Summary

سد واجهة الحيوية الالكترونية مع Biofabrication

Published: June 06, 2012
doi:

Summary

توضح هذه المقالة نهج biofabrication: ترسب من المحفزات التي تستجيب السكريات في وجود أقطاب منحازة لخلق افلام حيويا والتي يمكن functionalized مع الخلايا أو البروتينات. نحن يبرهن على وجود استراتيجية مقاعد البدلاء أعلى للجيل من الأفلام، فضلا عن استخداماتها الأساسية لإنشاء السطوح biofunctionalized تفاعلية للالمختبر على واحد في رقاقة التطبيقات.

Abstract

Advancements in lab-on-a-chip technology promise to revolutionize both research and medicine through lower costs, better sensitivity, portability, and higher throughput. The incorporation of biological components onto biological microelectromechanical systems (bioMEMS) has shown great potential for achieving these goals. Microfabricated electronic chips allow for micrometer-scale features as well as an electrical connection for sensing and actuation. Functional biological components give the system the capacity for specific detection of analytes, enzymatic functions, and whole-cell capabilities. Standard microfabrication processes and bio-analytical techniques have been successfully utilized for decades in the computer and biological industries, respectively. Their combination and interfacing in a lab-on-a-chip environment, however, brings forth new challenges. There is a call for techniques that can build an interface between the electrode and biological component that is mild and is easy to fabricate and pattern.

Biofabrication, described here, is one such approach that has shown great promise for its easy-to-assemble incorporation of biological components with versatility in the on-chip functions that are enabled. Biofabrication uses biological materials and biological mechanisms (self-assembly, enzymatic assembly) for bottom-up hierarchical assembly. While our labs have demonstrated these concepts in many formats 1,2,3, here we demonstrate the assembly process based on electrodeposition followed by multiple applications of signal-based interactions. The assembly process consists of the electrodeposition of biocompatible stimuli-responsive polymer films on electrodes and their subsequent functionalization with biological components such as DNA, enzymes, or live cells 4,5. Electrodeposition takes advantage of the pH gradient created at the surface of a biased electrode from the electrolysis of water 6,7,. Chitosan and alginate are stimuli-responsive biological polymers that can be triggered to self-assemble into hydrogel films in response to imposed electrical signals 8. The thickness of these hydrogels is determined by the extent to which the pH gradient extends from the electrode. This can be modified using varying current densities and deposition times 6,7. This protocol will describe how chitosan films are deposited and functionalized by covalently attaching biological components to the abundant primary amine groups present on the film through either enzymatic or electrochemical methods 9,10. Alginate films and their entrapment of live cells will also be addressed 11. Finally, the utility of biofabrication is demonstrated through examples of signal-based interaction, including chemical-to-electrical, cell-to-cell, and also enzyme-to-cell signal transmission.

Both the electrodeposition and functionalization can be performed under near-physiological conditions without the need for reagents and thus spare labile biological components from harsh conditions. Additionally, both chitosan and alginate have long been used for biologically-relevant purposes 12,13. Overall, biofabrication, a rapid technique that can be simply performed on a benchtop, can be used for creating micron scale patterns of functional biological components on electrodes and can be used for a variety of lab-on-a-chip applications.

