Modèles animaux de dépression - Modèle de désespoir chronique (MDP)

Les troubles affectifs, tels que les troubles dépressifs majeurs, sont parmi les maladies mentales les plus fréquentes et les plus difficiles et sont associés à une souffrance individuelle ^élevée1, à une augmentation du risque de ^suicide2 et à un fardeau socioéconomique ^{considérable3} pour la société. Malgré son impact, les options de traitement sont limitées et il est urgent de développer de nouvelles interventions antidépressives, en particulier en raison de la crise de l’innovation en psychopharmacologie au cours des dernières décennies. Afin de comprendre la physiopathologie de la dépression et de tester de nouveaux agents potentiels, des modèles animaux rationnels et valides sont nécessaires de toute ^urgence4. Pendant près d’un demi-siècle, le test classique de nage forcée (FST), décrit à l’origine par ^Porsolt5, a été utilisé comme induction et lecture pour le dépistage de nouveaux antidépresseurs potentiels. Il s’agit d’une période de nage forcée de 5 à 15 minutes le jour 1, d’une application unique de médicaments et d’une évaluation de la portion que les souris passent immobiles dans l’eau lors d’une autre période de nage le lendemain. Le temps d’immobilité a été considéré comme représentant un comportement d’évasion naturel manquant et on pensait qu’il était en corrélation avec le degré d’un état de dépression chez les ^souris5.

Le TSF classique a été fortement critiqué, non seulement dans la communauté ^{scientifique6,7,8} mais aussi dans les médias ^publics8. La plupart des controverses autour du TSF sont dues aux courtes périodes d’induction et de traitement de seulement 1 jour dans le paradigme classique. On a fait valoir que le TSF représente plutôt un modèle de traumatisme aigu qu’un état comparable à la dépression humaine. De plus, le test porsolt pourrait convenir comme outil de dépistage des agents antidépresseurs potentiels, mais il ignore le début retardé de l’action de nombreux antidépresseurs.

Le modèle de désespoir chronique (MDP)9,10,11,12,13,14,15, qui est dérivé du TSF original, représente un modèle animal plus approprié pour la dépression. Dans le MDP, le stress répété de la natation pendant 5 jours consécutifs évite les effets traumatiques aigus. En ne parvenant pas à échapper à une situation stressante répétée et continue, on pense que les souris développent un état d’impuissance, d’abandon et, en fin de compte, de désespoir. Ce paradigme est plus comparable aux théories psychologiques actuelles pour le développement de la dépression chez l’homme qu’un seul traumatisme aigu, qui est généralement vécu au début d’un trouble de stress post-traumatique. L’état de dépression qui en résulte dans le MDP est stable jusqu’à 4 ^semaines9 et ouvre donc la possibilité de périodes de traitement plus longues, qui sont mieux comparables aux conditions cliniques, où les antidépresseurs ont généralement besoin de 2 à 4 semaines pour montrer un ^bénéfice16.

L’évaluation de l’état dépressif devrait alors être multidimensionnelle. La mesure du temps d’immobilité, comme dans le TSF classique, est utile, mais ne doit pas être utilisée comme seul paramètre de résultat. Diverses méthodes, décrites ci-dessous, devraient être en mesure de cartographier différentes dimensions d’un état dépressif en fonction des symptômes généralement présents chez les humains déprimés. Les évaluations de lecture appropriées pourraient inclure le comportement d’échappement (temps ^{d’immobilité9,10,17}), le test de suspension de la queue (TST)⁹, l’anhédonie (test classique de préférence au saccharose (SPT)¹⁸), le comportement axé sur la motivation (test de préférence pour le saccharose piqué au nez (NPSPT)¹⁰), l’attente / comportement d’exploration (réponse au signal ^ambigu19; Test du labyrinthe ^Y9), électrophysiologie (mesures de la plasticité à long terme (potentialisation à long terme, LTP; dépression à long terme, LTD)²⁰), évaluations moléculaires (modèles d’activation des gènes précoces immédiats (IEG); autres modèles de ^stress21).

