Summary
المعدلة وراثيا وخروج المغلوب نماذج الماوس من الأمراض العصبية هي مفيدة لدراسة دور الجينات في الفسيولوجيا العصبية العادية وغير العادية. يصف هذا المقال المنهجيات التي يمكن استخدامها لدراسة التقوية طويلة الأمد، وهي آلية الخلوية التي قد تكمن وراء التعلم والذاكرة، وبالضربة القاضية في المعدلة وراثيا بحرية التصرف نماذج الماوس من أمراض الأعصاب.
Abstract
دراسات التقوية على المدى الطويل من فعالية متشابك، ظاهرة تعتمد على النشاط متشابك وجود الخصائص التي تجعلها جذابة كآلية الخلوية الكامنة التعلم وتخزين المعلومات المحتملة، منذ فترة طويلة تستخدم لتوضيح علم وظائف الأعضاء من مختلف الدوائر العصبية في الحصين، اللوزة ، والهياكل الحوفي والقشرية الأخرى. مع هذا في الاعتبار، ونماذج الماوس المعدلة وراثيا من الأمراض العصبية تمثل منصات المفيد إجراء التقوية على المدى الطويل (الكمونية) دراسات لتطوير فهم أكبر لدور الجينات في الاتصالات متشابك العادية وغير العادية في الشبكات العصبية المشاركة في التعلم، والعاطفة والمعلومات المعالجة. يصف هذا المقال منهجيات لإحداث موثوق الكمونية في الماوس يتصرف بحرية. هذه المنهجيات يمكن استخدامها في دراسات المعدلة وراثيا وخروج المغلوب يتصرف نماذج الماوس من أمراض الاعصاب بحرية.
Introduction
وقد أنتجت تطوير تكنولوجيا الجينات المعدلة وراثيا لمعالجة وخروج المغلوب نماذج الماوس من الأمراض العصبية والعصبية تقريبا. وقد استلزم هذه الترجمة من تقنيات البحث الكهربية المستخدمة سابقا في أنواع القوارض أكبر للنموذج حيواني الماوس. واحدة من هذه التقنية التحقيق العصبية هو استخدام التقوية على المدى الطويل (الكمونية) لاختبار فعالية الاتصالات متشابك داخل الشبكات العصبية المعنية في مختلف اضطرابات عصبية مرضية. يصف هذا البروتوكول تقنيات التحقيق الكهربية يمكن الاعتماد عليها من الكمونية في الفئران يتصرف بحرية. ميزة هذا البروتوكول على الآخرين هو أنه بسيطة وسهلة التنفيذ، بل هو أيضا بدلا أقل تكلفة كما أنها لا تتطلب ولا استخدام نظم مكلفة ميكرودريفي الكمبيوتر التي تسيطر عليها ولا تأثير الحقل headstages الترانزستور، و، على حد علمنا، هو البروتوكول الأول من الفيديو المزمنة التسجيلات الكهربية رس دراسة الكمونية في الفئران يتصرف بحرية. تحقيقا لهذه الغاية، وصفنا في هذه المقالة منهجيات بسيطة لدراسة التقوية على المدى الطويل في الفئران يتصرف بحرية. يمكن بسهولة أن تترجم هذه المنهجيات لنماذج الماوس المعدلة وراثيا وخروج المغلوب من اضطرابات عصبية مرضية.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
هذا البروتوكول هو مناسبة للفئران من 3 و 18 شهرا من العمر ووزن الجسم التقريبية 30-50 غ). ويمكن الحصول على الفئران من مختبر جاكسون (بار هاربور، ME). تمت الموافقة على جميع البروتوكولات الجراحية والتجريبية من قبل لجنة رعاية الحيوان واستخدام كلية ترينيتي وكانت وفقا لدليل المعاهد الوطنية للصحة لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية.
1. إعداد الحيوان والعمليات الجراحية
- إعداد التخدير كوكتيل يحتوي على الكيتامين (25 ملغ / مل)، زيلازين (2.5 ملغ / مل) وآسيبرومازين (0.5 ملغ / مل). حقن 1 مل / كجم من وزن الجسم في الربع السفلي الأيمن من البطن تكملها 0.2 الحقن مل / كغ كل 45 دقيقة بعد ذلك للحفاظ على عمق مستقرة التخدير باستخدام دواسة منعكس الانسحاب.
