Summary
Controllo dell'ossigeno microfluidica conferisce più di una semplice comodità e velocità su camere ipossiche per esperimenti biologici. Soprattutto quando attuata tramite diffusione attraverso una membrana, ossigeno microfluidica può fornire liquido simultanea e modulazioni di fase gas a livello di microscala. Questa tecnica permette di esperimenti multi-parametriche dinamiche critica per lo studio isolotto fisiopatologia.
Abstract
Ossigenazione simultanea e monitoraggio di glucosio stimolo-secrezione di fattori di accoppiamento in una singola tecnica è fondamentale per la modellazione stati patofisiologici di isolotto ipossia, soprattutto in ambienti di trapianto. Tecniche camera ipossiche standard non possono modulare sia stimolazioni Allo stesso tempo, né fornire un monitoraggio in tempo reale dei fattori di accoppiamento stimolo-secrezione di glucosio. Per far fronte a queste difficoltà, abbiamo applicato una tecnica microfluidica multistrato di integrare sia acqueo e modulazioni in fase gas tramite una membrana di diffusione. Questo crea un panino stimolazione attorno agli isolotti microscaled all'interno del polidimetilsilossano trasparente periferica (PDMS), consentono il controllo dei suddetti fattori di accoppiamento tramite microscopia a fluorescenza. Inoltre, l'ingresso del gas è controllato da una coppia di microdispensers, fornendo quantitativi, modulazioni sub-minute di ossigeno tra 0-21%. Questo ipossia intermittente viene applicato a indagare su un nuovo fenomeno di isolat precondizionamento. Inoltre, armati di microscopio multimodale, siamo stati in grado di guardare il calcio dettagliate e dinamiche dei canali K ATP durante questi eventi di ipossia. Noi immaginiamo ipossia microfluidica, in particolare questo simultanea tecnica a due fasi, come un valido strumento per studiare isole così come molti ex vivo tessuti.
Introduction
Ipossia dinamica è importante in biologia, in particolare per trapianti di isole
Ipossia dinamico è un importante fisiologica così come parametro fisiopatologico in molti tessuti biologici. Variazione ossigeno, per esempio, è un segnale di sviluppo potente nell'angiogenesi. Inoltre, i modelli spaziali e temporali in ipossia modulano HIF1-alfa e giocano un ruolo in malattie come il cancro del pancreas. L'ipossia è anche un fattore di confusione che interessano gli esiti del trapianto di isole pancreatiche. Recentemente, temporalmente oscillazioni di ipossia, o ipossia intermittente (IH) hanno dimostrato benefici in "precondizionamento" isolotti 1. Tuttavia, gli effetti di ipossia sia statici e transitori su isolotto fisiologia devono ancora essere ben compreso o studiato, principalmente a causa della mancanza di strumenti adeguati per controllare microambiente di isolotto.
Isolotti sono ben vascolarizzata in vivo
Isole pancreatiche sono 50-400 M aggregati sferoidali di cellule endocrine, comprese cellule beta e alfa-cellule che sono responsabili per l'omeostasi del glucosio; 56. Quando isolotti sono esposti a stimolatorio glucosio nel sangue, l'assorbimento e la glicolisi piombo per la produzione di ATP, che apre potassio ATP-sensibili (K ATP) canali e risultati in ingresso di calcio che innesca l'esocitosi di granuli di insulina. L'ossigeno è importante per guidare questo processo fortemente metabolico e la secrezione di insulina è significativamente influenzato dalla dinamica del flusso di sangue e ossigeno in aggiunta a gradienti di glucosio. Isolotti facilmente eseguire questa risposta di glucosio-insulina in vivo in quanto sono altamente perfusi nel pancreas, ciascuno entro una lunghezza di cella da un vaso capillare. Tuttavia, la fitta rete di capillari intraislet viene rimosso dalla collagenasi durante isolotto di isolamento 2,3. Di conseguenza, sia l'ossigeno e nutrienti forniture sono vincolati ad un perimetro 100 micron a causa di limitazioni di diffusione.