Théoriquement, un test de natation répété peut être utilisé pour induire un état dépressif sans aucune évaluation du temps d’immobilité. Cependant, il est fortement recommandé de fournir au moins une série expérimentale de preuve de concept avec des temps d’immobilité. De plus, le MDP représente un modèle approprié pour évaluer le développement d’un état dépressif en mesurant le temps d’immobilité pendant la phase d’induction. Des souches de souris spécifiques ou des souris traitées avant de nager peuvent être évaluées en ce qui concerne la résilience ou la vulnérabilité au stress et l’induction du désespoir comportemental.

Toutes les expériences ont été réalisées en accord avec les lignes directrices européennes (UE 2010/63) et conformément à la loi allemande sur la protection des animaux (TierSchG), FELASA (www.felasa.eu/guidelines.php), au guide de l’organisme national de protection des animaux GV-SOLAS (www.gv-solas.de/index.html) pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire, et ont été approuvées par le comité du bien-être animal de l’Université de Fribourg et par le Comité d’Éthique en Matiere d’Expérimentation Animale de Strasbourg (CREMEAS, CEEA35), ainsi que les autorités locales. Les deux sexes de souris de type sauvage C57Bl6N âgées de 10 à 14 semaines (70 à 98 jours postnatals, DPN) ont été utilisés pour des expériences de type sauvage (WT). En tant que lignée résistante au stress, la lignée de souris transgénique avec une expression améliorée des récepteurs de l’adénosine _A1 sous le promoteur neuronal CaMKII du cerveau antérieur a été ^{utilisée9,15}. Après les expériences, des souris ont été sacrifiées par luxation cervicale.

1. Préparation

1. Obtenir une licence de recherche animale, y compris une planification expérimentale approfondie.
2. Arrivée: À l’arrivée, élevez les animaux dans l’animalerie pour effectuer le MDP. Si les animaux sont achetés auprès d’un fournisseur externe, accordez-leur au moins 2 semaines pour s’adapter au nouvel environnement.
3. Logement: Pour loger les animaux, assurez-vous que les cages ne sont pas occupées avec le maximum d’animaux pour éviter un stress supplémentaire. Garantir que les conditions de logement sont conformes aux recommandations internationales en matière de logement de souris (pour plus d’informations, ^voir22) et les maintenir en permanence à tout moment.
   REMARQUE: Les conditions de logement standard les plus importantes comprennent des cages ventilées individuellement avec 25 à 120 changements d’air par heure, un cycle lumière-obscurité de 12 h, une température aussi stable que possible (au moins constante entre 20 et 24 ° C), une humidité aussi stable que possible (au moins entre 45% et 65%), du matériel de rongement et de l’abri présent, aucun logement individuel.
4. Point temporel : Effectuez toutes les expériences à la même heure de la journée.
   NOTE: Aucune évaluation directe n’a été faite pour vérifier l’influence de la journée sur le MDP, mais la plupart des tests comportementaux évaluant des états dépressifs montrent des variations en fonction de l’heure du jour23,24,25, et il est fort probable que le jour influence également le MDP.
5. Matériau de nidification : Réduisez le matériau de nidification au minimum. Assurez-vous qu’il n’y a pas de roues de roulement, etc., présentes dans la cage.
   REMARQUE: Un environnement enrichi empêche l’induction d’un état dépressif.
6. Composition du groupe : Permettre aux animaux de rester dans le même groupe tout au long de l’expérience. Regroupez les souris femelles même de différentes portées; regrouper les souris mâles avec les animaux mâles compagnons de litière. En raison de l’agressivité à venir, en particulier des hommes, mordre et coiffer peut devenir un problème, donc donner une importance particulière à la composition du groupe. Évitez les logements isolés, car la privation est un facteur de stress supplémentaire majeur.
7. Animaux: Utilisez différentes souches de souris, même si des différences spécifiques ont été ^{observées9,10}. Une souche de souris fréquemment utilisée est C57Bl6N. Étiquetez les souris afin d’effectuer une analyse statistique appariée (voir l’étape 3.2.4).
8. Sexe animal: Utilisez également des souris mâles et femelles.
9. Âge de l’animal : Assurez-vous que les animaux ont au moins 10 semaines (70 PND). N’utilisez pas d’animaux plus jeunes en raison de l’épuisement causé par la natation.
10. Équipement : Utilisez un cylindre/bécher en verre transparent d’une capacité d’au moins 2 L, d’un diamètre de 24 à 26 cm et d’une hauteur minimale de 30 cm. D’autres exigences comprennent un thermomètre pour vérifier la température de l’eau, des serviettes en papier, une lampe chauffante / tapis chauffant à lumière rouge ou une source de chauffage comparable, une minuterie, un chronomètre, un environnement calme. Filmez les séances de natation pour une analyse et une documentation hors ligne. Assurez-vous que la date et l’heure sont visibles en permanence sur la bande/le dossier, ainsi qu’un numéro de code d’identification pour chaque animal. Stockez les fichiers pour une analyse ultérieure et une référence ultérieure. Film du côté du cylindre de verre, pas d’en haut, pour faciliter l’analyse.

