Summary
このプロトコルは磁気Archimedesの効果に基づいて方法に区分するインクなし、ラベルなし、基質独立者、高スループットのセルを記述する。
Abstract
細胞パターニングは、細胞の位置を正確に制御することができ、細胞の挙動を研究する上で独自の利点をもたらします。このプロトコルでは、磁気Archimedes (Magアーチ)の効果に基づいて細胞のパターニングの作戦はもたらされる。このアプローチにより、インク材料や標識粒子を使用せずに細胞分布を正確に制御できます。常磁性試薬を導入して細胞培養培地の磁化率を高めることにより、細胞は磁石によって反発され、マイクロ流体基板の下に配置された磁石セットと相補的なパターンに配列されます。
本稿では、Mag-Archベースの戦略を用いた細胞パターニングの詳細な手順を説明します。単一細胞タイプおよび共培養実験用の複数細胞タイプをパターニングする方法が提供されています。さらに、細胞パターニング用のチャネルを含むマイクロ流体デバイスを作製するための包括的な手順も提供します。並列メソッドを使用してこの機能を実現することは困難ですが、簡素化された費用対効果の高い方法で実行できます。Mag-Archベースの細胞パターニングを採用することで、研究者は in vitro 研究のための強力なツールを手に入れることができます。
Introduction
細胞パターニングは、 in vitro 研究のための直感的で強力な技術へと進化しています1。培養プレート内の細胞位置を操作することで、細胞遊走2、生体模倣的多細胞共培養3、オルガノイドアセンブリ4、生体材料研究5など、さまざまな実験のためのソリューションを提供します。ほとんどの場合、インクフリー、ラベルフリーの方法は、操作が簡単で、その後の調査のための細胞生存率が高いため、細胞パターニングに好まれます。
マグアーチ効果は、常磁性液体中の反磁性体が弱い磁場の領域に向かって移動する傾向がある物理現象である6。生細胞は自然に反磁性であるが、細胞培養培地は、造影剤として核磁気共鳴画像法で一般的に静脈内投与されるガドペンテテートジメグルミン(Gd-DTPA)などの可溶性常磁性元素を添加することにより、常磁性にすることができる7。その結果、細胞は周囲の常磁性媒質に反発され、磁場の弱い領域に移動することが予想される8。パターン化された磁場は、ネオジム磁石のセットを使用して簡単に生成できます。理想的には、セルパターンは磁石パターンと反対に組み立てられます。技術的には、唯一の追加試薬であるGd-DTPAが細胞外環境に残り、細胞に結合しないため、これはラベルフリー法として定義されています。したがって、その後の細胞培養への潜在的な影響は、培地を交換することによって容易に回避することができる。他の方法1,3,9,10と比較して、Mag-Archベースの戦略は、細胞を肯定的に標識するためにバイオインク成分や特定の粒子の塗布を必要としません。さらに、細胞接着のために複数の基質上で作用することが示されており、ハイスループットな細胞パターニングが可能である4。
本稿では、Mag-Archベースの手法を用いたセルパターニングの詳細なプロトコールについて、デバイスの作製からセルパターンの調整までを網羅しています。今回実証したパターン以外にも、磁石やGd-DTPA溶液を用いて様々なセルパターンを簡単に作成することができます。さらに、複雑な共培養パターンを組み立て、密閉されたマイクロ流体チップ内の細胞を操作するためのプロトコルも提供されます。
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Protocol
1. マグネットセットの組み立て
- ストリップパターン用のマグネットセットを組み立てます。
- 図1Aに示すように、平らな長方形の磁石を選択します。今回使用した長方形磁石の寸法は、1.5mm×10mm×35mm(厚さ×高さ×長さ)です(材料表参照)。磁石の厚さによって、セルストライプ間のギャップが決まります。
- 厚さ2mmのシリコンプレート( 材料表を参照)を2mm×8mm×30mmの長方形にカットします。これらのシリコンプレートの後者の2つの寸法が、上記の長方形の磁石の寸法よりもわずかに小さいことを確認して、アセンブリを最適化します。シリコンプレートの厚さによって、セルストライプの幅が決まります。
- 図1Aに示すように、長方形の磁石とシリコンプレートを層ごとに組み立てます。各マグネットセットは、4つのマグネットと3つのシリコンプレートで構成されています。固有の引力によって磁石セットが自動的に揃うように、隣接する各磁石の極が反対であることを確認してください。
