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DOI: 10.3791/64665-v
Andre Lai*1, Rachel Rex*2, Kristen L. Cotner1, Alan Dong3, Michael Lustig1,3, Lydia L. Sohn1,2
1Graduate Program in Bioengineering,University of California, Berkeley and University of California, San Francisco, 2Department of Mechanical Engineering,University of California, Berkeley, 3Department of Electrical Engineering and Computer Sciences,University of California, Berkeley
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
这里介绍的是一种使用称为机械节点孔传感(mechano-NPS)的基于电子学的微流体平台对单个细胞进行机械表型分析的方法。该平台保持1-10个细胞/秒的中等通量,同时测量细胞的弹性和粘性生物物理特性。
我们提出了一种基于电子学的微流体平台,用于单细胞的机械表型。具体来说,我们以每秒高达10个细胞的吞吐量测量单细胞弹性和粘性特性。我们的方法需要最少的样品制备,利用简单的电子测量,取代昂贵的光学硬件和复杂的图像分析,并且是非破坏性的,这意味着我们的方法与下游分析兼容。
Mechano-NPS已被应用于许多细胞类型,包括原代样品,并测量了亚细胞成分对单细胞粘弹性的影响。它可用于了解细胞行为、确定疾病进展或监测药物反应。首先,从等离子体室中取出等离子体处理的组件。
用预制电极在玻璃基板上吸取二对一的甲醇和去离子水溶液。然后将PDMS模具,特征面朝下放在玻璃基板的顶部。将设备放在立体镜下方以调整对齐方式。
烘焙对齐的设备以完成设备制造。准备压力源、PCB、台式硬件和数据采集软件。接下来,将夹具接头引脚与PCB上的孔对齐,并将夹具弹簧加载引脚与微流体装置上的电极接触垫对齐。
然后将夹具针脚插入 PCB 孔中,确保弹簧加载引脚与电极接触垫保持对齐。设置并连接电子硬件。接下来,设置值以初始化数据采集会话并设置采集的采样率。
根据所选细胞系的适当细胞培养方案培养和制备细胞。然后将细胞悬浮在2%FBS和1X PBS的制备溶液中,浓度在每毫升100,000至500,000个细胞之间。在实验期间将细胞保持在冰上。
要将电池装入微流体装置中,请用剃须刀片切割30厘米的聚四氟乙烯管。使用注射器将细胞样品放入管子末端,并将同一端连接到设备入口。最后,将管道的另一端连接到微流体压力控制器。
要运行实验,请在压力控制器软件上设置所需的恒定驱动压力,并允许样品填充设备。如果在微流体通道中形成气泡,请使用死胡同填充。堵住设备出口并在入口处施加低压,以迫使空气通过透气 PDMS 排出。
然后通过旋转电源上的电压旋钮来设置所需的电压,并通过按 on 按钮启用电压。打开电流前置放大器并将灵敏度设置得尽可能低。或者,将增益设置得尽可能高,不要使前置放大器过载或超过DAQ的最大模拟输入电压。
按 MATLAB 功能区菜单中的绿色"运行"按钮开始数据采集脚本 NPS。m,然后开始采样并保存数据。要结束实验,请按实时绘图窗口左下角的"停止"按钮以结束数据采集脚本。
然后按开按钮禁用电源输出。最后,在压力控制器软件中将压力源设置为零压力。对于数据分析,原始信号应具有足够的信噪比,以滤除噪声并提取重要成分。
至关重要的是,来自每个节点的电流信号上升应该足够鲁棒,以便可以从差分信号中轻松识别子脉冲。恶性MCF-7细胞比非恶性MCF-10A细胞具有更大的wCDI分布,表明恶性MCF-7细胞比非恶性MCF-10A细胞更柔软。用乳腺菌素处理的MCF-10A和MCF-7细胞显示wCDI增加。
区分两种原代细胞类型的不同wCDI分布表明LEP细胞比MEP细胞更软。非恶性MCF-10A和未经处理的MCF-10A和MCF-7具有更大比例的细胞立即恢复,表明粘度低于恶性或乳腺菌素处理的对应物。如果实时电流读数异常,请停止实验并检查微流体通道。
确保没有气泡和堵塞,使细胞从入口自由流动到出口。因为我们的方法不会伤害细胞,所以可以进行下游分析,如RNA-seq或免疫荧光。这可能有助于揭示细胞具有不同机械表型的一些根本原因。
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