2. Phase d’induction

1. Avant de commencer
   1. Observez visuellement les animaux pour détecter les anomalies, y compris les signes de morsure ou de barbier. Exclure toute la cage de la série expérimentale si un animal présente des blessures minimes. Assurez-vous qu’un vétérinaire est disponible à tout moment, car les blessures s’aggraveront pendant l’expérience et empêcheront la poursuite à mesure que les souris deviennent plus agressives sous l’influence du stress.
   2. Obtenez le poids corporel de chaque animal avant de commencer l’expérience. Assurez-vous que la perte de poids souvent observée ne dépasse pas 20% du poids corporel initial. Exclure les animaux ayant une perte de poids de plus de 20% et les euthanasier immédiatement en raison de la souffrance élevée supposée.
   3. Remplir un bécher ou un cylindre avec de l’eau à température ambiante (22-23 °C) jusqu’à une hauteur d’au moins 20 cm du fond, en laissant un minimum de 10 cm entre la surface de l’eau et la bordure supérieure du récipient.
2. Performance
   1. Transférez doucement les animaux dans l’eau. Pendant la phase de nage, gardez l’animal sous observation continue pour éviter toute noyade. Observez à partir d’une position où l’animal ne peut pas voir l’expérimentateur (par exemple, observation vidéo depuis une pièce voisine).
   2. Réglez un chronomètre au début de l’expérience. Sortez les animaux de l’eau après 10 minutes en attrapant simplement leur queue. Séchez-les doucement avec une serviette en papier et placez-les soit sous une lampe chauffante, soit sur un tapis chauffant.
   3. N’évaluez qu’un seul animal à la fois. Assurez-vous que les animaux ne peuvent pas se voir (par exemple, séparez la cage de logement de la configuration expérimentale par un séparateur de pièce).
   4. Effectuez la séance de natation forcée pendant 10 minutes chaque jour pendant 5 jours consécutifs.
3. Finition
   1. Transférez les animaux dans leurs cages d’origine après cinq séances de natation et laissez-les se reposer pendant au moins 2 jours. Commencer des interventions de traitement spécifiques par la suite.

