Name: Lisolement et la différenciation Th17 de Naïve CD4 des lymphocytes T (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-09-26T21:15:00.000+00:00
Duration: 12 min 59 s
Description: Découvrez la différenciation des cellules Th17 à partir de lymphocytes T CD4+ naïfs chez la souris C57BL/6. Cette méthode permet d'étudier les mécanismes de l'auto-immunité inflammatoire et d'évaluer l'expression de l'IL-17A.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ce travail est soutenu en partie par les NIH / NCATS clinique et translationnelle Bourses en sciences à l&#39;Université de Floride TL1 TR000066 et UL1 TR000064, un supplément de la diversité de Parent Grant R01AI056152 de l&#39;Institut national de la santé, un réactif subvention BD Biosciences, et l&#39;Université de la Floride.

Toute utilisation des animaux a été effectuée conformément aux protocoles approuvés par le Comité institutionnel de protection et d&#39;utilisation des animaux. Une. Préparation des mélanges et des médias <ol><li> Stérile pH PBS: 7.3 (1 L) 0,23 g de NaH 2 PO 4 1,15 g de Na 2 HPO 4 9,0 g de NaCl Prendre avec de l&#39;eau déminéralisée. Stériliser à l&#39;autoclave. </li><li> Culture Cellulaire médias (100 ml) 89 ml de RPMI 10 ml de 10% de FBS 1 ml Antibiotique antimycosique (ABAM) 100 pg 50 mM de 2-mercaptoéthanol (3,5 ug stock 2-mercaptoéthanol dans 96,5 pg PBS) </li><li> FACS tampon (Fluorescent Activation tri cellulaire) (Pour être utilisé pendant la cytométrie de flux) FBS 2% dans du PBS stérile </li><li> iTh17 Mix (Basé sur le nombre d&#39;échantillons, déterminer le volume nécessaire pour tous les mélanges et les médias) 1,5 pg / ml d&#39;anti-CD28 20 ng / ml d&#39;IL-6 5 ng / mlTGF-β </li></ol> 2. Les cellules seront étalées dans Triplicate dans les conditions suivantes <ol><li> Plate lié anti-CD3, anti-CD28 (ce qui est le mélange de commande d&#39;activation). </li><li> iTH17: Plaque lié l&#39;anti-CD3, anti-CD28, IL-6, TGF-β. </li></ol> 3. Plate-lié l&#39;anti-CD3 (10 pg / ml) Il est recommandé que la préparation de plaques en forme de plaques anti-CD3 lié est effectué au moins 4 heures avant le moment où les cellules sont ajoutées aux plaques. <ol><li> Ajouter 30 ul anti-CD3 de puits (anti-CD3 est dilué dans du PBS stérile) d&#39;un nouveau puits U bas Microtest tissu plaque 96 de la culture, et appuyez sur les côtés de la plaque pour assurer une couverture uniforme des puits. Incuber à 37 ° C pendant 4 heures, puis réfrigérer jusqu&#39;à ce qu&#39;il soit temps d&#39;ajouter les mélanges et les cellules de la plaque. </li></ol> 4. Souris Dissection <ol><li> Ce protocole est basé sur l&#39;utilisation de la souris C57BL / 6 mice, 3-8 mois, et acheté de The Jackson Laboratory (Bar Harbor, ME). </li><li> Sacrifiez souris à l&#39;aide de CO 2 asphyxie, et confirmer la mort à la dislocation cervicale postérieure. </li><li> Stériliser souris outils de dissection et de la zone d&#39;incision avec 70% d&#39;éthanol et de commencer la dissection. </li><li> Du point de vue ventrale, saisir la peau qui est antérieure à l&#39;ouverture de l&#39;urètre et commencer à couper avec des ciseaux jusqu&#39;à la ligne médiane ventrale jusqu&#39;à atteindre la zone du menton. Prendre des précautions pour ne pas déchirer ou de couper dans la muqueuse de la paroi péritonéale. </li><li> Tirez sur la peau et cerner pour permettre un accès confortable aux ganglions lymphatiques lors de l&#39;enlèvement. </li><li> Les ganglions lymphatiques et la rate recueillies seront tous retirés avec une pince, et placés dans une boîte de Pétri stérile contenant 5 ml de autoMACS cours Buffer acheté de Miltenyi Biotec (voir les figures 2 et 3 pour les ganglions lymphatiques et les diagrammes d&#39;enlèvement de la rate). <ol><li> Retirer les ganglions lymphatiques axillaires qui sonttrouvé près de l&#39;aisselle (sous le bras) derrière les muscles pectoraux de chaque souris. </li><li> Retirer les ganglions lymphatiques brachial qui se trouvent dans les tissus conjonctifs qui se trouvent à proximité de chaque région axillaire. </li><li> Retirer les ganglions lymphatiques cervicaux superficiels présents dans le cou de chaque souris. </li><li> Retirer les ganglions lymphatiques inguinaux qui sont situés dans la région de la hanche à la conjonction des trois vaisseaux sanguins. </li><li> Pour accéder aux ganglions lymphatiques mésentériques, couper à travers le péritoine jusqu&#39;à la ligne médiane ventrale. Ganglions lymphatiques mésentériques sont présents dans le tissu conjonctif qui maintient ensemble les intestins. Ils se trouvent généralement dans une chaîne de 4-8 nœuds, et peuvent apparaître comme un &quot;collier de perles&quot;. Assurez-vous de retirer la totalité de la chaîne. </li><li> La rate est situé dans la région abdominale, derrière l&#39;estomac et les intestins. Retirez-le en le tirant et le détacher du pancréas. </li></ol></li><li> Broyer les organes sous une hotte stérile en utilisant deux lames de microscope givré. Placez les ganglions lymphatiques ou la rate surle côté givré d&#39;une lame de microscope, et frotter avec le côté givré de la deuxième diapositive jusqu&#39;à désintégré. Répétez jusqu&#39;à ce que tous les nœuds lymphatiques et la rate ont été la terre. </li></ol> Note: Il est recommandé de commencer par les ganglions lymphatiques et terminer avec la rate, comme le sang, il sera difficile de voir les ganglions lymphatiques restantes dans le tampon autoMACS. <ol start="9"><li> Pour filtrer les organes de base dans une suspension cellulaire unique, commencer par pliage d&#39;un morceau de matériau en nylon 40 pm à plusieurs reprises, et en plaçant dans la partie supérieure d&#39;un tube à centrifuger de 15 ml. Le matériau en nylon devrait être d&#39;environ 3 x 3 po </li><li> Utilisez une seringue de 5 ml et 21 aiguille G pour aspirer les 5 ml de autoMACS cours tampons et organes sol. Distribuer lentement dans le matériau de nylon repliée. Prenez soin de ne pas percer la matière avec l&#39;aiguille. </li></ol> Remarque: Une fois que la suspension cellulaire unique est atteint, la solution doit apparaître comme une solution cohérente pâle sans VisibLe morceaux de tissu solide. Si les solides restent, re-aspiration et de distribution à travers un nouveau morceau plié de nylon placé dans un nouveau tube de 15 ml de la centrifugeuse. <ol start="11"><li> Toujours garder les cellules sur la glace lorsqu&#39;il n&#39;est pas utilisé. </li></ol> 5. Séparation cellulaire <ol><li> Pour des résultats optimaux, obtenir au moins un CD4 pur à 80% + population CD25-cellule par autoMACS séparateur de cellules Pro utilisant le MACS CD4 + CD25 + T réglementaire l&#39;isolement cellulaire kit, souris. Le protocole pour la rétention négative de la population