successo step "> Le tecniche attuali sono limitate a ricreare isolotto microambienteOssigeno e glucosio dinamiche nativi Ricreare di isole, la chiave per modellare condizioni fisiologiche e fisiopatologiche, è difficile da raggiungere con le camere ipossiche standard che richiedono il flusso elaborata e privi di monitoraggio continuo delle funzioni insulari. Inoltre, le terapie di trapianto per il diabete di tipo I espongono isole isolate all'ipossia nel sistema portale epatico 4 che ha una più bassa pO 2 (<2%, 5-15 mmHg) rispetto al pancreas fisiologica (5,6%, 40 mmHg). Post-trapianto, gli innesti isole prendono due o più settimane da rivascolarizzati. È stato dimostrato che l'esposizione ipossico altera glucosio-insulina meccanismo di accoppiamento di isolotto. Tra i fattori di accoppiamento stimolo-secrezione, segnalazione di calcio, potenziali mitocondriali, e di insulina cinetica può essere facilmente monitorato mediante microfluidica. Il nostro precedente tecnica di microfluidica dimostrato questo remonitoraggio al-tempo con una precisa modulazione del microambiente acquosa intorno singolo isolotto 5,6. Tuttavia, la quantificazione di danno ipossico di isolotto è ostacolata dalla mancanza di tecniche di stimolazione e il monitoraggio simultaneo. Pertanto, la combinazione di controllo microfluidica di ossigeno e di monitoraggio isolotto in grado di migliorare gli studi di ipossia isolotto.
Microfluidics possono ricreare e modulare il microambiente acqueo e ossigeno
La tecnica standard per gli studi dei tessuti e la cultura ipossia è stata basata su camere ipossiche. In generale, le camere ipossiche forniscono concentrazioni singole di ossigeno con tempi di equilibrazione a ~ 10-30 min, incompatibili con minuti in scala ipossia dinamico. Due recenti studi utilizzati piccole camere su misura per l'esposizione ipossia intermittente sul complesso topi, con risultati contrastanti sulla glucosio-indotta risposta insulinica 7,8. Tenete a mente che l'intero livello animale, l'ossigeno respirato non è direttamente tranprevisto per isolotto capillare pO 2, a causa di controlli nel sistema respiratorio. Inoltre, questi studi non hanno livelli di ossigeno standardizzati, né forniscono misure in tempo reale a livello tissutale di isolotti.
D'altra parte, microfluidica ossigeno possono superare queste limitazioni controllando ossigeno attraverso reti di canali gas. Inoltre, microfluidica è compatibile con imaging dal vivo durante la modulazione di ossigeno, una prodezza momento non è possibile con le camere ipossiche standard. Un certo numero di questi nuovi approcci microfluidica utilizzare la permeabilità ai gas di polidimetilsilossano a dissolversi concentrazioni di ossigeno in microcanali che scorrono media negli cellule bersaglio 9-14. Questi dispositivi hanno integrato anche più discrete concentrazioni di ossigeno, sensori di ossigeno fluorescenza basato, e persino la generazione di ossigeno chimico on-chip.
Microfluidica basata solvatazione liquidi hanno difficoltà a mantenere stabili, continue sfumature come it dipende miscelazione convettiva che è sensibile alle condizioni di flusso. In confronto, la tecnica usata qui si concentra sulla riduzione percorso di diffusione di apporto di ossigeno. La solvatazione gas e flusso di taglio sono eliminati diffondendo direttamente ossigeno attraverso una membrana seminati con cellule o tessuti insulari. Questo elimina le microfluidica aggiuntivi necessari per controllare solvatazione e impedisce shear stress inutile per le isole, che a sua volta può innescare il rilascio di insulina. Questa piattaforma è stata utilizzata per dimostrare le specie reattive dell'ossigeno (ROS) up-regulation agli estremi sia iperossici e ipossia (2-97% O 2) in coltura cellulare 1,15. A causa della fornitura diretta di ossigeno e la rimozione di flusso di taglio, la nostra piattaforma basata sulla diffusione fornisce la soluzione ottimale per studiare microfluidica isolotto ipossia.
