Hemocytes mikrobiyal enfeksiyon ve çözümleme çekme--dan Drosophila melanogaster larva

Immunology and Infection

Your institution must subscribe to JoVE's Immunology and Infection section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Bu yöntem, patojen işgali üç boyutlu (3D) modelleri ile böcek hücreye görselleştirmek gösterilmiştir. Hemocytes Drosophila larvaları üzerinden viral veya bakteriyel patojenler, ex vivo veya vivo içindeile bulaşmış. Virüslü hemocytes daha sonra sabit ve görüntüleme için bir confocal mikroskop ve sonraki 3D hücresel yeniden yapılanma ile lekeli.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Hiroyasu, A., DeWitt, D. C., Goodman, A. G. Extraction of Hemocytes from Drosophila melanogaster Larvae for Microbial Infection and Analysis. J. Vis. Exp. (135), e57077, doi:10.3791/57077 (2018).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Drosophila melanogaster, patojenik enfeksiyon sırasında hemocytes enfeksiyon boyunca bağışıklık yanıtındaki önemli bir rol oynamaktadır. Böylece, bu iletişim kuralının amacı belirli bir bağışıklık yerde uçar, yani hemocytes patojen işgali görselleştirmek için bir yöntem geliştirmektir. Burada 3 × 10 anlatılan yöntemle6 canlı hemocytes 200 Drosophila 3rd INSTAR larva ex vivo enfeksiyon için 30 dk içinde elde edilebilir. Alternatif olarak, hemocytes enfekte vivo içinde 3rd INSTAR larva için 24 saat sonrası enfeksiyon hemocyte çıkarma tarafından takip enjeksiyon yoluyla olabilir. Bu virüslü primer hücre tespit edildi, lekeli ve confocal mikroskobu kullanarak yansıma. Sonra 3D temsilcilikleri patojen işgal kesin olarak göstermek için görüntülerden üretildi. Ayrıca, yüksek kaliteli RNA qRT-PCR patojen mRNA şu tespiti için elde edilebilir enfeksiyon ve yeterli protein hulâsa Western blot analizi için bu hücrelerden. Birlikte ele alındığında, biz patojen işgalinin kesin uzlaşma ve enfeksiyon bakteriyel ve viral patojen türleri ve verimli bir yöntem hemocyte çıkarılması için yeterli canlı hemocytes Drosophila elde etmek için kullanarak onay için bir yöntem mevcut larva ex vivo ve in vivo enfeksiyon deneyler için.

Introduction

Drosophila melanogaster doğuştan gelen bağışıklık1incelenmesi için bir iyi kurulmuş model organizmadır. Doğuştan gelen bağışıklık yanıtı sırasında hemocytes yanıt patojeni meydan okuma olarak önemli bir rol oynamaktadır. Hemocytes mantar, viral ve bakteriyel enfeksiyon2,3sırasında fagositik eylem yoluyla patojen mücadelede önemli bir işleve sahip yanı sıra parazit Kapsüllenen için kritik öneme sahiptir.

En iyi ana bilgisayarın doğuştan gelen bağışıklık yanıtı patojenik mikrobiyal enfeksiyon anlamak için nasıl patojen konak hücreleri enfeksiyon sırasında işgal görselleştirmek önemlidir. Bu görselleştirme işgali mekanizmasının bir anlaşmaya katkıda bulunur. Patojen hücre içi yerelleştirme ayrıntılarını ve hücresel yanıt ile birlikte, bu veriler enfeksiyon ve hangi ile mikrop etkileşim hücre organelleri ana bilgisayar yanıt hakkında ipuçları sağlar. Böylece, 3D modeli yeniden görüntüleme mikroskobu tarafından sonra konak hücreleri patojenler tam yerini belirlemek yararlı olabilir. Bu çalışmada, Avusturya'nın Coxiella burnetii (C. burnetii), Q ateşi, insan ve hayvan sağlığı için ciddi bir tehdit teşkil etmektedir birincil Drosophila hemocytes Hayvansal bir hastalık hastalığının görüntülenir. Son zamanlarda, Drosophila 2 dokuz mil faz II (NMII) klon C. burnetii 4 suşu ve bu zorlanma Drosophila4' te, çoğaltmak yapabiliyor bu gösteren Biyogüvenlik düzeyi duyarlı gösterilmiştir Drosophila C. burnetii patogenezi okumaya bir model organizma kullanılır.

Önceki çalışmalarda hemocytes ana bilgisayarın doğuştan gelen bağışıklık yanıtı incelemek için kullandık. Hemocytes kullanılan morfolojik gözlemleri5,6,7, xarakteristikaları analiz2,8, fagositoz analiz2,3, qRT-PCR2 için , 9, immunoprecipitation10,11, immünfloresan analiz10,12, immunostaining13, immunoblotting3,10, 11 ve immünhistokimya9,14. Drosophila S2 hücreleri de çeşitli vitro deneyler için kullanılabilir olmakla birlikte, onların davranış15,16-əbadoləşdirmək ve önceden var olan potansiyel viral enfeksiyon değiştirmek. Primer Hücre S2 hücreleri gibi bir ölümsüzleştirdi hücre kültürünü aksine kullanımı doğuştan gelen bağışıklık fonksiyonu çalışma için bir sistem tüm organizmanın daha temsilcisi sağlar. Ayrıca, hemocytes vivo, ayıklama önce enfeksiyonu hücrelere diğer ana bilgisayar proteinler ve doku, hemocytes ex vivo enfeksiyonu önce çıkarılması üzerinde bir avantaj etkileşim sağlar. Birkaç farklı yöntem hemocytes yeterli sayıda hemocytes canlı8,17,18,19tutmak için zaman kısa bir süre içinde elde etmek için kullanılmıştır.

Bu çalışmada, biz Drosophila 3rd INSTAR larva C. burnetii, Listeria Monositogenez (Listeria) veya omurgasız yanardöner patojenik mikrobiyal enfeksiyon için hemocytes ayıklamak için bir yöntem mevcut virüs 6 (IIV6). Vivo ve ex vivo hemocyte enfeksiyon yöntemleri açıklanmaktadır. Vivo- ve ex vivo-virüslü hemocytes confocal mikroskobu ile görüntülenir ve C. burnetii işgalinin 3D modeller oluşturmak için kullanılır. Buna ek olarak, ex vivoayıklama iletişim kuralını kullanarak-virüslü hemocytes için gen ve protein ifadesi kullanılmıştır deneyleri. Özellikle, IIV6 ve Listeriaenfeksiyonu ölçüde incelemek için toplam RNA veya protein qRT-PCR veya Western blot analizi için hücrelerden izole edildi. Birlikte ele alındığında, protokol hızla hemocytes sayısının fazlalığı 3rd INSTAR larva ve birincil hemocytes, in vivo veya ex vivoenfekte kanıt toplamak için yöntemler sağlar, için uygun bir platform olan mikrobiyal patojen enfeksiyon çalışmaları ve ilgili aşağı akım analizleri mikroskobu, transcriptomics ve proteomik gibi.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. ex vivo enfeksiyon