CD25-des cellules CD4 + est obtenue par Miltenyi Biotec. </li></ol> 6. Th17 différenciation <ol><li> Recueillir la population CD25 des cellules CD4 + après la séparation avec le Pro séparateur de cellules autoMACS. </li><li> Compter les cellules diluées dans un rapport de 1:1000 avec du bleu trypan en utilisant un hémocytomètre. </li><li> Une fois que la concentration a été déterminée à partir du nombre de cellules, diluer la suspension de cellules à 1 x 10 6 cellules / ml dans des milieux de culture cellulaire. </li><li> Sortez plaques à 96 puits avec plaque liée anti-CD3 après 4 h. </li><li> Laver les puits d&#39;anti-CD3-enduites avec 200 ul de PBS. Répétez 2 fois. <ol><li> Pour laver ajouter 200 ul de PBS stérile aux puits d&#39;anti-CD3-revêtues et supprimer PBS dans un conteneur de déchets. </li></ol></li><li> Ajouter 100 ul du mélange iTh17 ou commande d&#39;activation mélange (voir point n ° 2) dans les puits, en triple exemplaire. </li><li> Ajouter 100 pi de cellules dans chaque puits dans lequel soit le mélange Th17 ou le mélange de commande d&#39;activation a été placé. </li><li> Incuber les cellules pendant au moins 72 heures ou jusqu&#39;à 5 jours (différenciation Th17 peut être obtenu après 72 heures ou après 5 jours.) </li><li> différenciation Th17 peut être évaluée par coloration et analyse par cytométrie de flux intracellulaire, ELISA, ou qPCR </li></ol> 7. Activation de la cellule (seulement nécessaire pour intracellulaire coloration) <ol><li> Retirer des plaques 96 puits des incubateurs à la fin de l&#39;une des 72 heures ou 5 jours <ol><li> Rappelons que Th17 differentiation peut être réalisé soit après 72 heures ou 5 jours. </li></ol></li><li> Pour chaque condition (par exemple de commande d&#39;activation ou iTh17), transférer les cellules qui sont en triple dans un puits d&#39;une plaque 24 puits de culture cellulaire. Les cellules pour une condition ont été regroupées dans un puits de la plaque de culture de 24 puits, au lieu d&#39;être en triple exemplaire en bien U plaque inférieure 96 de la culture. </li><li> Le volume total de chaque puits de la plaque de culture cellulaire de 24 puits est maintenant de 600 ul. Augmenter le volume de chaque puits à 1 ml avec du milieu de culture cellulaire. </li><li> Ajouter PMA (phorbol myristate acétate) (50 ng / ml), de l&#39;ionomycine (1 uM), et BFA (Brefeldine-A) (10 pg / ml) à chaque puits dans le puits plaque 24 de culture cellulaire à des concentrations indiquées. </li><li> Incuber à 37 ° C pendant 4 heures. </li></ol> 8. Coloration intracellulaire <ol><li> cellules de coloration avec les marqueurs extracellulaires et intracellulaires souhaités pour l&#39;analyse par cytométrie de flux. Pour détecter la présence of IL-17, la coloration intracellulaire est réalisée avec des anticorps anti-IL-17A. Marqueurs de surface extracellulaires recommandées comprennent CD4, CD8, CD25 et. <ol><li> Utilisez la cytokine intracellulaire coloration Starter Kit-souris de BD Biosciences de l&#39;IL-17 intracellulaire coloration. </li><li> Pour chaque échantillon, un culot de cellules, enlever le surnageant et culot de cellules de remettre en suspension dans 200 ul de tampon FACS (FBS à 2% dans du PBS). </li><li> Transfert cellules remises en suspension à 96 flux de cellules cytométrie plaque. </li><li> Spin cellules vers le bas pendant 5 min à 1200 rpm et éliminer le surnageant. </li><li> Ajouter 200 pi de tampon PBS FACS, centrifugeuse pendant 5 min à 1200 rpm, et éliminer le surnageant. </li><li> Resuspendre les cellules dans 100 ul de tampon FACS et s&#39;appliquent 100 ul d&#39;anticorps extracellulaire de mélange (Ab) (Ac extracellulaire mélange est effectué dans un tampon FACS). Incuber pendant 15 min à température ambiante, recouverte d&#39;une feuille. </li><li> Répétez l&#39;étape 8.1.4. </li><li> Répétez l&#39;étape 8.1.5 2x. </li><li> Remettre en suspension les cellules dans 100 ul de BD Cytofix / Cytoperm tampon. Incubmangé pendant 20 min à température ambiante, recouverte d&#39;une feuille. </li><li> Ajouter 100 ul de tampon 1x BD Perm / Wash, centrifuger pendant 5 min à 1200 rpm, et éliminer le surnageant. Répétez. </li><li> Ajouter 50 ul de mélange Ab intracellulaire. (Mélange intracellulaire Ab est faite en 1x BD Perm / Wash) Incuber pendant 15 min à température ambiante, recouverte d&#39;une feuille. </li><li> Répétez l&#39;étape 8.1.10. </li><li> Remettre en suspension les cellules dans 200 ul de tampon de marquage BD. </li><li> Placez cellules remises en suspension dans cytométrie de flux des tubes contenant 200 pi BD tampon de marquage (volume final est de 400 pi). </li><li> Conserver à 4 ° C jusqu&#39;à ce que des échantillons sont prêts à être lu. </li></ol></li></ol> 9. Analyse par cytométrie en flux <ol><li> Porte population de cellules vivantes. </li><li> De la population de cellules vivantes, porte sur CD4 + CD8-population. </li><li> De l&#39;CD8-population CD4 +, porte sur l&#39;IL-17A + population. <ol><li> Sur la base de nos résultats expérimentaux précédents, 100% de l&#39;IL-17A + population sera CD25 +. </li></ol></li></ol> * Le nombre total de cellules absolues ont été obtenus après la mise en commun des échantillons en triple ** Nombre absolu de cellules CD4 + CD25 + IL-17A + cellules a été déterminé en multipliant le nombre total de cellules par le pourcentage de la grille en direct, et le pourcentage de cellules totales portant les marqueurs spécifiques de la lignée, CD4, CD25 et IL-17A, comme déterminés par cytométrie en flux. 10. qPCR et ELISA <ol><li> cellules place pas utilisées pour l&#39;analyse par cytométrie en flux dans un tube Eppendorf et centrifuger de 1,5 ml à 13 000 tours par minute pendant 5-10 min. Les cellules présentes dans le culot de cellules après centrifugation, seront utilisés pour l&#39;analyse qPCR. analyse qPCR a été effectuée à l&#39;aide de PTC-200 Peltier cycleur thermique (Biorad). </li><li> Recueillir le surnageant des tubes centrifugés pour ELISA. IL-17A ELISA ont été effectuées en utilisant deux anticorps TC11-18H10 (capture, le numéro de catalogue 555068) et TC11-8H4 biotine (détection, le numéro de catalogue 555067) a acheté de BD Biosciences. IL-17A ELISA standards ont été obtenus à partir de eBioscience (numéro de catalogue 14-8171-80). </li><li> Après élimination du surnageant, remettre en suspension les cellules restantes à être utilisés pour la qPCR dans 175 de tampon de lyse d&#39;ARN ul (utiliser immédiatement pour l&#39;extraction de l&#39;ARN, la synthèse d&#39;ADNc et PCR quantitative, ou conserver à -80 ° C pour une utilisation ultérieure). <ol><li> Reportez-vous au tableau II pour les séquences d&#39;amorces pour l&#39;IL-17A et l&#39;actine (gène maison de maintien) </li></ol></li></ol>