Stimolo e monitoraggio multimodale
Microfluidica basata Diffusion-porta anche vantaggi aggiuntivi quando adattato per lo studio mi dell'isolottocrophysiology. Utilizzando una membrana come barriera di diffusione, il liquido può essere isolata dalle modulazioni di ossigeno, permettendo controlli di stimolazioni glucosio acquose indipendentemente da stimoli ipossici. Questo crea una stimolazione simultanea sandwich che spazialmente pin-punti di consegna per le isole. Inoltre, poiché il gas è temporalmente modulata tramite microiniettori computerizzati, possiamo modulare la concentrazione di ossigeno 21-0% digitalmente con il tempo transitorio meno di 60 sec. I controlli dinamici del microambiente ossigeno e glucosio al microscopio permettono un protocollo multimodale in tempo reale che non sarebbe possibile o straordinariamente ingombrante utilizzando camere ipossiche standard. Utilizzando questo dispositivo, segnalazione del calcio (Fura-AM), potenziali mitocondriali (Rodamina 123), e la cinetica dell'insulina (ELISA) sono stati monitorati per fornire un quadro completo della risposta dinamica glucosio-insulina sotto ipossia.
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Protocol
1. Preparare le isole di topo
- Sezionare topi C57BL / 6 e isolare isolotti da digestione con collagenasi e separazione gradiente di densità Ficoll. (Fare riferimento ad articoli Giove riferimento in 2,3).
- Incubare isolotti in mezzo RPMI-1640 contenente 10% FBS, 1% di penicillina / streptomicina, e 20 mM HEPES in piastre Petri (37 ° C, 5% CO 2). Post-isolamento, la cultura isolotti per 24 ore prima di utilizzare negli esperimenti. Utilizzare le isole entro 1-2 giorni per garantire risultati coerenti.
2. Rendere la piattaforma Microfluidic
- Generare le geometrie microstruttura sulle fotomaschere di trasparenza per ogni strato del dispositivo: 1) entrata e di uscita, 2) strato microfluidica glucosio con camera di perfusione (8 mm di diametro x 3 millimetri, 150 ml), 3) 200 micron membrana con pozzetti (500 micron di diametro, 100 micron di profondità), e 4) strati microfluidici gas.
- Per fabbricare il livello di ingresso e di uscita, versare degassificate, PDMS premiscelati aun'altezza di 1,5 mm di un piatto vuoto Petri e di indurimento a 80 ° C per 2 h. Punch 2 millimetri di diametro di ingresso / uscita porti.
- Per fabbricare lo strato microfluidica glucosio, girare due strati di 350 um SU8-2150 per formare un unico strato 700 micron su un 4 in wafer di silicio.
- Esporre luce UV attraverso la fotomaschera opportuno trasferire modello microcanali sul SU8 dopo lo sviluppo, producendo un 700 micron maestro di altezza.
- Versare sgassato, PDMS premiscelati su questo maestro ad un'altezza di 3 mm e curare a 80 ° C per 2 ore. Tagliare questo PDMS a forma con una lama di rasoio.
- Punzone 2 mm di diametro porte di ingresso / uscita e la camera di 8 mm di diametro.
- Per fabbricare la membrana 200 micron con pozzetti, girare SU8-2100-100 micron. Applicare lo stesso UV-litografia per trasferire i modelli di pozzetti su questo 100 micron maestro di altezza.
- Spin degassificato, premiscelati PDMS su questo maestro a 900 rpm per 30 sec e cura a 80 ° C per 10 min. Spisecondo strato na sulla parte superiore del primo utilizzando le stesse condizioni, con un conseguente micron membrana PDMS 200 contenente modelli di micropozzetti.
- Punch 2 millimetri di diametro porte di ingresso / uscita attraverso questa membrana
- Per fabbricare il livello microfluidica gas, girare SU8-2100-100 micron. Applicare lo stesso UV-litografia per trasferire i modelli microfluidica gas su questa 100 micron maestro di altezza.
- Versare sgassato, PDMS premiscelati su questo maestro ad un'altezza di 1,5 mm e curare a 80 ° C per 2 ore. Tagliare il PDMS per modellare con una lama di rasoio.
- Punch 2 millimetri di diametro porte input / output attraverso questo strato
- Per legare gli strati multipli, prepararli mediante pulitura con nastro adesivo, esponendo a corona arco, e poi allineare manualmente nel seguente ordine.
- Fissare la membrana allo strato inferiore con gas micropozzetti rivolto verso l'alto.
- Fissare la microfluidica glucosio in cima alla membrana micropozzetti.
- Incollare l'ingresso e l'uscita strato on cima molto, incapsulando l'intero gruppo.
- Rinforzare il legame con l'aggiunta di 1 kg di peso in cima e cottura a 100 ° C per 3 ore.