- إعداد الماوس تخدير لعملية جراحية من قبل حلق الفراء على الجمجمة وذلك باستخدام ماكينة حلاقة كهربائية. وينبغي أن تشمل منطقة حلق منتصف العينين إلى منتصف الأذنين. تأكد من عدم حلق whiskeالتمرير لأنها جزء من الجهاز الحسي الماوس برميل.
- استخدام مسحات القطن لتطبيق ايزوبروبيل تليها بتدين إلى منطقة حلق على رأسه. ثم، أيضا باستخدام قطعة قطن، وتطبيق كمية صغيرة من الزيت المعدني على العيون لمنع مقل العيون من التجفيف.
- استخدام الأصفاد الأذن الفئران الرضع بدلا من قضبان الأذن العادية لتركيب رأس الحيوان على جهاز التجسيمي الإطار. للقيام بذلك، جبل أول الأذن اليسرى على الكفة الأذن اليسرى. ثم تخفيف بلطف الأذن اليمنى على الكفة الحق من خلال دعم بلطف رأس الحيوان مع يد واحدة ودفع الكفة الأذن مع جهة أخرى. المقبل، ووضع وسادة التدفئة تحت جسم الحيوان وتعيينها إلى 86 درجة فهرنهايت إلى الحفاظ على درجة حرارة الجسم.
- ثم، تحقق من صلابة الثنائية من خلال محاولة لتحريك الجانب الرأس إلى جنب. هي التي شنت هذا الحيوان بشكل صحيح على الإطار التجسيمي عند الرأس هو جامد ولا يمكن نقل جنبا إلى جنب ولكن يمكن الإرتكاز بسهولة صعودا وهبوطا.
- راحة بلطفخطم الماوس على شريط الأنف / الأسنان التجمع والتأكد من أن القواطع ويستريح بلطف ولكن بشكل آمن داخل الفتحة الأسنان من شريط الأنف / الأسنان.
- باستخدام مشرط معقم، وجعل شق خط الوسط بدءا من منتصف العين إلى منتصف الأذنين. تأكد من أن تعقد مشرط في زاوية 45 درجة والضغط بما فيه الكفاية لقطع طريق اللفافة الكامنة ولكن ليس من خلال الجمجمة لأن ذلك سوف يسبب النزيف.
- استخدام مسحات القطن لفصل اللفافة وفضح الجمجمة. معالم الجمجمة bregma وامدا يجب أن تكون واضحة للعيان (الشكل 1A). تأكد من أن الحيوان هو في موقف الجمجمة المسطحة من خلال تعديل شريط الأنف / الأسنان بحيث معالم bregma وامدا هي في نفس ظهري بطني (DV) موقف (+ 0.1 ملم).
- تنطبق على كمية صغيرة من ملحي معقم للمنطقة المكشوفة واستخدام مسحات القطن لتنظيف بلطف الجمجمة. ثم الانتظار لمدة 2-3 دقيقة الجمجمة إلى الهواء الجاف تماماقبل المتابعة.
- جبل إبرة في الذراع التجسيمي غادر لقياس موقف DV من bregma وامدا. يجب أن تكون المواقع DV هذه المعالم اثنين في 0.1 ملم من بعضها البعض. إن لم يكن، شريط الأنف من الإطار التجسيمي يمكن تعديلها صعودا وهبوطا لتحقيق ذلك.
- ضع الإبرة على bregma لتسجيل له في الخلفية الأمامية (ا ف ب)، الجانبي (LAT) وظهري بطني (DV) القياسات. تأكد من أن إبرة يمس فقط الجمجمة وأنها لا تخترق.
- استخدام ماوس أطلس الدماغ، مثل "الفأر الدماغ في التجسيمي إحداثيات" 1، لتحديد الإحداثيات للهياكل الهدف: مسار وسطي الثاقب (القسط) في حزمة الزاوي والتلفيف المسنن (DG) من الحصين، نسبة إلى امدا وbregma، على التوالي (انظر أيضا الجدول 1). ثم، استخدم قلم غرامة نقطة أو قلم رصاص بمناسبة هذه النقاط على الجمجمة.
- أيضا، علامة اثنين المزيد من النقاط على الجانب المقابل من الجمجمة. هذه النقاط ثhich سيكون بمثابة الأرض (GND) والمرجعية (REF) ينبغي أن تكون حوالي 3 مم من خط الوسط ووضع طولي بالنسبة لبعضها البعض (1A الشكل، وأيضا الجدول 1).