3. Évaluation d’un traitement antidépresseur

1. Cours de temps
   1. Évaluer les traitements aigus et subchroniques avec le MDP. En fonction de la question scientifique, adapter la période de repos entre la phase d’induction et la lecture.
   2. Pour évaluer la puissance aiguë et à action rapide de la kétamine, choisissez une courte période de repos (quelques jours) après la phase d’induction du MDP. Appliquez le traitement (c.-à-d. injection intrapéritonéale), puis effectuez l’évaluation (séance de natation supplémentaire ou méthode d’évaluation différente) peu de temps après.
   3. Pour évaluer les effets d’un traitement subchronique, augmenter la période de traitement jusqu’à 4 semaines (il n’y a pas de données disponibles pour des périodes de traitement plus longues). Par exemple, administrer le traitement oral à l’imipramine aux animaux pendant 4 semaines après la phase d’induction et évaluer par la suite.
   4. Commencez à évaluer l’état dépressif juste après la fin de la période de traitement, par exemple le lendemain. Choisissez toujours une période de temps identique pour les conditions de contrôle et expérimentales.
2. Temps d’immobilité
   1. Preuve de concept
      1. Pour utiliser le temps d’immobilité comme méthode de lecture, évaluez chaque jour de la phase d’induction et du jour du test pour fournir une preuve de concept (voir la figure 1). Pour d’autres séries expérimentales, réduisez les évaluations au jour 1, au jour 5 et au jour du test (voir la figure 1C).
      2. Enregistrez chaque expérience. Permettre à deux observateurs formés et aveugles aux conditions expérimentales d’effectuer l’analyse indépendamment. L’analyse vidéo permet à l’expérimentateur d’observer le comportement depuis une autre pièce, minimisant ainsi les interférences avec le test (par exemple, voir le fichier vidéo dans le matériel supplémentaire).
   2. Conditions: Observez et identifiez les trois conditions comportementales différentes pendant le test de natation: lutte, natation et immobilité. La plupart des chercheurs se concentrent sur l’immobilité; une différenciation supplémentaire entre la lutte et la natation est rarement utile et augmente considérablement la complexité et la durée de l’analyse.
      1. Lutte: L’animal essaie activement d’échapper à la situation menaçante. Cela implique de mettre en pied le côté du cylindre avec la tête orientée vers la paroi et les mouvements de tous les membres. La surface de l’eau est généralement légèrement turbulente.
      2. Natation: L’animal bouge au moins les deux pattes postérieures et parcourt une distance dans l’eau. Il cherche activement une issue mais n’essaie pas de surmonter la paroi de verre du navire. La natation n’implique pas de soulever les pattes au-dessus de la surface de l’eau et le corps est généralement orienté parallèlement aux parois du cylindre. Dans cette condition, les animaux se retournent fréquemment ou tournent en rond.
      3. Immobilité: L’animal reste immobile, dans une position glaciale, et ne bouge pas du tout ou ne bouge que la queue ou les pattes antérieures pour garder sa tête au-dessus de la surface de l’eau. Aucune distance n’est activement parcourue, à l’exception du flottement passif, et aucun mouvement dirigé des pattes avant n’est observé.
   3. Pistage
      1. Effectuez l’évaluation à l’aide d’enregistrements vidéo hors ligne. Utilisez les évaluations à l’aveugle de deux examinateurs indépendants et expérimentés et calculez des moyennes entre les deux évaluations.
      2. Répétez les évaluations si les résultats des deux évaluateurs diffèrent au-dessus d’une plage préalablement déterminée. Observez continuellement les souris car les différentes conditions changent fréquemment entre la lutte, la natation et l’immobilité.
      3. Utilisez un chronomètre pour mesurer le temps total passé dans une phase focalisée (généralement immobile) pendant les 10 minutes pendant lesquelles la souris reste dans l’eau. Considérez une latence courte d’environ une seconde avant de modifier la mesure du temps en cours (par exemple, si un animal reste pendant 20 s dans l’immobilité et ne se déplace qu’une fois pendant moins d’une seconde et revient à l’immobilité pendant 10 secondes supplémentaires, le temps d’immobilité total est de 30 s).
   4. Statistiques: En raison de l’écart type interindividuel relativement élevé (probablement causé par un transfert de comportement dépendant de la hiérarchie de la cage au test de natation), marquez ou étiquetez les animaux pour effectuer des tests paramétriques appariés (au lieu de non appariés) par la suite. Évaluer la distribution de normalité et, selon la question spécifique, effectuer une analyse de variance (ANOVA) avec des tests t post-hoc ou des tests t appariés pour comparer les différents groupes. Effectuez l’analyse en utilisant des valeurs absolues de temps d’immobilité (s) ou en tant que valeurs normalisées.
      1. Valeurs absolues : Indiquez les valeurs moyennes du temps d’immobilité du jour 1 au jour 5 et pour le jour d’essai ± SEM (voir Figure 1A). Comparez les valeurs moyennes pour le jour 1 et le jour 5, de préférence en utilisant un test t apparié pour valider l’induction d’un état déprimé. S’il y a une différence significative entre le jour 1 et le jour 5, comparez les valeurs moyennes du jour 5 aux résultats moyens du jour du test. Assurez-vous qu’une taille de groupe typique dans une expérience se situe entre 6 et 10 animaux et attendez-vous à des différences significatives entre les temps d’immobilité de base et post-induction chez les animaux de type sauvage. Il est difficile de comparer différents groupes avec un test t non apparié si des valeurs absolues sont utilisées en raison de différences de référence; par conséquent, utilisez des valeurs normalisées.
      2. Valeurs relatives/normalisées : Comparez les différents effets du traitement par normalisation au résultat individuel du jour 5, puis exprimez les valeurs en pourcentage du jour 5 (voir la figure 1B).
   5. Expériences de contrôle
      REMARQUE: La performance de natation peut être corrélée avec la locomotion. Les substances qui provoquent une hyper-locomotion pourraient induire des résultats faussement positifs (à savoir, une diminution du temps d’immobilité); ainsi que les agents sédatifs pourraient augmenter artificiellement le temps d’immobilité.
      1. Évaluer les changements dans la locomotion pour les substances inconnues avant d’effectuer l’analyse de nage. Utilisez Open Field Test (OFT) dans un groupe distinct d’animaux pendant au moins 10 min.
      2. Choisissez le même temps d’observation (10 min) dans l’OFT que dans le MDP pour détecter les effets hyper-locomotives non spécifiques du composé testé qui pourraient influencer la lecture du MDP via la mesure du temps d’immobilité avec une validité élevée.
      3. En cas d’effets hyper-locomotives significatifs, n’évaluez pas la séance de natation pour évaluer la puissance antidépressive, mais utilisez différentes méthodes de lecture (par exemple, préférence au saccharose, test de suspension de la queue, etc.).

