Summary

Isolering og kvantifisering av Botulinum Neurotoxin fra komplekse matriser med bruk av BoTest Matrix Analyser

Published: March 03, 2014
doi:

Summary

Den BoTest Matrix botulinumnevrotoksin (Bont) deteksjon analyser raskt rense og kvantifisere Bont fra et spekter av prøven matriser. Her presenterer vi en protokoll for påvisning og kvantifisering av Bont fra både faste og flytende matriser og demonstrere analysen med BOTOX, tomater og melk.

Abstract

Nøyaktig påvisning og kvantifisering av botulinum neurotoxin (Bont) i komplekse matriser er nødvendig for farmasøytiske, miljø-, og mat sample testing. Rapid Bont testing av matvarer er nødvendig under utbruddsetterforskning, pasientens diagnose, og mattrygghet testing mens nøyaktig potens testing er nødvendig for Bont-basert medikament produkt produksjon og pasientsikkerhet. Den mye brukt musen bioassay for Bont testing er svært følsom, men mangler presisjon og gjennomstrømning som trengs for rask og rutinemessig Bont testing. Videre har bioassay bruk av dyr førte til samtaler av narkotika produkt regulatoriske myndigheter og dyrerettighetstalsmenn i USA og i utlandet for å erstatte musen bioassay for Bont testing. Flere in vitro erstatningsanalyser har blitt utviklet som fungerer godt med renset bont i enkle buffere, men de fleste har ikke vist seg å kunne anvendes til testing i svært komplekse matrikser. Her er en protokoll for påvisning avBont i komplekse matriser ved hjelp av BoTest Matrix analysene er presentert. Analysen består av tre deler: Den første del omfatter fremstilling av prøver for testing, er den andre delen en immunoutfelling trinn ved hjelp av anti-bont antistoff-belagte paramagnetiske kuler for å rense bont fra grunnmassen, og den tredje delen kvantifiserer det isolerte bont største proteolytiske aktivitet ved hjelp av en fluorogene reporter. Protokollen er skrevet for høy gjennomstrømning testing i 96-brønners plater ved anvendelse av både flytende og faste matrikser og krever omtrent 2 timer for manuell forberedelse med totale analysetider av 4 til 26 timer, avhengig av prøvetype, toksin belastning, og ønsket følsomhet. Dataene er presentert for bont / A-testing med fosfat-bufret saltvann, et legemiddel, kultur supernatant, 2% melk, og ferske tomater og omfatter diskusjon av kritiske parametre for assay suksess.

Introduction

Botulinum nervegifter (BoNTs) er de dødeligste stoffer kjent, med intravenøse menneskelige dødelige doser anslått til 1-3 ng / kg 1,2. Syv strukturelt lignende serotyper av bont, merket A til og med G, finnes, som hver består av en tung kjede domenet er ansvarlig for cellebinding, binding og translokasjon inn i cytosol og en lett kjede som koder for et sink endopeptidase 3-5. Den utsøkte toksisitet av Bont skyldes delvis sin spesifikk binding og oppføring i motoriske nerveceller ved nevromuskulære krysset seks. Inne i nervecellen, den lette kjede endopeptidase spesifikt spalter ett eller flere av de løselige N-etylmaleimid følsomt faktor festeproteinreseptoren (SNARE) proteiner som kreves for vesikkelfusjon, inhiberende nevrotransmitter-frigjøring, og som fører til slapp paralyse 7-14. Kjent som sykdommen "botulisme," lammelse av membranen og interkostalrom muskler ved Bont slutt resulterer irespirasjonssvikt og død hvis ikke tidlig diagnose og behandling er mottatt.

Menneskelig matbåren botulisme er oftest assosiert med Bont serotype A, B, E og F (Bont / A, Bont / B, etc.) og vanligvis resultater fra inntak av forurenset mat 15,16, selv om, flere tilfeller av sårbotulisme ble rapportert blant sprøytemisbrukere 17,18. I USA, spedbarn botulisme som følge av inntak av Clostridium sporer av barn under ett er den vanligste formen for botulisme 19-21. Imidlertid ble det rapportert om matbårne Bont utbrudd som følge av uriktig hjem hermetisering og matfag i både USA og i utlandet. Mellom 2000-2009 ble det rapportert om minst 338 tilfeller av matbåren botulisme verdensbasis, inkludert seks omkomne 22. Evnen til raskt og følsomt oppdage matbårne botulisme utbrudd er en kritisk indikasjon som kan hjelpe tidlig diagnose 23,24. Videre vil deteksjonsmetoder som tillater kostnadseffektiv og rutine mat testing føre til økt matsikkerhet.