- إزالة علامة الإبرة من ذراع التجسيمي اليسار واستبدالها حفر الأسنان الكهربائية مجهزة جبل التجسيمي. ضع الحفر على كل نقطة ملحوظ وجعل الثقوب لدغ صغيرة من حوالي 0.5 ملم في القطر. عند الحفر، واستخدام الحركة صعودا ونزولا والمتكررة في كثير من الأحيان تحقق ما إذا كان الحفر قد اخترقت الجمجمة لفضح سطح الدماغ.
- بلطف ولكن بحزم قيادة القطب المسمار (# 0-80 1/8 في براغي آلة الفولاذ المقاوم للصدأ، مشقوق الفرزة الرأس) في كل من الثقوب المقابل (GND وREF) بحيث أنها مجرد لمس السطح القشري دون اختراق ذلك (الشكل 1A ). هذه أقطاب المسمار اثنين بمثابة الأرض والمرجعية.
- جبل محفزة وتسجيل الأقطاب الكهربائية فيأصحاب دي على الأسلحة التجسيمي اليسار واليمين، على التوالي.
- ربط المحطات تحفيز الكهربائي إلى مشجعا الكهربية مع العزلة الحالية ومحطة القطب تسجيل لمكبر للصوت التفاضلية الكهربية (كسب = 1،000، ممر الموجة مرشح = 1 هرتز، 3 كيلو هرتز) ومن ثم إلى الذبذبات الرقمية للتفتيش البصري للاستجابات أثار. أيضا، الاتصال GND ومحطات القطب المرجع إلى مكبر للصوت التفاضلية.
- بلطف وببطء أقل حد سواء محفزة وأقطاب تسجيل في 0.5 ملم بزيادات في حين رصد بصريا الاستجابة للمنبهات المسموعة لصدمة التحفيز من 600-800 تعميم الوصول إلى الخدمات. الاستمرار في خفض كل قطب كهربائي حتى يصلوا موقف DV هدف لكل منهما ولكن لوحظ أنه إشارة النمطية على الذبذبات (الشكل 1B).
- بعد ذلك، استخدم الاسمنت الأسنان الاكريليك لجعل الحد الأقصى لعقد محطات الكهربائي في المكان؛ يجب أن تمحى أي الاسمنت الأسنان التي تلامس الجلد قبالةعلى الفور. مرة واحدة يتم الشفاء الاسمنت الأسنان تماما نقل الحيوان من الإطار التجسيمي إلى القوارض القفص نظيفة. استخدام مصباح التدفئة أو وسادة للحفاظ على درجة الحرارة الأساسية.
- رصد الحيوان كل ساعة حتى يستعيد وعيه. حقنة من فلونيكسين يمكن أن تدار بمثابة مسكن.
2. الكمونية التعريفي
- تسمح الأيام الحيوان 5-7 للتعافي من الجراحة. وضع الحيوان في البيئة تسجيل تتألف من قفص فاراداي (122 سم × 43 سم × 43 سم) تجهيزه بمواد عازلة للصوت والدورية العاكس 5 قناة ربط الكهربائي يؤدي إلى الإعداد محفزة / تسجيل.
- السماح للحيوان حتى يتأقلم لمدة 1-2 ساعة في بيئة التسجيل قبل توصيل الأقطاب الكهربائية إلى الصكوك محفزة وتسجيل (راجع الخطوة 1.17).
- تعيين الضوابط مشجعا لإخراج 400 تعميم الوصول إلى الخدمات وتسجيل اتساع بمتوسط 10 أثار ردود التأكد عشرفي لا يقل عن 10 ثانية بين مرور المحفزات. استخدام الأسلوب هو موضح في الشكل 1C لقياس استجابة أثار. كرر هذا الإجراء ل600، 800، 1،000، 1،200، 1،400 وتعميم الوصول إلى الخدمات.
- بناء منحنى الإدخال / الإخراج بواسطة المتهم بالتآمر في متوسط مدى الاستجابة أثار مقابل كثافة التحفيز. من هذه المؤامرة تحديد كثافة التحفيز الذي يتوافق مع 50٪ من الحد الأقصى لسعة قياسها. استخدام كثافة 50٪ للفترة المتبقية من التجربة.
- ثم، وذلك باستخدام كثافة التحفيز 50٪، للحصول على خط الأساس عن طريق تسجيل متوسط السعة من 5 أثار ردود كل دقيقة لمدة 15 دقيقة. جعل مرة أخرى من أن لا يقل عن 10 ثانية بين مرور المحفزات.
- في وقت لاحق بتسليم التحفيز كزازي يتكون من 10 رشقات نارية من البقول 10 ألقاها في 400 هرتز مع معدل ابلا من 5 هرتز إلى مسار الثاقب وسطي. مراقبة الحيوانات عن كثب بحثا عن علامات على الاستيلاء، بما في ذلك يهز الكلب الرطب. إذا كان الحيوان لديه استيلاء experimينبغي إنهاؤها والأنف والحنجرة وينبغي استبعاد كافة البيانات من هذا الحيوان من نتائج الدراسة.
- ثم، والاستمرار في تسجيل متوسط السعة من 5 أثار ردود كل دقيقة لمدة 30 دقيقة posttetanization. بعد ذلك، قارن هذه السعة إلى السعة الأساسية التي تم الحصول عليها في الخطوة 2.5 عن طريق حساب نسبة التغير من الأساس (الشكل 2).
- عقب اختتام التجارب، والموت الرحيم للحيوان عن طريق استنشاق isoflurane و-الطريقة التي هي متسقة مع المبادئ التوجيهية بشأن القتل الرحيم للجمعية الأميركية للطب البيطري.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
ويبين الجدول 1 الإحداثيات لDG والقسط كما هو مستخدم في هذا البروتوكول ويبين الشكل 1A علامات للهياكل الهدف على الجمجمة؛. أظهرت أيضا هي موقع الأقطاب الأرضية والمرجعية ويوضح الشكل 1B أثار ممثل استجابة يتتبع سواء قبل وposttetanization في نفس الحيوان. لاحظ أن posttetanization أثار استجابة أكبر من الاستجابة pretetanization مما يدل على الحث الكمونية 2. يوضح الشكل 1C الطريقة المستخدمة لقياس السعة استجابة. في الواقع، ويبين الشكل 2 نسبة التغير في السعة استجابة أكثر من دورة الوقت تشمل كلا من فترات ما قبل والوقت posttetanization. فإنه تجدر الإشارة إلى أن القيم الكمونية ذروة تجاوزت 100٪. هذه النتائج من تعزيز السعة استجابة تكزيز التالية تشير إلى أن هذا البروتوكول هو ناجح، وبالتالي يمكن الاعتماد عليها لدراسة الكمونيةفي نموذج الفأر يتصرف بحرية.
الجدول 1. الاحداثيات لهياكل الهدف. الأمامي الخلفي (AP) المتوافق مع التلفيف المسنن (DG) والمرجع تعطى نسبة إلى bregma في حين أن وسطي للمسار الثاقب (القسط) وGND قريبة لامدا. جميع الإحداثيات DV قريبة إلى السطح القشري أدناه الجافية.
الشكل 1. الكهربائي الموقع وآثار ممثل استجابة أثار. أ) التوضيح بياني من الموقع النسبي من الأقطاب الكهربائية على سكو الماوسليرة لبنانية. ب) آثار نموذجي للاستجابة أثار حد سواء قبل وposttetanization. C) خوارزمية تستخدم لقياس مدى الاستجابة للمنبهات المسموعة.
الرقم 2. الكمونية في وسطي الثاقب التلفيف المسنن مسار المشبك. نتيجة ممثل الكمونية الاستقراء في MPP-DG المشبك على فأرة الحاسوب يتصرف بحرية. ملاحظة تعزيز التحفيز posttetanic من السعة استجابة أثار يدل على الحث الكمونية.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
في هذا البروتوكول، ونحن أثبتت طريقة موثوقة وبسيطة لدراسة الكمونية في DG في الفئران يتصرف بحرية. في حين أن العديد من الدراسات الكمونية في الفئران مستيقظا وقد أجريت 3،4، وقد أجريت في عدد قليل جدا من الفئران مستيقظا يرجع أساسا إلى التعقيد التقني الذي يشكله العقارات الجمجمة محدودة في الفئران ووزن headstages الكهربائي وفقا لمتوسط وزن الفئران 5. وعدد قليل من الدراسات التي أظهرت الكمونية في DG في التصرف الفئران تستخدم إما نظم الكهربائي ميكرودريفي أو تقاطع الترانزستور تأثير الحقل (JFET) preamplifiers متكاملة في headstage الذي يضيف بالضرورة إلى عبء حمولة الكهربائي للحيوان 6-10 بحرية. أهمية هذا البروتوكول هو أنه يمثل تحسنا مقارنة مع الطرق القائمة لإحداث الكمونية في DG في التصرف بحرية الفئران كما أنه يتجنب استخدام نظم القطب ميكرودريفي أو headstage في JFET.
فمن المجمدةتانت لتسليط الضوء على الخطوات الحاسمة من هذا البروتوكول. وتشمل هذه: 1) التركيب من الرأس الماوس، في إطار التجسيمي بحيث جامد ثنائيا (قد تكون هذه الخطوة أصعب لأنه يتطلب الممارسة والألفة مع تقنية)، 2) تحديد المواقع المثلى من الأقطاب الكهربائية لتعظيم حجم الاستجابة يمكن أن تتعزز تأمين أن bregma وامدا هي في نفس الطائرة التي عادة ما يمكن تحقيقه عن طريق ضبط الإطار التجسيمي الأسنان شريط من هذا القبيل أن الاختلاف في تحديد المواقع ظهري بطني من bregma وامدا هو ما لا يزيد عن 0.1 ملم، 3) خلال مرحلة تسجيل التجربة، فمن المستحسن أن يسمح الحيوانات الوقت لروض لبيئة التسجيل لأن الجدة من بيئة التسجيل قد يلمح التقلبات في البيانات استجابة للمنبهات المسموعة التي تم جمعها، وسوف 4) اختيار مناسبة من الأقطاب الكهربائية تحسين جودة الإشارة والإخلاص: أقطاب القطبين ( الفولاذ المقاوم للصدأ أنابيب تحت الجلد مع 0.2 ملم من الفولاذ المقاوم للصدأسلك إدراج مع الفصل غيض من 0.5 ملم) ويفضل لتحفيز بينما تستخدم أقطاب القطب (واحد سلك التنغستن حبلا العازلة epoxylite) لتسجيل في النسيج العصبي، و5) يمكن تخدير الفئران باستخدام حقنة داخل الصفاق من مزيج من الكيتامين (25 ملغ / مل)، زيلازين (2.5 ملغ / مل) وآسيبرومازين (0.5 ملغ / مل). ثم ينبغي أن تدار هذا الخليط مخدر في جرعة 1ml/kg وهو فعال عادة في حوالي 20 دقيقة تكملها 0.2 مل / كغ كل 45 دقيقة للحفاظ على عمق مستقرة من التخدير.
هناك عدد قليل من القيود المفروضة على هذا البروتوكول التي تحمل بالذكر. هذا البروتوكول لا يعطي أي فكرة عن آليات القناة الايونية أو مستقبلات تخليق البروتين التي قد أيد الكمونية. ولقلة المعلومات المتاحة بشأن الأرقام الفعلية من الخلايا العصبية في السكان يجري تسجيلها. قيود أخرى هو أنه منذ يجري جمع استجابات أثار في الحيوانات مستيقظا فإنه من الصعب ascertعين وتشريح خارج تأثير عوامل مثل الإجهاد، والمناولة، أو تلوث للإشارة التي سجلتها النشاط الحسية زائفة. هذه القيود يمكن التغلب عليها عن طريق ضمان أن يتم تسجيل أثار ردود فقط عندما يكون الحيوان هو حالة غير نشطة ولكن في حالة تأهب، والمعروف باسم هادئة في حالة اليقظة اليقظة.
ومع ذلك، فإن الأساليب الموصوفة في هذا البروتوكول توفير منصة الأكثر أهمية من الناحية الفسيولوجية عن التحقيق في النشاط الكهربائي في الدماغ السلوك الأساسية. باتباع الخطوات الواردة في هذا البروتوكول، أي بنية الدماغ يمكن أن تكون مستهدفة باستخدام الإحداثيات الصحيحة على النحو الوارد من قبل أطلس مخ الفأر 1. من المهم أن نلاحظ أن الفئران الكبار الإطار التجسيمي يمكن استخدامها في الفئران شريطة أن يتم استخدام الأصفاد الفئران الرضع مناسبة الأذن بدلا من القضبان الأذن العادية. سوف الأصفاد الأذن لشل حركة الرأس دون الإضرار آذان الفأر. أخيرا، يمكن للمنهجيات المقدمة هنا يكون readilذ ترجم إلى التحقيقات الكهربية في المعدلة وراثيا ونماذج الماوس خروج المغلوب من مجموعة من الاضطرابات العصبية.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
الكتاب ليس لديهم ما يكشف.