- Prova di tenuta del dispositivo completato caricando acqua nello strato acquoso, poi immergendo l'intero dispositivo sotto acqua. Poi, il flusso d'aria attraverso lo strato di gas con una siringa vuota.
- Sterilizzare dispositivi a prova di perdita con etanolo al 70% attraverso lo strato acquoso quindi lavare con tampone PBS, in cui il dispositivo viene conservata a 4 ° C fino all'utilizzo.
3. Setup microdispenser
- Ottenere 2 microdispensers, 5 V e 20 V di alimentazione DC, e una scheda I / O digitale per costruire la miscelazione di ossigeno e la configurazione di consegna.
- Collegare i cavi di controllo delle microdispensers 'alle unità driver inclusi.
- Collegare i piloti di I / O digitali pensione porte corrispondenti ai controlli LabVIEW.
- Collegare gli alimentatori 5 V e 20 V corrispondenti contatti sul uni unitàts.
- Collegare l'I / O digitale a un computer portatile per eseguire codice LabVIEW per il controllo dei gas (allegato).
- Collegare una microdispenser all'azoto mentre un'altra all'aria compressa, sia con 5% di CO 2. Impostare entrambi i gas a 2 psi. Collegare le uscite dei distributori "in un incrocio a T prima di entrare nel dispositivo microfluidica.
- Utilizzando un dispositivo di tenuta collaudata, caratterizzare la risposta transitoria di modulazione ossigeno da ciclismo le microdispensers tra 5-21% di ossigeno, mentre la misurazione dell'ossigeno disciolto in acqua con un sensore a fibra ottica ossigeno (vedere inventario e risultati rappresentativi).
4. Impostazione al Microscopia
- Montare il dispositivo alla fase riscaldata sul microscopio invertito.
- Collegare 0% e 21% O 2 gas al dispositivo e calibrare con il sensore di ossigeno.
- Collegare la porta di uscita della microfluidica glucosio ad un collettore di frazioni.
- Preparare il bicarbonato di Krebs Ringertampone (KRB): 129 mM NaCl, 5 mM NaHCO 3, 4.7 mM KCl, 1,2 mM KH 2 PO 4, 1 mM CaCl 2 · 2H 2 O, 1,2 MgSO mm 4 · 7H 2 O, 10 mM HEPES pH 7,35-7,40 , 2 mM glucosio basale, e 5% FBS.
- Preparare due soluzioni tampone contenente 2 mM e glucosio mm 14, rispettivamente, in 50 ml provette coniche bagnate da 37 ° C a bagnomaria.
- Collegare una pompa peristaltica per disegnare tampone a 250 ml / min nel tubo. Scorrere il tubo su una piastra riscaldante a 37 ° C prima di entrare nel dispositivo microfluidica.
- Per macchiare gli isolotti, aggiungere Fura-02:00 in DMSO e Rh123 in 100% etanolo per 2 ml di KRB per raggiungere concentrazioni di colorante finali di 5 micron e 2,5 micron, rispettivamente.
- Raccogliere isolotti con una pipetta 10 microlitri e incubare in coloranti per 30 min a 37 ° C.
- Caricare circa 20 isolotti nel dispositivo attraverso l'ingresso microcanali glucosio. Orientare gli isolotti nella camera di adescamento tampone dalla presa di nuovo in tha ingresso.
- Profumato gli isolotti in un tampone per 10 minuti per lavare via coloranti in eccesso.
5. Esecuzione del ossigeno e glucosio stimolazione simultanea
- Erogare un impulso di stimolazione con glucosio 5 min di base definita da KRB2, seguito da 15 min di stimolazione 14 mM, poi lavare per 15 minuti in KRB2.
- Record 340/380 nm di eccitazione lunghezza d'onda per Fura-2 e 534 di emissione per Rh123.
- Effettuare misure di un polso normale (normossiche 14 mm) prima di ogni esperimento.
- Per la modulazione di ossigeno (ipossia / ipossia intermittente), si applicano solo il flusso del buffer durante la stimolazione e fasi di lavaggio e di assenza di flusso in altre fasi, per ridurre al minimo i disturbi convettivi.
- Raccogliere effluenti da presa di glucosio a intervalli di 1 min per ELISA insulina.
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Representative Results
Al centro di questa tecnica isolotto ipossia è la capacità di modulare la stimolazione fase acquosa e gassosa nella stessa camera microfluidica con transienti minuto scala. Figura 1 è un risultato rappresentativo della a) doppi stimoli e b) modulazioni veloci misurati all'interno della camera isolotto. Modulazione acquosa, indicato dalla introduzione di fluoresceina nella camera, raggiunge l'equilibrio in tre o quattro minuti dalla miscelazione. Inoltre, l'ossigeno può essere un passo 5-21% con transienti veloci, consentendo ciclismo di ossigeno con periodi più brevi 2 min. Diverse profondità ciclismo e frequenze possono anche essere realizzati come illustrato nella Figura 2.
Quando questo riciclaggio è applicata per creare ipossia intermittente alle isolette, si possono osservare i vantaggi di precondizionamento isolotti contro ipossia, rispetto ad un normale, impulso normossia, Figura 3a. Perché flusso-le del calcio intracellulare mechanis segnalazionem secrezione di insulina-viene monitorato in tempo reale, effetti dell'ipossia e IH possono essere osservati nel superamento e l'oscillazione smorzamento dei transitori di calcio, Figura 3b. Questi sono parametri importanti associati con canali K ATP suggerito di controllare il processo di precondizionamento. Inoltre, collegamento di mitocondri al metabolismo e l'ipossia può essere visualizzato attraverso il monitoraggio dei potenziali mitocondriali utilizzando Rh123. Infine, la raccolta di effluenti microfluidica consente ELISA della quantità totale di insulina. Calcio, il potenziale mitocondriale, e l'insulina sono tre parametri che iniziano a costruire una visione multimodale della risposta glucosio-insulina sotto transitori di ipossia, figura 3c.
Figura 1. Simultanea ossigeno e glucosio stimolazioni. (a) i controlli statici. Top: introduzione camera di FITC molecola a 250 ml / min stabilizza nel raggio di 3 minuti di tempo di miscelazione. In basso: controllo dei gas prevede la consegna stabile di 5, 10, e il 21% di ossigeno a livello della membrana (b) il controllo temporale.. Bicicletta di ossigeno tra 5-21% è possibile con 1 min periodo misurato sia nella erogazione di gas (diffusa) e la superficie di micropozzetti (disciolto).
Figura 2. Dispositivo microfluidico può anche generare altri profili ossigeno. Differenti profili IH possono essere ottenuti variando la profondità (5-10-15%), così come i periodi (3-6-1 min) della bicicletta tramite miscelazione gas dalle microiniettori computerizzati .
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Figura 3. IH condizionato isolotti hanno migliorato la risposta all'ipossia. (A) Panoramica Rappresentante di precondizionamento utilizzando IH, per un totale di 30 minuti di esposizione al 5%, mostrando risposta ipossica maggiore rispetto a impulsi normossiche (stesso lotto isolotto in un esperimento precedente). Altri 10 minuti di successiva ipossia conserva ancora precondizionamento. (B) confronto Overlaid di normossia media, ipossia, e le risposte ipossiche precondizionate. Inserto mostra tracce di rappresentanza con recupero del comportamento di oscillazione (c) multimodale Fura-2, insulina, e Rh123 risposte per diversi ossigeno e condizioni chimiche:. Il 21% di ossigeno, 5% di ossigeno, precondizionamento (P +5%), diazossido (D + 5%), e 5HD (5HD + P +5%). Diazossido è coerente con il precondizionamento, mentre 5HD nega i benefici del precondizionamento aprendo e blocchizzazionecanali ng KATP, rispettivamente. ; * P <0.05, ** p <0.01, *** 5% vs 21%, 5% vs P +5%, D +5% vs 5HD + P +5%: t-test a due code p <0,001.
