op nanoschaal. Op basis van de zelf-assemblage van dendrimeren op het oppervlak door adsorptie, deze techniek vereist geen complexe nanopatronen apparatuur, aldus contrasteren met eerder beschreven lithografie gebaseerde methoden36,37, 38. Dendrimeer nanopatronen kan gemakkelijk worden opgeschaald naar groot oppervlak en is volledig compatibel met de protocollen van de cultuur van de cel.

De hier beschreven methode van de Dendrimeer-nanopatronen vindt toekomstige toepassingen in de regeneratieve geneeskunde. De controle uitgeoefend door Dendrimeer nanopatronen op cel hechting maakt deze techniek geschikt voor de conditionering van biomaterialen vóór, teneinde hun integratie in de weefsels van de gastheer. Bovendien maakt het gemak met welke Dendrimeer perifere wordt kunnen worden gewijzigd Dendrimeer nanopatronen geschikt is voor andere liganden die concentratie-afhankelijke activiteiten op cellen uitoefenen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

De auteurs hebben niets te onthullen.

Acknowledgements

De auteurs erkennen Oriol Font-Bach en Albert G. Castaño voor hun hulp in dmin kwantificering. Zij erkennen ook de geavanceerde digitale microscopie Unit van het Institute for Research in biogeneeskunde (IRB Barcelona) om te laten de auteurs de video opnemen in hun bedrijfsruimten ter beschikking. Dit werk werd gesteund door de Networking biomedische Research Center (CIBER), Spanje. CIBER is dat een initiatief in het gefinancierd door de VI nationale o & o & i Plan 2008-2011, Iniciativa Ingenio 2010, Consolider programma, CIBER acties, en het Instituto de Salud Carlos III, met de steun van het Europees Fonds voor regionale ontwikkeling. Dit werk werd ondersteund door de Commissie van universiteiten en onderzoek van het departement voor innovatie, universiteiten en ondernemingen van de Generalitat de Catalunya (2014 SGR 1442). Het werd ook gefinancierd door de projecten OLIGOCODES (nr. MAT2012-38573-C02) en CTQ2013-41339-P, uitgereikt door het Spaanse ministerie van economie en concurrentievermogen, daarnaast aan INTERREG V-A Spanje-Portugal 2014-2020 POCTEP (0245_IBEROS_1_E). C.R.P. erkent dat financiële steun van het Spaanse ministerie van economische zaken en concurrentievermogen subsidie (nr. IFI15/00151).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Gold (111) on mica. 1.4x1.1 cm  Spi Supplies 466PS-AB
Glass micro slides, plain Corning 2947-75x25
Deionized water Millipore 18MΩ cm
Ethanol 96% PanReac 131085.1212
L-Lactide/DL-Lactide copolymer Corbion 95/05 molar ratio
1,4 - dioxane Sigma-Aldrich 296309-1L
Silicone oil, high temperature Acros Organics 174665000
Spinner Laurell WS-650MZ-23NPP/Lite
Tissue culture laminar flow hood Telstar Bio II Advance Class II biological safety cabinet
Filter unit Millex-GP SLGP033RB 0.22 µm
Syringe 10 mL Discardit 309110
Atomic Force microscope Veeco Instruments Dimension 3000 AFM instrument
Silicon AFM probes Budget Sensors Tap300AI-G Resonant Freq. 300 kHz, k = 40 N/m
Scanning tunneling microscope Molecular Imaging PicoSPM microscope
Pt0.8:Ir0.2 wire Advent PT671012 Diameter 0.25 mm
WSxM 4.0 software Nanotec electronica
Optical contact angle (CA) system Dataphysics
SCA20 software Dataphysics
X-ray photoelectron spectrometer Physical Electronics Perkin-Elmer PHI 5500 Multitechnique System
Fibronectin from bovine plasma Sigma-Aldrich F1141-1MG 1.0 mL solution
Dulbecco's Phosphate Buffer Saline (DPBS) Gibco 21600-10 Powder
Mouse embryo fibroblasts ATCC ATCC CRL-1658 NIH/3T3
Dulbecco's modified eagle medium (DMEM) liquid high glucose Gibco 11960044 liquid high glucose, no glutamine, 500 mL
Fetal Bovine Serum (FBS) Gibco 16000044 500 mL
L-Glutamine Invitrogen 25030 200 mM (100X)
Penicillin-streptomycin Invitrogen 15140
Sodium pyruvate Invitrogen 11360039 100 mL
T75 culture flasks Nunclon 156499
Trypsin Life Technologies 25200072 0,25% EDTA
Centrifuge Hermle Labortechnik Z 206 A
Non-tissue culture treated plate, 12 well Falcon 351143 Non-adherent
Adipose-derived hMSCs ATCC ATCC PCS-500-011 Cell vial 1 mL
MSC basal medium ATCC ATCC PCS-500-030
MSC growth kit ATCC ATCC PCS-500-040 Low serum
Chondrocyte differentiation tool ATCC ATCC PCS-500-051
Formalin solution Sigma-Aldrich HT5011-15ML neutral buffered, 10%
Ammonium chloride Sigma-Aldrich A9434-500G for molecular biology, suitable for cell culture, ≥99.5%
Saponin Sigma-Aldrich 47036-50G-F for molecular biology, used as non-ionic surfactant, adjuvant
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma-Aldrich A3059-50G
Rabbit monoclonal [Y113] anti-paxillin antibody Abcam ab32084 Diluted 1:200
Mouse monoclonal [1F5] anti-collagen alpha-1 XX chain  Acris Antibodies AM00212PU-N Diluted: 1:400
Alexa Fluor 488-conjugated goat anti-mouse IgG (H+L) secondary antibody Invitrogen A10667 2 mg/mL. Diluted 1:1000
Alexa Fluor 568-conjugated goat anti-rabbit IgG (H+L) secondary antibody Invitrogen A11036 2 mg/mL. Diluted 1:1000
Hoechst 33342 Thermo Fisher H3570 10ML 10 mg/mL. Diluted 1:1000
Cover glass 24x24 mm Deltalab D102424
Fluoromount Sigma-Aldrich F4680-25ML
Epifluorescence Microscope Nikon Eclipse E1000 upright microscope with a CCD camera
Confocal Microscope Leica Microsystems Leica SPE Upright Confocal Microscope
ImageJ 1.50g freeware http://imgej.nih.gov/ij
MATLAB software The MATHWORKS, Inc.
OriginPro 8.5 software  OriginLab Coorporation