  1. Orta ve donanımları
    1. Steril koşullarda, taze Drosophila Hemocyte izole Orta (% 75 Schneider'ın Drosophila içeren DHIM) hazırlamak orta % 25 ile Fetal sığır Serum (FBS) ve filtre bu sterilize.
    2. 2-3 adet 10 cm x 10 cm parafin film bir stereomicroscope altında katman.
    3. Cam kılcal hazırlayın. Kapiller çektirme ısıtıcı maksimum % 55'i için ayarlayın. Kılcal tüp yaklaşık 10 µm keskin bir noktaya kadar çekin.
    4. Mineral yağ ile kılcal tamamlanmıyor.
    5. Dolu kılcal tüp nanoinjector (Şekil 1A) üzerine monte ve erimiş kılcal tüp İpucu İpucu off forseps ile (Şekil 1B) kırarak açık. Ucu dış çapı hemocytes kolay alımını için 100 µm olmalıdır.
    6. Kılcal tüp ucundan mümkün olduğunca çok yağ çıkarma sonra DHIM ile doldurun. Kenarlığı yukarı çekilen hemolymph ve yağ ile kolay görselleştirme için petrol ve DHIM arasında bir hava kabarcığı şunlardır (Şekil 1B').
  2. Hemolymph ayıklama
    1. Al 3rd biçim Drosophila larva iç duvar gıda yavaşça forseps kullanarak tüp ve bir 100 µm süzgeç (Şekil 1C) koyun. 3rd INSTAR larvalar 3-6 gün yetişkin bir kadın tarafından döşeme verimli yumurta bulunur.
      Not: Bu deneyler genotip, w1118kullanılan; P {w+ mCHml-GAL4.Δ =} 2, P {w+ mCUAS-2xEGFP =} AH2 beri hemocytes bu hayvanlardan gelişmiş yeşil flüoresan protein (EGFP) mikroskopi tarafından hücreleri tanımlaması içinde yardım etmek için hızlı.
    2. Larvaları 5 mL steril su dökün ve aşırı su kaldırmak 5 s. yer için görev silme üzerine süzgeç Süzgeç sallamak (Şekil 1C').
    3. Larvalar 1.5 mL microcentrifuge tüp içine aktarın. Onları CO2 gaz için 5 ile anestezi s (Şekil 1D).
    4. Parafin filmi stereomicroscope altında üzerine larva dorsal yüzü (Şekil 2A) bakacak şekilde yerleştirin.
    5. Yere tutun ve posterior kütikül bozmak için yer cam larva arka gövde üzerine hafifçe kapiller ince sivri uçlu forseps (Şekil 2B) kullanarak açın.
    6. Parafin filmin (Şekil 2C) akmaya hemolymph izin verir.
    7. Parafin film üzerinde bir anda hemocytes 20-50 larvaları üzerinden de dahil olmak üzere hemolymph bir havuz yapmak.
    8. Cam kullanarak havuza alınan hemolymph kadar nanoinjector (resim 2D) kapiller al.
      Not: Hemolymph, yaklaşık 10-20 µL olmalıdır.
    9. Hemolymph DHIM (Şekil 2E) 500 µL içeren bir 1.5 mL microcentrifuge tüp çıkar.
    10. Adımları yineleyin 1.2.4) - 1.2.9 yükleme) larva her dizi için.
  3. Hemocytes saymak.
    1. 5 µL % 0,4 Trypan mavi çözüm ölü hücreleri leke 0.6 mL microcentrifuge tüp içinde pipet. Hafifçe DHIM ve hemocytes bir pipet kullanarak 1,5 mL tüp içinde karıştırın ve DHIM 0.6 mL microcentrifuge Tube hemocytes de dahil olmak üzere 5 µL aktarmak ve karışımı yavaşça.
    2. 11: Trypan mavi: hemocyte karışımı hücre 10 µL hemasitometre pipet.
    3. Trypan ile değil lekeli hemocytomter 4 köşe alanların her birinde mavi ve hemocytes formülünü kullanarak mililitre başına konsantrasyonu hesaplayan canlı hemocytes saymak:
      Equation 1
      Burada X mililitre başına canlı hemocytes konsantrasyonu ise; a, b, c ve d mı hemasitometre içinde sayılan alanların her 4 canlı hücrelerde (Trypan mavi dışlama tarafından belirlenen) sayısı. 1:1 seyreltme Trypan mavi içeren hücrelerin hücre sayılan toplam sayısı 2 ile bölme kaynaklanmaktadır. Trypan ile mavi lekeli hücreleri ölü kabul edilir.
  4. Ex vivo Enfeksiyonlar
    1. Kuyu timepoints ve biyolojik dayalı hücreleri ile seribaşı sayısını çoğaltır her deneme için gerekli belirlemek. 5.0 × 104 hemocytes enfeksiyonu takip RNA ve protein arıtma için arzu.
    2. DHIM ile enfeksiyon için aşağıdaki formülü kullanarak seyreltilmiş için patojen stok hacmi hesaplamak:
      Equation 2
      nerede enfeksiyon (MOI) çokluğu veya bakteri hücre başına istenen viral sayısıdır.
      Not: kullanılan MOI bireysel deney ve deneyleri gerçekleştirilen bağlıdır. Burada, 10 genom eşdeğerleri (GE) / C. burnetii, 10 CFU/hücrenin Listeriaveya 1 TCID50/cell IIV6, hücresi kullanıldı.
    3. 500 µL patojen orta bir tüp viral veya bakteriyel cilt DHIM uygun hacmi ekleyerek bir 24-şey plaka her şey için hazır olun.
    4. Yer 12 mm yuvarlak cam (No 1 kalınlık) 24-şey kalıbının kuyuya.
    5. Hemocytes 24-şey plaka kuyu dahil DHIM bölme.
    6. 500 µL patojen orta hemocytes bir kuyu içinde ekleyin.
    7. 1000 x g 5 min için plaka santrifüj kapasitesi.
    8. 28 ° C'de 1 h plaka kuluçkaya Her 15 dk, hafifçe açık, daha sonra soldan sağa 5 arka plakasına eğimli el tarafından s.
    9. 1 h işgali/ek adım 1.4.8) sonra yavaşça patojen orta pipet hemocytes taze DHIM ile yıkayın ve taze DHIM 500 µL ile doldurma.
    10. Virüslü hemocytes için istenen saat kuluçkaya. Bu deneylerde, C. burnetii- veya hemocytes IIV6 enfekte inkübe 24 h ve Listeriaiçin-virüslü hemocytes inkübe 1, 2 veya 4 h için.