<ol><li>Chen, Z., Lin, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Foxp3+and+ROR%CE%B3T%3A+transcriptional+regulation+of+Treg+and+Th17%5BTitle%5D)+AND+%22International+Immunopharmacology%22%5BJournal%5D)">Foxp3 and RORγT: transcriptional regulation of Treg and Th17.</a> International Immunopharmacology. 11, 536-542 (2011).</li>
<li>Cua, D. J., Sherlock, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interleukin-23+rather+than+interleukin-12+is+the+critical+cytokine+for+autoimmune+inflammation+of+the+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Interleukin-23 rather than interleukin-12 is the critical cytokine for autoimmune inflammation of the brain.</a> Nature. 421, 742-748 (2003).</li>
<li>El-Behi, M., Rostami, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+views+on+the+roles+of+Th17+and+Th17+cells+in+experimental+autoimmune+encephalitis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neuroimmune+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Current views on the roles of Th17 and Th17 cells in experimental autoimmune encephalitis.</a> J. Neuroimmune Pharmacol. 5, 189-197 (2010).</li>
<li>Inaba, K., Kroide, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Properties+of+memory+T+lymphocytes+isolated+from+the+mixed+leukocyte+reaction%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci%22%5BJournal%5D)">Properties of memory T lymphocytes isolated from the mixed leukocyte reaction.</a> Proc Natl Acad Sci. 82, 7686-7690 (1985).</li>
<li>L, I. vanovF. rutosR., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specific+microbiota+direct+the+differentiation+of+IL-17-producing+T-helper+cells+in+the+mucosa+of+the+small+intestine%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Host+Microbe%22%5BJournal%5D)">Specific microbiota direct the differentiation of IL-17-producing T-helper cells in the mucosa of the small intestine.</a> Cell Host Microbe. 16, 337-349 (2008).</li>
<li>Jager, L. D., Dabelic, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Kinase+Inhibitory+Region+of+SOCS-1+is+Sufficient+to+Inhibit+T+helper-17+Function+in+Experimental+Allergic+Encephalomyelitis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neuroimmunol%22%5BJournal%5D)">The Kinase Inhibitory Region of SOCS-1 is Sufficient to Inhibit T helper-17 Function in Experimental Allergic Encephalomyelitis.</a> J. Neuroimmunol. 232, 08-18 (2011).</li>
<li>Kimura, A., Kishimoto, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IL-6%3A+regulator+of+Treg%2FTh17+balance%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">IL-6: regulator of Treg/Th17 balance.</a> Eur. J. Immunol. 40, 1830-1835 (2010).</li>
<li>Korn, T., Bettelli, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IL-17+and+Th17+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">IL-17 and Th17 Cells.</a> Annu Rev Immunol. 27, 485-517 (2009).</li>
<li>Kriegel, M. A., Seflk, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Naturally+transmitted+segmented+filamentous+bacteria+segregate+with+diabetes+protection+in+nonobese+diabetic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22PNAS%22%5BJournal%5D)">Naturally transmitted segmented filamentous bacteria segregate with diabetes protection in nonobese diabetic mice.</a> PNAS. 108, 11548-11553 (2011).</li>
<li>Langrish, C. L., Chen, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IL-23+drives+a+pathogenic+T+cell+population+that+induces+autoimmune+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">IL-23 drives a pathogenic T cell population that induces autoimmune inflammation.</a> J. Exp. Med. 201, 233-240 (2005).</li>
<li>Lau, K., Benitez, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+of+type+1+diabetes+by+a+Lactobacillus+johnsonii+mediated+Th17+bias%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Inhibition of type 1 diabetes by a Lactobacillus johnsonii mediated Th17 bias.</a> J. Immunol. 186, 3538-3546 (2011).</li>
<li>Lee, Y., Awasthi, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+and+molecular+signature+of+pathogenic+TH17+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Immunol%22%5BJournal%5D)">Induction and molecular signature of pathogenic TH17 cells.</a> Nat Immunol. 13, 991-999 (2012).</li>
<li>Litmann, D. R., Rudensky, A. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Th17+and+regulatory+T+cells+in+mediating+and+restraining+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Th17 and regulatory T cells in mediating and restraining inflammation.</a> Cell. 140, 845-858 (2010).</li>
<li>O'Connor, W. Jr, Kamanaka, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+protective+function+for+interleukin+17A+in+T+cell-mediated+intestinal+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Immunol%22%5BJournal%5D)">A protective function for interleukin 17A in T cell-mediated intestinal inflammation.</a> Nat Immunol. 10, 603-609 (2009).</li>
<li>Picca, C. C., Larkin, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+TCR+specificity+in+CD4%2BCD25%2B+regulatory+T+cell+selection%5BTitle%5D)+AND+%22Immunol+Rev%22%5BJournal%5D)">Role of TCR specificity in CD4+CD25+ regulatory T cell selection.</a> Immunol Rev. 212, 74-85 (2006).</li>
<li>Shah, K., Lee, W. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disregulated+balance+of+Th17+and+Th1+cells+in+systemic+lupus+erythematosus%5BTitle%5D)+AND+%22Arthritis+Research+%26+Therapy%22%5BJournal%5D)">Disregulated balance of Th17 and Th1 cells in systemic lupus erythematosus.</a> Arthritis Research & Therapy. 12, R53(2010).</li>
<li>Sospedra, M., Martin, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunology+of+Multiple+Sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Immunology of Multiple Sclerosis.</a> Annu. Rev. Immunol. 23, 683-747 (2005).</li>
<li>Stockringer, B., Veldhoen, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentiation+and+function+of+Th17+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Immunology%22%5BJournal%5D)">Differentiation and function of Th17 T cells.</a> Current Opinion in Immunology. 19, 281-286 (2007).</li>
<li>Veldhoen, M., Hocking, R. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TGF%CE%B2+in+the+context+of+an+inflammatory+cytokine+milieu+supports+de+novo+differentiation+of+IL-17-producing+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">TGFβ in the context of an inflammatory cytokine milieu supports de novo differentiation of IL-17-producing T cells.</a> Immunity. 24, 179-189 (2006).</li>
<li>Zou, Y., Zhang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strain-dependent+production+of+interleukin-17%2Finterferon-%CE%B3+and+matrix+remodeling-associated+genes+in+experimental+Candida+albicans+keratitis%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Vis%22%5BJournal%5D)">Strain-dependent production of interleukin-17/interferon-γ and matrix remodeling-associated genes in experimental Candida albicans keratitis.</a> Mol Vis. 18, 1215-1225 (2012).</li>
</ol>