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Discussion
Le molteplici modalità integrate in questa tecnica isolotto ipossia presenti diversi punti notati qui per la risoluzione dei problemi. In primo luogo le isolette isolate continuano a degradare e disintegrarsi nella cultura a causa di enzimi digestivi dalle cellule acinose. La standardizzazione esperimenti per 1-2 giorni dopo l'isolamento delle isole è quindi fondamentale per ottenere risultati coerenti. In secondo luogo, il flusso acquoso è stato fermato durante l'ipossia e ipossia intermittente per prevenire la clearance convettiva al confine tra flusso laminare e diffusione. Questo sembra limitare la durata di isolotto precondizionamento. Integrazione futura di una borsa del gas nel canale acquoso può eliminare questa eliminazione secondaria pur consentendo rapide modulazioni gas a membrana. In terzo luogo, durante il caricamento delle isole, il tubo acquosa deve essere ricollegato con cura in ordine inverso (uscita poi Inlet) per evitare di intrappolare bolle d'aria. Infine, il dispositivo futuro può essere aumentata con un distributore microfluidica ventaglio-out, per aiutare distribuzionetE cluster di isolotti sull'intera camera, in fondo alla quale può essere modellato con una serie di tasche Trapper. Questa distribuzione microfluidica in aggiunta alla matrice tasca creerebbe una matrice posizionale di isolotti per esperimenti avanzati.
Prima di questo microfluidica tecnica isolotto ipossia, le modulazioni ipossia veloce intermittenti sono stati raggiunti in 1-3 cicli minuti utilizzando piccole camere ipossiche personalizzato con alto flusso di gas in pressione. Tuttavia, questi possono essere utilizzati solo su animali interi e non a livello di singola isoletta. Oltre l'incertezza del livello ipossia effettivamente realizzato nel pancreas tutta animali (dopo equilibrio respiratorio) c'è anche l'impossibilità di sondare risposta di glucosio-insulina in tempo reale, microambienti ben controllati. In confronto, entrambe le stimolazioni acquosi e gas sono controllati a scale temporali minuti nella nostra microfluidica. Tali modulazioni sono montati direttamente al microscopio for monitoraggio multiparametrico. Prima della nostra tecnica, ripetibile e ben caratterizzato isolotto condizione non e 'stato realizzabile. Ex tessuti sensibili all'ossigeno vivo come isole sono perfettamente adatti a questa piattaforma microfluidica come le loro dimensioni microscaled (cioè 100 micron circondario) sono intrappolati tra piccola piattaforma di coltura cellulare e apparecchi da camera più grande. Al di là di isolotti, un certo numero di ex vivo tessuti tra cui tessuto cardiaco, fettine di cervello, e gli embrioni, possono essere studiati utilizzando questa tecnica.
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Disclosures
Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari in competizione.
Acknowledgments
Questo lavoro è stato sostenuto dal National Institutes of Health sovvenzioni R01 DK091526 (JO), NSF 0.852.416 (DTE), e Chicago diabete Project.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Reagent/Material | |||
| Spinner | Laurell | WS-400 | |
| SU8 | MicroChem | SU8-2150/SU8-2100 | |
| Digital Hotplate | PMC Dataplate | 722A | |
| UV Curing Lamp | OmniCure | S1000 | |
| PMDS | Dow Chemical | Sylgard 184 | |
| Corona Wand | ETP | BD-20AC | |
| Vacuum Chamber | Bel-Art | 420220000 | |
| Microdispensers | The Lee Company | IKTX0322000A | |
| 5 V and 20 V DC Power | Radio Shack | ||
| NI USB | National Instrument | NI USB-6501 | |
| Thermometer | Omega Engineering, Inc. | ||
| Peristaltic Pump | Gilson | Minipulse 2 | |
| Oxygen Sensor | Ocean Optics | NeoFox | |
| Fraction Collector | Gilson | 203 | |
| Pippette | Fisher Scientific | Finnpipette II 100μl | |
| Inverted Epifluorescence Microscope | Leica | DMI 4000B | |
| 50 ml Conical Tubes | Fisher Scientific | ||
| Fura-2 Fluorescence Dye | Molecular Probes, Life Technologies | ||
| Rhodamine 123 Fluorescence Dye | Molecular Probes, Life Technologies | ||
| Culture Media | Sigma-Aldrich | RPMI-1640 | |
| HEPES | Sigma-Aldrich | ||
| Glucose | Sigma-Aldrich | ||
| Bovine Serum Albumin | Sigma-Aldrich | ||
| 30 in Silicone Tubings | Cole-Parmer | 1/16 in x 1/8 in | |
| 1.5 ml Eppendorf Tubes | Fisher Scientific | ||
| Y-connectors | Cole-Parmer | 1/16 in and 4 mm | |
| Syringe Connectors | Cole-Parmer | female Luer plug 1/16 in | |
| Straight Connectors | Cole-Parmer | 1/16 in | |
| Elbow Connector | Cole-Parmer | 1/16 in | |
References
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