2. vivo enfeksiyon

  1. Enfeksiyon
    1. Drosophila meyve suyu agar tabağı 15 dk. plakaları için oda sıcaklığında daha önce yapılan sıcak20nitelendirdi.
      1. 30 g agar 700 mL su ve basınçlı kap ekleyin 40 dk için.
      2. Metil paraben mutlak etanol 10 ml 0.5 g geçiyoruz.
      3. Metil paraben çözüm için 300 mL meyve suyu konsantresi ekleyin.
      4. Hızlı bir şekilde suyu konsantresi autoclaved agar çözüm mix ve 5 mL 10 × 35 mm Petri yemekleri dağıtmak.
      5. Tabakları 15dk için soğutmalı sonra onları 4 ° C'de depolayın
    2. Hazırlamak 3rd INSTAR larva aşağıdaki adımları 1.2.1) - 1.2.3).
    3. Maya Yapıştır bir agar tabağa yerleştirin. Nerede larva (Şekil 3A) kurutma önlemek için geçirebilirsiniz agar plaka iyi bir kesim yapmak. Parafin film (Şekil 3B, C) kullanarak forseps holding ile 0,001 mm sivri tungsten iğne bir araya getirin.
    4. Yüksek-titresi mCherry 50 µL pipet ifade -C. burnetii (5,95 × 109 GE/mL) parafin üzerine film stereo mikroskop altında ve larvalar bakteri havuzun yerleştirin.
    5. Larvalar bakteri havuzun yerleştirin. Larva (Şekil 3D) tungsten iğne ile dikmek. Larvalar agar plaka (Şekil 3E) üzerine aktarın.
    6. Agar plaka kalan patojen ortamına aktarmak ve parafin film ile plaka mühür.
    7. Larvalar plaka üzerinde istenen saat sonrası enfeksiyon (Şekil 3F) kadar nemli havada tut. Bu deneyde, C. burnetii-virüslü larvaları vardır 24 h için plaka üzerinde.
  2. Hemolymph çıkarma ve hemocytes kaplama
    1. Orta ve 1.1. adımda takip donanımları hazırlamak).
    2. Yer 12 mm yuvarlak cam (No 1 kalınlık) 24-şey kalıbının kuyuya. DHIM 500 µL kuyunun içine pipet.
    3. Hemolymph aşağıdaki adımları 1.2.4 virüslü larvaları özü) - 1.2.8).
    4. Hemolymph de aşağıdaki içine çıkarma adım 2.2.2).
    5. 2.2.3 tekrar) ve 2.2.4) larva, birden çok toplu işlem için.
    6. 1000 x g 5 min için plaka santrifüj kapasitesi.

3. görsel öğe

  1. Sabitleme ve boyama
    1. Hemocytes iyi yuvarlak kapak camına yerleşmek izin sonra yavaşça orta her kuyudan çıkarın.
    2. Yavaşça 200 µL % 4 paraformaldehyde (PFA), kapatılan hemocytes her şey için ekleyin. Hemocytes oda sıcaklığında 20 dk için kuluçkaya.
    3. %4 kaldırmak PFA ve yavaşça 200 µL % 0,1 içeren PBS ekleyin Triton X-100 ve %1 sığır Serum Albumin (BSA) her şey için. Hemocytes oda sıcaklığında 10 dakika için kuluçkaya.
    4. PBS kaldır ve yavaşça, 1 × 4', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) her şey için 200 µL ekleyin. Hemocytes içinde belgili tanımlık karanlık oda sıcaklığında 10 dakika için kuluçkaya.
    5. DAPI çözümü kaldırmak ve yavaşça her şey için PBS ekleyin. Hemocytes oda sıcaklığında 5 min için kuluçkaya.
    6. Antifade montaj orta 10 µL cam mikroskop slayt üzerinde bırakın.
    7. PBS her kuyudan kaldırdıktan sonra kapak cam 24-şey plaka ince sivri uçlu forseps kullanarak kaldırın. Yavaşça kapak cam antifade montaj ortama cam slayt üzerinde hemocytes aşağı bakacak şekilde yerleştirin.
    8. Karanlık gecede yerleştirerek kurumaya slayt izin.
  2. Confocal görüntüleme
    1. Üç renk görüntüleme DAPI, EGFP ve mCherry için confocal mikroskop yapılandırın. Aşağıdaki ayarı kullanın: DAPI uyarma (ex) 405 nm, emisyon (em) 415-480 nm; EGFP 488 ex nm, em 493-564 nm; mCherry 587 ex nm, em 597-700 nm.
    2. Mikroskop ve odak bir 63 X kullanarak örnek örnek yerleştirin / 1.4 sayısal diyafram (NA) amaç. İstenen hemocytes görüntüleme için görüş alanı bulun.
    3. Lazer güç ve dedektör kazançlar örnek uygun pozlama elde etmek için ayarlayın. Birden çok z-düzlem pozlama seviyesi tüm örnek kalınlığı için uygun olduğundan emin olmak için denetleyin.
    4. Bütün hemocyte z ekseni üzerinde üst ve alt konumu bulun. Bu pozisyonlar z kesit için başlangıç ve bitiş konumlarını ayarlayın.
    5. Sadece görüntü hemocyte bulunduğu alanı için tarama zoom özelliğini kullanın. 3 X Zoom faktörleri genellikle kullanılır.
    6. 1024 x 1024 piksel x-y düzlemde gibi uygun çözünürlükte görüntü serisi ve 0.3 µm Aralık z boyut toplamak.
  3. 3D modeli yeniden yapılanma
    Not: Açık kaynak yazılım 3D modeli yeniden yapılanma için aşağıda açıklanan işlevlerin çoğunu gerçekleştiren oluşur.
    1. Z kesitli resim serisi dosyası 3D modeli yeniden inşası için confocal mikroskop ile İlişkili Yazılım alın.
    2. DAPI ve C. burnetii hemocyte ifade bir EGFP ifade mCherry ile lekeli çekirdeklerin ortak yerelleştirme gösterilen bir hücre seçin. Kırpma görüntü serisi yalnızca tek hücre içerir.
    3. Yazılımın önceden paketlenmiş algoritması kullanarak 3D modeli yeniden yapılandırır 3B görüntüleyici seçeneğini seçin. 3D temsil karışım, yüzey ve karışık seçenekleri arasında istediğiniz türü seçin. Bu yöntemde, hemocytes, çekirdek ve C. burnetii yüzey modeller kullanılarak gösterilir.
    4. Tutmak belgili tanımlık fare düğme ve belgili tanımlık perde imleci sürükleyerek 3D yeniden oluşturulan hücre çeşitli görüntüleme konumlardan gözlemlemek. Hücre yönlendirme ve görüntü optimize etmek için modellenmiş ışık kaynağının konumunu ayarlayın. Diğer seçenek saydamlık, en az ve en fazla eşik, Specular, Ambient, Shineness ve gama için görüntü optimize etmek için vardır.
    5. Kesit hemocyte iç içeriğini görselleştirmek için kırpma ve parça komutlarını kullanarak modeli üzerinden alın.