Aucune divulgation à déclarer.

Ici, nous avons décrit le protocole pour obtenir la différenciation in vitro de Th17. L&#39;étude de la différenciation Th17 est important, que la différenciation des lymphocytes T dans le sous-ensemble Th17 est essentiel pour l&#39;élimination efficace des agents pathogènes humains 13. A l&#39;inverse, la production IL17 a été associée à la progression de la maladie auto-immune 13. Le procédé de différenciation Th17 est applicable à de nombreux paramètres de recherche, car il peu...

Lymphocytes T CD4 + (cellules T) jouent un rôle critique dans la défense immunitaire à médiation par le système contre les micro-organismes infectieux. A l&#39;inverse, les cellules T sont également intimement associés à l&#39;apparition et la progression des maladies auto-immunes telles que le diabète de type 1, le lupus érythémateux disséminé et l&#39;arthrite rhumatoïde. Lymphocytes T CD4 + sont activées par une combinaison de récepteurs des cellules T (TCR) des interactions avec un antigène apparenté / complexe majeur d&#39;histocompatibilité (CMH II) II des molécules, et des interactions récepteur CD28 avec des ligands B7.1/B7.2 15. En plus de la fourniture de la stimulation du TCR et CD28 co-stimulation, les cellules présentatrices d&#39;antigènes offrent également un environnement de cytokines, ce qui détermine l&#39;état du lymphocyte T de différenciation, en dirigeant ainsi la réponse du lymphocyte T à l&#39;antigène donné. Interactions pathogène distincte / cellule présentatrice d&#39;antigène de créer des environnements de cytokines distinctes, qui Skew lymphocytes T vers le bas voies distinctes axées sur la elimination de l&#39;agent pathogène initiateur. Malheureusement, T voies effectrices des lymphocytes, à l&#39;origine destinées à éliminer les pathogènes envahisseurs, peuvent être à tort dirigés contre des auto-tissus 15. Par conséquent, une meilleure compréhension de l&#39;état de différenciation de chaque sous-ensemble distinct de cellules T CD4 + est essentielle pour notre compréhension de la façon de moduler l&#39;équilibre entre l&#39;élimination des agents pathogènes et la tolérance à l&#39;auto. En plus de la Th1, Th2, et des voies de différenciation des cellules T régulatrices inductibles, les lymphocytes T naïfs peuvent également être entraînés par des cytokines en bas de la voie Th17. Considérant que les cellules Th1 pathogènes intracellulaires combat, les cellules Th2 éliminer les agents pathogènes extracellulaires, et les lymphocytes T régulateurs (Tregs) minimiser les réactions inflammatoires 1, 16; cellules Th17 jouent un rôle important dans l&#39;élimination des bactéries et des champignons extracellulaires. cellules Th17 sont généralement désignés par l&#39;expression du facteur de transcription spécifique de la lignée RORγT et la production d&#39;IL-17A, ce qui favorise l&#39;activation des macrophages et des neutrophiles, 1 7. cellules Th17 ont été impliqués dans plusieurs maladies auto-immunes, et leurs modèles de rongeurs associés. Par exemple, il a été démontré que l&#39;IL-23 (qui est nécessaire pour maintenir le phénotype Th17), mais pas d&#39;IL-12, était le coupable central dans l&#39;encéphalite auto-immune expérimentale (EAE), le modèle de rongeur de la maladie de sclérose en plaques. Il a été montré par la suite que la réduction de la production d&#39;IL-17 sont corrélées à la prévention EAE 2, 6, 17. De plus, les cellules Th17 ont été associés à d&#39;autres maladies auto-immunes comme l&#39;arthrite et le lupus érythémateux disséminé (SLE) 10, 16. IL-23 p19 déficientes - / - les souris se sont révélés avoir de très faibles nombres de cellules Th17, et sont résistants au développement de l&#39;EAE, non seulement, mais également d&#39;arthrite induite par le collagène, un modèle pour la polyarthrite rhumatoïde 10, 18. En outre, les souris traitées avec des anticorps neutralisants de l&#39;IL-17A à l&#39;arrièreer l&#39;apparition de l&#39;arthrite induite par le collagène ont également été trouvés à avoir une résolution de l&#39;atteinte articulaire 18. Il convient de noter que le rôle des cellules Th17 dans la progression de la maladie auto-immune reste à caractériser la recherche récente a également montré un rôle protecteur des cellules Th17 dans diabète de type 1 9, 11 et 14 de l&#39;inflammation intestinale. Ces études confirment l&#39;importance de la différenciation Th17 dans l&#39;auto-immunité. Dans la différenciation Th17 vitro est une méthode nécessaire à la recherche sur les cellules T, car il ya au moins deux questions troublantes qui nécessitent une enquête plus approfondie: 1) Comment fonctionne exactement IL-6 régulent l&#39;équilibre entre Treg et la différenciation Th17, et 2) Quels sont les mécanismes exacts derrière l&#39;IL-17 induit-troubles inflammatoires? Notre procédé utilise des cellules CD4 + CD25-T à partir des rates et des ganglions lymphatiques de la souris C57BL / 6. Il est important de noter que bien qu&#39;il soit possible d&#39;induire la différenciation Th17 utilisant un impurpopulation, l&#39;acquisition d&#39;au moins une CD4 pur à 80% + population de cellules CD25-T nie toute