Summary

Hidrófobo sal modificada Nafion para inmovilización de enzimas y Estabilización

Published: July 11, 2012
doi:

Summary

En este artículo se describe el procedimiento para la síntesis de una enzima modificada hidrófobamente membrana Nafion inmovilización y cómo inmovilizar las proteínas y / o enzimas dentro de la membrana y probar su actividad específica.

Abstract

Durante la última década, ha habido una gran cantidad de solicitud de enzimas inmovilizadas y estabilizado incluyendo biocatálisis, biosensores, y las células de biocombustible. 1-3 En aplicaciones más bioelectrochemical, enzimas u orgánulos se inmovilizan sobre una superficie del electrodo con el uso de algún tipo de polímero de matriz. Este andamio polímero debe mantener las enzimas estable y permitir la difusión superficial de las moléculas y los iones en y fuera de la matriz. La mayoría de los polímeros utilizados para este tipo de inmovilización se basan en poliaminas o polialcoholes – polímeros que imitan el entorno natural de las enzimas que se encapsulan y estabilizar la enzima a través de hidrógeno o un enlace iónico. Otro método para estabilizar las enzimas implica el uso de micelas, que contienen regiones hidrofóbicas que pueden encapsular y estabilizar las enzimas 4,5. En particular, el grupo Minteer ha desarrollado un polímero basado en micelar Nafion comercialmente disponible. 6,7 Nafionen sí es un polímero micelar que permite la difusión del canal con ayuda de protones y otros cationes pequeños, pero las micelas y los canales son extremadamente pequeñas y el polímero es muy ácida debido a las cadenas laterales de ácido sulfónico, que es desfavorable para la inmovilización de enzimas. Sin embargo, cuando Nafion se mezcla con un exceso de sales de amonio hidrófobos alquilo tales como bromuro de tetrabutilamonio (BTBA), los cationes de amonio cuaternario reemplazar los protones y se convierten en los contra-iones de los grupos sulfonato en las cadenas laterales del polímero (Figura 1). Esto se traduce en mayores micelas y canales dentro del polímero que permiten la difusión de sustratos grandes e iones que son necesarios para la función enzimática, tales como nicotinamida adenina dinucleótido (NAD). Esta modificación Nafion polímero se ha utilizado para inmovilizar muchos tipos diferentes de enzimas, así como las mitocondrias para su uso en biosensores y células de combustible biológico. 8-12 Este artículo describe un nuevo procedimiento para la fabricación de este micrófonoEllar enzima polímero inmovilización membrana que puede estabilizar las enzimas. La síntesis de la membrana de inmovilización de enzimas micelar, el procedimiento para inmovilizar enzimas dentro de la membrana, y los ensayos para estudiar la actividad enzimática específica de la enzima inmovilizada se detallan a continuación.

Protocol

1. Modificación de Nafion con sales de amonio cuaternario Agitar una botella de suspensión Nafion 5% w / v vigorosamente durante aprox. 30 segundos para asegurar que Nafion está suspendida de manera uniforme en la solución. Pipetear a cabo 2 ml de la Nafion ahora re-suspendido en un vial de vidrio (volumen vial podría contener de 2,5 ml a 10 ml). Medir un exceso molar de 3 veces (en relación con los grupos ácidos sulfónicos en el polímero Nafion) de la sal de amonio bromuro de alq…

Discussion

En el procedimiento descrito, tetra-alquil sales de amonio se utilizan para modificar Nafion comercial para crear polímeros micelares que se pueden utilizar para inmovilizar y estabilizar las enzimas. Los ensayos descritos en el procedimiento muestran que el polímero puede ser usado para inmovilizar una amplia variedad de enzimas con una alta retención de la actividad. Si la enzima de interés tiene una actividad muy baja o es impura, una mayor concentración puede ser necesario y no debe afectar el proceso de inmovi…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Los autores agradecen a la Oficina de Investigación Naval, Junta Unidas de soja, y la Fundación Nacional de Ciencias para la financiación.

