Summary

实验室规模的人工合成蜘蛛丝生产

Published: July 18, 2012
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Summary

尽管优秀的机械和生化蜘蛛丝的性能,这种材料可以收获大量的常规手段。在这里,我们描述了一个有效的战略,以旋转人工蜘蛛丝纤维,这是一个重要研究蜘蛛丝作为下一代生物材料的生产和使用的调查过程。

Abstract

随着社会的进步和资源日益稀少,它正变得越来越重要,以培育新技术,新一代生物材料具有较高的性能工程师。这些新的结构材料的发展必须是快速,具有成本效益和涉及的加工方法和产品,环保和可持续发展。蜘蛛能纺出多种不同类型的纤维,具有不同的力学性能,提供丰富的新一代工程材料的来源,仿生学,对手最好的人造和天然材料。由于收集大量天然蜘蛛丝是不切实际的,人造丝生产有能力提供无限量供应的线程访问科学家。因此,如果纺纱过程可以简化和完善,人工蜘蛛纤维的防弹衣,应用范围广泛,手术缝合线的潜在用途,绳索和电缆,轮胎,乐器的弦,和航空航天技术的复合材料。以推动人造丝生产过程中产生纤维,显示在他们的物质属性从低自旋旋转方差,我们开发湿纺协议,整合重组蜘蛛丝蛋白的蛋白质的细菌,净化和浓度的表达其次是纤维挤压和机械旋转后处理。这是第一个可视化表示形式,揭示了一步一步的过程,旋转和分析实验室规模的人造丝纤维。它还提供了详细资料,以尽量减少从同一纺丝液纺纤维中引入变异。总的来说,这些方法将推动人造丝生产过程中,导致更高的质量超过天然蜘蛛丝纤维。

Introduction

蜘蛛丝具有非凡的机械性能,包括高强度钢,芳纶和尼龙出执行数的人造材料,旋转1蜘蛛至少6-7种不同的光纤类型,显示不同的力学性能,数额不等的拉伸强度和可扩展性设计执行特定的生物任务。2研究的科学家正在迅速推行的蜘蛛丝作为下一代生物材料由于其优异的力学性能,其生物相容性,无毒,绿色材料的性质使用。由于“吃人的3,4和有毒的蜘蛛纲的性质,通过耕种收割蜘蛛丝是不是一个实际的战略,以满足工业规模生产所必需的要求。因此,科学家们转向了从合成纤维纺丝加上在体外重组丝蛋白的转基因生物的生产5-8全长重组蜘蛛丝蛋白表达本身的纯化蛋白质。一直技术上的困难,由于他们的基因序列的内在属性,其中包括他们的高度重复的性质和物理长度(15 KB),GC丰富的内容和偏见丙氨酸和甘氨酸密码子使用9-11迄今为止,大多数实验室都集中表达形式截断主壶腹丝蛋白的部分cDNA序列或人工合成的基因MaSp1或MaSp2 12-15纺纱合成蜘蛛丝是一个具有挑战性的过程,需要掌握知识,在若干学科,纺纱过程的复杂性没有得到充分暴露广大市民通过视频表示。事实上,只有少数遍布全球的实验室具备专业知识,表达蜘蛛丝的cDNA,净化丝蛋白,纺合成纤维和执行后的自旋战平,然后最后测试其生物材料的性能8。16,17纺合成纤维不同的方法包括湿法和干法纺丝以及静电方法16,18,19的所有程序,有一个共同的目标-一个协议,生产合成蜘蛛丝力学性能发展,对手自然线程大规模商业化生产进程。

在这里,我们描述的过程来生成实验室规模的人工蜘蛛丝,用湿纺方法。相对于其他纺纱方法,湿法纺丝纤维分析的最一致的结果。我们概括与表达中的细菌其纯化重组丝蛋白,其次这个过程的开始,然后纺纱,包括自旋后抽签的方法适用于“纺”的纤维,产生线程的描述蛋白质的准备步骤材料性能接近天然蜘蛛丝的质量。我们的方法论的y的设计紧密地模仿天然蚕丝纤维的纺纱工艺和倚重它吸引我们的ORB和芯织网的蜘蛛。20-22此外,丝绸生产的腺体结构和功能方面的专长,我们的结论与必要的步骤,以确定使用tensometer绘制应力 – 应变曲线,这让研究者计算的极限强度,极限应变,韧性纤维,合成纤维材料的性能。最后,但显著的价值,纺纱,后台处理和绘图仪器可以在家使用市售的部分,而不是购买定制的精致和昂贵的设备,建造。

Protocol

图形概述:纺纱过程的仿生学 仿生学的天然蜘蛛丝的生产途径:制造人造丝的路线此图像显示了主壶腹腺金球织布, 蜘蛛clavipes,天然蚕丝生产(白色文字)利用组件。尾地区综合大量的丝蛋白,被运送到壶腹,为纺丝原液的存储区域。这种集中的涂料是通过纺纱管解决方案体验离子交换和?…

Discussion

这种方法纺成的合成纤维是机械上的同一量级的天然纤维相比。通过假脱机和自旋后抽签过程机械化,减少人为错误的数量,实验样品之间的变化有更多的控制,大大降低了。

我们的方法提供了潜力调查其他纺蜘蛛基因家族的其他成员的cDNA编码的重组蛋白纤维的力学性能。潜在的,它可以决定不同的蛋白质模块内素,或不同的素类型之间的机械作用,23它还允许蚕丝…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作由芮NSF的资助小型断路器-0950372和DMR-1105310题为“黑寡妇蜘蛛丝和力学性能蜘蛛胶彩衣的分子鉴定”,分别支持。

Materials

Reagent/Equipment Company Catalogue number Comments
pBAD/TOPO ThioFusion Expression Kit Invitrogen K370-01  
FastBreak Cell Lysis Reagent, 10x Promega V857C  
Ni-NTA Agarose Qiagen 30210 Includes instructions for buffers
ProteoSilver Silver Stain Kit Sigma-Aldrich PROTSIL1-1KT  
FreeZone Lyophilizer Labconco 7960041 FreeZone 12Plus
Hexafluoroisopropanol (HFIP) Sigma-Aldrich 52512  
Syringe Hamilton 7657-01 250 μL
Needle Hamilton 7780-01 26s Gauge, Blunt end removable needle
Syringe Pump Harvard Apparatus 702208 11Plus
Digital Caliper Carrera CP5906 0-150 mm range
Stainless steel forceps World Precision Instruments 501764 Mini Dumont #M5S
Motor Nature Mill 7090529 12VDC, 2 rpm speed
Linear Actuator Warner Electric 01-D024-0050-A06-LP-IP65 24VDC, 6 inch range
Dissecting microscope Leica Microsystems Leica MZ16  
Digital microscope camera Leica Microsystems DFC320 Software: Leica Application Suite v2.8.1
Vannas scissors World Precision Instruments 500260  
Microtensometer Aurora Scientific 310C 5N Dual-Mode System