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Jiang, F., Hörber, H., Howard, J., Müller, D. J. Assembly of collagen into microribbons: Effects of pH and electrolytes. J. Struct. Biol. 148, (3), 268-278 (2004).
  2. Smith, M. L., et al. Force-induced unfolding of fibronectin in the extracellular matrix of living cells. PLoS Biol. 5, (10), 2243-2254 (2007).
  3. Little, W. C., Smith, M. L., Ebneter, U., Vogel, V. Assay to mechanically tune and optically probe fibrillar fibronectin conformations from fully relaxed to breakage. Matrix Biol. 27, (5), 451-461 (2008).
  4. Christman, K. L., Enriquez-Rios, V. D., Maynard, H. D. Nanopatterning proteins and peptides. Soft Matter. 2, 928-939 (2006).
  5. Falconnet, D., Csucs, G., Grandin, H. M., Textor, M. Surface engineering approaches to micropattern surfaces for cell-based assays. Biomaterials. 27, (16), 3044-3063 (2006).
  6. Arnold, M., et al. Activation of integrin function by nanopatterned adhesive interfaces. ChemPhysChem. 5, (3), 383-388 (2004).
  7. Cavalcanti-Adam, E. A., et al. Lateral spacing of integrin ligands influences cell spreading and focal adhesion assembly. Eur. J. Cell. Biol. 85, (3-4), 219-224 (2006).
  8. Cavalcanti-Adam, E. A., et al. Cell spreading and focal adhesion dynamics are regulated by spacing of integrin ligands. Biophys. J. 92, (8), 2964-2974 (2007).
  9. Arnold, M., et al. Cell interactions with hierarchically structured nano-patterned adhesive surfaces. Soft Matter. 5, (1), 72-77 (2009).
  10. Malmström, J., et al. Large area protein patterning reveals nanoscale control of focal adhesion development. Nano Lett. 10, (2), 686-694 (2010).
  11. Deeg, J. A., et al. Impact of local versus global ligand density on cellular adhesion. Nano Lett. 11, (4), 1469-1476 (2011).
  12. Medda, R., et al. Investigation of early cell–surface interactions of human mesenchymal stem cells on nanopatterned β-type titanium-niobium alloy surfaces. Interface Focus. 4, 20130046 (2014).
  13. Wang, X., et al. Effect of RGD nanospacing on differentiation of stem cells. Biomaterials. 34, (12), 2865-2874 (2013).
  14. Wang, X., Ye, K., Li, Z. H., Yan, C., Ding, J. D. Adhesion, proliferation, and differentiation of mesenchymal stem cells on RGD nanopatterns of varied nanospacings. Organogenesis. 9, (4), 280-286 (2013).
  15. Wang, X., Li, S. Y., Yan, C., Liu, P., Ding, J. D. Fabrication of RGD micro/nanopattern and corresponding study of stem cell differentiation. Nano Lett. 15, (3), 1457-1467 (2015).
  16. Li, Z. H., et al. Effects of RGD nanospacing on chondrogenic differentiation of mesenchymal stem cells. J. Mater. Chem. B. 3, (12), 5197-5209 (2015).
  17. Stephanopoulos, N., et al. Bioactive DNA-peptide nanotubes enhance the differentiation of neural stem cells into neurons. Nano Lett. 15, (1), 603-609 (2015).
  18. Rolland, O., Turrin, C. O., Caminade, A. M., Majoral, J. P. Dendrimers and nanomedicine: Multivalency in action. New J. Chem. 33, 1809-1824 (2009).
  19. Saovapakhiran, A., D’Emanuele, A., Attwood, D., Penny, J. Surface modification of PAMAM dendrimers modulates the mechanism of cellular internalization. Bioconjug. Chem. 20, (4), 693-701 (2009).
  20. Albertazzi, L., Fernandez-Villamarin, M., Riguera, R., Fernandez-Megia, E. Peripheral functionalization of dendrimers regulates internalization and intracellular trafficking in living cells. Bioconjug. Chem. 23, (5), 1059-1068 (2012).