4. uygulama gen ve/veya protein analizi için

  1. IIV6 ve Listeria, enfeksiyonla takip koşullar sonraki qRT PCR hücreleri veya Western blot analizi daha önce açıklanan21 ve aşağıdaki prosedürü yerine getirin.
    Not: Tablo reçetesi qRT-PCR astar ve Western blot için antikorlar için bakın.
  2. PCR ürünlerinin özel jel elektroforez tarafından güçlendirilmiş ürün uygun uzunlukta sağlamak için yukarıda açıklanan22, analiz.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Hemocytes ex vivo enfeksiyonu, 3 × 10 toplamak yaşamak için6 hemocytes 200 Drosophila 3rd INSTAR larvaları elde. Bizim yöntem geliştirmek için bir takım farklı teknikler denendi. Bireysel larva diseksiyon en fazla 1,5 saat sürer ve ortalama ~ 8000 hücre elde edilen en çok hangi koleksiyonun sonuna tarafından canlı değildi bu yöntemi18, kullanarak. Daha sonra hemocytes bulunan hemolymph çıkarmak için çalıştı, bir cam kılcal tüp19ama kılcal kütikül ile tıkanmış oldu kullanarak bir saat 20 larvaları üzerinden malzeme ve hemolymph değildi cam tarafından etkili bir şekilde alınması mümkün Kılcal. Son olarak, biz mekanik olarak toplu iş iyi forseps12ile 20-50 larva kütikül bozulur ve hemolymph kolay alımı için bir havuz yaptı. Bu hemocytes büyük miktarda kolay topluluğu çok sayıda larva (Tablo 1) izin verdi.

Ayıklanan hemocytes canlı ve enfeksiyon için uygun olduğunu belirtmek için bir Trypan mavi dışlama tahlil canlı hemocytes burada (Şekil 6A) sunulan yöntemiyle çıkarılan yüzdesini hesaplamak için gerçekleştirildi. Buna ek olarak, biz nerede hedefi oldu yalıtmak ve dolaşan ve yerleşik arasında ayırt etmek için bir mekanik bozulma yöntem geliştirmek için daha önce yayımlanmış bir yöntem hemocyte çıkarılması için bizim yöntemiyle göre kişiden Drosophila hemocytes larva23. 10 bağımsız deneysel izolasyonların üzerinden iki yöntem arasındaki karşılaştırma biz hücre canlılığı yöntemi burada sunulan (Şekil 6A); kullanma biraz daha fazla gözlenen Ancak, Petraki ve arkyönteminden. yakın iki katı kadar hemocytes her 10 disseke larva (Şekil 6B) vermiştir. Hemocytes Petraki ve arkdan sayısının artmasına nedeni. Bu yöntem ikamet (sesil) hemocytes yanı sıra dolaşımdaki hemocytes toplar yöntemidir. Burada sunulan yöntemi ile çıkarılan hücreleri aslında hemocytes olduğunu onaylamak için biz transgenes ters yönde harekete geçirmek sıra (UAS) bağlayan hemocytes dolaşan GAL4 sürüş hemolectin (Hml) düzenleyici için içeren bir sinek çizgi için kullanılması Gelişmiş yeşil flüoresan protein (EGFP) transkripsiyon ve hemocytes ifadede etkinleştirin. Hemocytes üzerinden hml-GAL4 > UAS-EGFP larva sabit odacıklı coverglass slaytlar elde, permeabilized ve lekeli ile DAPI daha önce açıklandığı gibi21. Şekil 7 en DAPI pozitif hücreler de EGFP pozitif olduğunu gösterir. Ortak ifade miktar üzerinden birden çok resmi, gerçekleştirilen bu %86±9 izole hücre hesaplanan hemocytes vardı.

Yenilikçi 3D modelleri ex vivo veya içinde vivo C. burnetii enfeksiyonu takip 3rd INSTAR larvaları çıkarılan Drosophila hemocytes içine patojen işgalinin protokolünde. C. burnetii enfeksiyon bakteri mCherry hızlı beri görüntü başardık. Virüslü hemocytes lekeli ve düzeltildi sonra DAPI, EGFP ve confocal mikroskobu kullanılarak mCherry için görüntüsü. Ex vivo ve in vivo C. burnetii enfeksiyonları için neredeyse % 100 hemocyte enfeksiyon oranları da mCherry sergilenen EGFP pozitif hücreler yüzdeye göre belirlenen, sinyal. Bir MOI 10 GE/hücre hücreleri%24100'ünü enfeksiyonu neden ex vivo enfeksiyonu için kullanılan bu yana bu bekleniyordu. Larva mCherry bir yüksek-titresi damlacık içinde yerleştirilir bu yana vivo içinde enfeksiyonları ile ilgili ifade -C. burnetii (5,95 × 109 GE/mL), bakteri sayısını kabaca 10,000-fold hemocytes larva başına sayısı yüksektir. Bu nedenle, bir % 100 enfeksiyon oranını vivo içinde enfeksiyonlar için bekleniyor.

Ardından, Z-bölümler 3D tüm hücre görselleştirmek ve C. burnetii hücrenin iç varlığını doğrulamak için hemocyte yoluyla toplanmıştır. Şekil 4 hemocyte (yeşil içinde) şeffaf kesit ile hücrenin iç görülen C. burnetii (kırmızılı) gösterir. Görüntüleri de hemocyte ve C. burnetiitekrar C. burnetii cross-sectioned hemocytes iç gösteren, yüzeylerin temsil eden bir 3D modeli (Şekil 5) içine yeniden. İlginçtir, in vivo-virüslü hemocytes büyük sitoplazmik uzantıları sergilendi ve ex vivoise doğada düz-virüslü hemocytes vardı daha küresel (Şekil 5). Bu lamellocytes içinde vivoiçinde daha büyük bir nüfusa gösterebilir-enfekte nüfus ve plasmatocytes ex vivo nüfusu7. Lamellocyte farklılaşma genellikle parazitik eşek arısı enfeksiyon25sırasında bağlı iken, Drosophila larvaları yaralama da lamellocyte farklılaşma26ikna etmek yeterli olur. Son olarak, burada sunulan deneylerde kullanılan değil iken GFP ifade biçimlerinin Listeria27 ve hemocyte enfeksiyon 3D modeller oluşturmak için kullanılan olabilir IIV628 . Bunun yerine, Listeria- ve IIV6-enfekte hemocytes Western blot ve qRT-PCR deneyler için kullanılmıştır.

Burada sunulan yöntemini kullanarak, enfeksiyonlar gerçekleştirilen ex vivo ve in vivo görüntüleme için. Buna ek olarak, patojen mRNA ve protein analizi ex vivo enfeksiyonları takip ettim. Özellikle, ayıklanan hemocytes IIV6 ile enfekte ve qRT-PCR analiz uygulanmıştır. IIV6-193R, sözde inhibitörü olan apoptozis29, sahte ve IIV6 enfekte hücreleri (Şekil 8A) arasında için kodlar viral bir gen önemli ölçüde daha yüksek seviyelere gösterdi. Elektroforez güçlendirilmiş ürünlerin bir grup IIV6-193R gen ürününün virüslü örnek, ama değil sahte enfekte örnek (Şekil 8B) varlığını doğruladı. RpII endojen denetimi için güçlendirilmiş bantları tüm örnekleri bulundu ve IIV6 enfeksiyon S2 hücrelerdeki pozitif bir denetim olarak gerçekleştirilen. IIV6 enfeksiyonlar MOI 1 TCID50/cell gerçekleştirilen beri hücreleri yaklaşık % 50'si enfekte, Poisson dağılımı24tarihinde göre bekleniyordu.