- 使用前に磁石を滅菌してください。
注意: マグネットセットを純水で洗浄してから、75%エタノールに10分間浸すことをお勧めします。これらのマグネットセットの全体寸法は、12 mm × 10 mm × 35 mm で、標準的な 6 ウェル細胞培養プレートに適合するように設計されています。
- ドットアレイパターン用のマグネットセットを組み立てる
- 図1Bに示すように、小型の円筒形磁石を選択します。本実証に用いた円筒形磁石の寸法は、Φ1.5mm×10mm(直径×高さ)で、軸方向に磁化されています。
- 図1Bに示すように円筒形の磁石を組み立てます。各磁石セットが、6×6グリッドに配置された36個の円筒形磁石で構成されていることを確認します。また、固有の引力により磁石セットが自動的に整列できるように、隣接する各磁石の極が反対であることを確認してください。
- 使用前に、手順1.1.4と同じ手順に従って磁石を滅菌してください。これらのマグネットセットの全体寸法は、9 mm × 10 mm × 9 mm で、標準的な 6 ウェル細胞培養プレートに適合するように設計されています。
2. スライドガラス上での細胞パターニング
- 細胞培養装置を準備します。
- 厚さ2mmのシリコンプレートを使用して、シリコンモールドを作成します。パンチャーを使用して、プレートに1cm×1cmの長方形の穴を開けます。 図25Cに示すように、穴の周りのシリコンプレートをトリミングして、穴を中央に持つ丸い型(直径= 1 mm)を作成します。
- 超音波洗浄機を使用してシリコンモールドを完全に洗浄します。金型を純水で10分間洗浄し、さらに10分間水を75%エタノールに置き換えて滅菌します。最後に、金型を滅菌ボックスに入れて65°Cで60分間乾燥させます。
- 図1Cに示すように、滅菌したシリコン型をΦ25mmの丸いガラスセルスライドに取り付け、シリコンがガラスに付着するようにそっと押します。得られた細胞培養デバイスは、ガラスの下面と200μLの培養キャビティを有することになる。デバイスの寸法はΦ25mm×2.15mmで、標準的な6ウェル細胞培養プレートに適しています。
注:上記の細胞培養デバイスは、共焦点ディッシュなど、下面が0.5mmより薄い他のシャーレと交換できます。 - マグネットセットを6ウェルプレートに置きます。操作のしやすさから非磁性ピンセットをお勧めします。
注:以降のすべてのステップは、この時点から細胞パターンの観察まで無菌条件下で実行する必要があります。 - 細胞培養装置を、6ウェルプレートのウェルにセットされた磁石の上に置きます。細胞培養装置が水平に配置され、下側がマグネットセットに密着していることを確認してください。
- Gd-DTPAを含む細胞培養培地を調製します
- 市販のGd-DTPA注入液( 材料表を参照)を、通常500 mMの濃度で調製します。30 μL の Gd-DTPA 注入液を 470 μL の完全細胞培養培地に添加して注入を希釈し、目標濃度を 30 mM にします。
注:地域の規制と入手可能性に応じて、同じ目標濃度の他のガドリニウムベースの造影剤(GBCA)でも同様の結果が得られる可能性があります11。
- 市販のGd-DTPA注入液( 材料表を参照)を、通常500 mMの濃度で調製します。30 μL の Gd-DTPA 注入液を 470 μL の完全細胞培養培地に添加して注入を希釈し、目標濃度を 30 mM にします。
- セルパターンを作成します。
- パターニング用の細胞を採取します。このデモンストレーションでは、ヒト臍帯静脈内皮細胞(HUVEC、 材料表を参照)をパターニングに使用しました(図2)。細胞を200 x g (室温)で5分間遠心分離して懸濁液から回収し、Gd-DTPA含有培地に再懸濁します。細胞密度を数えます。
- 細胞密度を約2~2~105細胞/ mLに調整し×Gd-DTPA含有培地で使用します。細胞懸濁液を静かに混合し、各細胞培養型のキャビティに200μLを加えて、つばのある完全な液面を作成します。
- プレートを細胞培養インキュベーターに慎重に移し、細胞が基質によく付着するまで3〜6時間インキュベートします。細胞パターンの組み立てに干渉しないように、インキュベーターのドアをバタンと閉めないでください。接着率の低い細胞の場合、GBCAによる一晩の処理は一般的に安全です12。
- 細胞パターニングは、細胞が細胞培養装置のキャビティの底部に付着した時点で完了したとみなされます。Gd-DTPA含有培地を完全培養培地と交換します。
- マグネットセットから細胞培養装置を取り出します。細胞パターンをすぐに観察するか、デバイスを新しい培養プレートに移してさらに培養することができます。
3. 磁石横向きの共培養パターニング:可動テンプレートの作製
注:以下の手順は、Mag-Archベースのセルパターニングを活用し、より多くのアプリケーションの可能性を探るために提示されています。
- ステップ1とステップ2に従って、ストライプセルパターニング用のデバイスを準備します。ただし、細胞密度を1 × 105 cells/mLに減らし、磁石を分離するシリコンプレートをより薄いものに交換して、各ストライプセルパターンを薄くします。
メモ: これにより、複数のセルをストライプパターンで配置するのに十分な領域が確保されます。参考までに、磁石の分離には2mmではなく1mmのシリコンプレートを使用することをお勧めします。 - 手順2.2-2.3に示すように、最初のタイプのセルをパターン化します。このステップでは、細胞の接着にも3〜6時間かかります。
注:共培養システム内の異なる細胞タイプを区別するために、ユーザーはパターニングの前にDiI、DiDなどの蛍光色素、またはセルトラッカー(CMTPX、CMFDA、CMACなど)で細胞を標識することができます。例えば、DiIおよびDiD染色の場合、FBSフリー培地1 mLに対して1 μLの原液(10 mM)( 材料表を参照)を添加し、よく混合してワーキング溶液を得ます。培養液を作業溶液と交換して、接着細胞を覆います。30分間インキュベートし、PBSで3回洗浄した後、細胞回収に進みます。 - 最初のタイプの細胞をパターニングした後、 図3Aiiに示すように、細胞培養デバイスを下の磁石から右に1mm移動させます。
- スライドガラスを200μLのPBSで2回静かに洗浄します。スライドを乾かさないでください。
- 手順2.2-2.3で示したのと同じ方法で、2番目のタイプのセルをパターン化します。
- 図3Aiiiに示すように、細胞培養装置を下の磁石から1mm右に移動し、再度200μLのPBSでスライドガラスを洗浄します。手順2.2-2.3で示したのと同じ方法で、3番目のタイプのセルをパターン化します。
- すべての種類の細胞をパターニングした後、200 μLのPBSでスライドガラスを2回穏やかに洗浄し、完全な細胞培養培地と交換します。
- マグネットセットから細胞培養装置を取り出します。その後、細胞パターンを観察したり、デバイスを新しい培養プレートに移してさらに培養したりできます。
4. Gd-DTPA濃度調整による共培養パターニング
注:GBCAは、使用濃度(≤75 mM)での細胞接着またはその後の増殖に大きな影響を与えません。さらに、細胞パターンはGd-DTPAの濃度の影響を受け、濃度が高いほど細胞パターンが小さくなったり薄くなったりします。このように、Gd-DTPAの濃度を調整するだけで共培養系を作ることができる。この例では、同心円状配列のパターニングを示します。
- ステップ2.2-2.3に示すように、ステップ1.2のミニチュア円筒形磁石を使用して、最初のタイプのセルをパターン化します。細胞を回収する前に、DiI、DiD、またはセルトラッカー(ステップ3を参照)などの蛍光色素で細胞を標識し、共培養システム内のさまざまな細胞タイプを区別します。
注:高濃度のGd-DTPA(30 mMではなく50 mM)とより低い細胞密度(約1×〜105 cells/mL)が必要です。 - 最初のセルアレイをパターニングした後、200 μLのPBSでスライドガラスを2回静かに洗浄します。スライドを乾燥させないでください。
- 前と同じ手順に従って、2 番目のタイプのセルをパターン化します。転位を防ぐために、スライドガラスを磁石上で比較的動かないようにしてください。スライドガラスの下面には、マグネットセットをはめ込むための中空のあるシリコンプレートを取り付けることをお勧めします。
注: ここでは、図 3B に示すように、2 番目のセルパターンが 1 番目のセルパターンよりも大きくなることが予想されるように、Gd-DTPA の濃度を低くする必要があります(30 mM ではなく 20 mM)。 - すべてのタイプの細胞をパターニングした後、200 μLのPBSでスライドガラスを2回穏やかに洗浄し、培地を完全な細胞培養培地と交換します。
- マグネットセットから細胞培養装置を取り出します。その後、細胞パターンを観察したり、デバイスを新しい培養プレートに移してさらに培養したりできます。
5. マイクロ流体チップにおける細胞パターニング
注:Mag-Archベースの方法は、以前の研究8で密閉された狭いチャンバーで機能することが実証されています。これは、マイクロ流体チャネルにおけるドットアレイのパターニングの例です。