inquiétude de contamination et garantit des résultats de différenciation Th17 plus de succès. Afin d&#39;obtenir une différenciation adéquate Th17, les cellules CD4 + CD25-T sont incubées en présence d&#39;anticorps anti-CD3 et anti-CD28, qui fournissent des signaux d&#39;activation, 1 et 2, respectivement, et de l&#39;IL-6, et TGF-β. Bien qu&#39;il ait été rapporté que l&#39;IL-23 seule peut être utilisé pour réaliser la différenciation Th17, il a ensuite été démontré que l&#39;IL-23 est nécessaire pour la stabilité de la population de cellules Th17, mais IL-6 et le TGF-β sont essentiels pour la différenciation Th17 3, 18, ​​19. Des études murines ont montré que le récepteur de l&#39;IL-23 est exprimé sur les cellules T CD4 + seulement après qu&#39;ils ont été stimulées avec de l&#39;IL-6 et le TGF-β 13, 18. En outre, les cellules Th17 vont développer avec succès en présence d&#39;IL-23-anticorps de blocage aussi longtemps que l&#39;IL-6 et TGF-β sont présents 18, 19. En tant que tel, cette différenciation Th17 protocole provIDES les conditions appropriées avec succès pour induire la différenciation Th17. Développement d&#39;une meilleure compréhension des mécanismes qui sous-tendent la différenciation Th17 et IL-17 production présenter l&#39;opportunité pour le développement de meilleurs traitements visant à les troubles auto-immunes 13.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Reagent/Material</td></tr><tr><td>Stérile Polyestrene Boîte de Pétri</td><td>Fisher Scientific</td><td>0875713A</td><td>60 mm x 15 mm</td></tr><tr><td>autoMACS Running Buffer</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-091-221</td><td></td></tr><tr><td>Lames de microscope Premium, Givré</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-544-3</td><td>3 » x 1"1 mm</td></tr><tr><td>5 ml 21G1 Seringue et aiguille sans latex</td><td>BD Biosciences</td><td>309632</td><td></td></tr><tr><td>Corning 15 ml Tubes à centrifuger</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>CLS430791</td><td></td></tr><tr><td>Nylon 40 microns</td><td>Miami Aquaculture</td><td>Nylon 40/26</td><td></td></tr><tr><td>Microtest Plaque de culture tissulaire 96 puits U bottom </td><td>BD Biosciences</td><td>35-3077</td><td></td></tr><tr><td>Corning Costar 24 puits plaques de culture cellulaire</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>CL3524</td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf Tubes 1,5 ml</td><td>Fisher Scientific</td><td>05-408-129</td><td></td></tr><tr><td>Purifié NA/LE Hamster Anti-souris CD3e</td><td>BD Biosciences</td><td>553057</td><td></td></tr><tr><td>Purifié NA/LE Hamster Anti-Souris CD28</td><td>BD Biosciences</td><td>553294</td><td></td></tr><tr><td>Souris IL-6 Protéine recombinante</td><td>eBioscience</td><td>14-8061-62</td><td></td></tr><tr><td>TGFbeta</td><td>R& D Systems</td><td>240-B-002</td><td></td></tr><tr><td>Trypan blue solution 0,4 %</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>66H2364</td><td></td></tr><tr><td>Pac Blue Rat Anti-souris CD4</td><td>BD Biosciences</td><td>558107</td><td></td></tr><tr><td>APC Rat Anti-souris CD8a</td><td>BD Biosciences</td><td>553035</td><td></td></tr><tr><td>PE Conjugué Anti-souris CD25</td><td>eBioscience</td><td>E01155-516</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 700 Rat Anti-souris IL-17</td><td>BD Biosciences</td><td>560820</td><td></td></tr><tr><td>Kit de démarrage pour la coloration des cytokines intracellulaires-Souris</td><td>BD Biosciences</td><td>51-2041AK (559311)</td><td></td></tr><tr><td>MACS CD4+CD25+ Kit d’isolement des lymphocytes T régulateurs, souris</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-091-221</td><td></td></tr><tr><td>ABAM </td><td>Cellgro</td><td>30-004-CI</td><td></td></tr><tr><td>RPMI</td><td>Corning, Cellgro</td><td>10-040-CM</td><td></td></tr><tr><td>B 2-Mercapt&#8211 ; thanol</td><td>MP Biomedical</td><td>194834</td><td></td></tr><tr><td>Hazardous Phorbol 12-Myristate 13-Acétate (PMA)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ionomycine Sel de calcium</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>13909-1ML</td><td></td></tr><tr><td>Brefeldin A dangereux (BFA)</td><td>MP Biomedicals</td><td>159027</td><td></td></tr><tr><td>ELISA IL-17A Capture mAb </td><td>BD Biosciences</td><td>555068</td><td></td></tr><tr><td>ELISA IL-17A Detection mAb </td><td>BD Biosciences</td><td>555067</td><td></td></tr><tr><td>ELISA IL-17A Standard</td><td>eBioscience</td><td>14-8171-80</td><td></td></tr><tr><td>IL-2 Kit ELISA</td><td>BD Biosciences</td><td>555148</td><td></td></tr><tr><td>TMB Substrate Reagent Set </td><td>BD Biosciences</td><td>555214</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Equipment </td></tr><tr><td>autoMACS Pro Cell Separator</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-092-545</td><td></td></tr><tr><td>Centrifugeuse Sorvall Legend RT+</td><td>ThermoScientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>série Napco 8000 WJ Incubateur CO2</td><td>ThermoScientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PTC-200 Thermocycleur Peltier</td><td>Biorad</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