Sahte veya enfekte Listeria -hemocytes toplam protein 1, 2 ve 4 h sonrası enfeksiyon toplanan ve protein konsantrasyonu Bicinchoninic asit (BCA) tahlil tarafından belirlendi. hücrelerin % 100 MOI 10 CFU/hücre24yaşından beri virüslü ex vivo olması bekleniyor. Western blot Listeriavarlığını doğruladı-4 h sonrası enfeksiyon (Şekil 9) tarafından elde yüksek ile enfekte hemocytes protein ürünleri türetilmiş. Listeria inoculum Listeriatespiti için pozitif kontrol kullanılan-belirli gruplar. Aktin varlığı hemocyte örneklerinde yükleme protein düzeyleri onaylamak için gösterilir. Birlikte ele alındığında, bu sonuçları burada sunulan yöntemiyle çıkarılan hemocytes her iki viral ve bakteriyel enfeksiyon deneyleri için uygun olduğunu gösterir.

Figure 1
Resim 1 : Anahat ekipman ve malzeme hemocyte çıkarma için kullanılan. Ekipman ilk önce diseksiyon hazırlanmıştır. A) çekti cam kapiller geri mineral yağ ile dolu olduktan sonra nanoinjector eklenir. B) yuvarlak ucu cam kılcal bir 100 µm dış çap oluşturmak için forseps ile kırılmıştı. B') DHIM tarafından kılcal hücre kirlenmesini önlemek için yukarı çekildi ve hava kabarcıkları petrol ve DHIM arasında açık bir ayrım yapmak tanıtıldı. C) larvaları yemek şişeleri aldı ve bir hücre süzgeç yerleştirilir. C') larvaları steril suda yıkanmış ve su ile bir görev silme, D kaldırılır) larva microcentrifuge tüp içine transfer ve CO2 gaz ile anestezi. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Figure 2
Resim 2 : Zaman çizelgesi ve akış grafiği hemocytes çıkarım için. A) larvaları manikür açmadan önce onların dorsal tarafta yerleştirilir. B) kütikül ince sivri uçlu forseps ve kapiller iğne ile bozulur. C) hemolymph parafin film kan kaybından öldü. D) hemolymph 20-50 larvaları üzerinden takımlık cam kapiller ve nanoinjector ile alınır. E) hemolymph ve hemocytes 500 µL bir hemasitometre ile sayılması için DHIM içeren bir microcentrifuge tüp içine aktarılır. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Figure 3
Şekil 3: In vivo enfeksiyon. a) Drosophila meyve suyu ağar kaplamalar ve Maya Yapıştır enfekte vivo içinde larvalar kuluçka için kullanılır. Kesim agar tabak içinde larvalar uzun ömürlü (gri oklar) kolaylaştırmak için yapılır. B) 0,001 mm sivri tungsten iğne parafin film kullanarak forseps için eklenir. C) 0,001 mm sivri tungsten iğne ucu. D) stereo mikroskop altında parafin filmde patojen havuzunda tungsten iğne ile larva diktim. E) pricked larvalar agar plaka yerleştirilir. F) plaka parafin film ile mühürlü ve nemli kağıt havlu kapsayıcısında üzerinde uygun zamana kadar devam etti. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Figure 4
Şekil 4 : Kesit hemocytes içine patojen işgalinin. Dan 3D confocal tarama patojen enfekte hemocytes çıkarılan bölümler. A, B) xy bölümleri gösterir C. burnetii (kırmızı beyaz ok uçları ile işaretlenmiş) hemocyte iç. Gri ok uçları hemocytes çekirdekleri göster. A', A ", B') yz ve xz bölümü görüntüler dahil görünümleri göster C. burnetii Invasion 2 ek görüntüleme puan üzerinden hemocytes içine. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Figure 5
Şekil 5 : 3D modelleri hemocytes içine patojen işgalinin. C. burnetii işgali hemocytes içine yeniden oluşturulan 3D modelleri ex vivo ve in vivo enfeksiyonu takip oluşturulur. Modeli serbestçe yazılımı kullanarak döndürülebilir; Burada 6 puan ile ilgilenen hemocyte yeşil, kırmızı (beyaz ok uçları) C. burnetii ve çekirdek mavi (gri ok uçları) ile gösterilir. Patojen işgal hücreler iç gösteriler kesit resimleri de gösterilir. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Figure 6
Şekil 6 : Yüzde ve canlı hemocytes nüfusu. Hemocytes Petraki vd yöntemiyle 10 3rd INSTAR larva gruplardan elde ve yöntem burada sundu. A) canlı hemocytes yüzdesi her teknik için Trypan mavi dışlama tahlil tarafından hesaplanır. B) hemocytes toplam nüfusu iki teknik arasında karşılaştırıldı. Çubuk grafikler ortalama ± standart sapma N temsil eden yöntem çıkarma ve tahlil türü başına 10 biyolojik çoğaltır =. P-değerleri iki kuyruklu öğrenci T-testi varsayarak eşit olmayan varyans gösterilir. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Figure 7
Şekil 7 : Ayıklanan hemocytes hemolectin sürücüyü kullanarak görüntüleri. Hemocytes 80 w1118larvaları elde; P {w [+ mC] = Hml-GAL4.Δ} 2, P {w [+ mC] = UAS-2xEGFP} AH2. Hml organizatörü GAL4 hemocytes, EGFP transkripsiyon ve ifade geçirmek UAS bağlayan dolaşan kullanıyor. Hemocytes sabit ve yukarıda açıklanan20DAPI ile lekeli. Hemocytes üzerinde odacıklı coverslips monte ve fark girişim sözleşme (DIC) ve Floresan Mikroskobu görüntüsü. Mavi kanal DAPI ve yeşil kanal ile lekeli çekirdeği EGFP ifade hemocytes gösterir. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Figure 8
Şekil 8 : qRT-PCR ve jel elektroforez. IIV6-193R Gen ifadesinin qRT-PCR IIV6 enfekte hemocytes içinde sadece tarafından gözlenmiştir. A) 193R gen ekspresyonu iç denetimin RpII, normalleştirilmiş ve bir oranı olarak sundu. 193R bu örnekler tespit edilmedi beri döngüsü numarası sahte enfekte hemocytes için keyfi olarak maksimum devir sayısı 40 analiz için ayarlandı. Verileri temsil eden ortalama ± standart sapma N grubu başına 3 biyolojik çoğaltır =. P-değeri iki kuyruklu öğrenci T-testi eşit olmayan varyans varsayarak gösterir. B) qRT-PCR ürünleri özel jel elektroforez tarafından gösterilir. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Figure 9
Şekil 9 : Western Blot analizi. Listeria antijenleri ve aktin sahte ve Listeriaifade-3rd gelen virüslü hemocytes biçim Drosophila larva 1, 2 ve 4 h sonrası enfeksiyon (özel dedektif) Western blot tarafından belirlenir. Toplam protein konsantrasyonları Bicinchoninic asit (BCA) tahlil tarafından toplam protein jel her şeritte yüklü miktarda normalleştirmek için belirlenmiştir. Hemocytes bulaştırmak için kullanılan inoculum bir olumlu denetim örnek olarak kullanılmıştır. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Yöntemi Larva ortalama sayısı
hemocyte çıkarma için
Ortalama toplam hemocytes sayısı
hemolymph
kapiller çıkarma
(Bu yöntem)
192.44 (SD: 86.05) 4,56 x 105 hücreleri (SD: 5,83 x 105)
(Aralığı: 70-390, N = 25 denemeler) (Aralığı: 1,20 x 105 - 2.95 x 106 hücreleri)
bireysel
larva diseksiyon
26.67 (SD: 11.55) 8.33 x 103 hücre (SD: 6,66 x 103)
(Aralığı: 20-40, N = 10 deneme) (Aralığı: 4,00 x 103 - 1.60 x 104 hücreleri)
larva
kapiller ayıklama *
N/A * N/A *
* hemocytes kılcal iğne tıkanma nedeniyle bu yöntemi kullanarak elde edilebilir koyamadık

