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Biology

Alimentador livre adaptação, Cultura e Passaging de células iPS humanas usando Completa KnockOut Alimentador-Free substituição Serum Médio

Published: July 15, 2010 doi: 10.3791/2236

Summary

O protocolo a seguir fornece instruções para a adaptação humana tronco pluripotentes induzidas (iPS) células para alimentação livre de cultura usando completa KnockOut Feeder livre de substituição de soro médio (KSR-FF). Uma vez adaptado, instruções para a manutenção contínua também são fornecidos.

Abstract

A descoberta em 2006 que fibroblastos humanos e mouse poderia ser reprogramado para gerar células iPS 1-3 com qualidades muito semelhantes às células-tronco embrionárias criou uma valiosa fonte de novas células pluripotentes para descoberta de medicamentos, terapia celular, e pesquisa básica.

Media GIBCO e reagentes têm estado na vanguarda da pesquisa com células-tronco pluripotentes por anos. Knockout DMEM suplementado com Knockout Serum substituição é a mídia de sua escolha para o crescimento de células-tronco embrionárias e, agora, de cultura de células iPS 3-9. Este padrão ouro sistema de mídia agora pode ser usado para alimentação livre de cultura com a adição de Knockout SR Cocktail Fator de Crescimento.

ES humana e métodos tradicionais de cultura de células iPS requerem o uso de mouse ou camadas de alimentação humana de fibroblastos, ou alimentador condicionado médio. Estes métodos cultura são de trabalho intensivo, difícil de escala e é difícil manter quadris células indiferenciadas, devido às condições indefinido. Invitrogen desenvolveu Knockout SR Cocktail Fator de Crescimento para permitir que você facilmente a transição do seu celular para culturas quadris alimentador livre, mantendo o uso do SR Knockout.

Protocol

Nota: Para manter as condições de cultura estéril, todos os procedimentos neste protocolo são realizadas utilizando práticas de laboratório estéril e conduzidos sob uma capela de fluxo laminar.

Antes de começar, certifique-se que qualquer mídia é equilibrado a 37 ° C e adequadamente gaseados.

Preparar pratos Geltrex revestido Cultura

Nota: ver anexo para o uso de placas de cultura de CELLstart revestido

  1. Tubo de descongelar um dos Geltrex (1 mL) lentamente a 2-8 ° C e diluir 1:100 em 99 mL de Knockout D-MEM/F-12. Misturar a solução suavemente.

    Nota: Algumas linhagens de células iPS podem requerer uma diluição Geltrex diferentes para o crescimento ideal. Veja o apêndice para diluições de alternativa.
  2. Cobrir toda a superfície de cada placa de cultura com a solução Geltrex (1 mL para um prato de 35 mm, 1,5 mL para um prato de 60 mm).
  3. Seal cada prato com Parafilm para evitar a secagem e incubar os pratos para 1 hora a 37 ° C.

    Nota: Neste ponto, você pode armazenar os pratos Geltrex revestido cultura a 4 ° C por até 1 mês. Seal cada prato com Parafilm para impedir a Geltrex sequem.
  4. Antes de usar, transferir os pratos Geltrex revestido a uma capela de fluxo laminar e permitir-lhes atingir a temperatura ambiente (cerca de 1 hora).

Preparando Alimentador-Free SR Completa KnockOut Médio

  1. Para preparar 1 mL de 10 mcg / ml solução FGF Basic, assepticamente misturar os componentes listados abaixo. Alíquota da solução e armazenar a -20 ° C por até 6 meses.

    FGF básico 10 mg
    D-PBS 990 mL
    10% BSA 10 L


    Nota: BSA pode ser substituído com HSA ou SR Knockout na mesma concentração.
  2. Para preparar 50 mL de solução 2 Dispase mg / mL, assepticamente misturar os componentes listados abaixo. Filtro de esterilizar a solução e armazenar a 4 ° C por até duas semanas.

    Dispase 100 mg
    D-PBS 50 mL
  3. Para preparar 100 mL de SR KnockOut completa Alimentador-Free (KSR-FF) médio assepticamente combinar os componentes listados na tabela abaixo.

    Componente Concentração de ações Concentração Final Volume
    Knockout DMEM/F12 (Cat. n º. 12.660-012) - 1X 76,8 mL
    Glutamax-I (Cat. No. 35050-061) 200 mM 2 mM 1 mL
    KnockOut SR (sem Cat.. 10.828-028) - 20% 20 mL
    KnockOut SR-GFC (sem Cat.. A10580-01) 50X 1X 2 mL
    bFGF (sem Cat.. PHG0024) 10 mcg / mL 20 ng / mL 200 mL
    Você pode armazenar o meio KSR-FF a 2-8 ° C por até uma semana.
  4. Pouco antes de pré-equilibrar o meio completo à temperatura e gases, adicionar assepticamente o volume necessário de 2-mercaptoetanol (55 mM de concentração de ações) para uma concentração de 0,1 mM final. Por exemplo, para preparar 100 mL da KSR-FF médio mL adicionar 182 de 55 mM 2-mercaptoetanol (1:550 diluição) Alternativamente, o 2-mercaptoetanol podem ser adicionadas ao meio 1X preenchido e armazenado a 2-8 ° C para até uma semana.