  21. Mikhail, A. S., Jones, K. S., Sheardown, H. Dendrimer grafted cell adhesion peptide-modified PDMS. Biotechnol. Prog. 24, (4), 938-944 (2008).
  22. Kino-oka, M., Kim, J., Kurisaka, K., Kim, M. H. Preferential growth of skeletal myoblasts and fibroblasts in co-culture on a dendrimer-immobilized surface. J. Biosci. Bioeng. 115, (1), 96 (2013).
  23. Kim, M. H., et al. Morphological regulation and aggregate formation of rabbit chondrocytes on dendrimer immobilized surfaces with D-glucose display. J. Biosci. Bioeng. 107, (2), 196-205 (2009).
  24. Lomba, M., et al. Cell adhesion on surface patterns generated by the photocrosslinking of hyperbranched polyesters with a trisdiazonium salt. React. Funct. Polym. 73, (3), 499-507 (2013).
  25. Maheshwari, G., Brown, G., Lauffenburger, D. A., Wells, A., Griffith, L. G. Cell adhesion and motility depend on nanoscale RGD clustering. J. Cell Sci. 113, (Pt 10), 1677-1686 (2000).
  26. Kim, M. H., Kino-oka, M., Kawase, M., Yagi, K., Taya, M. Synergistic effect of D-glucose and epidermal growth factor display on dynamic behaviors of human epithelial cells. J. Biosci. Bioeng. 104, (5), 428-431 (2007).
  27. Pericet-Camara, R., Cahill, B. P., Papastavrou, G., Borkovec, M. Nano-patterning of solid substrates by adsorbed dendrimers. Chem. Commun. 3, 266-268 (2007).
  28. Lagunas, A., et al. Large-scale dendrimer-based uneven nanopatterns for the study of local arginine–glycine–aspartic acid (RGD) density effects on cell adhesion. Nano Res. 7, (3), 399-409 (2014).
  29. Lagunas, A., et al. Tailoring RGD local surface density at the nanoscale toward adult stem cell chondrogenic commitment. Nano Res. (2017).
  30. Prats-Alfonso, E., et al. Effective and Versatile Strategy for the Total Solid-Phase Synthesis of Alkanethiols for Biological Applications. Eur. J. Org. Chem. 2013, (7), 1233-1239 (2013).
  31. Zhu, Y. B., Gao, C. Y., Liu, X. Y., He, T., Shen, J. C. Immobilization of biomacromolecules onto aminolyzed poly(L-lactic acid) toward acceleration of endothelium regeneration. Tissue Eng. 10, (1-2), 53-61 (2004).
  32. Güell, A., Díez-Pérez, I., Gorostiza, P., Sanz, F. Preparation of reliable probes for electrochemical tunneling spectroscopy. Anal. Chem. 76, (17), 5218-5222 (2004).
  33. Bobick, B. E., Chen, F. H., Le, A. M., Tuan, R. S. Regulation of the chondrogenic phenotype in culture. Birth Defects Res. C Embryo Today. 87, (4), 351-371 (2009).
  34. De Lise, A. M., Fisher, L., Tuan, R. S. Cellular interactions and signaling in cartilage development. Osteoarthritis Cartilage. 8, (5), 309-334 (2000).
  35. Kosher, R. A., Kulyk, W. M., Gay, S. W. Collagen gene expression during limb cartilage differentiation. J. Cell Biol. 102, (4), 1151-1156 (1986).
  36. Biebricher, A., Paul, A., Tinnefeld, P., Golzhauser, A., Sauer, M. Controlled three-dimensional immobilization of biomolecules on chemically patterned surfaces. J. Biotechnol. 112, (1-2), 97-107 (2004).
  37. Tinazli, A., Piehler, J., Beuttler, M., Guckenberger, R., Tampé, R. Native protein nanolithography that can write, read and erase. Nat. Nanotechnol. 2, 220-225 (2007).
  38. Oberhansl, S., et al. Facile Modification of Silica Substrates Provides a Platform for Direct-Writing Surface Click Chemistry. Small. 8, (4), 541-545 (2012).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics