Summary
ウズラ - ニワトリキメラ胚における鳥類の神経堤細胞の遊走と最終的な運命を分析するためのアプローチが説明されています。このメソッドは、unmanipulatedニワトリ胚内で区別することはそうでなければ困難な移行および分化における神経堤細胞をトレースするためのシンプルで簡単なテクニックです。
Abstract
鳥類の胚は卵内の胚の簡単なアクセスのために多くの脊椎動物の発達過程を研究するためのユニークなプラットフォームを提供します。ウズラのドナー組織がOVOでニワトリ胚に移植されたキメラ鳥類の胚は、鳥類の胚によって提示された操作の容易さと細胞集団の消えない遺伝標識のパワーを兼ね備えています。
ウズラ-ニワトリキメラ1-3渡り鳥神経堤細胞（NCCS）をトレースするための古典的なツールです。 NCCSは、発展途上の神経管4の背側領域に由来する胚における細胞の一過性の渡り鳥集団である。彼らは、葉への移行上皮を受け、その後、彼らは軟骨5-13、メラノサイト11,14-20、ニューロンとグリア21から32までを含む様々な種類の細胞に分化する胚の他の地域に移行します。 NCCSは多能性であり、その究極の運命はインフルです。1）彼らは胚11,33-37、2 rostro -尾軸に沿って発信された神経管の領域）が38から44に移行するように隣接セルからの信号を、その究極の3）微小で積んだ胚45,46内の宛先。胚内での最終的な位置と運命に、神経管に由来それらの点から、これらの細胞を追跡し、パターニングおよび器官形成を制御する発達過程に重要な洞察を提供します。
ドナー神経管（グラフトホモトピック）またはドナー神経管（グラフト異所性）の異なる領域の相補的領域の移植はrostro-尾軸に沿って2,47 NCCSの事前の仕様の違いを明らかにすることができます。この手法は、さらに一側がドナー組織由来されるように、神経管の一方的なコンパートメントを移植するように適応し、反対側の遺跡は、ホスト胚に動じない、yiをすることができます同じサンプル2,47の内部制御を薪。前方神経管47を閉じたときにも、HH10した後、後で胚の脳セグメントの移植に適合させることができます。
ここでは、神経管の独立したセグメントから派生した渡り鳥NCCSのトレースを可能にする神経管移植を介して、ウズラ - ニワトリキメラを生成するための手法を報告します。ウズラ固有QCPN抗体を48から56のドナー由来細胞の種特異的標識は、研究者は実験終了時点で、ドナーと宿主細胞を区別することができます。この手法は、安価で、簡単で、トレース、およびrostro-尾軸45に沿って事前にパターニングイベントを識別する運命マッピング、細胞系譜を含む多くのアプリケーションを持っています。ので、鳥類の胚へのアクセスのしやすさから、ウズラ-ニワトリ移植技術は、他の操作と組み合わせて含むが、レンズのアブレーション4に限定されるものではない0の場合、胚の発達プログラムの摂動にNCCSの特定の渡り鳥ストリームの応答を識別するために、阻害分子57,58、または59から61発現プラスミドのエレクトロポレーションを介した遺伝子操作の注入。さらに、この移植技術はまた、鳥類の胚の操作のしやすさとマウス遺伝学の力を組み合わせることがNCCの顔面形態形成への貢献や、マウス、ニワトリキメラを勉強するようなウズラ、アヒルのキメラのような他の種間キメラ胚を生成するために使用することができ62
Protocol
1。希望するステージにインキュベートひよこやウズラの卵
HH9胚については、典型的なインキュベーション時間は38℃63に29から33時間の範囲
- ぬるま湯と卵からの破片を洗ってください。
- 水平トレイ上に鶏の卵を配置します。鉛筆で上を向く側をマークし、これは胚がローカライズされる領域に対応します。ウズラの卵平滑末端をインキュベートします。
- 38℃の加湿インキュベーター内に置きます。関数のロッキングオンにします。
2。ウィンドウと解剖のために卵を準備します。
- インキュベーターから卵を除去し、70％エタノールでトップを滅菌する。エタノールをスプレーし、卵殻を通してエタノールのいずれかの吸収を避けるために、紙タオルまたはキムワイプですばやく拭き取ってくださいすることをお勧めします。
- 個々の卵ホルダー（我々は折り畳まれたペーパータオルを敷いたペトリ皿を使用して、例えば、 "キムワイプ"）上に配置鶏の卵。 AA鉗子を用いて、小さなHOLをタップ卵の尖った端に卵の殻の上面に電子。
- 18½G注射針、5 mLシリンジと鶏の卵からの光アルブミン1.5-3MLを削除します。卵（図2A）の先のとがった端に直面してベベルで、穴に垂直に針を挿入することをお勧めします。この方法では、アルブミンが取り下げられたときに、誤って吸引を介して卵黄を損傷のほとんどリスクがあります。アルブミンを破棄します。このステップでは、卵の殻で開かれるウィンドウを可能にするために卵内で卵黄と胚を下げます。
- 上記のように70％エタノールで穴を拭き、スコッチテープでシールします。それは穴の周囲卵殻が完全に欠けているアルブミンと乾燥しているか、接着剤、シールされないことが重要です。
- AAの鉗子ではなく、非常に心尖部では、水平卵の著しい上面に別の穴をタップします。鉗子は、卵黄や胚の損傷を防ぐために、卵殻を通して遠く行かせないように注意してください。
- で卵の殻に穴を平行に湾曲した虹彩の鉗子の片側をSERT。鶏の卵の殻の直径ウィンドウで〜2センチメートルを破壊する円を描くように働いて、シェルの上にピンチ。削除され卵殻を破棄します。また、ガムテープで卵の上面を覆う、窓の外をカットするはさみのペアを使用しています。これは卵に陥る卵殻の破片の可能性を最小限に抑えることができます。胚は卵黄の上に不透明なディスクとして表示されます。すべての未受精卵を（胚盤葉の小さな白い卵黄の表面上のスポット、または不在で識別される）破棄します。
- 胚のステージングを支援するための胚盤葉の下に：インドインク（最終濃度100μg/ mlのペニシリンおよび100μg/ mlストレプトマイシン "ペン/連鎖球菌"抗生物質を含有する滅菌リンゲル液で1:10に希釈）を少量注入します。代わりに、1ミリアンペア、1 mLシリンジと26½Gの皮下注射針、針の基部に45°の角度に曲げ、上向きに面取りを使用します。yが引っ張らガラスパスツールピペットと口ピペッティング装置（皮下注射針を曲げたり、ガラスの針を壊したときに目の保護具を着用）を使用します。卵黄の胚盤葉の境界の外膜に近い卵黄の表面に、胚の下に針の先端をスライドさせて穿刺ではなく胚層で（図2B）。胚性に関する概要を説明するだけで十分なインクを注入し、慎重に針（図2C）を撤回することができる。あまりにも多くのインクを注入すると胚の死につながることができます。これは汚染の原因となる可能性がありますので、胚の下に気泡を注入しないことが重要です。 NB：この手順で使用されるすべてのリンゲル液を滅菌し、上記で定義されたペン/連鎖球菌が含まれています。緩衝生理食塩水（PBS）滅菌リン酸塩はまた、このプロトコルのすべてのステップでリンゲル液に受け入れられる代替手段です。
- ハンバーガーとハミルトン63に従って胚をステージングして、永久的なインクや鉛筆で卵殻上のステージを記録します。ステージは最高のステールの下に評価されているomicroscopy、限られた熱負荷を持つ光ファイバ "グースネック"の光源である。
- 2〜3滴脱水や汚染を防ぐために、胚の表面に暖かい滅菌リンゲル液を適用します。パラフィルムは、卵の表面上に伸ばして一時的にウィンドウをシールします。
- 繰り返し移植実験を開始する前に、すべてのニワトリ卵で2.2から2.9を繰り返します。
- ウズラの胚のみがドナー組織のために使用されるので、OVOの手順で 2.2から2.9までを省略することができます。ドナー胚の元卵を調製するため、ウズラの卵は鈍い面を上にしてインキュベートし、胚を明らかにするために湾曲したピンセットで、この地域にオープンしました。解剖はさみを使用して、胚外卵黄膜と胚盤葉（すべてのカットが満たしていることを確認してください）を使用して正方形の形をした4カットを行います。湾曲した虹彩の鉗子を使用して、静かにワンカットエッジをつかみ、卵から胚を持ち上げ、ペトリ皿にリンゲル液に移します。また、一つの曲線を使用することができますDアイリスは下から摘出した胚を持ち上げるために鉗子、または胚スプーンまたはシリンダの広い部分を切ってプラスチック製のピペットは、卵の胚を転送するために使用されることがあります。優しく＃5ピンセットで卵黄膜を除去します。上記のように残っているウズラの胚を収集し、解剖顕微鏡下でそれらをステージングします。
3。移植を受けるために宿主胚を準備します。
- ホスト（ニワトリ）胚からパラフィルムを除去し、シャープタングステン針または＃5鉗子を用いて、神経管の所望の領域（図3A）における卵黄膜に小さな穴を開ける。
- 胚へのリンゲル液のドロップを追加します。完全に組織の脱水を防ぐために、全体の手順の実行中にリンゲル液に浸漬胚を保つために世話をする。必要に応じてピペットを介した胚の表面にリンゲル液滴を追加してください。
- 引っ張らガラス針を用いて、慎重に吻側およびCAを作る神経管背側の関心の長さと領域に対応する自由保有権横切開。一方的な移植のために切開だけで背側神経管の内腔を拡張する必要があります（プルガラス針は針引っ張って装置を加熱下で取得されたシリコンガラス毛細管から生成される）、および二国間の移植のために、全体で切開を行う全体の神経管背側。その後、神経管背側と沿軸中胚葉の間で二国間でカット。
- 神経管から切り出し片を慎重に分離し、ガラスマイクロピペット（図3B）に吸引することによって胚から削除します。
4。ドナー移植片組織を準備する
- ステージにマッチウズラの胚を選択します。 AAの鉗子で胚を押したまま、卵黄膜を除去し、消費税上記のように神経管の類似したサイズの領域（3.3から3.4）（図3A'-B '）。あなたの実験のニーズに応じて、この領域は可能性がありますrostro-尾軸に沿ったホスト（ひよこ）神経管または異なる領域からの相補的な領域。 （注：完全な神経管移植片を含むより大きな地域の移植のために、研究者は、移植前にドナー組織から任意の接着性の間葉組織を削除するには、この段階でプロテアーゼ消化を追加したい場合がありますしかし、初期段階での小さな背側神経管移植のためにここで詳述されている神経管が容易に厳密に外科的手法により、隣接する間充織から分離されているように、プロテアーゼ消化は必要ありません。）
5。移植組織
- リンゲル液を含むガラスピペットにドナー移植片を吸引除去する。ピペットに任意の気泡を導入しないように注意してください。
- ひよこホストの摘出した領域に隣接する植を転送します。東洋は、プルダウンガラス針を用いて植ゆっくりとアブレーション領域（図3C）にそれを導く。
- 慎重にリンゲル液の数滴を追加脱水を防ぐために、胚へ。これは、移植片を取り除くことができるように移植部位に直接液体を落とさないように注意してください。
- ガムテープで窓をシールします。ウィンドウ卵のテープシールは、地域全体いることを確認してください。これにより、その後のインキュベーション中に脱水および胚の汚染を防ぐことができます。
- 希望する段階までインキュベーターに卵を返します。キメラをインキュベートしながら、 "ロッキング"機能がオフになっていることを確認してください。開発の後期段階を対象としている場合、これは彼らの生存率を増加させる可能性がある卵が優しく手で1日2回をオンにすることができます。
6。セクショニングのキメラ胚を準備する
- 実験的なエンドポイントで、上質なハサミを使用してウィンドウを覆うテープを切り取る。
- 湾曲した虹彩の鉗子（鋸歯状のヒントを実行する最も簡単な）と胚盤葉の端をつかみ、その後胚盤葉の境界の外側に4つの大きなカットを廃止する卵黄から胚を切った。 リンゲル液を含むペトリ皿に胚を転送します。組織の脱水を避けるために、空気への胚の曝露を最小限に抑えるように注意してください。
- 実体顕微鏡下で、静かに第5鉗子を用いて胚盤葉から卵黄膜を分離します。
- それがフラットにレイアウト周囲の膜で、卵であったとして、胚が同じ向きになるように皿に胚を慎重に配置します。
- きれいに皿の底にタングステン線と平行の長さ、胚および胚体外組織の境界に針を配置することにより、胚から胚盤周囲を削除するには、タングステン線64から作られた解剖針を使用しています。組織を切断するために穏やかな鋸の動きを使用しています。
- 慎重に＃5鉗子で羊膜を除去します。この時点で、どちらさらにご関心のある領域を分析する、または胚全体を残したいと思うかもしれません。
- 氷冷4％PARAFに胚を転送する4℃で一晩ormaldehydeとロック
- サンプルを調製し、凍結またはパラフィン切片用に埋め込むことができます。
宿主胚内に移植した組織をトレースします 。ヘマトキシリン染色によるウズラ核小体の検出（ウズラの核がひよこの核よりも非常に大きく、暗い染色封入体を持っています）、フォイルゲン-Rossenbeck反応、アクリジン·オレンジまたはBIZ-ベンズアミド染色を含むニワトリ胚内ウズラ組織を識別するためのいくつかの手法があります。ウズラ特異的抗原3,47,65,66ための電子顕微鏡、または免疫標識と組み合わせた。ここでは、ウズラ - ニワトリキメラ（図4）ウズラ神経堤細胞を識別するためにQCPN抗原、標準ホールマウントまたはセクション免疫蛍光技術を使用しています。 QCPNの免疫はまた、ドナー（ウズラ）組織に由来する分化細胞を識別するために、他の抗体と組み合わせることができるように、この技術は、実験的なデザインの中で最も柔軟性を提供します。 standaを使用します。RD全体のマウントまたはセクション免疫蛍光テクニックはキメラでウズラ由来の細胞を標識します。
7。代表的な結果
再インキュベーションの6時間後の神経管のグラフト化地域の代表的なイメージ（HH11に）ホスト（ひよこ）神経管（図4A）に移植したドナー（ウズラ）組織の期待の取り込みを示しています。 reincubation後、移植の不完全な統合、または頭蓋領域や体節の非対称発展を示す胚は破棄する必要があります。
HNK-1は、横方向に離れて神経管からの移行で標識されたHH11ショーNCCSでグラフトされた領域を通ってセクションを渡ります。 NCC渡り鳥ストリームにし、神経管に貢献ウズラ細胞は、明らかにQCPN（図4B）で標識されています。
後の段階で、ウズラNCC-由来細胞は、その最終的な標的組織にさかのぼることができます。 QCPN標識された細胞は、ニワトリ胚の間充織内に散在しているE5（図4C）で上顎のプロセス。
QCPN抗体は簡単にホスト環境でのウズラ由来NCCSの分化を調べるために他の抗体と組み合わせることができます。ウズラNCC由来の三叉神経感覚ニューロンはQCPNとTuj1抗体（図4D）によってラベルが付けられています。
図1。実験手順と必要な機器の概要について説明します。）ホスト（ひよこ）とドナー（ウズラ）の胚ステージ一致する必要があります。三叉神経節および顎下顎、地域に貢献するNCCストリームにラベルを付けるには、HH9が理想的です。 HH9で、神経管は、吻側領域で閉じ始めているが、まだ完全に密封されていません。図中の灰色の線は、閉鎖神経管の正中線を表しています。点線の白い線は、ホストとドナーから神経管の右側の脳領域を切り出すため、切断線を示すEMbryos。宿主胚の摘出した領域が破棄され、ドナー組織は、キメラ胚を生成するために移植されています。 B）必要な機器は、次のとおりです。）5mLを18とシリンジ½Gの注射針、b）が26と1 mLのシリンジ½45°の角度、c）を墨でGの注射針を曲げ、d）の明確なパッキングテープ、e）を口にピペッティングしたガラスピペット装置、f）は60ミリメートル、ペトリ皿、G）AAピンセット、h）の鋸歯状のヒント、私の湾曲した虹彩の鉗子）＃5鉗子、j）の罰金はさみ、k）はlのタングステン線をシャープ）ガラス針、m）をパラフィルムを引っ張った正方形。
図2。 18の理想的な挿入ポイントを含む卵の卵および胚の作製 ）断面図、½アルブミン光の撤退のためにGの注射針。 B）光アルブミンの〜3mlのを撤回した後、卵黄と胚は、研究者は、tに "窓"（矢印）をカットすることができ、卵内に下げる彼は、胚にアクセスするには卵殻。インドのインクは、滅菌リンゲル液で1:10に希釈し、胚の簡単なステージング用にコントラストを提供するために、胚盤葉の下に注入することができます。インクの後C）ニワトリ胚。
図3。移植手順の各ステップで回路図とHHステージ9ドナーとホスト胚の例）。ニワトリ宿主胚。図中の破線は、卵黄膜が移植のための脳神経領域にアクセスするために引き裂かれるべき場所を示しています。卵黄膜のかつて引き裂かれた三角形のフラップが尾側に剥離する必要があります。画像内のボックスは、（BC）に使用されるはめ込みを示しています。 '）ウズラのドナー胚。画像は、ドナー胚卵から摘出し、移植組織の解剖用シャーレに入れである。画像内のボックスははめ込みます（B '）で使用されていることを示します。卵黄と卵黄膜がtを除去するためにカットすべき場所の概略図の破線は（ '）を示す卵から彼は胚。移植を待って摘出した神経管（白矢印）の一方的な脳領域とB）ホスト胚。カットは、中脳領域での消費税神経管に行われるべき場所の概略図で点線を示します。 B '）摘出した神経管背側に移植組織（黒の矢印で示された移植組織）を持つドナー胚。カットが神経管の脳領域の移植のために一方的な消費税ドナー組織にウズラ胚で行われるべき場所の図の点線が示しています。ニワトリ中脳領域にウズラの神経管背側の外植の移植後のC）キメラ胚。
図4。免疫は、キメラ胚におけるドナー由来細胞におけるウズラ特異的核抗原QCPNを検出する。A）キメラHH11（HH9でグラフトされた）のホールマウントイメージQCPN赤で染色し、HNK-1染色（NCCSの移行のマーカー）を示すで緑色に点灯します。倍率10倍、背ビュー。神経管と渡り鳥NCC HNK-1（緑）との共染色にQCPN陽性ウズラ由来の細胞を示す（A）の胚を介してB）断面図。 40X倍率。 C）キメラE5の上顎のプロセスを介してクロスセクション（3日後に移植インキュベート）、胚の最終ロケーションに神経管のグラフト領域から移行したQCPN陽性NCC-由来細胞（赤）を示す。倍率10倍。 TuJ1陽性ニューロン（緑）に三叉神経節（赤）と分化にNCCを導出したウズラのE5キメラを示す貢献を通じて、D）のセクションをご覧ください。 40X倍率。 *、NCCS、MP、上顎のプロセス、NT、神経管、TG、三叉神経節。
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Discussion
ホストのニワトリ胚にウズラの神経管の移植はrostro-尾軸に沿って21,67-69さまざまな地域から発せられるNCCSを移行し、特定の集団を追跡するための簡単で安価な手法であるここで説明する。この手法は、実験的に調べるために、鳥類の胚へのアクセスのしやすさ（哺乳類胚に比べて）を活用し、そのような組織切除、阻害分子の注入、または発現プラスミドのエレクトロポレーションを介した遺伝子操作のような他の技術と組み合わせることができる胚47,69内のさまざまな発達の手がかりに特定の渡り鳥NCC集団の応答。
ウズラ - ニワトリキメラは、NCCの移行と分化を調べるための強力なツールであり、この技術は、神経管以外の組織の移植を含むように適合させることができる。ニワトリ胚にウズラの組織の移植は、定評のあるtechniquです。神経管の小さな領域の顕微解剖は非常に微細な運動技能を必要とするとして電子13,21,70-76が、は最高の、視覚的なデモンストレーションによって学習されます。
ウズラ由来の細胞が容易にウズラ特異的抗体QCPNによる免疫染色を介してホストニワトリ細胞と区別することができるので、神経管の特定の領域に起因するNCCSの発達可能性が実験的にドナー（ウズラ）細胞の分化から推測することができますエンドポイントは、例えば、眼周囲の地域と角膜のQCPN陽性細胞の存在は、HH9でニワトリ胚の脳領域にウズラの神経管を移植した後に、この地域からの渡り鳥神経堤は、角膜内皮細胞と間質77に上昇を与えることを示しています。 HH9-10における神経管移植片は、三叉神経節と鰓弓にNCCの寄与を明らかにした。また、ウズラ由来の感覚神経は、別のウズラ、ニューロン特異的（QN）抗体78,79を使用して追跡することができます。