Adaptação iPSCs a KSR-FF Médio

  1. Antes de começar, pré-equilibrar os seus pratos Geltrex revestidas até a temperatura ambiente no bairro.
  2. Cultura da iPSCs em células alimentadoras MEF até que sejam confluentes 70-80%. Por favor, consulte o manual Fibroblasto GIBCO embrionárias de camundongos para protocolos baseados em MEF cultura. Pré-aquecer o volume necessário de Dispase em um banho de água 37 ° C. Consulte a Tabela 1 abaixo para obter detalhes sobre os volumes necessários.
  3. Pré-equilibrar o volume necessário de KSR-FF em um banho de água a 37 ° C for15 min. Consulte a Tabela 1 abaixo para obter detalhes sobre os volumes necessários.
  4. Aspirar o meio dos pratos, cultura e adicionar uma quantidade adequada de solução Dispase. Incubar os pratos a 37 ° C por 3-5 minutos.
  5. Aspirar a solução de cada navio Dispase cultura e lavar as células alimentador MEF suavemente com D-PBS (2 a 3 vezes).
  6. Adicionar uma quantidade adequada de meio completo KnockOut SR a cada navio de cultura. Use um raspador de célula ou uma pipeta de 5 mL para raspar suavemente as células da superfície da embarcação cultura.

    Nota: veja o apêndice para protocolos alternativos para adaptação difícil de se adaptar as linhas de células iPS,
  7. Recolher a suspensão de células de cada placa de cultura em diferentes tubos de 15 mL cônico. Lave cada navio cultura com uma quantidade adequada de meio completo KnockOut SR, e adicione a D-PBS lavar médio para o 15 mL tubos cônicos contendo a suspensão celular. Seja cauteloso para não quebrar os aglomerados de células em uma única célula
  8. Centrifugar a 15 mL em tubos cônicos 200 xg por 5 minutos para sedimentar as iPSCs.
  9. Aspirar o sobrenadante do pellet iPSC. Ressuspender o sedimento em uma quantidade adequada de KSR-FF médio de acordo com a taxa de divisão (Tabela 1). Não quebre os aglomerados de células para um tamanho menor, porque os aglomerados mais pequenos não dão bem para a superfície.

    Nota: Recomenda-se uma taxa de divisão de 1:2 para os primeiros três passagens após o iPSCs foram várias passagens diretamente do Meio de Cultura iPSC MEF para KSR-FF médio. Normalmente, a razão de separação 01:03 - 01:05 é apropriado, mas passaging em 01:02 garante a maior densidade de células necessárias ao adaptar em uma cultura de alimentação livre.
  10. Antes de chapeamento do iPSCs em pratos Geltrex revestido, aspirar solução Geltrex residual do prato pré-revestidos, e lentamente adicionar uma quantidade adequada de suspensão de células de cada placa de cultura. Nota: não lavar os pratos antes de chapeamento.
  11. Mover a placa de cultura e para trás e para os lados várias vezes para dispersar as células em toda a superfície do prato. Delicadamente, coloque o prato de cultura em uma incubadora de 37 ° C com uma atmosfera húmida de 4 a 6% CO 2 no ar. Substituir o médio gasto com KSR-FF a cada dia.

Passaging células iPS usando KSR-FF

  1. Observar o iPSCs humana crescendo em completa KSR-FF sob o microscópio para confirmar que as células são 70-80% confluentes e pronto para ser repicadas. Consulte a Figura 1.