Tablo 1: sayısı disseke larva ve farklı yöntemlerle hemocytes çıkarılan. Ortalama sayıda disseke larva ve ayıklanan hemocytes burada sunulan Yöntem ve diğer yöntemleri arasında karşılaştırıldı. Bizim yöntem daha yüksek sayıda larva ve hemocytes koleksiyonunda sonuçlandı. Larva kapiller ayıklama yöntemi de denendi ama hemocytes kılcal ucu tıkanma nedeniyle elde edilebilir koyamadık.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Nasıl konak hücreleri enfekte olma daha iyi anlamak için özellikle daha önce denenmemiş patojen ve hücre tipi kombinasyonları4' te deneme zaman patojen hücrelerdeki lokalizasyonu netleştirmek önemlidir. Enfeksiyonu takip hücresel yanıt basamaklı eğitim üretken patojen işgali gösterebilir iken, görüntüleme ve hücresel yanıt verilerini kombinasyonu patojen işgali ve enfeksiyon göstermek için önemlidir. Patojen işgalinin 2D görüntüleri ana hücreleri gösteren raporlar üretken enfeksiyon göstermek eğiliminde iken, konak hücre içinde ilk patojen işgalinin zamanlama ile ilgili bazı sorular kalabilir. Böylece, 3D modelleri 2D görüntüleri z-Bölüm tarama yeniden bu soruları gidermek ve konak hücreleri (Şekil 4 ve 5) konumda patojen gösterir. Ancak, birincil hemocytes kullanarak bir hücre kültüründe onların uzun ömürlü kısıtlamadır. Devletler bir önceki raporu hücre kültür medya hayatta hemocyte sadece 8 h18yaşında ve bizim enfeksiyon protokolünde 24 h, ama artık deneyleri yapmak başardık. Bu nedenle, yüksek düzeyde C. burnetii çoğaltma veya forma 2 gün sonrası enfeksiyon kadar başlamaz ve 4-6 gün sonrası enfeksiyon30 ' a kadar riayet büyük değil parasitophorous çarpıtması oluşumu gözlemlemek mümkün değildi .

Nerede son nokta deneyleri protein veya RNA analizi için kullanmak birçok deney için çok sayıda hücre genellikle sorgulama için yeterli malzeme üretmek için gereklidir. Western blot ve birincil hemocytes 3rd türetilmiş enfeksiyonunda patojen ölçüde soruşturma için qRT-PCR Drosophila larva biçim gibi örneğin, burada, bitiş noktası analizleri kullanırız. Böylece, yöntem burada sunulan hızlı larva diseksiyon ve ex vivo patojen enfeksiyon için yeterli canlı hemocytes içeren hemolymph toplanması üzerinde duruluyor. Bu yöntem yukarıya belgili tanımlık hemolymph ve hemocytes hızlı bir şekilde almak için nanoinjector kullanımını sunar. Hemocytes %25 içeren DHIM yerleştirilmesi FBS hemocyte hayatta kalmak için önemli olduğunu. Ayrıca, burada sunulan ex vivo enfeksiyonları için çok sayıda hemocytes ihtiyaç vardır. Melanization31,32,33önlemek için diseksiyon ve hemocyte koleksiyonu hızla yürütülmelidir. 18,19,23hemocyte ayıklama için diğer yöntemleri var iken, hemocytes ex vivo enfeksiyon için yeterince büyük bir sayı toplamak için bu yöntemleri süresi çok uzun. 100 µm iyi ipucu kapiller iğne tıkanma için neden olabilir diğer organlara kadar almadan hemolymph alımı için faydalıdır. Bir nanoinjector bir micromanipulator sahne alanı'na iliştirildiğinde de otomatik ve ayak pedalı, Kullanıcı Drosophila larva hızlı diseksiyon üzerinde odaklanmak ve larva çevreleyen olmadan hemocytes çoğu zaman azaltmak için izin doku veya hücre kültür ortamı. Yine de, bir pipet kullanımı da transfer için hemolymph DHIM için almak kullanılabilir. Buna ek olarak, bizim Yöntem CO2 gaz larva diseksiyon öncesinde anestezi için kullanır; Parafin film kaplama ile soğuk bir blok kullanımı başka bir uygun yöntem23' tür. Son olarak, DHIM bir damla larva diseksiyon hemolymph yayın sırasında parafin filmin yapışmasını kaybolur hemocytes sayısını azaltabilir ama tarafından kapiller iğne alımı için gerekli süreyi artırır.

Bir ortak açılış ve larva kütikül diseksiyon sırasında oluşan yaralanma bağışıklık yanıt olarak Drosophila melanization31,32,33olduğunu. Hemocytes emme sırasında 10 dk çıkarma takip melanization DHIM erken hemocytes gözlemlemek. Melanization hızlı bir süreç olduğu için bu hücreleri patojenin enfeksiyon deneylerden dışlanacak. Ayrıca, Anti-koagulant phenylthiourea DHIM9yaralama sırasında phenoloxidase harekete geçirmek sistem ve melanization inhibe eklenebilir. Yine de, melanization ve Apoptozis Drosophila, doğuştan gelen bağışıklık yanıtı olarak, onların seviyeleri quantified aşağıdaki hemocyte çıkarma ve burada açıklanan yöntemleri kullanarak stimülasyon olabilir.

Protein veya RNA malzeme büyük miktarlarda kurtarma gibi Western blot ve qRT-PCR teknikleri için bir gereksinimdir, RNAseq gibi yeni teknikler daha az giriş malzeme, bir tek hücre34üzerinden yüksek kaliteli toplam RNA'ın olduğu kadar az 10 pg gerektirir. Bunlar deneysel sorular ilginç yükseltmek ve Drosophila hemocytes kristal hücreleri, plasmatocytes ve lamellocytes7içeren türdeş olmayan bir nüfus olduğundan, bir sorgulamaya başlayabilir gibi deneyler her hücrenin transkripsiyon yanıtı35yazın. Örneğin, Kurucz vd., için kullanılabilir Drosophila hemocyte alt kümeleri yalıtmak için kullanılabilecek antikorlar geliştirdik transkripsiyon veya çeşitli uyaranlara takip proteomik profil oluşturma. Ayrıca, tek hücre RNAseq teknoloji son gelişmeler transcriptomes başlangıçta her hücre türü36,37,38, ayırmak için her hücre tür antikor kullanımı olmadan tanımlar mısınız 39. Ayrıca, bir soru ile ilgili gen düzenlemesi nasıl insan kan hücresi soy anlamamıza yardımcı olabilir hemocyte alt kümeleri içinde kökenli ve karşılaştırmalı genomik aracılığıyla eski organizmalar üzerinden çabaları gelişti sorabilirsiniz. Bunlar gibi sorunlarla mücadele Deneysel teknikler geniş bir arada gerektirir ve çok sayıda omurgasız larvaları üzerinden hemocytes yalıtım gerekli olduğunda burada açıklanan tekniği bu çabaların için yararlı olabilir.

Burada, biz 3D kombinasyonu enfeksiyon onaylamanız sayısal, biyokimyasal verilerle modeller öneririz. Gelecekte çalışmaları, bağışıklık yanıtı ve patojen işgali konak hücreleri içine mekanizmasının ana bilgisayar proteinler mikroskobu analiz için ortak boyama tarafından gözlemlemek için burada açıklanan yöntemleri kullanabilirsiniz.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Yazarlar onlar rakip hiçbir mali çıkarları var bildirin.

Acknowledgements

MCherry ifade Coxiella burnetiistokları sağlamak için Dr Robert Heinzen için minnettarız. Biz Dr Luis Teixeira omurgasız yanardöner virüs 6 ve Bloomington stok merkezi sinek stokları sağlamak için verdiğiniz için teşekkür ederiz. Bu projenin kısmen NIH hibe R00 AI106963 (A.G.G.) ve Washington State Üniversitesi tarafından finanse edildi.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Schneider's Drosophila Medium  Thermo Fisher Scientific (Gibco) 21720024 1.1.1), 2.1.2)
Fetal Bovine Serum GE Healthcare Life Sciences  (HyClone) SH30070.03HI 1.1.1), 2.1.2)
Filter (0.22 µL) RESTEK 26158 1.1.1)
Strainer (100 µm) Greiner bio-one 542000 1.2.1), 2)
Stereo microscope Amscope SM-1BSZ-L6W 1.2), 2)
Glass capillary Fisher Scientific 21-171-4 1.1), 1.2), 2)
Capillary puller Narishige International USA, Inc. PC-10 1.1.3)
Mineral oil Snow River Products 1.1.4)
Nanoinjector Drummond Scientific Company 3-000-204 1.1), 1.2), 2.2)
Forceps VWR 82027-402 1.1.5), 1.2), 2), 3.1.7)
CO2 delivery apparatus Genesee Scientific 59-122BC 1.2), 2)
Trypan Blue Thermo Fisher Scientific (Gibco) 15250061 1.3)
Hemocytometer Hausser Scientific 3100 1.3)
24 well plate Greiner bio-one 662160 1.4), 2.2)
Coxiella burnetii - mCherry Dr. Heinzen, R. 1.4), 2.2)
Drosophila fruit juice plates Cold Spring Harbor Protocols 2.1) http://cshprotocols.cshlp.org/content/2007/9/pdb.rec11113.full
Agar Fisher Bioreagents BP1423-500 2.1.1.1)
Methyl paraben Amresco 0572-500G 2.1.1.2)
Absolute ethanol Fisher Bioreagents BP2818-500 2.1.1.2)
Welch's 100% Grape juice frozen concentrate, 340 mL Amazon B0025UJVGM 2.1.1.3)
Petri dishes, 10 x 35 mm Fisher Scientific 08-757-100A 2.1.1.4)
Microscope cover glass Fisher Scientific 12-545-80 1.4.4), 2.2.2)
Yeast, Bakers Dried Active MP Biomedicals 0210140001 2.1) Add 2 parts of water to 1 part of yeast (v/v)
Tungsten needle Fine Science Tools 10130-20 2.1)
Holding forceps VWR HS8313 2.1)
Paraformaldehyde Fisher Scientific FLO4042-500 3.1.3)
Triton X-100 Fisher Scientific BP151-500 3.1.3)
Bovine Serum Albumin Fisher Scientific BP9706-100 3.1.3)
4',6-diamidino-2-phenylindole Thermo Fisher Scientific 62247 3.1.4)
Antifade mounting medium Thermo Fisher Scientific P36930 3.1.6)
Confocal microsope Leica TCS SP8-X White Light Confocal Laser Scanning Microscope 3.2)
3D imaging reconstruction software Leica LASX with 3D visualization module 3.3)
Microscope slides Fisher Scientific 12-552-3 3.1.6)
Invertebrate iridescent virus 6 (IIV6) Dr. Teixeria, L. 4) PLoS Biol, 6 (12), 2753-2763, doi: 10.1371/journal.pbio.1000002, (2008)
Listeria monocytogenes ATCC strain: 10403S 4) Listeria monocytogenes strain 10403S (Bishop and Hinrichs, 1987) was grown in Difco Brain-heart infusion (BHI) broth (BD Biosciences) containing 50 µg/ml streptomycin at 30 °C.
DNase I Thermo Fisher Scientific(Invitrogen) 18068015 gDNA degradation
cDNA Synthesis Kit Bio-Rad 1708891 cDNA synthesis
IIV6_193R_F IDT qRT-PCR, 5'- TCT TGT TTT CAG AAC CCC ATT -3'
IIV6_193R_R IDT qRT-PCR, 5'- CAC GAA GAA TGA CCA CAA GG -3'
RpII_qRTPCR_fwd SIGMA-ALDRICH qRT-PCR, 5'- GAA GCG TTT CTC CAA ACG -AG
RpII_qRTPCR_rev SIGMA-ALDRICH qRT-PCR, 5'- TTG AGC GTA AGC ATC ACC -TG
SYBR Green qRT-PCR reagent Thermo Fisher Scientific K0251, K0252, K0253 qRT-PCR
Real-Time PCR System Thermo Fisher Scientific 4351107, 7500 Software v2.0 qRT-PCR
Anti-Listeria monocytogenes antibody abcam ab35132 Western blot
Anti-Actin antibody produced in rabbit SIGMA-ALDRICH A2066 Western blot
Anti-Rabbit IgG (H+L), HRP Conjugate Promega W4011 Western blot