Protocol

1. الجينات الكهربي توصيل التيار الكهربائي إلى الأقطاب الكهربائية المخصصة ملفقة عن طريق التصحيح بالحبال باستخدام مقاطع التمساح. وأكسيد القصدير الإنديوم (ITO) غطت شريحة زجاجية سيكون بمثابة القطب الموجب (عامل كهربائي)، ورقائق البلاتين ستكون بمثابة الكاثود (مكافحة الكهربائي). وضع الأقطاب وبالتالي فإن سطح ITO أن functionalized تعارض القطب المضاد ويتم وضع إما عموديا إلى أن تراجع في حل من هذا القبيل أو أفقيا أن يرد حل ترسب على السطح. يعد حل ترسب الجينات عن طريق خلط الجينات 1٪ و 0.5٪ كربونات الكالسيوم 3 (وزنا) في الماء المقطر ثم جهاز الأوتوكليف الحل. فمن المستحسن أن يحرك باستمرار على حل عندما لا تكون قيد الاستعمال. غمر كل من الأقطاب الكهربائية في حل ترسيب. ويمكن أن تستخدم الجينات fluorescently المسمى مع FluoroSpheres (إينفيتروجن)، وفقا لتشنغ وآخرون. 14، للسماح لfluorescenم تصوير الفيلم الناتجة عن ذلك. تطبيق كثافة ثابت الحالي (3 أ م / 2) لمدة 2 دقيقة، سوف يتحول الجهد في نطاق 2-3 V. فصل الكهربائي وإزالة حل غير المودعة. شطف بلطف الفيلم مع كلوريد الصوديوم (0.145 م) لإزالة زائدة الجينات. احتضان لفترة وجيزة فيلم (~ 1 دقيقة) في CaCl 2 (0.1 م) لتعزيز هلام. شطف مع كلوريد الصوديوم (0.145 م) واحتضان في الحل المنشود تستكمل مع CaCl 2 (1 ملم). صورة باستخدام مجهر مضان (الشكل 1B). 2. Codeposition من السكان الخلايا التواصل في الجيني ثقافة الخلية إشارة المرسل (W3110 وزن كولاي)، ونمت في وسائل الاعلام LB، وثقافة الخلية إشارة المتلقي (+ MDAI2 pCT6-lsrR – أمبير R + PET-dsRed – كان ص)، ونمت في وسائل الاعلام LB + 50 ميكروغرام / مل من كل من الكانامايسين والأمبيسيلين، لا بد من نشأوا بين عشية وضحاهاالثانية وإعادة تلقيح للنمو إلى الكثافة البصرية (في 600 نانومتر) 1. ضبط الكثافة البصرية للثقافة المتلقي الخلية إلى 0،4-0،6 مع LB قبل الاستخدام. يعد حل ترسب الجينات 2٪ و 1٪ كربونات الكالسيوم 3، والاختلاط مع كل ثقافة خلية في نسبة 1:1 إلى تركيز النهائي من الجينات 1٪، 0.5٪ كربونات الكالسيوم 3، مع خلايا مخففة لكثافة حوالي نصف في زراعة كثافة. استخدام شريحة زجاجية منقوشة مع أقطاب ITO الواردين من قبل polydimethylsiloxane (PDMS) جيد (أعدت وفقا لتعليمات Sylgard وقطع إلى الحجم المطلوب)، وقطب كهربائي عداد البلاتين. ربط واحدة ITO الكهربائي لامدادات الطاقة مع البلاتين كما هو موضح في الإجراءات 1 (الكهربي الجيني). تزج الأقطاب في محلول يحتوي على ترسيب خلايا المتلقي. وضع التيار الكهربائي إلى تيار مستمر في مناطق ذات كثافة من 3 ألف م 2 /، حيث يتم تعريف البعد مساحة السطح بواسطة قطب واحد على أي depositioوسوف تحدث ن. تطبيق الحالي لمدة 2 دقيقة للسماح للcodeposition من الخلايا في المصفوفة الجينات. شطف الفيلم كما هو موضح في الخطوة 1.5. تبديل اتصال انوديك إلى الثانية، القطب، المتاخمة ITO. كرر الإجراء ترسيب (خطوات 2،4-2،7)، ولكن هذه المرة إدخال محلول يحتوي على خلايا مرسل. احتضان شريحة 2-الكهربائي التي تحتوي على خلايا codeposited والكالسيوم الجينات، بين عشية وضحاها في 37 درجة مئوية في الفوسفات مخزنة المالحة (PBS) تستكمل مع وسائل الاعلام LB 10٪ و 1 مم CaCl 2. بعد مرور فترة الحضانة، صورة باستخدام مجهر مضان (الشكل 2B). 3. الشيتوزان الكهربي توصيل التيار الكهربائي إلى الأقطاب الكهربائية عن طريق مقاطع التمساح. وهناك شرائح السليكون الذهب المطلي بمثابة الكاثود (القطب العمل)، ورقائق البلاتين سيكون بمثابة القطب الموجب (مكافحة الكهربائي). وضع سطح القطب الذهب حتى السابعةفي انها تعارض القطب المضاد ويتم وضع حد سواء عموديا إما أن يغمس في حل من هذا القبيل أو أفقيا أن يرد حل ترسب على السطح. يعد حل الشيتوزان عن طريق خلط الشيتوزان رقائق في الماء، وإضافة ببطء 2 M حمض الهيدروكلوريك إلى حل السكريات (درجة الحموضة النهائية 5.6)، والتأكد من اتباع الإجراءات التي حددها ماير وآخرون. 15. وضع أقطاب كهربائية في حل الشيتوزان (0.8٪)، غمر المنطقة بالكامل المطلوب للترسيب. ويمكن للمستعمل الشيتوزان fluorescently المسمى مع 5 – (و-6)، carboxyrhodamine 6G succinimidyl استر (إينفيتروجن)، ولكل وآخرون وو 8، إلى صورة الفيلم electrodeposited بواسطة الفحص المجهري مضان. تطبيق كثافة ثابت الحالي (4 أ م / 2) لمدة 2 دقيقة. وسوف يتحول الجهد في نطاق 2-3 خامسا حساب الكثافة الحالية بوصفها وظيفة من المساحة الذهب من القطب العمل يتعرضون لdepositioن حل. شطف القطب بالماء DI لإزالة زائدة الشيتوزان. ويمكن تخزين الشريحة في الماء أو في برنامج تلفزيوني (10 ملم، ودرجة الحموضة 7.0). صورة باستخدام مجهر مضان (الشكل 3C). 4. الكهروكيميائية تنبيغ مع فيلم الشيتوزان Functionalized Codeposit الشيتوزان والجلوكوز أوكسيديز (GOx) من التوصل إلى حل (1٪ الشيتوزان، 680 يو / مل GOx، ودرجة الحموضة 5.6) في مناطق ذات كثافة الحالية من 4 ألف متر / 2 على القطب منقوشة وفقا للإجراءات 3 (الشيتوزان الكهربي). سيتم إنشاء فيلم الشيتوزان شرك في GOx. نعلق القطب إلى نظام المعالجة لمدة ثلاثة الكهربائي كما القطب العمل، وسلك البلاتين كما القطب المضاد وجي / أجكل مثل الإلكترود المرجعي، كما هو موضح في الشكل رقم 4A. تزج الأقطاب في الفوسفات حل العازلة (0.1 م، ودرجة الحموضة 7.0) التي تحتوي على كلوريد الصوديوم (0.1 م). المتقارن Electrochemically البروتين إلى الشيتوزانفيلم عن طريق تطبيق الجهد المستمر (0.9 فولت) للاستخدام 60S chronoamperometry 10. وضع رقاقة في العازلة الفوسفات (0.1 م، ودرجة الحموضة 7.0)، ويغسل لمدة 10 دقائق على شاكر المداري لإزالة أي غير المتفاعل GOx كلوريد الصوديوم وunconjugated. إلى النظام الكهربائي لمدة ثلاثة اعادة نعلق، كما هو موضح في الخطوة 4.2 وغمر في محلول الجلوكوز 5 مم. باستخدام voltammetry دوري، يجتاح محتمل في اتجاه إيجابي إلى 0.7 خامسا استخدم فيلم السيطرة التي لا تحتوي على أوكسيديز الجلوكوز وعلى سبيل المقارنة لكمية أكسدة ينظر في الاجتياح (الشكل 4B). إزالة الأقطاب من حل الجلوكوز وشطف مع العازلة الفوسفات (0.1 م، ودرجة الحموضة 7.0) ثم ضع الأقطاب في كأس 10 مل تحتوي على 8 مل من الفوسفات عازلة (0.1 م، ودرجة الحموضة 7.0). انحياز شرائح GOx-functionalized إلى 0.6 V لتكون بمثابة القطب العمل (4C الشكل). إضافة aliquots من الجلوكوز إلى المخزن المؤقت (كل قسامة يزيد تركيز الجلوكوز4 ملم). إنشاء منحنى قياسي بين التيار حالة مستقرة وتركيز الجلوكوز للفيلم الشيتوزان GOx-functionalized. 5. Functionalization بروتين عن طريق الجمعية الأنزيمية استخدام شريحة زجاجية منقوشة مع الذهب المجاورة والقطب ITO الواردة في بئر PDMS. انحياز القطب الذهب مع احتمال الكاثودية لelectrodeposit الشيتوزان كما هو موضح سابقا. شطف الفيلم لفترة وجيزة في المياه دي، وبعد ذلك في برنامج تلفزيوني بواسطة ماصة. إضافة إلى حل من 3 ميكرومتر الزرقاء fluorescently المسمى "منظمة العفو الدولية-2 سينسيز" 16 (استخدام عدة وسم DyLight) 100 + يو / مل التيروزينات في برنامج تلفزيوني. احتضان لمدة 1 ساعة في درجة حرارة الغرفة، ثم شطف الفيلم مع برنامج تلفزيوني. تطبيق محتمل انوديك إلى القطب ITO إلى codeposit حلا ترسب الجينات التي تحتوي على خلايا المتلقي (المعد في خطوات 2،1-2،2). اتبع الخطوات من 2،3-2،6 الداخلي 2 (Codeposition للسكان الخلية في الجينات). لتوليدالإشارة المرسلة (منظمة العفو الدولية-2) إنزيمي، بعد الشطف هذه الأفلام إضافة إلى حل من 500 الهموسيستين S-adenosyl ميكرومتر (SAH) في برنامج تلفزيوني، على أن تستكمل مع وسائل الاعلام LB 10٪ و1MM CaCl 2. تغطية كهربائية لمنع التبخر من الحل واحتضان بين عشية وضحاها في 37 درجة مئوية. وهذا سوف يسمح لجهاز استقبال استجابة الخلية عن طريق توليد بروتين أحمر فلوري (dsRed). ويمكن تصوير أقطاب المتاخمة مع مضان المجهر من خلال تعديل المرشحات للقبض على مضان الزرقاء من سينسيز AI-2 ومضان أحمر وأعرب من قبل خلايا المتلقي codeposited (الشكل 5B). 6. ممثل النتائج يمكن أن الإشارات الكهربائية التي فرضت خلق microenvironments محلية (على سبيل المثال، الحقول والتدرجات) بالقرب من سطح القطب وهذه المحفزات يمكن أن تؤدي إلى التجميع الذاتي من السكريات مثل الجينات والشيتوزان على أن تودع كفيلم هيدروجيل على سطح القطب. لأن تيسول له جل التحول يحدث على سطح القطب، وelectroaddressed الفيلم الناتج، مع علم الهندسة في مطابقة نمط القطب (أرقام 1B، 3C). الأفلام حيويا مثل الجينات والشيتوزان توفير الأسطح التي يمكن functionalized مع المكونات البيولوجية. باستخدام الجينات، وقد تم codeposited السكان خلية فريدة من نوعها في مكانين منفصلين. وقد لوحظ دليل على electroaddressment سفرهم لدى والتفاعل بين المرسل والمستقبل سكان الخلية. يؤخذ على جزيء autoinducer-2 (AI-2) ينشر من الخلايا المرسل وحتى من قبل خلايا المتلقي، مما أدى إلى التعبير عن بروتين فلوري dsRed أحمر (الشكل 2A). 2B في الشكل، لوحظ مضان أحمر فقط في القطب حيث يتم تناول الاستقبال. المجموعات أمين موجودة على الشيتوزان تزويدها استجابة درجة الحموضة المطلوبة لالكهربي، فضلا عن سطح مناسب لfunctionalization. نحنيستعمل هذا النوع من خصائص فريدة من نوعها من قبل التصريف electrochemically الجلوكوز انزيم biosensing أوكسيديز (GOx) لelectrodeposited الشيتوزان الأفلام. هذا الانزيم ثم يقدم القدرة للكشف عن الجلوكوز من خلال رد فعل الأنزيمي (الشكل 4A) إنتاج بيروكسيد الهيدروجين الذي يمكن بعد ذلك تتأكسد electrochemically لإنتاج الانتاج الحالي. في هذه الطريقة، يمكن إشارة كيميائية transduced إلى الشكل الكهربائية. 4B يدل على أن الأفلام التي GOx كان مترافق electrochemically إنتاج إشارة قوية انوديك في وجود الجلوكوز في مقابل تلك الأفلام التي لا تحتوي على GOx. وتدل هذه النتائج يمكن تجميعها GOx على فيلم الشيتوزان المودعة وستحتفظ نشاط الحفاز. وعلاوة على ذلك، الشكل 4C يظهر خطوة زيادة في انوديك الحالية التي تنتج في استجابة لزيادة تركيزات الجلوكوز. المنحنى القياسي الحالي أيضا في 4C الشكل يدل على ان الزيادات خطوة شرع في فاس خطي قربوأضاف هيون تعتمد على كمية من السكر. هذه النتائج تدل على أن يحتفظ أيضا انزيم حساسيتها لزيادة تركيز الجلوكوز على اقتران لفيلم الشيتوزان. ولم يكن درس الحد الأدنى للكشف هنا كما سبق أن تتميز في السابق لهذا النظام في عمل وآخرون ماير. آل. نحن أيضا أثبتت تجميد التساهمية من انزيم من الفائدة، والمهندسة لاحتواء عرف خماسي التيروزين العلامة، إلى الشيتوزان بطريقة إنزيمي التي تسيطر عليها. على وجه التحديد، وتتوسط هذه العملية من خلال التيروزينات الانزيم. كما هو مبين في مخطط 5A في الشكل (العلوي)، انزيم، AI-2 سينسيز يتضمن علامة خماسي التيروزين. التيروزينات يعمل على البطاقة التيروزين، المؤكسدة المجموعات بقايا "الفينول إلى O-كينونات، التي ثم ربط تساهمي إلى الأمينات الشيتوزان ل. وقد لوحظ دليل على functionalization فيلم الشيتوزان مع منظمة العفو الدولية سينسيز-2 من قبل الجمعية التيروزينات في الشكل 5B </stرونغ>، حيث تم سينسيز AI-2 fluorescently المسمى أزرق. لأن منظمة العفو الدولية-2 سينسيز يولد AI-2 من الحمض الاميني S-adenosyl الركيزة (SAH) في نفس الطريق كما الخلايا مرسل، قربها من خلايا المتلقي codeposited في حضور SAH يتسبب أيضا في خلايا المتلقي للرد fluorescently بالإعراب عن dsRed (الشكل 5A (أدنى)). مضان أحمر من خلايا المتلقي (الشكل 5B) يوضح مرة أخرى التفاعل بين عناوين بسبب نشر منظمة العفو الدولية-2 من واحدة إلى أخرى، ويشير كذلك إلى أن الإنزيمات ثبتوا على الشيتوزان الاحتفاظ النشاط مرة واحدة ملزمة تساهمي. الشكل 1. الكهربي الجيني. (أ) آلية من الجينات الكهربي: وكما هو منحاز anodically إلكترود، التحليل الكهربائي للماء يحدث في سطحه، وتوليد درجة الحموضة المحلية منخفضة. جزيئات من كربونات الكالسيوم تتفاعل مع فائضمن البروتونات، والإفراج عن كاتيونات الكالسيوم كما جزيئات تذوب. في ظل وجود سلاسل البوليمر الجينات، تصبح بالكلاب الأيونات في شبكة "eggbox"، وتشكيل هيدروجيل crosslinked في القطب. والمسافة من الزيادات الكهربائي، الجينات لديها ميل أكبر للبقاء في حل بسبب وجود انخفاض أيونات الكالسيوم. (ب) واستخدم على شكل حرف L القطب ITO منقوشة على الجينات electrodeposit. وكذلك تم إصلاح PDMS إلى القطب تحتوي على الجينات الخضراء fluorescently المسمى (1٪) وكربونات الكالسيوم 3 (0.5٪) محلول ترسيب. بعد electrodepositing لمدة 2 دقيقة. في الكثافة الحالية من 3A / م 2، تم تصويرها في هيدروجيل الجينات electroaddressed بواسطة الفحص المجهري مضان. الشكل 2. Codeposition للسكان الخلية. (أ) التفاعل بين اثنين من مخطط يبين E. سلالات القولونية: واحد سكان تنتج autoinducer-2 (منظمة العفو الدولية-2)، وهو جزيء إشارة، ويطلق عليه "منظمة العفو الدولية-2 المرسل". السكان الأخرى، ويطلق عليه "منظمة العفو الدولية-2 المتلقي،" هو مراسل صحفي من منظمة العفو الدولية-2، عند تلقي منظمة العفو الدولية-2 عن طريق الانتشار من المرسل، فإنه يعبر عن بروتين أحمر فلوري dsRed. (ب) codeposited الأحمر صورة مضان من الزوج الكهربائي مع السكان لمنظمة العفو الدولية-2 المرسل مع الجينات في القطب اليسار ومنظمة العفو الدولية-2 سكان المتلقي codeposited مع الجينات في القطب حق. رأي تضخيم يدل على التعبير dsRed من أجهزة الاستقبال فقط AI-2. الشكل 3. الشيتوزان الكهربي. (أ) خطة تبين الكهربي التي تعتمد على درجة الحموضة من الشيتوزان. التحليل الكهربائي للماء في القطب منحازة cathodically يسبب الحموضة محلية عالية (كما هو موضح من قبل تغيير لون المترجمة من درجة الحموضة صبغ مؤشر بالقرب من القطب السالب في صورة مجهرية) الذي يحفز انتقال سول جل من الشيتوزان في هذه المنطقة. (ب) والأمينات على تقديم منح الشيتوزان أناتي الحموضة التي تستجيب للخصائص. أعلاه الرقم الهيدروجيني من 6.3 (الباكاف الحمضية من الشيتوزان) وdeprotonated والأمينات، وتسهيل الانتقال من شكله القابل للذوبان البروتونية إلى شكله هلام غير قابلة للذوبان. (C) واستخدمت القطب الذهب منقوشة على الشيتوزان electrodeposit. ومغمورة القطب، متصلا cathodically إلى إمدادات الطاقة، وإلى الأخضر fluorescently المسمى الشيتوزان (0.8٪) محلول ترسيب. بعد electrodepositing لمدة 2 دقيقة. في الكثافة الحالية من 4 ألف متر / 2، تم تصوير الفيلم الشيتوزان electroaddressed بواسطة الفحص المجهري مضان. الرقم تنبيغ الكهروكيميائية 4. مع فيلم الشيتوزان functionalized. (أ) تخطيطي يظهر مجموعة المتابعة لنظام القطب الثلاثة. Functionalized الشيتوزان الفيلم بمثابة القطب العمل، وسلك البلاتين كما القطب المضاد وجي / أجكل مثل الإلكترود المرجعي. الكهروكيميائية تنبيغ العائدات الجلوكوز من خلال اله التفاعلات الأنزيمية والكهروكيميائية أظهرت حيث يمكن المؤكسدة تنتج بيروكسيد الهيدروجين، والكشف في القطب العمل. (ب) دوري voltammagram (السيرة الذاتية) في القطب مع فيلم الشيتوزان تحتوي على مترافق electrochemically أوكسيديز الجلوكوز (GOx) يظهر إشارة قوية انوديك في محلول جلوكوز 5 ملم. عمل فيلم لا تحتوي على GOx كعنصر تحكم وعرض أي إشارة في نفس الحل. (ج) منحنى القياسية الحالية بين انوديك وتركيز الجلوكوز يعرض علاقة قرب الخطية (كل قسامة زيادة تركيز الجلوكوز بنسبة 4 ملم وكذلك زيادة السعة الحالية في الرسم البياني أقحم على نحو تدريجي). الشكل 5. functionalization البروتين باستخدام الجمعية الأنزيمية. (A، العلوي) خطة تبين التيروزين، الموسومة "AI-2 سينسيز" يجري المربوطة تساهمي إلى فيلم من قبل الجمعية الشيتوزان التيروزينات. بقايا التيروسين أصبح OXIDأوتوماتيكية إلى O-كينونات بواسطة عمل التيروزينات، وربما تتفاعل مع مجموعات أمين على الفيلم الشيتوزان، وتشكيل الرابطة التساهمية. (A، أقل) ومنظمة العفو الدولية سينسيز-2-2 يولد لمنظمة العفو الدولية من ركيزة (SAH)، وخلايا المتلقي تقرير منظمة العفو الدولية ولدت-2 بواسطة التعبير مضان dsRed. (ب) وصور الإسفار عرض فيلم الشيتوزان على الذهب، functionalized مع سينسيز AI-2 الأزرق المسمى. مجاور، ومنظمة العفو الدولية codeposited-2 خلايا المتلقي مع الجينات في منظمة التجارة الدولية. بعد إضافة الركيزة الأنزيمية إلى البئر، وحضانة، والتعبير عن dsRed خلايا المتلقي AI-2.

Discussion

إجراءاتنا إثبات الكهربي وfunctionalization من الأفلام البوليمر الحيوي، وهي عملية نحن مصطلح biofabrication. من خلال functionalization مع الخلايا والجزيئات الحيوية نخلق السطوح بيولوجي قادر على التفاعل مع بعضهم البعض وعنوان القطب يتم تجميعها عليها. الخطوة الأولى، الكهربي، تتم من خلال الجمعية المصير أثار من الجينات، والبوليمرات الحيوية الشيتوزان في دراساتنا، واستجابة لإشارة كهربائية. كما ذكر في وقت سابق يتم إنشاء معامل الحموضة والتي يمكن التحكم بها كثافة والوقت الحالي ترسيب، وتوفير رقابة إضافية على أبعاد الفيلم وخصائص 6،17. لقد وجدنا أنه يمكن استخدام مجموعة متنوعة من الكثافة الحالية ومجموعات وقت ترسب الأقطاب هو مبين في الجدول رقم 1. في حين أن استخدام الأقطاب الكهربائية الأخرى غير مجدية، والتعديلات التي أدخلت على إجراء يكون ضروريا. بالمقارنة مع غيرها من التقنيات لتشكيل الفيلم عملية electrodeposiنشوئها هو بسيط وسريع وreagentless. ليست هناك حاجة للحصول على ذخيرة واسعة من معدات باهظة الثمن والتحضير شاقة. الأهم من ذلك، يمكن لعملية الصمود الانحرافات تجريبية طفيفة ويمكن أن تبدأ بسهولة أكثر في حالة حدوث مشكلة.

الشيتوزان غير قادرة على الاستجابة لتدرج درجة الحموضة الكاثودية واسعا نظرا لخصائص وظيفية مهمة الممنوحة لها من قبل على نسبة عالية من الأمينات الأولية. عند درجة الحموضة العالية (أكبر من الباكاف الحمضية لها من ~ 6.3) وdeprotonated والأمينات، ويصبح غير قابل للذوبان الشيتوزان، والسماح لتشكيل الفيلم. بعد الترسيب، وهذه الأفلام لا تزال تعلق على قطب كهربائي. ومع ذلك، فإن القدرة موجودة لdelaminate لهم اذا شئت. وهذه الأفلام لا تزال مستقرة طالما أن الرقم الهيدروجيني من الحل لا ينخفض ​​إلى أقل من الباكاف الحمضية. المحاليل الحمضية protonate والأمينات والنفور لاحق كهرباء تضخم الجل حتى يذوب 18. هذا هو، وعملية التجميع / التفكيك هو عكسها على الطلب وألووفاء سلطان لإزالة الأفلام أودعت وإعادة استخدامها من الأقطاب الكهربائية. ملائم، في نطاق درجة الحموضة في المرحلة الانتقالية التي سول جل تجري على مقربة من تلك التي في معظم المكونات البيولوجية تعمل على النحو الأمثل. هذا يجعل عملية مثالية للإبقاء على وظيفة خلال الجمعية 6.

ومما يسهل تشكيل الجينات فيلم بواسطة التحليل الكهربائي انوديك من المياه، فضلا عن وجود كربونات الكالسيوم 7. درجة الحموضة المترجمة منخفض عند المصعد solubilizes على كربونات الكالسيوم مما يؤدي إلى إطلاق الكاتيونات الكالسيوم. وبالكلاب هذه الأيونات بواسطة الجينات، وتشكيل شبكة crosslinked على سطح القطب. الأفلام الجينات هي انعكاس لا سيما من خلال التنافس على أيونات الكالسيوم من مركبات مخلبية الأخرى مثل سيترات أو EDTA، والتي يمكن استخدامها في حل هذه الأفلام، والسماح لإعادة استخدام الأقطاب الكهربائية الأساسية. وهكذا، والأفلام الجينات هشة نسبيا عندما تعرضوا لظروف فسيولوجية لأن أيونات الكالسيوم ليالي بسهولةcavenged من المصفوفة هلام، وإضعاف بنيتها وتعزيز فيلم التبطين أو redissolution. للتغلب على هذا القيد، أدرجنا خطوة حضانة للفيلم في CaCl M 1 2 لتعزيز هلام. وبالإضافة إلى ذلك، من المستحسن أن تستكمل حل الفيلم حضانة (وسائل الاعلام الخلية، وغيرها) مع CaCl 2 في تركيز مم ميكرومتر، 500 3.

الإجراء الرئيسي الثاني هو functionalization من الفيلم المودعة لدى المكونات البيولوجية ذات الصلة. ويمكن تحقيق ذلك بطريقتين، الأولى اقتران الكهروكيميائية يجري، ووضع استراتيجية تسمح للجمعية، سريع reagentless من البروتينات مع سيطرة المكاني استثنائية 10. ومع ذلك، يقتصر functionalization في هذه الطريقة من قبل نشر كلور الأيونات من خلال الفيلم إلى القطب، وكذلك نشر HOCL، فإن رد الفعل المتولدة وسيطة، والعودة بها الى حل. قدرة الجزيئات النشطة electrochemically لتمريرمن خلال هذا الفيلم يتيح للتنبيغ الكيميائية والبيولوجية في إشارات سهلة لقراءة الإشارات الكهربائية 15. لقد أظهرنا التيروزينات بوساطة اقتران كاستراتيجية الثاني لfunctionalization انزيم إلى الشيتوزان، أظهرت عن طريق ربط تساهمي AI-2 سينسيز. هذه الاستراتيجية تسمح للعملية functionalization أن يكون للرقابة وانتقائية – يعتمد على كاشف محددة، التيروزينات، والذي يعمل ينطوي على تمييز على البروتينات التي تحتوي على علامة التيروزين 9.

نعرض فائدة وتوافق مع الحياة المتعددة عنوان نظم من قبل تكرار المسارات الطبيعية على رقاقة. نظمت أول نحن سكان الخلية 2 (أي "المرسلين" و "استقبال") في عناوين مختلفة، وتبين أنها تفاعلت عبر الأقطاب الكهربائية المجاورة لتقديم AI-2 و توليد استجابة مضان. كما تم هذا المفهوم الذي أبدته تشينغ وآخرون. في 14 رقاقة ميكروفلويديك. نحن تحاكي أيضا التفاعل، ولكنها تستخدم بدلا من ذلكانزيم لتجميع AI-2 للتسليم. بهذه الطريقة، وتكرر طريقا الاصطناعية داخل الخلايا، لمنظمة العفو الدولية-2 التوليف، من خلال biofabrication وتعمل بقدر ما تفعل في حل.

في كلتا الحالتين، والتجمع من عناوين متعددة ويقدم التحدي لتجنب غير محددة ملزمة بين عناوين لأنه يجب أن يتم إدخال كل حل ترسب إلى مجموعة قطب كهربائي كامل، حتى ولو كان المقصود فقط الكهربي في عنوان واحد. ويمكن غسل لطيف حتى الآن شامل إزالة معظم المتبقي من حل غير متحيز الأقطاب الكهربائية، واستخدام تدفق في قنوات ميكروفلويديك قد تقليل مزيد من عدم الدقة. لا سيما بالنسبة للbiofabrication المجاورة الشيتوزان وعناوين الجينات، ونحن نوصي إيداع فيلم الشيتوزان الأولى، بعد هذه الخطوات مع biofunctionalization، وبعد هذا، electrodepositing الجينات. على الرغم من أننا لم نفعل ذلك هنا، وجدنا أن منع فيلم الشيتوزان مع البروتينات خامل (مثل ملك، جيش صرب البوسنة، وغيرها) يقلل إلى حد كبير غير محددة وملزمة من الجزيئات غير المرغوب فيها إلى سطح الشيتوزان لaminated.

لقد وجدنا فائدة في إنشاء أقطاب منقوشة، غالبا ما توجد في أجهزة bioMEMS، بأنها "مخططات" لترتيب معقد من الخلايا والجزيئات الحيوية. electrodeposited استخدامات الشيتوزان في الأجهزة bioMEMS يمكن أن تذهب إلى أبعد من الأمثلة المذكورة هنا 19. يمكن أن تودع الشيتوزان في هندستها الميكروسكيل المختلفة – مثل في microchannels، وعلى غير المستوية الأسطح 20،15. ويمكن أيضا أن هذه الأفلام يمكن تعديلها مع البوليمرات الأخرى ومجموعة متنوعة من البروتينات والحمض النووي، وجزيئات، والجزيئات النشطة الأكسدة لخصائص رواية 21،22،23. في أجهزة bioMEMS، وقد استخدمت الأفلام الشيتوزان لتسليم المخدرات، الأكسدة والصغيرة اكتشاف جزيء، biocatalysis، ودراسات الخلية 20،23،24،25. وبالمثل، يستخدم على نطاق واسع الجينات في شكل مصفوفة الخلايا وفخ قد تم استكشافه لاحتواء fluidic عكسها منالسكان في الخلية والأفلام immunoanalysis 26،27،28. وقد تم تلفيق الأفلام مركب للتطبيقات هندسة الأنسجة باستخدام الكهربي الجينات، التي تحتوي على مكونات مثل مع هيدروكسيباتيت لعملية زرع العظام 29.

في مظاهرات لدينا من biofabrication، لقد أظهرنا كل من التفاعلات بين المكونات البيولوجية وعبر واجهة الحيوي الالكترونية لتكون قابلة للتطبيق على حد سواء، وهذا يجلب إلى التوصل إلى احتمال دمج جميع أنواع التفاعلات لأداء متطور في إرسال الإشارات على الرقاقة. وفقا لذلك، قد biofabrication تسهيل تصنيع الأجهزة مع انخفاض "أحجام ميزة الحد الأدنى" وذلك مباشرة متابعة للتطورات المتسارعة في microfabrication، وغالبا ما بدافع من الالكترونيات الاستهلاكية. وهذا هو، ربما القادم الجيل القادم من الأجهزة في الواقع تشمل المكونات البيولوجية عطوب التي تقدم الجمعية الطبيعة الرائعة وقدرات التعرف على هيئة السلع التموينية طول أصغرليه من صنع الإنسان النظم. نحن نتصور المدى القريب التطبيقات في الأجهزة التحليلية، وأجهزة الاستشعار البيئية، والأجهزة التي تزرع في الجسم حتى حيويا.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

ونحن نعترف تمويلا من اثناء اجتماع السلطة للحصول على الدعم من هذه المخطوطة من وONR، اثناء اجتماع السلطة، وجبهة الخلاص الوطني للحصول على دعم جزئي من البحوث الأساسية.

Materials

Name of the component Company Catalogue number
Power Supply Keithley SourceMeter 2400
Three electrode potentiostat CH Instruments Potentiostat/Galvanostat 600D
RE-5B Ag/AgCl Reference Electrode with Flexible Connector BASi MF-2052
Gold coated silicon wafer, 500um Si, 12nM Cr, 120nM Au, SiO2 for insulation custom fabricated  
Indium Tin oxide coated glass slide, rectangular, 8-12 ohm resist Sigma-Aldrich 578274
Platinum sheet/foil (0.002 in) Surepure Chemetals 1897
Slim Line 2″ Alligator Clips RadioShack 270-346
Multi-Stacking Banana Plug Patch Cord TSElectronic B-36-02
B-24-02
SYLGARD 184 silicone elastomer kit Dow Corning NC9020938
From Fischer
Fluorescecence stereomicroscope Olympus MVX10 MacroView
cellSens Standard Olympus version 1.3

Table 1. Electrodeposition and fluorescence visualization equipment.

Name of the reagent Company Catalogue number
Chitosan, medium molecular weight Sigma-Aldrich 448877
Hydrochloric Acid, ARISTAR. ACS, NF, FCC Grade VWR BDH3030
Sodium Hydroxide, Solution. 10.00N VWR VW3247
Alginic acid, sodium salt Sigma-Aldrich 180947
Multifex-MM Precipitated
Calcium Carbonate, 70nm particles
Speciality
Minerals Inc.
100-3630-3

Table 2. Chitosan and alginate solution reagents.

Name of the reagent Company Catalogue number
Calcium chloride, dihydrate J.T. Baker 0504
Sodium Chloride, Certified
ACS crystalline
Fischer
Scientific
S271
Potassium Phosphate Monobasic, anhydrous Sigma-Aldrich P9791
Potassium Phosphate Dibasic, anhydrous Sigma- Aldrich P3786
Phosphate Buffered Saline Sigma-
Aldrich
P4417

Table 3. Other solution components and buffer reagents.

Name of the reagent Company/Source Catalogue number
Glucose oxidase from aspergillus niger Sigma-Aldrich G2133
Tyrosinase from mushroom Sigma-Aldrich T3824
LB broth, Miller (granulated) Fischer Scientific BP9723-2
“AI2-Synthase” (HGLPT) Lab stock 16  
W3110 wildtype cells Lab stock 30  
MDAI2 + pCT6-lsrRampr + pET-dsRedkanr cells Lab stock 30  
FluoroSpheres: 1μm diameter, Ex/Em: 505/515 Invitrogen F8765
5-(and-6)-carboxyrhodamine 6G succinimidyl ester, Ex/Em: 525/560 Invitrogen C-6157
DyLight antibody labeling kit, 405 Thermo Scientific PI-53020

Table 4. Enzymes, cells, and other functionalization reagents.

References

  1. Luo, X. In situ generation of pH gradients in microfluidic devices for biofabrication of freestanding, semi-permeable chitosan membranes. Lab Chip. 10, 59-65 (2010).
  2. Javvaji, V., Baradwaj, A. G., Payne, G. F., Raghavan, S. R. Light-Activated Ionic Gelation of Common Biopolymers. Langmuir. 27, 12591-12596 (2011).
  3. Dowling, M. B., Javvaji, V., Payne, G. F., Raghavan, S. R. Vesicle capture on patterned surfaces coated with amphiphilic biopolymers. Soft Matter. 7, 1219-1226 (2011).
  4. Liu, Y. Biofabrication to build the biology-device interface. Biofabrication. 2, 022002-022002 (2010).
  5. Yang, X., Shi, X. -. W., Liu, Y., Bentley, W. E., Payne, G. F. Orthogonal Enzymatic Reactions for the Assembly of Proteins at Electrode Addresses. Langmuir. 25, 338-344 (2008).
  6. Cheng, Y. In situ quantitative visualization and characterization of chitosan electrodeposition with paired sidewall electrodes. Soft Matter. 6, 3177-3183 (2010).
  7. Cheng, Y. Mechanism of anodic electrodeposition of calcium alginate. Soft Matter. 7, 5677-5684 (2011).
  8. Wu, L. -. Q. Spatially Selective Deposition of a Reactive Polysaccharide Layer onto a Patterned Template. Langmuir. 19, 519-524 (2003).
  9. Wu, H. C. Biofabrication of antibodies and antigens via IgG-binding domain engineered with activatable pentatyrosine pro-tag. Biotechnol. bioeng. , 103-231 (2009).
  10. Shi, X. -. W. Reagentless Protein Assembly Triggered by Localized Electrical Signals. Adv. Mater. 21, 984-988 (2009).
  11. Shi, X. -. W. Electroaddressing of Cell Populations by Co-Deposition with Calcium Alginate Hydrogels. Adv. Funct. Mater. 19, 2074-2080 (2009).
  12. de Vos, P., Faas, M. M., Strand, B., Calafiore, R. Alginate based microcapsules for immunoisolation of islet cells. Biomaterials. 27, 5603-5617 (2006).
  13. Jayakumar, R., Prabaharan, M., Sudheesh Kumar, P. T., Nair, S. V., Tamura, H. Novel chitin and chitosan nanofibers and their biomedical applications. Biotechnol. Adv. 29, 322-337 (2011).
  14. Cheng, Y. Electroaddressing Functionalized Polysaccharides as Model Biofilms for Interrogating Cell Signaling. Adv. Funct. Mater. 22, 519-528 (2012).
  15. Meyer, W. L. Chitosan-coated wires: conferring electrical properties to chitosan fibers. Biomacromolecules. 10, 858-864 (2009).
  16. Fernandes, R., Roy, V., Wu, H. -. C., Bentley, W. E. Engineered biological nanofactories trigger quorum sensing response in targeted bacteria. Nat. Nanotechnol. 5, 213-217 (2010).
  17. Yi, H. Biofabrication with chitosan. Biomacromolecules. 6, 2881-2894 (2005).
  18. Liba Benjamin, D., Aranha India, V., Kim, E., Payne Gregory, F. ACS Symposium Series Ch. 4. Renewable and Sustainable Polymers. 1063, 61-71 (2011).
  19. Koev, S. T. Chitosan: an integrative biomaterial for lab-on-a-chip devices. Lab Chip. 10, 3026-3042 (2010).
  20. Luo, X. Programmable assembly of a metabolic pathway enzyme in a pre-packaged reusable bioMEMS device. Lab Chip. 8, 420-430 (2008).
  21. Spinks, G. M. A novel “dual mode” actuation in chitosan/polyaniline/carbon nanotube fibers. Sensor Actuat B-Chem. 121, 616-621 (2007).
  22. Yi, H. Patterned assembly of genetically modified viral nanotemplates via nucleic acid hybridization. Nano letters. 5, 1931-1936 (2005).
  23. Kim, E. Redox-cycling and H2O2 generation by fabricated catecholic films in the absence of enzymes. Biomacromolecules. 12, 880-888 (2011).
  24. Xie, Y., Xu, B., Gao, Y. Controlled transdermal delivery of model drug compounds by MEMS microneedle array. Nanomedicine. 1, 184-190 (2005).
  25. Odaci, D., Timur, S., Telefoncu, A. A microbial biosensor based on bacterial cells immobilized on chitosan matrix. Bioelectrochemistry. 75, 77-82 (2009).
  26. Selimoglu, S. M., Elibol, M. Alginate as an immobilization material for MAb production via encapsulated hybridoma cells. Crit Rev Biotechnol. 30, 145-159 (2010).
  27. Braschler, T., Johann, R., Heule, M., Metref, L., Renaud, P. Gentle cell trapping and release on a microfluidic chip by in situ alginate hydrogel formation. Lab Chip. 5, 553-559 (2005).
  28. Yang, X. In-Film Bioprocessing and Immunoanalysis with Electroaddressable Stimuli-Responsive Polysaccharides. Adv. Funct. Mater. 20, 1645-1652 (2010).
  29. Cheong, M., Zhitomirsky, I. Electrodeposition of alginic acid and composite films. Colloid Surface A. 328, 73-78 (2008).
  30. Tsao, C. Y., Hooshangi, S., Wu, H. C., Valdes, J. J., Bentley, W. E. Autonomous induction of recombinant proteins by minimally rewiring native quorum sensing regulon of E. coli. Metab. Eng. 12, 291-297 (2010).

Play Video

Cite This Article
Gordonov, T., Liba, B., Terrell, J. L., Cheng, Y., Luo, X., Payne, G. F., Bentley, W. E. Bridging the Bio-Electronic Interface with Biofabrication. J. Vis. Exp. (64), e4231, doi:10.3791/4231 (2012).

View Video