Bont sin neuronal spesifisitet og lang biologisk halveringstid gjør det en potent terapeutisk også. I USA, er Bont-baserte legemidler godkjent av Food and Drug Administration for behandling av kosmetiske forhold og nevromuskulære relaterte lidelser inkludert glabellalinjer, cervikal dystoni, migrene, overaktiv blære, og skjeling. Mange "off-label" applikasjoner er dokumentert, inkludert høydose behandlinger for alvorlig muskel dysfunksjon 25-28. Nøyaktig kvantifisering toksin er kritisk for riktig dosering, som underdosering kan føre til ineffektiv behandling mens dosering setter pasienter med risiko for potensielt skadelige bivirkninger. Dessverre er ingen standardisert potens analyseprotokollen delt på tvers av produsenter, noe som resulterer i enhet definisjonsforskjeller mellom Bont-basert medikament proCTS 29-31.

Standarden test for Bont er musen bioassay der Bont-holdige prøvene er injisert intraperitonealt i mus og antallet dødsfall registrert over 1-7 dager 16,32,33. Musen bioassay er svært følsom med grensene for påvisning (LOD) på 5-10 pg Bont / A 34, men etiske bekymringer over dyr bruk, de høye kostnadene ved opplæring av personell og opprettholde dyrefasiliteter, lange analyse ganger, og mangel på standardiserte protokoller resulterte i samtaler for å utvikle standardiserte, dyr fritt Bont testing og kvantifisering metoder 35-39. Nylig ble flere alternative Bont kvantifisering metoder utviklet som tilbyr musen eller nær-mus bioassay følsomhet 40-49. Disse metodene vanligvis bruker fluorescens, masse-spektrometri, eller immunologiske metoder og gir analysetider betydelig kortere enn mus bioassay uten animalsk bruk. Mass-spektrometri tilnærminger kombinert med immunologisk techniqdier ble vist å oppdage og kvantifisere Bont finnes i mat og andre komplekse prøver, men krav personell opplæring og spesialisert utstyr grense disse analysene 50-55. De fleste andre alternative analyser er ikke aktuelt lett til komplekse sample testing eller mangler kapasiteten som kreves for rutine Bont testing. Den svært variabel karakter av mat prøveviskositeten, pH, saltinnhold, og matrise bestanddeler presenterer en spesielt vanskelig utfordring når du prøver å utvikle in vitro analysemetoder med følsomhet for å matche den ekstreme styrken på Bont. Videre, til og med enkle og forholdsvis godartede buffersystemer, slik som de som oppstår ved resuspensjon av bont-baserte legemidler, inneholder salt, albumin, og sukker stabilisatorer (dvs. hjelpestoffer) som i vesentlig grad påvirker in vitro potens bont 56.. Toksin rensing er nødvendig for nøyaktig aktivitet testing av alle, men den enkleste av prøvene 56-59.

DenBoTest Matrix analysene ble designet for rask, høy gjennomstrømning, og konsekvent kvantifisering av Bont fra svært komplekse prøver ved hjelp av utstyr som vanligvis finnes i forskningslaboratorier 56,60. Disse analysene bruker paramagnetiske perler kovalent knyttet til serotype-spesifikke anti-Bont antistoffer til å binde og beslaglegge Bont ut av en prøve, og deretter fjerne forstyrrende matrise forbindelser ved vasking. Etter vasking blir bundet bont proteolytisk aktivitet så kvantifisert i en optimal reaksjonsbuffer ved hjelp av et reporter kompatibel med bont serotype som testes. Disse journalister er fluorogenic proteiner bestående av en N-terminal cyan fluorescerende protein (CFP) del og en C-terminal gul fluoriserende protein derivat (Venus) enheten bundet av en Bont substrat, SNAP25 rester 141-206 eller synaptobrevin rester 33-94 utgjør den BoTest A / E eller B / D / F / G journalister, henholdsvis 45. Reporter spalting av Bont er overvåket ved hjelp av Förster resonans energioverføring (FRET). Når than reporter er intakt, eksitasjon av CFP resulterer i FRET til Venus, leskende CFP utslipp og spennende Venus utslipp. Spalting av reporter ved Bont hindrer FRET, som fører til en økning i CFP utslipp og reduksjon i Venus utslipp. Bont aktivitet kan deretter bli målt kvantitativt ved å bruke forholdet mellom CFP og Venus utslipp. LOD under 3 pg er mulig fra et bredt utvalg av matvarer ved hjelp av en high-throughput 96-brønn plate-format 56. Økt følsomhet kan oppnås ved bruk av større prøvevolumer, siden analysen tillater konsentrasjonen av toksinet på perleoverflaten.

De BoTest Matrix-analyser for BoNTs A, B, E og F ble utviklet og testet med mat, farmasøytisk, og miljøprøver 56,60. Her beskriver vi prosedyrer for å gjennomføre disse analysene for påvisning av Bont i lav kompleksitet (f.eks farmasøytisk, Bont i buffer) og høy kompleksitet (for eksempel mat, miljø) prøver. Spesifikke bearbeidingsmetoderfor flere prøvetyper er omtalt i denne protokollen, og prøvetyper som ikke er beskrevet her kan vanligvis tilpasses ved hjelp av en kombinasjon av de presenterte metoder. Protokollen ble utviklet og testet med Bont / A, men er tilpasningsdyktig til andre Bont serotyper bruke sine respektive analysene som demonstrert andre steder 56,60.

Protocol

En. Utarbeidelse av analysereagensene Tin 200x ditiotreitol (DTT), 10x Matrix bindende buffer (10 x bindingsbuffer heretter), 10x Nøytralisering buffer (næringsmiddel-eller pH ubalanserte prøvene bare), og 10x BoTest reaksjonsbuffer (10x reaksjonsbuffer i det følgende) ved romtemperatur (RT) i 15 min eller til det er helt tint. Se tabell 1 for en liste over buffere og reagenser som brukes i denne protokollen. Se tabell 2 for en liste over materialer og utstyr som kreves f…

Representative Results

Et diagram som oppsummerer fremgangsmåten i den beskrevne protokoll er vist i figur 2.. Analysen krever mellom 4-26 timer å fullføre, avhengig av prøvetype og ønsket analysen følsomhet, men bare ~ 2 timers hands-on tid. Analysen utføres i 96-brønners plater, og, avhengig av hvilken type av tester som skal utføres, kan triplo testing av opptil 20 prøver inkludert standarder pr plate. Fig. 3 viser representative resultater ved å bruke assay-bont / A…

Discussion

Denne protokollen beskriver prosedyrer for kvantifisering Bont / En kompleks, holotoxin, eller Clostridium kultur supernatant i komplekse matriser. Protokollen er det samme, men, når testing andre bont serotyper (f.eks bont / B, E og F) med de respektive matrise-analyser 56,60, selv om måle-følsomheten vil variere mellom serotyper og analyser. Denne protokollen ikke står for hver type prøve mulig og kan kreves noen modifikasjoner avhengig av den spesifikke utvalget sammensetning og øns…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å takke H. Olivares og D. Ruge for verdifulle diskusjoner og råd. Denne forskningen ble støttet delvis av en NSF SBIR award (IIP-1127245 til BioSentinel Inc.) og en Department of Defense kontrakt (W81XWH-07-2-0045 til BioSentinel Inc.).

Materials

BoTest Matrix A Botulinum Neurotoxin Detection Kit BioSentinel A1015 Detection kits for BoNT/B and F are also available.
Varioskan Flash fluorescence microplate reader Thermo-Fisher Scientific 5250040 Most monochromator- or filter-based units with 434 nm excitation and 470 and 526 nm emission capability can be used.
96-well Magnetic Bead Separation Plate V&P Scientific  VP771H Other magnetic plates may be used, but the plate should be designed to separate the beads to the side of the well.
Magnetic Bead-Compatible Plate Washer BioTek  ELx405 VSRM Optional, only required for automated plate washing.  Other magnetic bead-compatible plate washers may also be used, but should be tested before use.
Microcentrifuge Various N/A Optional, only required for samples needing centrifugation.
MixMate plate mixer Eppendorf 22674200
Orbital Shaker Various N/A Used at room temperature or at 25 °C If temperature control is available
EDTA-free Protease Inhibitor Tablets Roche 4693132001 Only required for food or environmental testing.  Protease inhibitors must be EDTA-free.
BoNT/A  Metabiologics N/A Optional, only required for standardization and quantification purposes 
Black, Flat-bottomed 96-well Plates NUNC 237105 Plates should not be treated
96-well Plate Sealing Tape Thermo Scientific 15036

