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Medicine

쥐의 방광 통증 모델로 방광 팽창 유발 내장 운동 응답

Published: April 27, 2014 doi: 10.3791/51413

Summary

미국에서 약 3~8,000,000명은 간질 성 방광염 / 방광 통증 증후군 (IC / BPS), 골반 통증에 의해 부분적으로 특징 쇠약 상태에서 고통. 조건 신경계 기여를 연구하기 위해, 방광 통증의 생리 학적 모델은 생쥐와 쥐에 사용됩니다.

Abstract

미국에서 약 3~8,000,000명은 간질 성 방광염 / 방광 통증 증후군으로 고생 (IC / BPS), 특히 방광 충전 또는 증가에 따라 긴급 및 주파수 배뇨뿐만 아니라 야간 빈뇨 및 일반 골반 통증을 특징으로 쇠약 상태 배뇨. 수 년간의 연구에도 불구하고, IC / BPS의 원인이 애매 남아 및 치료 전략은 환자에게 완전한 구제를 제공 할 수 없습니다. 조건 신경계 기여를 연구하기 위해, 많은 동물 모델은 IC / BPS와 관련된 통증과 증상을 모방하기 위해 개발되었습니다. 하나의 쥐 모델은 방광의 팽창 (UBD)입니다. 이 모델에서, 특정 압력의 압축 공기를 일정 시간 동안 가볍게 마취 동물의 방광에 전달된다. 절차 전반에 걸쳐, 상사 근 복부 근육에있는 전선은 근육의 전기적 활동을 기록합니다. 이 활동은 내장 운동 반응 (VMR)로 그리고 난 알려져있다통각의 SA 신뢰성과 재현성 측정. 여기서는 수술 조작 생리 기록 및 데이터 분석을 포함 마우스에서이 기술을 수행하는 데 필요한 단계를 설명한다. 이 모델의 사용으로, 기본 감각 신경, 척수 차 구 심성, 방광 통증에 관여 높은 중추 신경계 영역 사이의 조정이 풀어 수 있습니다. 이 기초 과학 지식은 임상 적으로 IC / BPS으로 고통받는 환자를 치료하기 위하여 번역 될 수있다.

Introduction

만성 통증은 공식적으로 약 3 개월, 또는 정상 조직의 치유 시간 1 이상 지속되는 통증으로 정의된다. 통증이 유형의 사람들이 의사의 치료 2를 추구하는 구동하는 주된 이유 중 하나이며 매년 3 6천3백50억달러 달러까지 비용이 있습니다. 현재 만성 통증 대처 전략은 오래된 것으로 간주됩니다; 의료의 발전, 비 스테로이드 성 소염 진통제 (비 스테로이드 성 항 염증 약물)과 아편의 수십 년 후 의사에 의해 처방의 기본 치료는 여전히있다. 그러나 이러한 치료는 모두 특별히 정확한 통증 사건의 원인에 집중 반대로 몸 진통 효과를 제공하는 동일한 방식으로 고통의 모든 다른 유형을 표적으로한다. 더 나은 만성 통증으로 고통받는 사람들을 돕기 위해, 연구의 관심은 만성 통증의 가장 흔한 원인과 관련된 원인 및 가능한 통증 관련 치료쪽으로 이동해야한다. 이 manuscri의 목표PT는 더 간질 성 방광염 / 괴로운 방광 증후군 (IC / BPS)으로 알려진 상태를 이해하기 위해 사용 모델을 설명하는 것이다.

IC / BPS는 사람, 40 (4)의 나이에 주로 여성의 수백만에 영향을 미치는 쇠약 상태입니다. IC / BPS의 정확한 원인은 그러나 유행은 유전학 5, 특정 다이어트, 높은 스트레스 수준 6에 연결되어 있습니다, 알 수없는 . IC / BPS의 증상을 포함 하나 이에 국한되지 않습니다 : 소변을 긴급 증가, 배뇨 빈도 증가, 아프고, 피어싱, 또는 방광의 충만과 배뇨시 통증을 레코딩하고, 야간 빈뇨 7. 이러한 조건을 경험 환자는 더 높은 스트레스 수준이 8 더 걱정이다. 이것은 원래의 스트레스 수준을 증가시키고 증가 통증, 스트레스의 결과를 증가했다. 연구는 우울증과 불안 수준은 소변 통증을 완화 다음 치료, 따라서 효과적으로 긍정적 인 피드백주기를 깨고 감소하는 것으로 나타났습니다