4. Évaluation du développement d’un état dépressif

1. Pour évaluer le développement d’un trouble dépressif, évaluez chaque jour de la phase d’induction pour mesurer le temps d’immobilité.
   NOTE: Dans ce cas, une légère augmentation du temps d’immobilité entre chaque jour décrit la résilience, tandis qu’une augmentation plus forte et plus précoce par rapport aux animaux non traités ou de type sauvage représente une vulnérabilité accrue au désespoir induit par le stress. En traitant des souris avant l’événement de natation, l’intervention préventive ou les lignées de souris transgéniques pourraient être évaluées concernant le développement du désespoir comportemental.

Lors de la première séance de natation de la phase d’induction du MDP, les souris présentent généralement un temps d’immobilité moyen compris entre 190 s et 230 s, qui augmente constamment à chaque séance de natation supplémentaire (Figure 1A). Cette augmentation est plus prononcée au cours des 3 premiers jours et atteint une phase de plateau au cours des 2-3 derniers jours. Le temps d’immobilité mesuré au jour 5 reste stable jusqu’à 4 semaines, indiquant un désespoir comportemental stable. La puissance antidépressive d’une intervention peut être évaluée en traitant l’animal entre le dernier jour de la phase d’induction et le jour du test. Notez que le temps de score absolu pendant les séances de natation est assez subjectif et dépend de l’expérimentateur, de l’âge, du sexe et de la ligne de souris utilisée. Cependant, la différence relative entre les séances est assez stable avec seulement de petites différences d’interrater.