References

  1. Gosline, J. M., Guerette, P. A., Ortlepp, C. S., Savage, K. N. The mechanical design of spider silks: from fibroin sequence to mechanical function. J. Exp. Biol. 202, 3295-3303 (1999).
  2. Foelix, R. . Biology of spiders. , (1996).
  3. Vollrath, F., Knight, D. P. Liquid crystalline spinning of spider silk. Nature. 410, 541-548 (2001).
  4. Spiess, K., Lammel, A., Scheibel, T. Recombinant spider silk proteins for applications in biomaterials. Macromol. Biosci. 10, 998-1007 (2010).
  5. Stark, M., Grip, S., Rising, A., Hedhammar, M., Engstrom, W., Hjalm, G., Johansson, J. Macroscopic fibers self-assembled from recombinant miniature spider silk proteins. Biomacromolecules. 8, 1695-1701 (2007).
  6. Lazaris, A., Huang, Y., Zhou, J. F., Duguay, F., Chretien, N., Welsh, E. A., Soares, J. W., Karatzas, C. N. Spider Silk Fibers Spun from Soluble Recombinant Silk Produced in Mammalian Cells. Science. 295, 472-476 (2002).
  7. Teule, F., Cooper, A. R., Furin, W. A., Bittencourt, D., Rech, E. L., Brooks, A., Lewis, R. V. A protocol for the production of recombinant spider silk-like proteins for artificial fiber spinning. Nat. Protoc. 4, 341-355 (2009).
  8. Gnesa, E., Hsia, Y., Yarger, J. L., Weber, W., Lin-Cereghino, J., Lin-Cereghino, G., Tang, S., Agari, K., Vierra, C. Conserved C-Terminal Domain of Spider Tubuliform Spidroin 1 Contributes to Extensibility in Synthetic Fibers. Biomacromolecules. , (2011).
  9. Hayashi, C. Y., Shipley, N. H., Lewis, R. V. Hypotheses that correlate the sequence, structure, and mechanical properties of spider silk proteins. Int. J. Biol. Macromol. 24, 271-275 (1999).
  10. Xu, M., Lewis, R. V. Structure of a protein superfiber: Spider Dragline Silk. Proc. Natl. Acad. Sci. 87, 7120-7124 (1990).
  11. Hayashi, C. Y., Blackledge, T. A., Lewis, R. Molecular and mechanical characterization of aciniform silk: uniformity of iterated sequence modules in a novel member of the spider silk fibroin gene family. Mol. Biol. Evol. 21, 1950-1959 (2004).
  12. Lazaris, A., Arcidiacono, S., Huang, Y., Zhou, J. F., Duguay, F., Chretien, N., Welsh, E. A., Soares, J. W., Karatzas, C. N. Spider silk fibers spun from soluble recombinant silk produced in mammalian cells. Science. 295, 472-476 (2002).
  13. Arcidiacono, S., Mello, C., Kaplan, D., Cheley, S., Bayley, H. Purification and characterization of recombinant spider silk expressed in Escherichia coli. Appl. Microbiol. Biotechnol. 49, 31-38 (1998).
  14. Menassa, R., Zhu, H., Karatzas, C. N., Lazaris, A., Richman, A., Brandle, J. Spider dragline silk proteins in transgenic tobacco leaves: accumulation and field production. Plant Biotechnology Journal. 2, 431-438 (2004).
  15. Scheller, J., Guhrs, K. H., Grosse, F., Conrad, U. Production of spider silk proteins in tobacco and potato. Nat. Biotechnol. 19, 573-577 (2001).
  16. An, B., Hinman, M. B., Holland, G. P., Yarger, J. L., Lewis, R. V. Inducing beta-sheets formation in synthetic spider silk fibers by aqueous post-spin stretching. Biomacromolecules. 12, 2375-2381 (2011).
  17. Elices, M., Guinea, G. V., Plaza, G. R., Karatzas, C., Riekel, C., Agullo-Rueda, F., Daza, R., Perez-Rigueiro, J. . Bioinspired Fibers Follow the Track of Natural Spider Silk. Macromolecules. 44, 1166-1176 (2011).
  18. Scheller, J., Guhrs, K. H., Grosse, F., Conrad, U. Production of spider silk proteins in tobacco and potato. Nature Biotechnology. 19, (2001).
  19. Kojic, N., Kojic, M., Gudlavalleti, S., McKinley, G. Solvent removal during synthetic and Nephila fiber spinning. Biomacromolecules. 5, 1698-1707 (2004).
  20. Jeffery, F., La Mattina, C., Tuton-Blasingame, T., Hsia, Y., Gnesa, E., Zhao, L. Microdissection of Black Widow Spider Silk-producing Glands. J. Vis. Exp. (47), e2382 (2011).
  21. Blasingame, E., Tuton-Blasingame, T., Larkin, L., Falick, A. M., Zhao, L., Fong, J., Vaidyanathan, V., Visperas, A., Geurts, P., Hu, X., La Mattina, C., Vierra, C. Pyriform spidroin 1, a novel member of the silk gene family that anchors dragline silk fibers in attachment discs of the black widow spider, Latrodectus hesperus. J. Biol. Chem. 284, 29097-29108 (2009).
  22. La Mattina, C., Reza, R., Hu, X., Falick, A. M., Vasanthavada, K., McNary, S., Yee, R., Vierra, C. A. Spider minor ampullate silk proteins are constituents of prey wrapping silk in the cob weaver Latrodectus hesperus. Biochemistry. 47, 4692-4700 (2008).
  23. Hsia, Y., Gnesa, E., Jeffery, F., Tang, S., Vierra, C., Cuppoletti, J. Spider Silk Composites and Applications. Metal, Ceramic and Polymeric Composites for Various Uses. 2, 303-324 (2011).

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Cite This Article
Hsia, Y., Gnesa, E., Pacheco, R., Kohler, K., Jeffery, F., Vierra, C. Synthetic Spider Silk Production on a Laboratory Scale. J. Vis. Exp. (65), e4191, doi:10.3791/4191 (2012).

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