References

  1. Arnon, S. S., et al. Botulinum toxin as a biological weapon: medical and public health management. J. Am. Med. Assoc. 285, 1059-1070 (2001).
  2. Gill, D. M. Bacterial toxins: a table of lethal amounts. Microbiol. Rev. 46, 86-94 (1982).
  3. Montal, M. Botulinum neurotoxin: a marvel of protein design. Annu. Rev. Biochem. 79, 591-617 (2010).
  4. Lacy, D. B., Stevens, R. C. Sequence homology and structural analysis of the clostridial neurotoxins. J. Mol. Biol. 291, 1091-1104 (1999).
  5. Montecucco, C., Schiavo, G. Structure and function of tetanus and botulinum neurotoxins. Q. Rev. Biophys. 28, 423-472 (1995).
  6. Ahnert-Hilger, G., Munster-Wandowski, A., Holtje, M. Synaptic vesicle proteins: targets and routes for botulinum neurotoxins. Curr. Top. Microbiol. Immunol. 364, 159-177 (2013).
  7. Yamasaki, S., et al. Cleavage of members of the synaptobrevin/VAMP family by types D and F botulinal neurotoxins and tetanus toxin. J. Biol. Chem. 269, 12764-12772 (1994).
  8. Schiavo, G., et al. Identification of the nerve terminal targets of botulinum neurotoxin serotypes A, D, and E. J. Biol. Chem. 268, 23784-23787 (1993).
  9. Schiavo, G., et al. Tetanus and botulinum-B neurotoxins block neurotransmitter release by proteolytic cleavage of synaptobrevin. Nature. 359, 832-835 (1992).
  10. Schiavo, G., et al. Botulinum G neurotoxin cleaves VAMP/synaptobrevin at a single Ala-Ala peptide bond. J. Biol. Chem. 269, 20213-20216 (1994).
  11. Rossetto, O., et al. SNARE motif and neurotoxins. Nature. 372, 415-416 (1994).
  12. Montecucco, C., Schiavo, G. Mechanism of action of tetanus and botulinum neurotoxins. Mol. Microbiol. 13, 1-8 (1994).
  13. Blasi, J., et al. Botulinum neurotoxin A selectively cleaves the synaptic protein SNAP-25. Nature. 365, 160-163 (1993).
  14. Blasi, J., et al. Botulinum neurotoxin C1 blocks neurotransmitter release by means of cleaving HPC-1/syntaxin. EMBO J. 12, 4821-4828 (1993).
  15. Cherington, M. Clinical spectrum of botulism. Muscle Nerve. 21, 701-710 (1998).
  16. Lindstrom, M., Korkeala, H. Laboratory diagnostics of botulism. Clin. Microbiol. Rev. 19, 298-314 (2006).
  17. Werner, S. B., Passaro, D., McGee, J., Schechter, R., Vugia, D. J. Wound botulism in California, 1951-1998: recent epidemic in heroin injectors. Clin. Infect. Dis. 31, 1018-1024 (2000).
  18. Passaro, D. J., Werner, S. B., McGee, J., MacKenzie, W. R., Vugia, D. J. Wound botulism associated with black tar heroin among injecting drug users. J. Am. Med. Assoc. 279, 859-863 (1998).
  19. Brook, I. Infant botulism. J. Perinatol. 27, 175-180 (2007).
  20. Arnon, S. S. Honey, infant botulism and the sudden infant death syndrome. West J. Med. 132, 58-59 (1980).
  21. Arnon, S. S. Infant botulism. Annu. Rev. Med. 31, 541-560 (1980).
  22. Peck, M. W., Stringer, S. C., Carter, A. T. Clostridium botulinum in the post-genomic era. Food Microbiol. 28, 183-191 (2011).
  23. Sharma, S. K., Whiting, R. C. Methods for detection of Clostridium botulinum toxin in foods. J. Food Prot. 68, 1256-1263 (2005).
  24. Sobel, J. Botulism. Clin. Infect. Dis. 41, 1167-1173 (2005).
  25. Chen, S. Clinical uses of botulinum neurotoxins: current indications, limitations and future developments. Toxins. 4, 913-939 (2012).
  26. Sinha, D., Karri, K., Arunkalaivanan, A. S. Applications of Botulinum toxin in urogynaecology. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 133, 4-11 (2007).
  27. Dmochowski, R., Sand, P. K. Botulinum toxin A in the overactive bladder: current status and future directions. BJU Int. 99, 247-262 (2007).
  28. Benecke, R., Dressler, D. Botulinum toxin treatment of axial and cervical dystonia. Disabil. Rehabil. 29, 1769-1777 (2007).
  29. Hunt, T., Clarke, K. Potency evaluation of a formulated drug product containing 150-kd botulinum neurotoxin type A. Clin. Neuropharmacol. 32, 28-31 (2009).
  30. Marchetti, A., et al. Retrospective evaluation of the dose of Dysport and BOTOX in the management of cervical dystonia and blepharospasm the REAL DOSE study. Mov. Disord. 20, 937-944 (2005).
  31. Wohlfarth, K., Sycha, T., Ranoux, D., Naver, H., Caird, D. . Dose equivalence of two commercial preparations of botulinum neurotoxin type A: time for a reassessment. 25, 1573-1584 (2009).
  32. . AOAC International, Clostridium botulinum and its toxins in foods (method 977.26 section 17.7.01). , (2001).
  33. Schantz, E. J., Kautter, D. A. Microbiological methods: standardized assay for Clostridium botulinum toxins. J. AOAC. 61, 96-99 (1978).
  34. Ferreira, J. L. Comparison of amplified ELISA and mouse bioassay procedures for determination of botulinal toxins A, B, E, and F. J. AOAC. Int. 84, 85-88 (2001).
  35. . Directive 2003/15/EC of the European Parliament and of the Council. Official Journal of the European Union. , (2003).
  36. . Report on the ICCVAM-NICEATM/ECVAM Scientific Workshop on Alternative Methods to Refine, Reduce or Replace the Mouse LD50 Assay for Botulinum Toxin Testing. Report No. 08-6416, NIH. , (2008).
  37. Bitz, S. The botulinum neurotoxin LD50 test – problems and solutions. ALTEX. 27, 114-116 (2010).
  38. Balls, M. Replacing the animal testing of botulinum toxin: time to smooth out the wrinkles. Altern. Lab. Anim. 38, 1-2 (2010).
  39. Balls, M. Botulinum toxin testing in animals: the questions remain unanswered. Altern. Lab. Anim. 31, 611-615 (2003).
  40. Singh, A. K., Stanker, L. H., Sharma, S. K. Botulinum neurotoxin: where are we with detection technologies. Crit. Rev. Microbiol. 39, 43-56 (2013).
  41. Liu, Y. Y., Rigsby, P., Sesardic, D., Marks, J. D., Jones, R. G. A functional dual-coated (FDC) microtiter plate method to replace the botulinum toxin LD50 test. Anal. Biochem. 425, 28-35 (2012).
  42. Ouimet, T., Duquesnoy, S., Poras, H., Fournie-Zaluski, M. C., Roques, B. P. Comparison of Fluorigenic Peptide Substrates PL50, SNAPtide, and BoTest A/E for BoNT/A Detection and Quantification: Exosite Binding Confers High-Assay Sensitivity. J. Biomol. Screen. , (2013).
  43. Scotcher, M. C., Cheng, L. W., Stanker, L. H. Detection of botulinum neurotoxin serotype B at sub mouse LD(50) levels by a sandwich immunoassay and its application to toxin detection in milk. PLoS One. 5, (2010).
  44. Mason, J. T., Xu, L., Sheng, Z. M., O’Leary, T. J. A liposome-PCR assay for the ultrasensitive detection of biological toxins. Nat. Biotechnol. 24, 555-557 (2006).
  45. Ruge, D. R., et al. Detection of six serotypes of botulinum neurotoxin using fluorogenic reporters. Anal. Biochem. 411, 200-209 (2011).
  46. Hines, H. B., et al. Use of a recombinant fluorescent substrate with cleavage sites for all botulinum neurotoxins in high-throughput screening of natural product extracts for inhibitors of serotypes A, B, and E. Appl. Environ. Microbiol. 74, 653-659 (2008).
  47. Gilmore, M. A., et al. Depolarization after resonance energy transfer (DARET): a sensitive fluorescence-based assay for botulinum neurotoxin protease activity. Anal. Biochem. 413, 36-42 (2011).
  48. Capek, P., Dickerson, T. J. Sensing the deadliest toxin: technologies for botulinum neurotoxin detection. Toxins. 2, 24-53 (2010).