Acknowledgments
الكتاب نود أن نعترف بما يلي: الدكتور جوزيف برونزينو، والدكتور خميس أبو حسب الله، والسيد RJ-افرانس أوستن، والسيدة جيسيكا Koranda.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Ketamine (100 mg/ml) | Henry Schein | 10177 | |
| Xylazine (20 mg/ml) | Henry Schein | 33197 | |
| Acepromazine (10 mg/ml) | Henry Schein | 2177 | |
| Dental acrylic powder | Lang Dental Manufacturing Co. | 1330CLR | |
| Dental acrylic liquid | Lang Dental Manufacturing Co. | 1306CLR | |
| Tungsten wire (0.127 mm) | World Precision Instruments | TGW0515 | |
| Stainless Steel Hypodermic Tubing (0.286 mm) | World Precision Instruments | 832400 | |
| Flunixin (50 mg/ml) | Henry Schein | 14165 | |
| Epoxilyte | Superior Essex | EP 6001-M | |
| Stainless steel wire insert (0.2 mm) | World Precision Instruments | 792900 | |
| Stereotaxic frame apparatus | Kopf Instruments | Model 902 | |
| Ear cuffs (ear cups) | Kopf Instruments | Model 921 | |
| Electrophysiological stimulator | Astro-Med, Inc. | S88 | |
| Digital oscilloscope | B K Precision Corp. | 2542 | |
| Current isolation unit | Astro-Med, Inc. | PSIU-6 | |
| Differential amplifier | World Precision Instruments, Inc. | DAM-50 | |
| Commutator | Plastics One | SLC6 | |
| Dental drill | Stoelting | 58650 |
References
- Paxinos, G., Franklin, K. B. J. The mouse brain in stereotaxic coordinates. , Compact 2nd edn, Elsevier Academic Press. (2004).
- Bliss, T. V. P., Lomo, T. Long-lasting potentiation of synaptic transmission in the dentate area of the anesthetized rabbit following stimulation of the perforant path. J. Physiol. 232, 331-356 (1973).
- Blaise, J. H., Bronzino, J. D. Effects of stimulus frequency and age on bidirectional synaptic plasticity in the dentate gyrus of freely moving rats. Exp. Neurol. 182, 497-506 (2003).
- Blaise, J. H., Koranda, J. L., Chow, U., Haines, K. E., Dorward, E. C. Neonatal isolation stress alters bidirectional long-term synaptic plasticity in amygdalo-hippocampal synapses in freely behaving adult rats. Brain Res. 1193, 25-33 (2008).
- Koranda, J. L., Masino, S. A., Blaise, J. H. Bidirectional synaptic plasticity in the dentate gyrus of the awake freely behaving mouse. J. Neurosci. Methods. 167, 160-166 (2008).
- Cooke, S. F., et al. Autophosphorylation of alphaCaMKII is not a general requirement for NMDA receptor-dependent LTP in the adult mouse. J. Physiol. 574, 805-818 (2006).
- Davis, S., Bliss, T. V., Dutrieux, G., Laroche, S., Errington, M. L. Induction and duration of long-term potentiation in the hippocampus of the freely moving mouse. J. Neurosci. Methods. 75, 75-80 (1997).
- Jones, M. W., Peckham, H. M., Errington, M. L., Bliss, T. V., Routtenberg, A. Synaptic plasticity in the hippocampus of awake C57BL/6 and DBA/2 mice: interstrain differences and parallels with behavior. Hippocampus. 11, 391-396 (2001).
- Zhang, T. A., Tang, J., Pidoplichko, V. I., Dani, J. A. Addictive nicotine alters local circuit inhibition during the induction of in vivo hippocampal synaptic potentiation. J. Neurosci. 30, 6443-6453 (2010).
- Tang, J., Dani, J. A. Dopamine enables in vivo synaptic plasticity associated with the addictive drug nicotine. Neuron. 63, 673-682 (2009).