조건 신경계 기여를 연구하기 위해, 많은 동물 모델은 IC / BPS와 관련된 통증과 증상을 모방하기 위해 개발되었습니다. 전통적으로, 방광염 등 겨자유, 아세톤, 리포 폴리 사카 라이드, 염산, 및 방광 시클로 같은 각종 화학 물질의 도입과 함께 동물에서 재현되었다. 그러나 외래 에이전트 따라서 이러한 모델의 유효성에 의문을 제기, IC / BPS 환자의 무균 소변에 존재하지 않습니다. 비뇨기과 고통의 또 다른 쥐 모델은 방광의 팽창 (UBD) 10. 이 모델에서, 특정 압력의 압축 공기가 설정된 시간 동안 어 웨이크 또는 가볍게 마취 동물의 방광에 전달된다. 절차 전반에 걸쳐, 상사 근 복부 근육 기록 전기 액티브있는 전선(근전도 (EMG)와 함께) 근육에서 ITY. 이 활동은 내장 운동 반응 (VMR)로 알려져 있고, 통각 (10)의 신뢰성, 재현성 측정입니다. 건강한 지원자에있는 유사 중공 장기 팽창 (예를 들면 방광, 직장이) 불편의 감정과 고통을보고 11, 12의 상당한 증가, 종종 IC / BPS를 진단하는 데 사용되는 특성을 생성합니다. 따라서, 자극 또는 억제, 전기 약리학 및 optogenetic 방법과 함께, UBD 방광 통각 통증의 양쪽 말초 및 중추 신경계의 성분을 이해하는데 유용하고 올바른 모델이다.

현재 일반적인 마우스 변형, C57BL/6J의 여성 회원에서 우리의 실험실에서 사용 된 바와 같이, 우리는 UBD하는 절차를 설명합니다. 때문에 남성의 카테터 삽입 과정에서 어려움이 절차는 주로 암컷 생쥐에서 수행된다. 이 프로토콜은 네스 <으로 개발 한에서 적응되었습니다EM> 등. 10 이전에 우리의 랩 13에서 발표했다. (1) 방광 카테터 및 기록 전극 수술 (2) 부분 마취의 유도 (3) 방광 팽창 및 VMR 녹화, 원시 VMR / EMG의 흔적 (4) 데이터 분석 : 다음 프로토콜은 마취 된 동물이 모델의 네 가지 기본 구성 요소에 대해 설명합니다 . 때문에 유기체의 선택, 마취의 깊이와 유도, 체온에 UBD-VMR 절차에 미묘한 차이는 아래에 설명되어 있습니다.

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Protocol

다음 프로토콜은 듀 케인 대학에서 기관 애니멀 케어 및 사용위원회에 의해 승인과 건강의 국립 연구소에서 가이드 라인과 일치하고있다.

무균 기술을 사용하여 와이어 전극과 방광 카테터 1. 외과 주입 (총 시간 5 ~ 10 분)

  1. 다음 항목은 이전부터 수술 준비를해야합니다 :
    1. 적극적으로 (자료 목록) 체온의 추가 제어를위한 낮은 소비 전력 가열 램프에 자동 시스템을 연결 모니터링하고 배터리로 작동하는 전기 패드 및 동물의 신체 온도 프로브와 온도 제어 시스템을 사용하여 37.5 ± 0.5 ° C로 체온을 조절합니다.
    2. 이소 플루 란 마취에 필요한 장비는 압축 공기 (초기 최저 용) (예를 들어 100 % O 2), 이소 플루 란 기화기, 이소 플루 란, 이소 플루 란 유도 챔버, 코 콘, 배기 시스템을 포함한다.
    3. 일을 조립전자 적절한 수술 도구, IV 카테터, 전극 (자료 목록)
  2. 2~3% 이소 플루 란 (isoflurane)에서 유도 챔버에서 마취 상태를 유도한다. 바로 잡는 반​​사가 (0-1 분) 손실 된 경우 실에서 마우스를 제거합니다.
  3. 2-2.5 %의 이소 플루 란과 코 콘에 마우스를 놓습니다. 전체 마취를 확인하기 위해 발가락을 꼬집어. 동물의 응답이 없어야합니다. 타이머를 시작합니다.
  4. 마우스의 눈은 안과 연고 1 방울을 넣습니다.
  5. 그래서 등쪽면이 아래를 향하도록 마우스를 켭니다.
  6. 요도를 통해 방광에 카테터를 삽입합니다.
  7. 카테터에 기름칠을하기 위해 수술 윤활유에 카테터를 찍어.
    1. 부드럽게 동물의 몸에 수직이 뾰족한 집게와 요도구를 개최합니다. 집게의 2 차 세트와 카테터를 잡고 천천히 동물의 몸에 수직 각도에서 요도 카테터 끝을 삽입합니다.
    2. 카테터를 요도 ~ 1-2mm 들어갔 때 보러 본체에 평행하도록 부드럽게 카테터를 조정할머리를 향해 목표. 이 운동은 치골을 방지 할 필요가있다.
    3. 부드럽게 쥐의 몸으로 카테터를 밀어 넣습니다. 카테터가 원활하게 저항없이 체강 내에 슬라이딩한다. 카테터를 강요하지 마십시오. 카테터가 원활하게 들어가 있지 않는 경우, 수직 카테터의 위치로 복귀하고, 다시 시작.
    4. 카테터가 완전히 방광에 삽입으로 부드럽게 방광 내용을 추방하기 위해 마우스의 복부를 아래로 밀어 넣습니다. 카테터 구멍에 종이 타월의 작은 조각을 밀어 카테터에서 모든 소변을 제거합니다. 종이 타월이 소변을 적신 때 교체하십시오. (아래 프로토콜 3을 참조하십시오.) 방광 팽창 실험 중에 포함 나머지 프로토콜을 통해 지속적으로 소변을 제거
  8. (지상으로). 왼쪽 복부 근육과 가슴에 하나 실버 와이어에 두 개의 은색 와이어를 삽입
    1. 카테터의 오른쪽에있는 영역 측면을 소독하기 위해 알코올이나 요오드를 사용하여 (몸의 동물의 왼쪽).
    2. 왼쪽 복부 근육을 노출합니다.
      1. 집게로 왼쪽 복부 근육 주변의 피부를 잡아. 매체 수술 가위로 작은 1~2센티미터의 절개를합니다.
      2. 절개로 가위의 끝을 삽입하고 부드럽게 2cm로 절개를 확장합니다.
      3. 상사 근 복부 근육을 노출 상부의 밴드를 이동하는 집게를 사용합니다. 이 지역에있는 주요 혈관 중 하나를 추출 / 베이지 않도록주의하십시오.
    3. 반에서 세 실버 와이어를 구부려. 근육의 작은 물린을 날카로운 21 G 바늘을 사용합니다. 그리고, 근육을 통해 바늘을 밀어 넣습니다. 근육에 삽입 할 때 내부 장기에 구멍 근육에 불필요한 손상을 유발하지 않도록주의하십시오.
    4. 21 G 바늘의 구멍에 하나 실버 와이어의 끝을 스틱. 부드럽게 근육 물린 통해 실버 와이어를 그리는 근육을 통해 다시 바늘을 빼냅니다. 바늘이 근육이없는 경우 와이어의 루프와 닿을 때까지 부드럽게 근육을 통해 실버 와이어를 당겨근육 물린.
    5. 단계를 반복 1.7.3-1.7.4 두 번째 근육 와이어에. 이 와이어는 먼저 근육 와이어에서 ~ 0.5 cm를 배치해야합니다. 그것은 두 개의 와이어가 삽입 후 만지지 않는 것이 중요합니다.
    6. 마음에 열등 가슴에 세 번째 실버 와이어 (접지)를 넣습니다.
      1. 피부의 작은 물린을 (그것은 절개를하거나 피부를 면도 할 필요가 없습니다)과 피부를 통해 바늘을 밀어 날카로운 21 G 바늘을 사용합니다.
      2. 상술 한 바와 같이 실버 와이어를 삽입하고 피부를 통해 당기십시오.
  9. 습기를 유지하고 가능한 한 많이 노출 된 근육을 통해 피부를 당겨 노출 된 근육에 37.5 ° C 살균 미네랄 오일의 작은 금액을 놓습니다.
  10. 이후의 단계에서 유체 수준을 유지하기 위해 생리 식염수를 피하 0.5 ㎖를 주입한다.
  11. 체온이 쉽게 유지 될 수 있도록 부드럽게면에 동물을 굴립니다.

2. 부분 마취 스텝 다운 절차 (토타L 시간 ~ 75 분)

다음 마취 프로토콜은 듀 케인 대학에서 기관 애니멀 케어 및 사용위원회에 의해 승인과 건강의 국립 연구소에서 가이드 라인과 일치하고있다.

  1. 즉시 제 후 나는 (위), 1.5 %의 낮은 이소 플루 란이 완료됩니다. 15 분 동안이 수준에서 잡아.
  2. 니더 이소 플루 란 마취 동물 부분적되도록.
    1. 0.125 %의 낮은 이소 플루 란 매 15 분 동물 전시 굴곡 발가락 핀치에 응답하지만 목소리를하거나 이동하지 않습니다 때까지.
    2. 수준으로 인해 마취 설정의 차이에 따라 다를 수 있지만 일반적으로 0.8 ~ 1.0 %의 이소 플루 란의 수준은 최적입니다. 마취가 적절한 수준에있을 때 발성 및 / 또는 보행은 매우 드문 이벤트입니다.

. 3 근전도 (EMG) 등급을 매긴 압력 (15 ~ 75 mmHg로)와 방광 팽만 (총 시간 - 변수가 실험에 따라 다름) 동안 기록

설치 EMG 기록 및 방광 팽창에 대한 다음과 같은 항목 :
  1. 설치 앰프, 디지타이저 및 레코딩 소프트웨어를. 이 설정에서, 디지타이저 (3.1.2 절 아래를 참조 압력과 자극 마커 입력) 증폭기는 하나의 입력과 압력 조절기에 대한 두 개의 입력이 있습니다. 정확한 하드웨어 및 소프트웨어 설치가 (특정 지침에 대한 자료 목록을 참조) 사용자 정의 할 수 있습니다.
  2. 설치 동물에 공기압의 특정 버스트를 전달하는 시스템. 이 시스템은 다음과 같은 프로토콜 "정해진 압력 조정기"로 지칭된다. 그것은 공기 압력의 디지털화, 재판 길이의 조절, 간 시험 간격 자동화, 시험 번호의 제어 등의 자동화 된 압력 전달이 가능하고, 발병 디지털 신호를 (시간 초과 압력 레귤레이터의 회로도 앤더슨 등. 14 참조) 자극.
  • 앰프에 마우스 (2 복부 와이어 + 1 접지선)에서 모든 리드 와이어를 연결하고디지타이저 및 디지타이저 소프트웨어에 기록 EMG 신호를 시작합니다. 디지타이저 소프트웨어에서 선택한 어떤 시간 "쓰기"합니다.
  • 방광 카테터에서 종이 타월을 제거합니다. (시간 초과 압력 레귤레이터.) 공기 튜브에 카테터를 연결
  • 60 mmHg로의 팽창 압력에 하나 20 초 시험을 제공합니다.
    1. 60 mmHg로에 유량 조절기를 설정합니다 (아날로그 혈압계를 사용하여 검사 압력.)
    2. 20 초 팽창 압력 펄스 뒤에 20 초 prepressure 간격 (이것은 디지타이저 소프트웨어에 기록 2V의 자극 신호가 될 것이다) 제공하도록 정해진 압력 조정기를 설정한다.
    3. 시험 (prepressure 간격 + 압력 팽창 시험)를 시작합니다. 실제 압력 시험이 시작되면, 시스템에 연결된 3 혈압계를 사용하여 압력을 재확인한다.
    4. 압력 팽창 시험하는 동안, 강한 EMG 신호 (> 0.5 V)는 20 초 동안 팽창 가능성이 후 관찰해야한다. 동물 abdomi가 발생할 수 있습니다NAL 이동하지만, 동물은 목소리를하거나 이동하지 않아야합니다. 드물지만, 비정상적인 움직임이나 발성이 관찰되는 경우, 이소 플루 란의 수준을 높일 수 있습니다.
  • 1 일 60 mmHg로의 팽창은 1 ~ 2 분의 intertrial 간격으로 적절한 EMG 신호 단계를 반복 3.4 두 번 이상 생성하는 경우.
  • 세 60 mmHg로 시험에서 강한 신호를 수신하면, 실험 distentions을 수행합니다.
    1. 많은 연구는 낮은 압력 (10 ~ 15 mmHg로)에서 시작하여 10 ~ 15 mmHg로 증가에서 유해 압력 (75 ~ 80 mmHg로)까지 작동 등급을 매긴 distensions를 사용합니다. 다른 압력에서 예를 추적 아래 대표적인 결과를 참조하십시오.
    2. 일반 시험은 20 초 prepressure 간격, 20 초 압력 팽창 시험, 그리고 1 ~ 2 분 간격 intertrial 있습니다.
    3. 각 압력에서 세 distentions를 수행 한 후 (각 압력 하나의 내장 운동의 응답을 얻기 위해) 세 가지 실험을 통해 평균. 다른 방법으로, P IN각 압력에서 다섯 distensions을 erform 높고 낮은 시험을 폐기하고 나머지 세 가지 응답을 평균.
  • 일단 실험 distensions는, 녹음을 중지 실험 파일을 저장하고, 승인 된 방법을 사용하여 동물을 희생 완료됩니다.
  • 원시 EMG의 흔적 4. 분석

    1. 내장 운동 반응 (즉, EMG 녹음)의 분석을 쉽게 온보드 디지타이저 소프트웨어를 사용하거나 타사 프로그램 (자료 목록)을 통해 수행된다 다음은 여러 프로그램을 사용하거나 수동 분석을 사용하여이 데이터를 분석하는 데 사용할 수있는 일반적인 지침입니다 .
    2. EMG, 압력을 수출하고, 디지타이저 소프트웨어의 자극 신호 데이터는 다음과 같이
      1. 실험 파일을 엽니 다.
      2. "파일" "내보내기로 클릭합니다."
      3. 파일 이름을 클릭하십시오 ", 스프레드 시트 텍스트 (. TXT)"파일 형식으로 변경 "저장."
      4. PO에서P 창에 출력 샘플 속도 변경」(1000)를, "시작 모멘트 데이터 수집을 시작 시간을 변경하는 종료 시간 변경"MaxTime ()를. ""타임 시프트 출력을 표시하는 박스를 선택하므로 첫번째 라인이다 0.0 초, OK "를 클릭합니다". "
      5. 이제 데이터가 다양한 프로그램에서 열 수있는 텍스트 파일로 내 보냅니다. 이 파일은 네 개의 열 (타이머, VMR (EMG), 압력, 자극)을 포함해야합니다.
    3. 시험 된 각각의 실험 동물의 경우, 다음과 같은 수학적 연산을 수행한다.
      1. 각 시점의 절대 값을 계산하여 설정 한 전체 데이터 EMG 신호를 정류.
      2. 실험의 배경 섹션 동안 평균 EMG 응답을 확인합니다.
      3. 배경 보정 데이터 세트를 얻기 위해 실험의 모든 정류 데이터 점에서이 평균 배경 EMG 응답을 뺍니다.
      4. 각 20 초 이전의 곡선 (AUC)에서 지역을 결정배경 보정 데이터 세트의 압력 간격.
      5. 배경 보정 데이터 세트의 각 20 초 압력 팽창 시험의 AUC를 결정합니다.
      6. 전체 실험에​​서 가장 낮은 prepressure 간격 AUC에 의해 (단계 4.3.5에서 얻은) 각 압력 팽창 시험 AUC를 나눈다 (단계 4.3.4에서 얻어진.). 이것은 각각의 완전한 압력 팽창 시험에 대한 표준화 및 배경 수정 AUC입니다.
    4. 각각의 실험 동물의 경우, 하나의 압력에서 평균 체류 정규화 실험은 볼트의 정규화 VMR * 초 (Vsec)을 얻었다.
    5. 실험 설계에 따라 데이터의 적절한 통계를 수행합니다.

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    Representative Results

    전체 UBD-VMR 설정의 그림은 그림 1A에서 볼 수 있습니다. 압력 증가 단계는 원시 VMR (즉 EMG) (도 1b). 디지타이저 소프트웨어를 사용하여 기록시 관찰되어야 것의 VMR, 압력 및 자극 마커 신호는도 2에서 볼 수있는 증가를 유도한다. 보이는 베스트 채널 그림 2는 (V에서) EMG 추적이다. EMG 추적의 배경 신호는 꾸준하고 낮은 진폭 (<0.2 V)해야한다. 배경이 높거나 산발적 큰 스파이크가 포함 된 경우 (> 0.5 V) 전선 및 앰프 설정을 조정해야 할 수도 있습니다. 호일 (앰프 및 / 또는 앰프 디지타이저에 마우스에서)을 전선을 감싸는 경우에 따라 약간의 노이즈를 줄일 수 있습니다. mmHg로에서 정해진 압력 조절기에 의해 정량화로서도 2의 중간 채널은 압력 신호를 나타낸다. 신호 발병 곡선 있습니다. 이 문제가 발생합니다 전체의 팽창 때문에방광이 순간이 아니다. 압력 신호가 해당 시험 (예,도 2에서 75 mmHg로)의 최대 값에 도달하면, 압력은 그 최대 값으로 유지한다. 경우에 따라, 공기 도관 주위의 요도 밖으로 누출 수 있습니다. 이는 압력 신호의 진폭의 변화에 의해 관찰 될 수있다 (60 mmHg로>. 예) 높은 압력에서 가장 자주 발생하고, 요도구 주위 수술 윤활제를 소량 첨가함으로써 감소 될 수있다. 최종 채널 (그림 2의 바닥) 자극 마커 채널을 보여줍니다. 자극 마커 채널은 2 개의 별도의 신호를 보여줍니다. prepressure 구간의 시작에서 순간이 V 신호 마커가있다. 이 신호는 소정의 실험 데이터 분석 과정을 자동화하는데 사용될 수있다. 구체적으로, 하나는이 데이터 분석 시스템 quickl하는 수 V. 1.5 이상으로 상승 자극 마커를 찾는 데이터 파일을 통해 스캔 된 데이터 분석 시스템을 프로그램 할 수있다Y는 각각의 완전한 재판을 찾을 수 있습니다. 자극 채널의 두 번째 구성 요소는 전체 압력 팽창 시험 동안 발생 하나 V 신호이다. 다시,이 제 2 신호의 존재는 쉽게 데이터 분석에 사용될 수있다.

    하나의 실험 동물에서 대표 데이터는도 3표 1에서 알 수있는 동물은 다음 각 압력에서 팽창 세 번이었다. (.도 3a, 표 1) 15, 30, 45, 60 및 75 mmHg로 세 distentions은 평균화 그래프에서 하나의 데이터 요소로 표현된다. 공지 사항이 점차 방광의 팽창 압력 증가와 함께 표준화 된 신호가 증가합니다. 이 초기 팽창 설정에 따라,이 동물은 등급 방광 팽창의 두 세트를 추가로 받았다. 도 3b에 도시 된 바와 같이, distentions의 두 번째 및 세 번째 세트 (각 압력에서.) 유사한 VMRs 생산 distentions이 세 세트 2.5 열연 요정을 통해 발생한OD 녹화 설정의 안정성과 UBD 자극 및 단일 동물에서 VMR 응답의 재현성을 입증. 이소 플루 란 마취 서서히 강압되면 ​​1 시간에 걸쳐 중요한 것은,이 사전의 장기 안정성에만 발생한다. 짧은 마취 절차 distentions 각 세트 UBD VMR 신호에서의 점진적인 손실을 초래할 수있다 (미공개 관찰 새들러 및 Kolber.) UBD VMR 시스템의 안정성의 또 다른 중요한 요소는 안정된 체온의 유지이다. 그림 4 (60 mmHg로의 팽창에 대응) UBD VMR에서 보는 바와 같이하면 37.5 ° C.에 비해 33.5 ° C의 체온이 현저히 감소

    그림 1
    그림 1. UBD에서 내장 운동 반응 (VMR). (A) SchematiUBD 설정의 C. 압축 공기는 요도 카테터를 통해 방광으로 전달된다. distensions 동안, 복부 근육의 기록 EMG의 전극. 전체 절차 전반에 걸쳐 온도는 배터리로 작동하는 전기 패드 및 오버 헤드 램프를 사용하여 유지됩니다. (B) 예 EMG는 UBD 동안 추적합니다. 압력이 증가함에 따라, 복부 근육의 전기 출력은 congruently 증가한다.