- マイクロ流体チップの作製
- 図4Aに示すように、24 mm×50 mm × 8 mmの長方形のキャビティを含む40 mm×75 mm×20 mmのポリテトラフルオロエチレン(PTFE)金型(材料表を参照)をカスタマイズします。
- 厚さ0.5mmのシリコンプレートを平らにします。図4A、Bに示すように、15 mm×20 mm×0.5 mmの長方形の空洞を持ち、入口側と出口側の両方に三角形の緩衝領域がある流体チャネルの形状に従ってシリコンプレートを切断します。
- 40mm×75mmの長方形のガラス板をカスタマイズします。ガラス板をエアプラズマで30秒間洗浄します。
- エアプラズマ洗浄後すぐに、ガラス板を市販の付着防止緩衝液0.5mL( 材料表参照)で覆い、風乾させます。ガラス板を一度エタノールで洗い、自然乾燥させます。
- 図5.1.2で準備したシリコンプレートをガラス板の真ん中にしっかりと取り付けます( 図4A)。
- 製造元の指示に従ってポリジメチルシロキサン(PDMS)プレポリマーを調製します( 材料表を参照)。各PDMSチップについて、10 gの塩基成分と1 gの硬化剤を50 mLの遠心チューブに秤量します。
- 小さな気泡がコロイド中に均一に分布するまで、ガラス攪拌棒で薬剤を完全に混合します。混合には、コロイドの量にもよりますが、5〜10分かかります。コロイドプレポリマーを500 x g (室温)で1分間遠心分離し、気泡を除去します。
- ~10 mLのプレポリマーをキャビティにゆっくりと流し込み、PTFEモールドに充填します。
- 金型を真空リザーバーに慎重に配置し、プレポリマーが流れ出ないように水平に保ちます。
- 真空ポンプでプレポリマーに残留気泡を除去します。掃除機には120〜180分かかります。
- 必要に応じて、さらにプレポリマーを流し込んで、金型キャビティをさらに充填します。さらに60分間掃除機をかけます。
- 図4Biに示すように、シリカ側をキャビティに向け、PTFEモールドをガラス板で慎重に覆います。
- すべての気泡が排除されていることを確認します。金型を60°Cの乾燥オーブンに移し、プレポリマーを一晩固化させます。
- オーブンから型を取り出します。冷却後、固化したPDMSカバーを慎重に離型します。Φ1mmのニードルパンチャーで入口と出口を作成します。
- 手順2.1.2に従って、PDMSカバーと24mm×50mmのカバースライドを洗浄します。
注意: 滅菌状態で次の手順に進みます。 - PDMSカバーとカバースライドを取り付けて、高さ約~500μmの流路を含むマイクロ流体チップを作成します。底面は~0.15 mmのガラスカバースライドで構成し、Mag-Archベースの戦略で細胞のパターニングを可能にする必要があります。
- 市販の滅菌アダプタをマイクロ流体チップ8の入口と出口の両方に組み立てる。
- 2%(w/v、PBSに溶解)のゼラチンコーティング緩衝液を調製します。オートクレーブ滅菌により緩衝液を滅菌します。
- ゼラチンコーティングバッファーを、1 mLシリンジを使用してインレットアダプター を介して チップに注入します。気泡が発生した場合は、追加のコーティングバッファーで洗い流してください。
- チップを10cmの細胞培養皿に入れます。乾燥を防ぐために、皿の底の周りに1 mLのPBSを加えます。皿を細胞培養インキュベーターに移します。コーティングには30分かかります。
- 2 mLのGd含有培地(30 mM)でコーティングバッファーをインレット から 洗い流します。
- 30 mM Gd-DTPAを含む細胞懸濁液1 mLを1 mLシリンジで静かに注入します。
- ステップ2.2-2.3で示したように、ステップ1.2のミニチュア円筒形磁石を使用してセルをパターン化します。
注:ただし、 図4Ciに示すように、マグネットセットをスライドガラスの下面に取り付ける中空のあるシリコンプレートを取り付けることをお勧めします。 - パターニング後、Gd-DTPA含有培地を1 mLの完全培地で1 mLのシリンジで洗い流し、穏やかにリフレッシュします。
注:マイクロ流体工学におけるセルパターニングのプロセスは、ステップ5.7〜5.9で約180分かかり、これは標準的なスライドガラスのセルパターニングと同様です。 - 顕微鏡でパターンを定量化します。必要に応じて、マイクロ流体チップを循環培養装置に接続して、さらに培養します。
注:我々の経験では、細胞は、細胞インキュベーター8内の新鮮な培地の連続的な流れをマイクロ流体工学に提供する単純なマイクロポンプベースのデバイスによって支持された場合、少なくとも72時間増殖することができる。
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Representative Results
矩形(1.5mm×10mm×35mm)と円筒形(Φ1.5m×10mm)の磁石を選定し、セルパターンをデモンストレーションとして作成しました。ユーザーは、磁石のサイズや形状を変更したり、さまざまなセルパターンを作成したりできる柔軟性があります。図1A、Bでは、磁石を組み立て、磁極を青(南)と赤(北)で明確に示しています。この構成では、図2に示すように、磁石は互いに横方向に引き合い、整列します。図1C、Dは、細胞培養装置の構造および細胞パターニング手順を示す。
図2は、モノタイプのセルパターンを示しています。GFP標識HUVECを蛍光顕微鏡での観察に利用しました。セルは、対応する磁石セットを使用してストライプおよびドットアレイパターンに編成されました。スライドガラスに急速に接着するHUVECの場合(120〜180分以内)、手順全体は4時間で完了しました。プロトコルに従うことで、エッジが明確に定義され、高い均一性を持つパターンが得られました。生存率を決定するために、細胞をGd-DTPAで12時間処理したが、これはステップ2の3〜6時間よりもはるかに長い。しかし、生染色/死染色およびCCK8アッセイ8 のいずれにおいても、細胞生存率の有意な低下は認められなかった。比較的高濃度のGd-DTPA(50 mM)は統計的な差を誘発したが、それでも90.76%±1.78%の生存率を維持した(補足図1)。
モノタイプ細胞パターニングプロトコルに基づいて、潜在的な共培養アプリケーションのためにマルチタイプ細胞パターニングの例が提供されました。このシナリオでは、HUVEC、A2780卵巣がん細胞、および平滑筋細胞(SMC)が採用されました。それらを区別するために、細胞をパターニングする前にGFP、DiD、およびDiIで標識しました。ステップ3に従うことで、横並びのストライプの三部セルパターンが生成されました(図3A)。逆に、ステップ4を使用して、Gd-DTPAの濃度を調整して同心円状のドットアレイを作成しました(図3B)。細胞の1層目はDiI(赤色)で染色し、50 mM Gd-DTPAでパターニングし、2層目の細胞はGFP(緑)で標識し、25 mM Gd-DTPAでパターニングしました。その結果、第1層のドットサイズは小さくなり、ドットパターンのセルの第2層が同心円状に囲まれました。細胞の種類によって接着速度と拡散速度は異なり、HUVECは急速に接着して広がり、A2780は急速に接着するが拡散はより遅く、SMCは比較的ゆっくりと接着して広がりました。これらの結果から、様々な種類の細胞が3時間で細胞パターンを形成し、共培養実験に利用できることが実証されました。
さらに、磁場を用いた細胞パターニングは、マイクロ流体チップなどの密閉型狭量培養装置と互換性があることを実証しました。ステップ5に続いて、マイクロ流体チップを作製し、その中にドットアレイを生成しました(図4)。
図1:マグアーチベースのセルパターニングのセットアップと模式図。 (A)ストライプセルパターンを作成するためのマグネットセットの組み立て。(B)ドットアレイセルパターンを生成するための磁石セットの組み立て。(C)細胞培養装置のセットアップ。(D)細胞パターニングの段階的な手順。この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。
図2:デバイスの組み立てとHUVECのストライプおよびドットアレイパターンへのパターニング 。 (A)細胞培養装置(i)内に閉じ込められ、細胞培養プレート(ii)に入れられたマグネットセット。(B)と(C)マグネットセットと対応するセルパターン。細胞パターンを可視化するために、細胞を緑色蛍光タンパク質(GFP)で標識しました。スケールバー= 1.5 mm;インセット = 500 μm。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。
図3:ステップバイステップの戦略による共培養システムのパターニング。 (A)磁石を横向きに用いた共培養パターニング(i-iii)。細胞をGFP(緑)、DiD(青)、DiI(赤)で標識し、異なる細胞タイプを区別しました。スケールバー = 1 mm。 (B)Gd-DTPA濃度を調整することにより達成される共培養パターニング。(i)50mM、(ii)20mM。スケールバー= 1.5 mm;インセット = 250 μm。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。