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Hoffmann, J. A. The immune response of Drosophila. Nature. 426, (6962), 33-38 (2003).
  2. Regan, J. C., et al. Steroid hormone signaling is essential to regulate innate immune cells and fight bacterial infection in Drosophila. PLoS Pathog. 9, (10), 1003720 (2013).
  3. Yano, T., et al. Autophagic control of listeria through intracellular innate immune recognition in Drosophila. Nat Immunol. 9, (8), 908-916 (2008).
  4. Bastos, R. G., Howard, Z. P., Hiroyasu, A., Goodman, A. G. Host and Bacterial Factors Control Susceptibility of Drosophila melanogaster to Coxiella burnetii Infection. Infect Immun. 85, (7), (2017).
  5. Kacsoh, B. Z., Schlenke, T. A. High hemocyte load is associated with increased resistance against parasitoids in Drosophila suzukii, a relative of D. melanogaster. PLoS One. 7, (4), 34721 (2012).
  6. Tsuzuki, S., et al. Switching between humoral and cellular immune responses in Drosophila. is guided by the cytokine GBP. Nat Commun. 5, 4628 (2014).
  7. Kurucz, E., et al. Definition of Drosophila. hemocyte subsets by cell-type specific antigens. Acta Biol Hung. 58, Suppl 95-111 (2007).
  8. Neyen, C., Bretscher, A. J., Binggeli, O., Lemaitre, B. Methods to study Drosophila immunity. Methods. 68, (1), 116-128 (2014).
  9. Arefin, B., et al. Apoptosis in Hemocytes Induces a Shift in Effector Mechanisms in the Drosophila. Immune System and Leads to a Pro-Inflammatory State. PLoS One. 10, (8), 0136593 (2015).
  10. Rus, F., et al. Expression pattern of Filamin-240 in Drosophila blood cells. Gene Expr Patterns. 6, (8), 928-934 (2006).
  11. Kurucz, E., et al. Hemese, a hemocyte-specific transmembrane protein, affects the cellular immune response in Drosophila. P Natl Acad Sci USA. 100, (5), 2622-2627 (2003).
  12. Markus, R., et al. Sessile hemocytes as a hematopoietic compartment in Drosophila melanogaster. P Natl Acad Sci USA. 106, (12), 4805-4809 (2009).
  13. Bretscher, A. J., et al. The Nimrod transmembrane receptor Eater is required for hemocyte attachment to the sessile compartment in Drosophila melanogaster. Biol Open. 4, (3), 355-363 (2015).
  14. Zettervall, C. J., et al. A directed screen for genes involved in Drosophila blood cell activation. P Natl Acad Sci USA. 101, (39), 14192-14197 (2004).
  15. Flynt, A., Liu, N., Martin, R., Lai, E. C. Dicing of viral replication intermediates during silencing of latent Drosophila viruses. P Natl Acad Sci USA. 106, (13), 5270-5275 (2009).
  16. Jovel, J., Schneemann, A. Molecular characterization of Drosophila cells persistently infected with Flock House virus. Virology. 419, (1), 43-53 (2011).
  17. Stoepler, T. M., Castillo, J. C., Lill, J. T., Eleftherianos, I. A simple protocol for extracting hemocytes from wild caterpillars. J Vis Exp. (69), e4173 (2012).
  18. Sampson, C. J., Williams, M. J. Protocol for ex vivo incubation of Drosophila primary post-embryonic haemocytes for real-time analyses. Methods Mol Biol. 827, 359-367 (2012).
  19. Nehme, N. T., et al. A model of bacterial intestinal infections in Drosophila melanogaster. PLoS Pathog. 3, (11), 173 (2007).
  20. Drosophila fruit juice egg plates. Cold Spring Harbor Protocols. (9), pdb.rec11113 (2007).
  21. Ahlers, L. R., Bastos, R. G., Hiroyasu, A., Goodman, A. G. Invertebrate Iridescent Virus 6, a DNA Virus, Stimulates a Mammalian Innate Immune Response through RIG-I-Like Receptors. PLoS One. 11, (11), 0166088 (2016).
  22. Lee, P. Y., Costumbrado, J., Hsu, C. Y., Kim, Y. H. Agarose gel electrophoresis for the separation of DNA fragments. J Vis Exp. (62), (2012).
  23. Petraki, S., Alexander, B., Bruckner, K. Assaying Blood Cell Populations of the Drosophila melanogaster Larva. J Vis Exp. (105), (2015).
  24. Figliozzi, R. W., Chen, F., Chi, A., Hsia, S. C. Using the inverse Poisson distribution to calculate multiplicity of infection and viral replication by a high-throughput fluorescent imaging system. Virol Sin. 31, (2), 180-183 (2016).
  25. Rizki, T. M., Rizki, R. M. Lamellocyte differentiation in Drosophila. larvae parasitized by Leptopilina. Dev Comp Immunol. 16, (2-3), 103-110 (1992).
  26. Markus, R., Kurucz, E., Rus, F., Ando, I. Sterile wounding is a minimal and sufficient trigger for a cellular immune response in Drosophila melanogaster. Immunol Lett. 101, (1), 108-111 (2005).
  27. McCormack, R., et al. Perforin-2 Protects Host Cells and Mice by Restricting the Vacuole to Cytosol Transitioning of a Bacterial Pathogen. Infect Immun. 84, (4), 1083-1091 (2016).
  28. Ozgen, A., et al. Construction and characterization of a recombinant invertebrate iridovirus. Virus Res. 189, 286-292 (2014).
  29. Jakob, N. J., Muller, K., Bahr, U., Darai, G. Analysis of the first complete DNA sequence of an invertebrate iridovirus: coding strategy of the genome of Chilo iridescent virus. Virology. 286, (1), 182-196 (2001).
  30. Ghigo, E., Colombo, M. I., Heinzen, R. A. The Coxiella burnetii parasitophorous vacuole. Adv Exp Med Biol. 984, 141-169 (2012).
  31. Liu, F., et al. Drosophila melanogaster prophenoloxidases respond inconsistently to Cu2+ and have different activity in vitro. Dev Comp Immunol. 36, (3), 619-628 (2012).
  32. De Gregorio, E., et al. An immune-responsive Serpin regulates the melanization cascade in Drosophila. Dev Cell. 3, (4), 581-592 (2002).
  33. Kari, B., et al. The raspberry Gene Is Involved in the Regulation of the Cellular Immune Response in Drosophila melanogaster. PLoS One. 11, (3), 0150910 (2016).
  34. Wu, A. R., et al. Quantitative assessment of single-cell RNA-sequencing methods. Nat Methods. 11, (1), 41-46 (2014).
  35. Buettner, F., et al. Computational analysis of cell-to-cell heterogeneity in single-cell RNA-sequencing data reveals hidden subpopulations of cells. Nat Biotechnol. 33, (2), 155-160 (2015).
  36. Nevil, M., Bondra, E. R., Schulz, K. N., Kaplan, T., Harrison, M. M. Stable Binding of the Conserved Transcription Factor Grainy Head to its Target Genes Throughout Drosophila melanogaster Development. Genetics. 205, (2), 605-620 (2017).
  37. Yang, C. P., et al. Transcriptomes of lineage-specific Drosophila neuroblasts profiled by genetic targeting and robotic sorting. Development. 143, (3), 411-421 (2016).
  38. Jaitin, D. A., et al. Dissecting Immune Circuits by Linking CRISPR-Pooled Screens with Single-Cell RNA-Seq. Cell. 167, (7), 1883-1896 (2016).
  39. Karaiskos, N., et al. The Drosophila embryo at single-cell transcriptome resolution. Science. 358, (6360), 194-199 (2017).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics