Summary

Kvantificering af svampekolonisering, sporedannelse, og produktionen af ​​mycotoksiner brugen af ​​kernel Bioassays

Published: April 23, 2012
doi:

Summary

Den ødelæggelse af kornafgrøder ved frø-inficerende svampe har fået mange forskningsindsats for bedre at forstå plante-patogen interaktioner. At studere frø-svampe interaktioner i et laboratorium indstilling, har vi udviklet en robust metode til kvantificering af svampe reproduktion, biomasse, og mykotoksinkontaminering brugen af ​​kernel bioassays.

Abstract

Den forrådnelse af korn af frø-inficerende svampe udgør en af ​​de største økonomiske udfordringer til kornproduktion på verdensplan, for ikke at nævne alvorlige risici for menneskers og dyrs sundhed. Blandt kornproduktion, er majs nok den hårdest ramte afgrøde, på grund af patogen-inducerede tab i korn integritet og mycotoxin frø forurening. De to mest udbredte og problematisk mykotoksiner for majs avlere og fødevarer og foder processorer er aflatoksin og fumonisin, produceret af Aspergillus flavus og Fusarium verticillioides, hhv.

Nylige undersøgelser i molekylær plante-patogen interaktioner har vist sig lovende i forståelsen særlige mekanismer i forbindelse med plante svar på svampeinfektion og mykotoksinkontaminering 1,2,3,4,5,6. Da mange laboratorier anvender kerne assays for at undersøge plante-patogen interaktioner, der er et behov for en standardiseret fremgangsmåde til kvantificering forskellige biologiske parametre, såResultaterne fra forskellige laboratorier kan tværs fortolkes. For et robust og reproducerbar midler til kvantitative analyser på frø, har vi udviklet in-lab kerne analyser og efterfølgende metoder til at kvantificere svampevækst, biomasse, og mykotoksin forurening. Fire steriliserede majskerner inokuleres i hætteglas med en fungal suspension (10 6) og inkuberes i en forudbestemt periode. Prøvehætteglas udvælges derefter til tælling af conidier af hæmocytometer, ergosterol-biomasse analyse ved væskechromatografi med høj ydeevne (HPLC), aflatoxin kvantificering ved anvendelse af en AflaTest fluorometeret metode, og fumonisin kvantificering ved HPLC.

Protocol

1. Majs Kernel Bioassay To uger før, dyrkning af fungale patogener på kartoffeldextroseagar (PDA) ved 28 ° C. Vælge kerner med lignende størrelse og form, fortrinsvis fladtrykt, så de lå i niveau med bunden af ​​bioassay hætteglas, og anbringes i 50 ml Falcon-rør. Udvalgte Kerner skal være fremstillet samtidigt i samme miljø for at sikre et ensartet frø alder og metabolit sammensætning. Overfladen steriliseres kerner ved omrystning rør ved stuetemperatur i 5 minutter med …

Discussion

<p class="jove_content"> De her beskrevne metoder er blevet testet grundigt, og vist sig at være robust i den generation af målbare resultater for svampekolonisering, sporedannelse, og produktion af mykotoksiner. Desuden bør disse metoder kunne anvendes på frø fra andre plantearter, der er modtagelige for kontaminering med mycotoxigenic svampe (f.eks jordnødder, hvede, bomuld, pistacienødder, etc.). For kompetente plante-patogen interaktion analyser, er det bydende nødvendigt, at frøene holdes i live. En lille sår sted på embryo s…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gerne takke Brandon Hassett og Carlos Ortiz for deres tekniske assistance. Dette arbejde blev støttet af NSF tilskud IOB-0544428, IOS-0951272, og IOS-0925561 til Dr. Michael Kolomiets, og af USDA National Institute of Levnedsmiddel-og Landbrugsorganisation (NifA), AFRI Planteforædling og Uddannelse Grant # 2010-85117 -20539 til Drs. Seth Murray, Thomas Isakeit, og Michael Kolomiets.

Materials

Name of the reagent Company Catalog #
Potato Dextrose Agar Fisher Scientifc S71659A
Tween-20 Fisher Scientifc BP337-100
Plastic incubation container Sterilite 1713LAB06
Blender Vicam 20200
24 cm Fluted Filter Papers Vicam 31240
1.5 μm glass microfibre Vicam 31955
Afla Test column Vicam G1024
Afrla Test Developer Vicam 32010
Methanol Vicam 35016
Acetonitrile Fisher Scientifc AC14952-0025
Ethanol Fisher Scientifc AC39769-0025
C-18 solid phase extraction column (Prep SEP SPE C18 Column) Fisher Scientifc 60108-304
O-phthalaldehyde (OPA) Sigma Chemical Co 79760-5g
Boric acid Fisher Scientifc BP168-500
Sodium borate Fisher Scientifc RDCS0330500
Mercaptoethanol Fisher Scientifc 45-000-231
Shimadzu HPLC LC-20AT (Pump) Shimadzu Scientific Instruments, Inc. LC-20AT
Zorbax ODS column (4.6x150mm) Agilent Technologies 443905-902
Shimatzu RF-10Axl fluorescence detector Shimadzu Scientific Instruments, Inc. RF-10AXL
Sodium phosphate Fisher Scientifc AC38987-0010
FB1 standards Sigma Chemical Co. F1147-1mg
Chloroform VWR MK444410
13 mm syringe filter with 0.45 um nylon membrane (HPLC) Pall Life Science 4426
Ergosterol Sigma-Aldrich 45480-50G-F
Scintillation vials VWR 66021-602
Sodium Chloride Vicam G1124

References

  1. Tsitsigiannis, D. I., Keller, N. P. Oxylipins as developmental and host-fungal communication signals. Trends Microbiol. 15, 109-118 (2007).
  2. Gao, X., Shim, W. -. B., Göbel, C., Kunze, S., Feussner, I., Meeley, R., Balint-Kurti, P., Kolomiets, M. Disruption of a maize 9-lipoxygenase results in increased resistance to fungal pathogens and reduced levels of contamination with mycotoxin fumonisin. Mol. Plant-Microbe Interact. 20, 922-933 (2007).
  3. Brodhagen, M., Tsitsigiannis, D. I., Hornung, E., Goebel, C., Feussner, I., Keller, N. P. Reciprocal oxylipin-mediated cross-talk in the Aspergillus – seed pathosystem. Mol. Microbiol. 67, 378-391 (2008).
  4. Gao, X., Brodhagen, M., Isakeit, T., Brown, S. H., Göbel, C., Betran, J., Feussner, I., Keller, N. P., Kolomiets, M. V. Inactivation of the lipoxygenase ZmLOX3 increases susceptibility of maize to Aspergillus spp. Mol. Plant-Microbe Interact. 22, 222-231 (2009).
  5. Gao, X. Q., Kolomiets, M. V. Host-derived lipids and oxylipins are crucial signals in modulating mycotoxin production by fungi. Toxin Rev. 28, 79-88 (2009).
  6. Mukherjee, M., Kim, J. -. E., Park, Y. -. S., Kolomiets, M. V., Shim, W. -. B. Regulators of G protein signaling in F. verticillioides mediate differential host-pathogen responses on non-viable versus viable maize kernels. Mol. Plant Pathol. 12, 479-491 (2011).
  7. Zheng, M. Z., Richard, J. L., Binder, J. A review of rapid methods for the analysis of mycotoxins. Mycopathologia. 161, 261-273 (2006).
  8. Bacon, C. W., Bennett, R. M., Hinton, D. M., Voss, K. A. Scanning electron microscopy of Fusarium moniliforme within asymptomatic maize kernels and kernels associated with equine leukoencephalomalacia. Plant Dis. 76, 144-148 (1992).
  9. Munkvold, G. P., Hellmich, R. L., Rice, L. G. Comparison of fumonisin concentrations in kernels of transgenic Bt maize hybrids and nontransgenic hybrids. Plant Dis. 83, 130-138 (1999).
  10. Sagaram, U. S., Shaw, B. D., Shim, W. -. B. Fusarium verticillioides GAP!, a gene encoding a putative glycolipid-anchored surface protein, participates in conidiation and cell wall structure but not virulence. Microbiol. 153, 2850-2861 (2007).
  11. Shim, W. -. B., Flaherty, J. E., Woloshuk, C. P. Comparison of Fumonisin B1 biosynthesis in maize germ and degermed kernels by Fusarium verticillioides. J. Food Protect. 66, 2116-2122 (2003).
  12. Shim, W. -. B., Woloshuk, C. P. Regulation of fumonisin B1 biosynthesis and conidiation in Fusarium verticillioides by a cyclin-like (C-type) gene, FCC1. Appl. Environ. Micrbiol. 67, 1607-1612 (2001).
  13. Christensen, S. A. . Conversation with: Won-Bo Shim. , (2011).
  14. Shin, J. -. H., Shim, W. -. B. Characterization of PPR1 and PPR2, genes encoding regulatory subunits of protein phosphatase 2A in Fusarium verticillioides. Phytopathol. 99, S119 (2009).
  15. Breivik, O. N., Owades, J. L. Spectrophotometric Semimicrodetermination of Ergosterol in Yeast. Yeast. Agric. and Food Chem. 5, 360-363 (1957).

Play Video

Cite This Article
Christensen, S., Borrego, E., Shim, W., Isakeit, T., Kolomiets, M. Quantification of Fungal Colonization, Sporogenesis, and Production of Mycotoxins Using Kernel Bioassays. J. Vis. Exp. (62), e3727, doi:10.3791/3727 (2012).

View Video