図4:マイクロ流体チャンバー内のセルパターニング。 (A)マイクロ流体モールドの模式図。(B)ポリジメチルシロキサン(PDMS)を用いたマイクロ流体の作製(i,ii)。(c)マイクロ流体デバイス内のセルパターニング(i,ii)とドットアレイセルパターンを示す代表的な結果(iii)。細胞を緑色蛍光タンパク質(GFP)で標識しました。スケールバー = 3 mm。この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。
補足図1:細胞生存率に対するGd-DTPAの影響。 HUVECをさまざまな濃度のGd-DTPAで12時間処理した後、生/死染色またはCCK-8アッセイに供しました。(A)HUVECの生染色/死染色。スケールバー = 200 μm。 (B)生染色/死染色結果を示すヒストグラム。(C)CCK-8アッセイ結果を示すヒストグラム。 このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。
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Discussion
Mag-Archベースのセルパターニングは、ほとんどの生物医学ラボにユーザーフレンドリーなソリューションを提供します。この方法は、インクフリー、ラベルフリー、基板非依存、およびハイスループットパターニングの能力8,13の特性と並行して進歩します。モノタイプのセルパターニングでは、ワンステップでセルをパターニングします。この手順は、培地をリフレッシュするだけで終了します。
これまでの研究では、磁性粒子を使用して細胞を標識し、磁石で引き付けて正確なパターンを形成していました14,15。しかし、細胞上に磁性粒子が存在することで、細胞の挙動に及ぼす潜在的な影響が懸念されました。Mag-Archベースの細胞パターニングは、細胞外液体を細胞ではなく常磁性に変えるという逆の戦略を取ります。この戦略により、培地をリフレッシュすることで、余分な常磁性試薬の除去がはるかに簡単になります。研究により、Mag-Archベースの細胞パターニング11,16で細胞球とドットアレイが生成されました。既存のMag-Archベースの研究と比較して、このプロトコルによって提示された方法は、パターンの形状を自由にカスタマイズできます。さらに、このプロトコルは、共培養システムを製造するための戦略を提示しています。また、マイクロ流体工学でテストしたように、密閉された狭い細胞培養チャンバー内でも機能することが証明されています。
専門のバイオプリンティング装置17、カスタマイズされたテンプレート18、または複合体の表面改質19を必要とする並列法ではなく、Mag-Archベースの方法は、磁石とGBCAの2つの必需品のみを必要とする。磁石パターンの表面は、セルパターンを逆に決定します。いくつかのパターンのストライプとドット配列を基本として実演しました。ユーザーは、市販されているさまざまな形状の磁石セットを使用して、自由にパターンを生成できます。理想的な結果を得るには、十分な磁力を供給する磁石を採用することをお勧めします。本研究では、極の残留磁気が1430mT以上、表面磁気が100mT以上のN52ネオジム・鉄・ホウ素磁石を採用した。GBCAでは、生理学的条件で安定しており、ほとんどの国や地域で安価に入手できることから、Gd-DTPAが採用されました。他のGBCAを代替的に採用することもできます。ガドブトロールやガドテリドールなどの大環状非イオン性GBCAは、長期治療のために脆弱な細胞をパターン化する際の細胞毒性が低いため、より良い選択である可能性があります11,12。
Mag-Archベースのセルパターニングの限界は、主に磁石によって生成される磁場の作用領域にあります。逆二乗の公式に従うと、磁場は距離8で急激に減少します。その結果、Mag-Arch法では、底が1mmより厚い一般的なポリスチレン細胞培養皿やプレートでは、理想的な細胞パターンを組み立てることができません。したがって、このプロトコルは、スライドガラスや共焦点細胞培養皿など、より薄い細胞培養表面で機能する必要があります。また、マイクロ流体内部をパターニングする場合、マイクロ流体工学の底面スライドは0.5mmより薄くする必要があります。共培養システムを確立する場合、この方法は時間がかかる場合があり、細胞タイプを追加するたびに、細胞接着にかかる時間が3〜6時間長くなります。