Materials

Name of the reagent Company Catalog number
Nafion Sigma-Aldrich 70160
Tetra alkylammonium bromide salts Sigma-Aldrich n/a
Alcohol dehydrogenase Sigma-Aldrich A3263
Nicotinamide adenine dinucleotide (NAD) Simga-Aldrich N7004
Sodium pyrophosphate Sigma-Aldrich P8010
Phenazine methosulfate (PMS) Sigma-Aldrich P9625
2,6-Dichloroindophenol (DCIP) Sigma-Aldrich D1878
Glucose oxidase Sigma-Aldrich G7141
4-Hydroxybenzoic acid Sigma-Aldrich 240141
Sodium azide Sigma-Aldrich S8032
Peroxidase Sigma-Aldrich P8375
4-aminoantipyrine Sigma-Aldrich 06800
UV/Vis Spectrophotometer Thermo Evolution 260 Bio or Spectronic Genesys 20
Vortex Genie    
Analytical balance    

References

  1. Calabrese-Barton, S., Gallaway, J., Atanassov, P. Enzymatic biofuel cells for implantable and microscale devices Chem. Rev. 104, 4867-4886 (2004).
  2. Cracknell, J. A., Vincent, K. A., Armstrong, F. A. Enzymes as Working or Inspirational Electrocatalysts for Fuel Cells and Electrolysis. Chem. Rev. 108, 2439-2461 (2008).
  3. Minteer, S. D., Liaw, B. Y., Cooney, M. J. Enzyme-Based Biofuel Cells. Curr. Opin. Biotechnol. 18, 228-234 (2007).
  4. Callahan, J. W., Kosicki, G. W. The Effect of Lipid Micelles on Mitochondrial Malate Dehydrogenase. Canadian Journal of Biochemistry. 45, 839-851 (1967).
  5. Martinek, K. Modeling of the Membrane Environment of Enzymes: Superactivity of Laccase Entrapped into Surfactant Reversed Micelles in Organic Solvents. Biokhimiya. 53, 1013-1016 (1988).
  6. Moore, C. M., Akers, N. L., Hill, A. D., Johnson, Z. C., Minteer, S. D. Improving the Environment for Immobilized Dehydrogenase Enzymes by Modifying Nafion with Tetraalkylammonium Bromides. Biomacromolecules. 5, 1241-1247 (2004).
  7. Schrenk, M. J., Villigram, R. E., Torrence, N. J., Brancato, S. J., Minteer, S. D. Effects of Mixture Casting Nafion with Quaternary Ammonium Bromide Salts on the Ion-Exchange Capacity and Mass Transport in the Membranes. J. Membr. Sci. 205, 3-10 (2002).
  8. Akers, N. L., Moore, C. M., Minteer, S. D. Development of Alcohol/O2 Biofuel Cells Using Salt-Extracted Tetrabutylammonium Bromide/Nafion Membranes to Immobilize Dehydrogenase Enzymes. Electrochim. Acta. 50, 2521-2525 (2005).
  9. Sokic-Lazic, D., Minteer, S. D. Citric Acid Cycle Biomimic on a Carbon Electrode. Biosens. Bioelectron. 24, 939-944 (2008).
  10. Arechederra, R. L., Minteer, S. D. Complete Oxidation of Glycerol in an Enzymatic Biofuel Cell. Fuel Cells. 9, 63-69 (2009).
  11. Germain, M., Arechederra, R. L., Minteer, S. D. Nitroaromatic Actuation of Mitochondrial Bioelectrocatalysis for Self-Powered Explosive Sensors. J. Am. Chem. Soc. 130, 15272-15273 (2008).
  12. Addo, P. K., Arechederra, R. L., Minteer, S. D. Evaluating Enzyme Cascades for Methanol/Air Biofuel Cells Based On NAD+-Dependent Enzymes. Electroanalysis. 22, 807-812 (2010).
  13. Smith, P. K., Krohn, R. I., Hermanson, G. T., Mallia, A. K., Gartner, F. H., Provenzano, M. D., Fujimoto, E. K., Goeke, N. M., Olson, B. J., Klenk, D. C. Measurement of protein using bicinchoninic acid. Analytical Biochemistry. 150, 76-85 (1985).
check_url/3949?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Meredith, S., Xu, S., Meredith, M. T., Minteer, S. D. Hydrophobic Salt-modified Nafion for Enzyme Immobilization and Stabilization. J. Vis. Exp. (65), e3949, doi:10.3791/3949 (2012).

View Video