La figure 1 montre plusieurs traitements représentatifs. L’imipramine, la privation de sommeil et la kétamine ont considérablement réduit le temps d’immobilité, tandis que la privation de sommeil combinée à un sommeil de récupération n’a pas montré de changement significatif du phénotype dépressif. Ces résultats concordent avec une puissance antidépressive des traitements appliqués et similaires aux effets observés chez les patients humains. Le traitement impliquait l’ingestion d’imipramine 20 mg/ kg / jour pendant 3 semaines via l’eau potable, 3 mg / kg de kétamine par une seule injection intrapéritonéale 24 h avant le test et la privation de sommeil pendant 6 h avant le test.

Selon la question de recherche, diverses représentations peuvent être affichées. Une représentation des valeurs absolues peut donner une vue d’ensemble réelle des données et permet une bonne évaluation de la phase d’induction et d’un seul traitement (Figure 1A,D). Cependant, les différences entre les différents traitements ne peuvent pas être directement comparées; par conséquent, chaque groupe de traitement a des valeurs moyennes différentes d’immobilité-temps au jour 5. Par conséquent, il est recommandé d’utiliser la représentation des valeurs moyennes normalisées dans ce cas (Figure 1B). Une représentation réduite peut être choisie en raison de contraintes d’espace (Figure 1C). Notez qu’il est obligatoire d’afficher au moins les résultats du jour 1, du jour 5 et du jour du test.

Figure 1 : Résultats positifs en valeurs absolues et normalisées. (A) On peut observer l’induction réussie d’un état de dépression chez 30 souris. Chaque point représente le temps d’immobilité d’un seul animal un jour spécifique et les barres représentent les valeurs moyennes des animaux testés. Le temps d’immobilité est représenté pour chaque jour de la phase d’induction (jour 1 au jour 5) et pour le jour du test (après la ligne pointillée) avec ou sans traitement. Notez que dans cet échantillon, une augmentation significative peut être observée entre le jour 1 et le jour 2. Dans certains cas, les niveaux de signification sont d’abord atteints entre le jour 1 et le jour 3. Pour la poursuite de l’expérience, une augmentation statistiquement significative entre le jour 1 et le jour 5 est obligatoire. Notez l’effet de plafond typique (augmentation entre les jours 1, 2 et 3, par rapport à la différence entre les jours 4 et 5). Entre le jour 5 et les jours d’essai, les animaux ont été logés pendant 4 semaines dans leurs cages d’origine, soit sans autre traitement (MDP), soit traités à l’imipramine (Imip.); privation de sommeil (SD); privation de sommeil et récupération du sommeil (RS) et de la kétamine (Ket). (B) Un parcours temporel exemplaire de la performance des animaux individuels est donné pour chaque jour. (C) Représentation normalisée des mêmes résultats déjà présentés à la figure 1A. Le temps d’immobilité de chaque animal et de chaque jour a été normalisé à son temps d’immobilité correspondant au jour 5 et exprimé en pourcentage. Les valeurs post-traitement de différents groupes peuvent être mieux affichées et comparées à l’aide de cette approche. (D) Représentation des valeurs normalisées pour le jour 1, le jour 5 et le jour du test (CDM). Après une étude de validation de principe réussie, les points de temps d’évaluation peuvent être réduits au premier jour, au cinquième jour et au jour du test. Ces points de temps sont nécessaires parce qu’une augmentation significative entre le jour 1 et le jour 5 est nécessaire pour démontrer une induction réussie, et le jour 5 doit être comparé au jour du test pour donner une déclaration sur l’efficacité du traitement. (E) Comparaison du temps d’immobilité de trois lignées de souris différentes: Wildtype (WT) montre une induction réussie; une ligne résiliente (LR) exemplaire montre une diminution significative du comportement semblable à la dépression les trois premiers jours et le jour du test. ANOVA unidirectionnelle avec test post-hoc Bonferroni : ∗/#p < 0,05, ∗∗/##p < 0,01, ∗∗∗/###p < 0,001, ∗∗∗∗/####p < 0,0001. (#indiquer la différence par rapport aux valeurs moyennes du jour 1, ∗indiquer la différence par rapport aux valeurs moyennes du jour 5 dans la figure 1A, C et par rapport à la ligne de souris WT dans la figure 1E). Les données sont exprimées comme moyen ± SEM. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.