全体として、このプロトコルは、特別な装置なしでほとんどの研究室で複製できる細胞パターニングの簡素化された方法を提供します。ユーザーは、細胞の挙動を研究したり、多細胞微小環境を模倣したり、生体材料の細胞親和性をテストしたりするための強力なツールとして採用できます8。
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Disclosures
著者は競合する金銭的利害関係を持っていません。
Acknowledgments
本研究は、中国国家重点研究開発プログラム(2021YFA1101100)、中国国家自然科学基金会(32000971)、中央大学基礎研究費(No.2021FZZX001-42)、浙江大学上海高等研究院星月夜科学基金(助成金番号.SN-ZJU-SIAS-004)です。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| A2780 ovarian cancer cells | Procell | CL-0013 | |
| Cell culture medium (DMEM, high glucose) | Gibco | 11995040 | |
| Cover slides | Citotest Scientific | 80340-3610 | For fabricating microfluidics. Dimension: 24 mm × 50 mm |
| DiD | MedChemExpress (MCE) | HY-D1028 | For labeling cells with red fluorescence (Ex: 640 nm) |
| DiI | MedChemExpress (MCE) | HY-D0083 | For labeling cells with orange fluorescence (Ex: 550 nm) |
| Fetal Bovine Serum (FBS) | Biochannel | BC-SE-FBS07 | |
| Gadopentetate dimeglumine (Gd-DTPA) | Beijing Beilu Pharmaceutical | H10860002 | |
| Gelatin | Sigma Aldrich | V900863 | |
| Glass cell slides | Citotest Scientific | 80346-2510 | Diameter: 25 mm; thickness: 0.19-0.22 mm |
| Glass plates | PURESHI hardware store | For fabricating microfluidics. Dimension: 40 mm × 75 mm | |
| Human Umbilical Vein Endothelial Cells (HUVECs) | Servicebio | STCC12103G-1 | |
| Neodymium-iron-boron magnets (N52) | Lalaci | ||
| Non-toxic glass plate coating (Gel Slick Solution) | Lonza | 1049286 | For convenience of demolding when fabricating microfluidics |
| Phosphate Buffered Saline (PBS) | Servicebio | G4200 | |
| Plasma cleaner | SANHOPTT | PT-2S | |
| Polydimethylsiloxane (PDMS) kit | DOWSIL | SYLGARD 184 Silicone Elastomer Kit | For fabricating microfluidics |
| Polytetrafluoroethylene (PFTE) mold | PURESHI hardware store | Customized online, for fabricating microfluidics | |
| Silicon plate | PURESHI hardware store | ||
| Smooth Muscle Cells (SMC) | Procell | CL-0517 | |
| Ultrasonic cleaner | Sapeen | CSA-02 |
References
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