l&#39;isolement et la différenciation th17 de naïve cd4 des lymphocytes t

Isolation and Th17 Differentiation of Na&iuml;ve CD4 T Lymphocytes

cellules Th17 sont un sous-ensemble distinct de cellules T qui ont été trouvées pour produire l&#39;interleukine 17 (IL-17), et se différencient en fonction des autres sous-ensembles de cellules T, y compris Th1, Th2, et des cellules T régulatrices. cellules Th17 ont émergé comme un coupable central dans les réponses immunitaires inflammatoires associés à l&#39;excès de zèle de nombreuses maladies auto-immunes. Dans cette méthode, nous purifions lymphocytes T de la rate et des ganglions lymphatiques de souris C57BL / 6, et stimuler les cellules T CD4 + purifiés sous contrôle et environnements Th17 induisant. L&#39;environnement de Th17 inducteur comprend stimulation en présence d&#39;anti-CD3 et anti-CD28, les anticorps de l&#39;IL-6, et TGF-β. Après incubation pendant au moins 72 heures et jusqu&#39;à cinq jours à 37 ° C, les cellules sont ensuite analysées pour la capacité de produire de l&#39;IL-17 par cytométrie en flux, qPCR, et ELISA. cellules différenciées Th17 CD4 + CD25-T peuvent être utilisés pour élucider le rôle que jouent les cellules Th17 dans l&#39;apparition et la progression de l&#39;auto-immunité et de l&#39;hôte defense. En outre, la différenciation Th17 de CD4 + CD25 des lymphocytes à partir de modèles KO / murins de maladies distinctes peut contribuer à notre compréhension du destin cellulaire plasticité.

Ce protocole de différenciation Th17 commence par le prélèvement de la rate et de la axillaire, brachiale, mésentériques, utérus, et les ganglions lymphatiques inguinaux. Une représentation de l&#39;emplacement de chacun peuvent être trouvées dans les figures 2 et 3. Les figures 1 et 5 fois fournissent une représentation visuelle des méthodes décrites dans ce protocole. Ce protocole Th17 met l&#39;accent sur la différenciation de la populati...

Avec des fonctions effectrices distinctes des autres sous-ensembles de cellules T, les cellules Th17 ont été impliqués dans l&#39;auto-immunité centre inflammatoire. Cette vitro Th17 protocole de différenciation fournit un moyen de déterminer si les lymphocytes T CD4 + naïfs peuvent se différencier en cellules Th17, et d&#39;examiner leur rôle dans l&#39;auto-immunité et réponse de l&#39;hôte.

L&#39;isolement et la différenciation Th17 de Naïve CD4 des lymphocytes T

Th17 cells are a distinct subset of T cells that have been found to produce interleukin 17 (IL-17), and differ in function from the other T cell subsets ...

L'objectif général de cette procédure est de différencier les cellules TH17 à partir de lymphocytes T naïfs CD4 positifs. Cette étape est réalisée en prélevant d'abord les ganglions lymphatiques et la rate d'une souris adulte C57BL/6. Dans la deuxième étape, les tissus sont broyés afin d'obtenir une suspension monocellulaire.Les cellules T CD4 positives et CD25 négatives sont ensuite isolées et cultivées dans des conditions inductrices de TH17 ou des conditions de contrôle d'activation. Enfin, la Q-PCR-EIA et la cytométrie en flux peuvent être utilisées pour évaluer l'expression de l'IL-17A. Ainsi, cette méthode permet d'obtenir des informations sur la différenciation des lymphocytes T CD4 en cellules T17 dans des souris C57BL/6.Il peut également être appliqué à d'autres modèles murins. La démonstration de cette méthode est essentielle, car les ganglions lymphatiques sont très petits, ce qui rend les étapes de dissection difficiles. En l'absence de visualisation directe de cette méthode, au moins quatre heures avant d'ajouter les cellules, recouvrez les puits d'une nouvelle plaque de culture tissulaire microtest UBO 96 puits avec 30 microlitres d'anticorps anti-CD3 dilué dans du PBS stérile, tapez doucement sur les côtés de la plaque pour assurer une couverture uniforme des puits, puis incubez la plaque à 37 degrés Celsius. Après quatre heures, placez la plaque au réfrigérateur jusqu'au moment d'ajouter les cellules.Après avoir confirmé le décès par dislocation cervicale, stérilisez la zone d'incision sur une souris adulte C57 black six à l'aide d'éthanol à 70 %. Ensuite, saisissez la peau située en avant de l'orifice urétral et incisez depuis la ligne médiane ventrale jusqu'à la région du menton, en prenant soin de ne pas perturber le péritoine. Puis fixez la peau avec des épingles afin d'accéder aux ganglions lymphatiques et à la rate pour leur prélèvement.Retirez maintenant les ganglions lymphatiques axillaires situés près de l'aisselle de la souris, derrière les muscles pectoraux, et placez le tissu dans une boîte de Pétri contenant cinq millilitres de tampon de lavage AutoMax. Ensuite, retirez les ganglions lymphatiques brachiaux situés dans le tissu conjonctif près de chaque aisselle. Puis, retirez les ganglions lymphatiques cervicaux superficiels situés au niveau du cou de l'animal, de part et d'autre de la trachée, puis retirez les ganglions lymphatiques inguinaux situés dans la région de la hanche, au niveau de la jonction des trois vaisseaux sanguins.Pour accéder aux ganglions lymphatiques mésentériques, commencez par inciser la ligne médiane ventrale à travers le revêtement péritonéal. Les ganglions lymphatiques mésentériques se trouvent profondément dans le mésentère de la souris, généralement en chaîne de quatre à huit ganglions qui peuvent apparaître comme un chapelet de perles. Retirez la rate en la tirant et en la détachant du pancréas.Ensuite, placez-le dans la boîte de Pétri avec les ganglions lymphatiques pour broyer les organes. Placez les ganglions lymphatiques sur le côté dépoli d'une lame de microscope, puis frottez les tissus avec le côté dépoli d'une deuxième lame. Pour filtrer les organes broyés afin d'obtenir une suspension monocellulaire, pliez d'abord un morceau de nylon de 40 microns mesurant environ 7,5 cm sur 7,5 cm plusieurs fois et placez-le au-dessus d'un tube conique de 15 millilitres.Utilisez une seringue de cinq millilitres équipée d'une aiguille de calibre 21 pour aspirer les cellules et le tampon, puis versez lentement la solution cellulaire dans le nylon plié. Veillez à ne pas percer le matériau avec l'aiguille. Une fois une suspension unicellulaire obtenue, la solution doit apparaître homogène, sans morceaux visibles de tissu solide.Placer cette solution sur de la glace. Après avoir trié les cellules par séparation AutoMax jusqu'à une pureté d'au moins 80 % de cellules CD4 positives et CD25 négatives, compter les cellules par exclusion au bleu de trypan et diluer ensuite la suspension cellulaire à 1 × 10⁶ cellules par millilitre dans le milieu de culture cellulaire.À présent, rincez tous les puits de la plaque revêtue d'anticorps anti-CD3 avec 200 microlitres de PBS, en éliminant chaque fois la solution de lavage dans un récipient pour déchets. Ensuite, ajoutez 100 microlitres du cocktail inducteur de TH17 ou des mélanges de contrôle d'activation dans les puits appropriés, en triple exemplaire.Enfin, ajoutez 100 microlitres de cellules dans chaque puits et incubez les cellules pendant au moins 72 heures ou jusqu'à cinq jours afin d'obtenir la différenciation des cellules TH17 pour ELISA et QPCR. Après la période d'incubation, regroupez les triplicats de chaque échantillon dans des tubes Eppendorf individuels. Après centrifugation des cellules, transférez le surnageant dans des tubes Eppendorf séparés et conservez-les à moins 20 degrés Celsius pour mesurer ultérieurement la production d'IL-17A par ELISA.A. Pour préparer la PCR quantitative après avoir retiré le surnageant, resuspendre les culots restants dans 175 microlitres de tampon de lyse pour ARN afin d'extraire immédiatement l'ARN, ou les conserver à moins 80 degrés Celsius jusqu'au moment de commencer la procédure après la période d'incubation. En prévision de l'activation cellulaire avant la coloration intracellulaire de l'IL-17, répartir chacun des triplicats de cellules contrôles d'induction ou d'activation Th17 dans des puits individuels d'une plaque de culture cellulaire à 24 puits. Ajouter 400 microlitres de milieu de culture cellulaire dans chaque puit.Pour ajuster le volume total à un millilitre, ajouter ensuite le PMA, l'ionomycine et la feldéine A dans chaque puits et incuber les cellules pendant quatre heures à 37 degrés Celsius afin de détecter la présence de l'IL-17A par coloration intracellulaire et cytométrie en flux. Tout d'abord, transférer les cellules de chaque puits de la plaque 24 puits dans un tube Eppendorf séparé. Ensuite, centrifuger les tubes.Éliminer les surnageants et resuspendre les culots cellulaires dans 200 microlitres de tampon fax. Transférer les cellules resuspendues dans une plaque de cytométrie en flux à 96 puits et centrifuger à nouveau les cellules après avoir lavé les culots dans 200 microlitres de tampon fax, resuspendre les cellules dans 100 microlitres de tampon fax et ajouter 100 microlitres du mélange d'anticorps pour la coloration extracellulaire. Incuber 15 minutes à température ambiante à l’abri de la lumière.Après avoir lavé les cellules deux fois, incuber les culots dans 100 microlitres de tampon BD Cytofix/Cytoperm, recouvert de papier d’aluminium, pendant 20 minutes à température ambiante. Laver ensuite les cellules deux fois dans 100 microlitres de tampon de perméabilisation BD 1X, puis incuber les cellules dans 50 microlitres de mélange d'anticorps intracellulaires, recouvert de papier d’aluminium, pendant 15 minutes à température ambiante.Après un nouveau lavage des cellules, resuspendez les cellules dans 200 microlitres de tampon de marquage BD, puis transférez les cellules dans des tubes de cytométrie en flux contenant 200 microlitres de tampon de marquage. Conservez les tubes à quatre degrés Celsius jusqu'à ce qu'ils soient prêts à être analysés par cytométrie en flux. Commencez par définir la porte sur la population de cellules vivantes. Ensuite, utilisez la population de cellules vivantes pour définir la porte sur la population CD quatre positif CD huit négatif.Enfin, à partir de la population CD quatre positif CD huit négatif, il est nécessaire d'isoler la population positive pour l'IL-17A afin de différencier les cellules TH17 ; les cellules non fractionnées issues des ganglions lymphatiques et de la rate doivent donc être enrichies pour la population de lymphocytes T CD quatre positif CD 25 négatif. Sur cette figure, sont représentées les cellules non fractionnées issues des ganglions lymphatiques regroupés, les cytes SP et les fractions de cellules T séparées par AutoMax, marquées avec des anticorps anti-CD quatre et anti-CD 25. Ce premier diagramme de dispersion montre un profil représentatif du pourcentage de lymphocytes CD quatre positif, CD 25 positif et CD quatre positif CD 25 négatif présents dans les cellules non fractionnées issues des ganglions lymphatiques et de la rate regroupés.La procédure d'isolement fournit également une population enrichie de Treg CD4 positif CD25 positif qui peut être utilisée dans des expériences supplémentaires. Sur ce dernier graphique de dispersion, l'enrichissement cellulaire souhaité avec une population de 84 % de lymphocytes T CD4 positif CD25 négatif est illustré. Cette population enrichie de lymphocytes T CD4 positif CD25 négatif contribue à assurer une différenciation TH17 plus efficace, comme le montre cette figure.L'incubation de lymphocytes T CD4 positifs CD25 négatifs avec des anticorps anti-CD3 et anti-CD28 pendant cinq jours donne des lymphocytes T CD25 positifs, tandis que l'incubation dans des conditions inductrices de TH17 produit une sous-population de lymphocytes CD4 positifs CD25 positifs producteurs d'IL-17. Le statut de différenciation TH17 peut être évalué davantage par PCR quantitative et ELISA ; ici, les données obtenues à partir de lymphocytes T CD4 positifs CD25 négatifs enrichis, incubés dans des conditions témoins ou inductrices de TH17, sont présentées. Les lymphocytes T CD4 positifs CD25 négatifs incubés dans des conditions TH17 surexpriment l'IL-17A, ce qui peut être confirmé par QPCR et ELISA. Le facteur de transcription spécifique TH17, RORγt, est également surexprimé par les cellules T CD4 positives CD25 négatives incubées dans des conditions inductrices de TH17, comme cela peut être mesuré par QPCR.Lors de cette procédure, il est important de se rappeler d'obtenir une pureté d'au moins 80 % de cellules CD4 positives et CD25 négatives avant d'incuber les cellules dans des conditions inductrices de TH17. Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez bien comprendre comment disséquer les ganglions lymphatiques et la rate de souris C57BL/6, comment incuber les cellules dans des conditions de contrôle d'activation ou inductrices de T8 17, et comment évaluer la différenciation des lymphocytes T CD4 naïfs en cellules T8 17 South.

