Summary

Étiquetage immunologique post-enrobage des protéines synaptiques dans l'hippocampe cultures Slice

Published: April 03, 2013
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Summary

La localisation et la distribution des protéines fournissent des informations importantes pour la compréhension de leurs fonctions cellulaires. La résolution spatiale supérieure de la microscopie électronique (EM) peut être utilisé pour déterminer la localisation subcellulaire d'un antigène donné à la suite immunohistochimie. Pour les tissus du système nerveux central (SNC), la préservation de l'intégrité structurelle tout en maintenant antigénicité a été particulièrement difficile en EM études. Ici, nous adoptons une procédure qui a été utilisée pour préserver les structures et les antigènes du système nerveux central d'étudier et de caractériser les protéines synaptiques dans l'hippocampe de rat neurones pyramidaux CA1.

Abstract

Immunoélectromicroscopie est un outil puissant pour étudier les molécules biologiques au niveau subcellulaire. Anticorps couplés à des marqueurs denses aux électrons tels que l'or colloïdal peut révéler la localisation et la distribution des antigènes spécifiques dans différents tissus 1. Les deux techniques les plus utilisées sont des techniques de pré-enrobage et de post-intégration. En pré-enrobage immuno-microscopie électronique (EM) techniques, le tissu doit être perméabilisées pour permettre la pénétration d'anticorps avant d'être embarqué. Ces techniques sont idéales pour la préservation des structures, mais la faible pénétration de l'anticorps (souvent, seuls les quelques premiers micromètres) est un inconvénient considérable 2. Les méthodes de marquage post-enrobage peut éviter ce problème, parce que l'étiquetage se fait sur des coupes de tissus fixes où les antigènes sont plus facilement accessibles. Au fil des ans, un certain nombre de modifications ont permis d'améliorer les méthodes de post-enrobage à améliorer l'immunoréactivité et de préserver l'ultrastructure <sup> 3-5.

La fixation des tissus est un élément essentiel des études EM. Fixateurs chimiquement réticuler les macromolécules pour verrouiller les structures tissulaires en place. Le choix du fixateur affecte non seulement la préservation mais aussi structurelle antigénicité et le contraste. Tétroxyde d'osmium (OsO 4), le formaldéhyde et le glutaraldéhyde ont été les fixateurs standards depuis des décennies, y compris pour le système nerveux central (SNC) des tissus qui sont particulièrement exposés à des dommages structurels au cours de traitement chimique et physique. Malheureusement, OsO 4 est très réactif et a été montré pour masquer les antigènes 6, résultant en mauvais étiquetage et insuffisante. Des approches alternatives pour éviter la fixation chimique comprennent le gel des tissus. Mais ces techniques sont difficiles à réaliser et nécessitent des instruments coûteux. Pour résoudre certains de ces problèmes et d'améliorer l'étiquetage des tissus du système nerveux central, Phend et al. remplacé OsO 4 avec de l'acétate d'uranyle (UA) et tannique acid (TA), et introduit avec succès des modifications supplémentaires pour améliorer la sensibilité de détection de l'antigène et de préservation de structure dans le cerveau et les tissus de la moelle épinière 7. Nous avons adopté cette osmium sans post-intégration méthode aux tissus du cerveau de rat et d'optimiser la technique de marquage immunologique pour détecter et étudier les protéines synaptiques.

Nous présentons ici une méthode pour déterminer la localisation ultrastructurale des protéines synaptiques dans l'hippocampe de rat neurones pyramidaux CA1. Nous utilisons organotypiques d'hippocampe en culture tranches. Ces tranches de maintenir le circuit trisynaptic de l'hippocampe, et sont donc particulièrement utiles pour l'étude de la plasticité synaptique, un mécanisme largement considéré comme sous-tendent l'apprentissage et la mémoire. Organotypiques de coupes d'hippocampe postnatales jour 5 et 6 souris / rat chiots peuvent être préparés comme décrit précédemment 8, et sont particulièrement utiles pour effet de choc aiguë ou surexpriment les protéines exogènes. Nous avons déjà utilisé ce protocole pour characterize neurogranine (Ng), une protéine spécifique des neurones avec un rôle critique dans la régulation de la fonction synaptique 8,9. Nous avons aussi utilisé pour caractériser la localisation ultrastructurale de la calmoduline (CaM) et Ca 2 + / CaM-dépendante protéine kinase II (CaMKII) 10. Comme le montrent les résultats, ce protocole permet une bonne préservation ultrastructurale des épines dendritiques et d'étiquetage efficace de Ng pour aider à caractériser sa distribution dans la colonne 8. En outre, la procédure décrite ici peut avoir une large applicabilité dans l'étude de nombreuses autres protéines impliquées dans les fonctions neuronales.

Protocol

1. Fixation Fixateurs sont cancérigènes, porter des gants et manipuler les fixateurs dans une hotte. Sauf indication contraire, toutes les incubations sont effectuées sur la glace et toutes les solutions doivent être filtrés avant utilisation. Utilisez la microscopie électronique réactifs de qualité. Jour 1 Après conditions expérimentales (par exemple, injection virale, le traitement médicamenteux), placez la membr…

Representative Results

La figure 2B représente un exemple de la distribution des molécules endogènes Ng à épines dendritiques des neurones pyramidaux CA1 hippocampique. Grilles de nickel avec ultrafines (60 nm) tissus contenant la région CA1 de l'hippocampe (comme on le voit sur ​​la figure 2A) étaient couverts de 1% T / PB, 50 mM de glycine, puis bloquées avec de la BSA 2,5% et 2,5% de sérum avant l'incubation avec des anticorps anti Ng-anticorps. Après lavage avec T / PB, les grilles o…

Discussion

Dans ce protocole, nous avons adopté la méthode Phend et Weinberg pour le cerveau et les tissus de la moelle épinière pour étudier épines dendritiques dans les cultures rat tranche d'hippocampe. Épines dendritiques dans l'hippocampe CA3-CA1 région sont délicates structures contenant une grande variété de protéines qui jouent un rôle important dans la régulation des fonctions neuronales. La méthode présentée permet une approche équilibrée pour atteindre antigénicité accrue tout en conservant …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs tiennent à remercier Matthew Florence pour la préparation des cultures de tranches d'hippocampe. Ce travail a été soutenu par des subventions de l'Institut national américain sur le vieillissement et l'Association Alzheimer NZG.

Materials

NAME OF REAGENT COMPANY CATALOG NUMBER
60 x 15 mm polystyrene Petri dish Falcon 351007
Disposable scalpel EXELINT 29552
Cell culture inserts Millipore PICM03050
10 nm Goat-anti-rabbit gold Electron Microscopy Sciences 25108
Anti-Neurogranin antibody Millipore AB5620
100% Picric acid Electron Microscopy Sciences 19550
96% Paraformaldehyde Acros Organics AC41678-0030
25% Glutaraldehyde (EM grade) Sigma G5882
Uranyl acetate Electron Microscopy Sciences 22400
p-Phenylenediamine Sigma P6001
Platinum (IV) chloride Sigma 379840
Tannic acid Electron Microscopy Sciences 21710

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Cite This Article
Zhong, L., Brown, J. C., Wells, C., Gerges, N. Z. Post-embedding Immunogold Labeling of Synaptic Proteins in Hippocampal Slice Cultures. J. Vis. Exp. (74), e50273, doi:10.3791/50273 (2013).

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