  49. Bagramyan, K., Barash, J. R., Arnon, S. S., Kalkum, M. Attomolar detection of botulinum toxin type A in complex biological matrices. PLoS One. 3, (2008).
  50. Wang, D., Baudys, J., Kalb, S. R., Barr, J. R. Improved detection of botulinum neurotoxin type A in stool by mass spectrometry. Anal. Biochem. 412, 67-73 (2011).
  51. Parks, B. A., et al. Quantification of botulinum neurotoxin serotypes A and B from serum using mass spectrometry. Anal. Chem. 83, 9047-9053 (2011).
  52. Kalb, S. R., Goodnough, M. C., Malizio, C. J., Pirkle, J. L., Barr, J. R. Detection of botulinum neurotoxin A in a spiked milk sample with subtype identification through toxin proteomics. Anal. Chem. 77, 6140-6146 (2005).
  53. Kalb, S. R., et al. The use of Endopep-MS for the detection of botulinum toxins A, B, E, and F in serum and stool samples. Anal. Biochem. 351, 84-92 (2006).
  54. Boyer, A. E., et al. From the mouse to the mass spectrometer: detection and differentiation of the endoproteinase activities of botulinum neurotoxins A-G by mass spectrometry. Anal. Chem. 77, 3916-3924 (2005).
  55. Barr, J. R., et al. Botulinum neurotoxin detection and differentiation by mass spectrometry. Emerg. Infect. Dis. 11, 1578-1583 (2005).
  56. Dunning, F. M., et al. Detection of botulinum neurotoxin serotype A, B, and F proteolytic activity in complex matrices with picomolar to femtomolar sensitivity. Appl. Environ. Microbiol. 78, 7687-7697 (2012).
  57. Jones, R. G., Ochiai, M., Liu, Y., Ekong, T., Sesardic, D. Development of improved SNAP25 endopeptidase immuno-assays for botulinum type A and E toxins. J. Immunol. Methods. 329, 92-101 (2008).
  58. Ekong, T. A., Feavers, I. M., Sesardic, D. Recombinant SNAP-25 is an effective substrate for Clostridium botulinum type A toxin endopeptidase activity in vitro. Microbiology. 143 (pt 10), 3337-3347 (1997).
  59. Shone, C. C., Roberts, A. K. Peptide substrate specificity and properties of the zinc-endopeptidase activity of botulinum type B neurotoxin. Eur. J. Biochem. 225, 263-270 (1994).
  60. Piazza, T. M., et al. In vitro detection and quantification of botulinum neurotoxin type e activity in avian blood. Appl. Environ. Microbiol. 77, 7815-7822 (2011).
  61. Mizanur, R. M., Gorbet, J., Swaminathan, S., Ahmed, S. A. Inhibition of catalytic activities of botulinum neurotoxin light chains of serotypes A, B and E by acetate, sulfate and calcium. Int. J. Biochem. Mol. Biol. 3, 313-321 (2012).
  62. Sugii, S., Sakaguchi, G. Molecular construction of Clostridium botulinum type A toxins. Infect. Immun. 12, 1262-1270 (1975).
  63. Sharma, S. K., Ramzan, M. A., Singh, B. R. Separation of the components of type A botulinum neurotoxin complex by electrophoresis. Toxicon. 41, 321-331 (2003).
  64. Bryant, A. M., Davis, J., Cai, S., Singh, B. R. Molecular composition and extinction coefficient of native botulinum neurotoxin complex produced by Clostridium botulinum hall A strain. Protein. J. 32, 106-117 (2013).
  65. Kukreja, R. V., Singh, B. R. Comparative role of neurotoxin-associated proteins in the structural stability and endopeptidase activity of botulinum neurotoxin complex types A and E. 46, 14316-14324 (2007).
  66. Eisele, K. H., Fink, K., Vey, M., Taylor, H. V. Studies on the dissociation of botulinum neurotoxin type A complexes. Toxicon. 57, 555-565 (2011).

Play Video

Cite This Article
Dunning, F. M., Piazza, T. M., Zeytin, F. N., Tucker, W. C. Isolation and Quantification of Botulinum Neurotoxin From Complex Matrices Using the BoTest Matrix Assays. J. Vis. Exp. (85), e51170, doi:10.3791/51170 (2014).

View Video