En cas de temps d’immobilité inchangé pendant les 5 jours (Figure 2), le stress appliqué n’a pas été en mesure de modifier le comportement de manière pertinente et aucun effet du traitement ne peut être évalué; les animaux doivent être sacrifiés et ne doivent pas être utilisés davantage.

Figure 2 : Résultats infructueux. Une représentation d’une induction inefficace est montrée dans la figure. Notez qu’aucune augmentation significative du temps d’immobilité entre le jour 1 et le jour 5 ne se produit. Par conséquent, les critères de poursuite de l’expérience n’ont pas été atteints et aucune prolongation supplémentaire n’est rationnelle (dans ce cas, seules les souris mâles ont été testées et, après une enquête rétrospective, il a été constaté qu’elles n’étaient pas des compagnons de portée). Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

D’autres méthodes de lecture doivent être utilisées pour décrire une vision plus large du désespoir comportemental des animaux. Une variété de tests comportementaux, de mesures électrophysiologiques et d’évaluations moléculaires des changements induits par le stress sont disponibles. Des résultats exemplaires pour le test de suspension de la queue (TST), avec traitement au MDP, à l’imipramine et à la kétamine, le test de préférence nez-poke-saccharose (NPSPT) et l’évaluation de la potentialisation à long terme à l’aide de la technique patch-clamp sont donnés à la figure 3. Ces résultats encouragent l’utilisation de la phase d’induction du MDP comme outil général pour l’induction du désespoir comportemental. Pour plus de détails sur les techniques utilisées (TST, NPSPT, LTP-assessment), voir9,10,17,20.

Figure 3 : Résultats supplémentaires avec des souris MDP. (A) Une représentation exemplaire des effets du MDP dans l’essai de suspension de la queue. Les souris ont été suspendues par la queue et le temps passé immobile a été enregistré (pour des détails méthodologiques, voir9). Chaque point représente le temps d’immobilité d’un seul animal, et les barres représentent les valeurs moyennes des animaux testés. ANOVA unidirectionnelle avec test post-hoc Bonferroni : ∗∗∗p < 0,001. Les données sont exprimées comme les moyennes ± SEM. (B) Résultats représentatifs du test de préférence pour le saccharose récemment établi chez les souris MDP. Dans cette tâche, la préférence pour le saccharose a été mesurée avec un effort croissant progressif pour atteindre le flacon de saccharose (nombre de piqûres nasales) (pour les détails méthodologiques, voir 10). Notez que la préférence pour le saccharose a diminué dans le MDP et que la différence entre le MDP et les souris témoins augmente progressivement avec l’effort (valeurs moyennes des piqûres nasales chaque jour indiquées comme Nspk1-7) que les souris ont dû appliquer pour boire la solution sucrée. ANOVA bidirectionnelle avec test post-hoc Bonferroni : ∗∗p < 0,01, ∗∗∗p < 0,001. Les données sont exprimées comme les moyennes ± SEM. (C) Les changements dépendants du MDP dans la plasticité synaptique à long terme sont présentés comme des changements des valeurs moyennes des EPSP après l’application d’un protocole d’induction LTP associatif dans des tranches cérébrales hippocampiques de souris WT. Les données ont été obtenues par stimulation de la synapse CA3-CA1 (pour plus de détails, voir 17,20). Test t non apparié, ∗∗p < 0,01, les données sont exprimées comme moyens ± SEM. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.

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