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Disclosures
著者らは、開示することは何もありません。
Acknowledgments
著者は、原稿の批評のためにLwigale研究室のメンバーに感謝。 SLGは、国立眼研究所（F32 EY02167301）からルースL.キルシュシュタインNRSAフェローシップでサポートされています。 PYLは、国立眼研究所（EY018050）によってサポートされています。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Chick eggs | Various | ||
| Quail eggs | Various | ||
| Egg incubator (Digital Readout 1502 Sportsman Incubator w/Humidity 110-120 Volt AC) |  Poultry Supply |
1502 | |
| Dumont AA forceps, Inox Epoxy-coated | Fine Science Tools | 11210-10 | |
| Scotch tape | Any Supplier | ||
| Curved Iris forceps | Fine Science Tools | 11065-07 | |
| India ink | Any Supplier | ||
| Pen/Strep (Penicillin, Streptomycin) Solution | VWR international | 101447-068 | |
| Clear Packing tape | Any Supplier | ||
| Needle pulling apparatus | Narishige International | PE-21 | |
| Pulled glass needle, made from 1.5-1.8 x 100mm borosilicate glass capillary tube | Kimble Chase | 34500 99 | |
| Pulled glass pipette, made from 5¾" Pasteur pipette | Fisher Scientific | 13-678-6A | |
| Mouth pipette apparatus (aspirator tube assembly for calibrated microcapillary pipette) | Sigma-Aldrich | A5177-52A | |
| Dumont #5 forceps | Fine Science Tools | 11251-30 | |
| Tungsten wire, 0.1mm diameter | VWR international | AA10404-H2 | |
| Needle holders (Nickel-plated pin holder) | Fine Science Tools | 26018-17 | |
| QCPN antiserum | Developmental Studies Hybridoma Bank | QCPN | |
| Alexa Fluor secondary antibody (e.g., Alexa Fluor 594 goat anti-mouse IgG1) | Invitrogen | A21125 | |
Ringer’s Solution (2L):
|
Fisher Scientific |
|
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