isolation-and-th17-differentiation-of-nave-cd4-t-lymphocytes

Research

Recherche

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie et infection

Cette procédure décrit la détection et l'isolement des leucocytes TH17 souris qui sécrètent activement l'IL-17 après stimulation.

Détection et isolement des cellules de souris viables T IL-17-sécrétrices

Nous décrivons une méthode pour générer des cellules T régulatrices, de mémoire et naïve d'un donneur de sang humain unique. Polarisée Tregs peut être ensuite comparé à des sous-ensembles d'autres dans une variété d'applications génétiques et fonctionnelles avec une homogénéité génétique, y compris un test de suppression aussi détaillé ici.

Génération de cellules T régulatrices induites de l&#39;homme primaires cellules T naïves et mémoire

Les lymphocytes T CD4+ naïfs se polarisent en divers sous-ensembles en fonction de l’environnement au moment de l’activation.  La différenciation des lymphocytes T CD4+ naïfs en divers sous-ensembles effecteurs peut être réalisée in vitro par l’ajout de stimuli des récepteurs des lymphocytes T et de signaux spécifiques de cytokines.

Souris Naïf CD4<sup&gt; +</sup&gt; Isolement des cellules T et<em&gt; In vitro</em&gt; Différenciation en sous-ensembles de cellules T

Ici, nous fournissons un protocole optimisé pour l’isolement et le clonage de l’entité rare des lymphocytes T périphériques Vδ1+CD4+ qui est, comme nous l’avons montré récemment, un progéniteur extrathymique des lymphocytes T αβ. Cette technique permet d’isoler quantitativement, de cloner et d’étendre efficacement ces cellules en culture ex vivo.

Isolement et<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Culture de Vδ1<sup&gt; +</sup&gt; CD4<sup&gt; +</sup&gt; cellules γδ T, un extrathymique αβT cellules progénitrices

Ce protocole décrit la différenciation des lymphocytes T CD4+ naïfs en lymphocytes Th17 pathogènes in vitro. Plus précisément, lorsqu’il est combiné à une approche basée sur la cytométrie en flux multiparamétrique, une pureté de 90 % de cellules Th17 pathogènes peut être obtenue à partir de cellules T CD4+ naïves en utilisant cette méthode de différenciation.

Différenciation in vitro de lymphocytes T CD4+ naïfs en lymphocytes Th17 pathogènes chez la souris

Nous présentons un protocole pour la transduction rétrovirale de l’ARN guide dans les lymphocytes T primaires de souris transgéniques Cas9, offrant une alternative efficace pour l’édition de gènes dans l’étude de la différenciation Th17.

Ciblage génique rétroviral médié par CRISPR/Cas9 pour l’étude de la différenciation Th17 in vitro

Génération des lymphocytes T à partir de cellules souches pluripotentes induites (iPS) donne une approche alternative de l'utilisation de cellules souches embryonnaires à des cellules T à base d'immunothérapie. Procédé montre que, en utilisant...

Différenciation dirigée des cellules souches pluripotentes induites à l&#39;égard des lymphocytes T

Un moyen efficace pour isoler les lymphocytes de souris tractus génital est décrite. Cette méthode tire parti de la digestion enzymatique et séparation par gradient de Percoll pour permettre l'isolement efficace. Cette technique est également adaptable pour une utilisation à d'autres...

Isolement des lymphocytes de souris muqueuses génitales Tract

Le transfert de gène adénoviral en CD4 des cellules T naïves avec expression transgénique du récepteur de l'adénovirus Coxsackie permet l'analyse moléculaire de la différenciation des cellules T...

Transduction Adenoviral de CD4 naïfs cellules T pour étudier la différenciation Treg

Les amygdales palatines sont une source riche en lymphocytes B et T. Nous proposons ici un protocole simple, efficace et rapide pour isoler les lymphocytes B et T des amygdales palatines humaines. La méthode décrite a été spécifiquement adaptée pour les études de l’étiologie virale de l’inflammation des amygdales connue sous le nom d’amygdalite.

Protocole d&#39;isolation efficace pour B et les lymphocytes T à partir des amygdales palatines humaines

Découvrez la différenciation des cellules Th17 à partir de lymphocytes T CD4+ naïfs chez la souris C57BL/6. Cette méthode permet d'étudier les mécanismes de l'auto-immunité inflammatoire et d'évaluer l'expression de l'IL-17A.

L'isolement et la différenciation Th17 de Naïve CD4 des lymphocytes T

Explorer plus de vidéos