    Nota: Se colônias tornam-se muito denso ou muito grande, maior diferenciação ocorre.
  2. Cortar e remover qualquer colônias diferenciada iPSC antes passaging a cultura.
  3. Pré-aquecer o volume necessário de Dispase em um banho de água 37 ° C. Consulte a Tabela 1 abaixo para obter detalhes sobre os volumes necessários.
  4. Pré-equilibrar o volume necessário de KSR-FF em um banho de água a 37 ° C for15 min. Consulte a Tabela 1 abaixo para obter detalhes sobre os volumes necessários.
  5. Aspirar o meio de gastos do navio cultura usando uma pipeta, e lavar as células duas vezes com D-PBS.
  6. Delicadamente adicionar pré-aquecido Dispase solução para o navio de cultura (por exemplo, 1 mL de solução Dispase por 60 mm placa de cultura). Redemoinho do navio cultura para revestir a superfície da célula inteira.
  7. Incubar a embarcação cultura a 37 ° C por 3 minutos.
  8. Remover o navio da incubadora, aspire a solução Dispase e lavar cuidadosamente as células com D-PBS.
  9. Raspe as células da superfície da placa de cultura com uma espátula de células, e transferência das células para um tubo de centrifugação estéril 15ml.
  10. Lavar o prato de cultura duas vezes com KSR-FF, gentilmente "pulverização off" as células que não tenham destacado. Piscina do enxágüe meio com as células no tubo de 15mL.
  11. Centrifugar o tubo a 200 xg por 5 minutos em temperatura ambiente para agregar as células.
  12. Aspirar cuidadosamente o sobrenadante sem perturbar o pellet celular e descartá-lo.
  13. Agite suavemente o tubo para expulsar totalmente o pellet celular a partir do fundo do tubo.
  14. Delicadamente ressuspender as células pré-equilibradas KSR-FF com uma pipeta de 5mL sorológicos. Não triturar. Nota: é fundamental na etapa delicadamente ressuspender as células sem usar a força para evitar danos.
  15. Transferência das células para um novo prato de 60 mm Geltrex revestido na razão de separação desejada e mova a placa de cultura e para trás e para os lados várias vezes para dispersar as células em sua superfície.
  16. Coloque o prato de cultura em uma incubadora de 37 ° C com uma atmosfera húmida de4 a 6% CO 2 no ar.
  17. No dia seguinte, colocar suavemente o médio gasto com KSR-FF para remover restos celulares. Substituir o médio passou todos os dias depois. Observe as células iPS diárias e passagem-los conforme necessário (aproximadamente a cada 4-5 dias). Passaging é recomendada quando as células atingem confluência de 70-80%. Para criopreservação de células iPS e descongelamento, consulte nosso protocolo intitulado "criopreservação e recuperação das células humanas iPS usando Completa KnockOut Feeder livre de substituição de soro Medium".

Resultados esperados

Figura 1
Figura 1. A imagem abaixo mostra contraste de fase iPSCs cultivadas em pratos Geltrex revestido cultura usando completa KnockOut Alimentador-Free substituição Serum médio. O iPSCs apresentam morfologia semelhante ao hESCs, caracterizado por núcleos grandes e citoplasma escasso. (40x)

Componente Dish 35 milímetros Dish 60 milímetros Dish 100 milímetros
Completa KnockOut SR médio 2 mL 4 mL 10 mL
Geltrex Solution 1 mL 1,5 mL 4-5 mL
Dispase 0,5 mL 1 mL ML 3-4
D-PBS para lavagem 2 mL 4 mL 10 mL

Tabela 1. Volumes recomendado

Por favor, clique aqui para ver o apêndice .

Disclosures

Os autores deste artigo são empregados por Life Technologies, que produz reagentes e instrumentos utilizados neste artigo.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Knockout DMEM/F12 Cat. no. 12660-012 Note: see appendix for the use of alternative DMEM products
GlutaMAX-I Cat. No. 35050-061
KnockOut Serum Replacement KnockOut SR, Cat. no. 10828-028
KnockOut Serum Replacement Growth Factor Cocktail KnockOut SR-GFC, Cat. no. A10580-01
FGF-basic, human recombinant protein, 10 μg bFGF, Cat. no. PHG0024 Note: see appendix for alternative bFGF pack sizes.
2-Mercapt–thanol Cat. no. 21985-023
Dispase Cat. no. 17105-041 Note: see appendix for alternative passaging methods.
Geltrex hESC-Qualified Reduced Growth Factor Basement Matrix, 1 mL Cat. no. A10480-01
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (D-PBS) without calcium and magnesium Cat. no. 14190-144
Sterile Tissue Culture Hood
Incubator set at 37°C
Pipette-Aid
Water Bath set at 37°C
Sterile serological pipettes (5 mL, 10 mL)
Centrifuge
15 mL centrifuge tubes
60mm Tissue Culture treated dishes

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Takahashi, K. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell. 126, 663-676 (2006).
  2. Takahashi, K. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131, 861-872 (2007).
  3. Yu, J. Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells. Science. 318, 1917-1920 (2007).
  4. Maherali, N. Guidelines and techniques for the generation of induced pluripotent stem cells. Cell Stem Cell. 3, 595-605 (2008).
  5. Li, W. Generation of rat and human induced pluripotent stem cells by combining genetic reprogramming and chemical inhibitors. Cell Stem Cell. 4, 16-19 (2009).
  6. Liao, J. Generation of induced pluripotent stem cell lines from adult rat cells. Cell Stem Cell. 4, 11-15 (2009).
  7. Dimos, J. T. Induced pluripotent stem cells generated from patients with ALS can be differentiated into motor neurons. Science. 321, 1218-1221 (2008).
  8. Aasen, T. Efficient and rapid generation of induced pluripotent stem cells from human keratinocytes. Nat Biotechnli. 26, 1276-1284 (2008).
  9. Park, I. H. Generation of human-induced pluripotent stem cells. Nat Protoc. 3, 1180-1186 (2008).

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Wagner, K., Welch, D. Feeder-Free Adaptation, Culture and Passaging of Human IPS Cells using Complete KnockOut Serum Replacement Feeder-Free Medium. J. Vis. Exp. (41), e2236, doi:10.3791/2236 (2010).

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