    그림 2
    그림 2. 화면 UBD 시험 동안 데이터를 보여주는 촬영. 세 개의 채널이 표시됩니다. 상위 채널은 중간 채널이 방광으로 전달되는 (mmHg로의) 압력을 보여줍니다 (V.에서) 원시 EMG의 흔적을 보여줍니다. 하단 트레이스는 prepressure 간격과 전체 압력 팽창 시험의 시작을 나타냅니다 자극 마커 채널을 보여줍니다. 이미지는 40 초 전체 시험 (2입니다0 초 prepressure 간격 플러스 20 초 압력 팽창 시험.)

    그림 3
    그림 3. 등급 VMR을 보여주는 대표적인 데이터. (A) 점차적으로 압력이 증가 (15 ~ 75 mmHg로)와 표준화 된 VMR 증가는 쥐의 방광에 전달했다. (B) 방광 distentions (15 ~ 75 mmHg로 = 1 세트)의 후속 세트 distentions의 첫 번째 세트에 비해 비슷한 VMRs을 보여줍니다.

    그림 3
    . 그림 4 체온 UBD VMR 감소 33.5 ° C가 UBD VMR 크게 감소의 원인이 37.5 ° C의 체온의 감소. (N = 6;. 쌍 t-테스트 *의 P <0.05)


    표 1. distentions의 전체 집합에 대 한 대표적인 데이터. 표, 압력 팽창의 AUC를 포함하는 데이터를 보여주기 AUC, 배경 수정 압력 팽창의 AUC 및 표준화 압력 팽창의 AUC를 prepressure. 각 압력, 동물 세 팽창 시험을 받았다. 각 압력에서 표준화 된 압력 팽창의 AUC의 평균은 그림의 (a)에 그려집니다.

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    Discussion

    환자는 종종 일반 통증 치료 (15)에 응답하지 않는 고통을 쇠약 때문에 인간, 간질 성 방광염 / 방광 통증 증후군 (IC / BPS)는 중요한 임상 문제를 나타냅니다. 이해 궁극적 만성 통증 방광 치료 중요한 과제 중 하나는 유해 방광 팽창에 대한 반응에 관여하는 신경 정상적인 프로세스를 이해하는 것이다. 이러한 문제를 극복하기 위해, 방광 통증 동물 모델이 필요하다. 이 모델은, 재생 가능한 안정적이고 쉽게 측정해야한다. 다행히도 네스 및 동료 10 유해 방광 팽창에 대한 생리적 반응을 조사하는 데 사용될 수있는 시스템을 개발 하였다.

    시스템 설치가 간단하고, 주로 기성 하드웨어와 소프트웨어를 사용하여 수행 할 수있다. UBD VMR 시스템에 관련된 장비의 주요 사용자 정의 조각은 정해진 압력 레귤레이터이다. 이 기계는 아날로그를 제공합니다- 디지털 - 공기 압력의 변환 및 디지타이저 하드웨어에 자극 발병 마커를 보냅니다. 정해진 압력 조정기의 사용은 크게 자동 VMR 반드시 방광 제 팽창이다 정확하게 때 시작되지 않고 VMR 종종 유지되기 때문에 이것은 중요하다 기록 EMG (즉. VMR)와 압력 자극을 동기화하여 데이터 분석을 단순화 팽창의 끝에 다음과 같은 짧은 시간 (<5 초). 그럼에도 불구하고,주의 동기화, 하나는 쉽게 팽창 ON / OFF 및 기록 된 EMG 신호와 동기화에 타이머를 제어하는​​ ON / OFF 레귤레이터 UBD VMR 절차를 수행 할 수 있습니다.

    방광 통증은 신경계의 역할을 테로 UBD VMR 시스템의 가장 큰 장점은 등급 방광 팽창 압력에 대한 반응이 더 큰 VMRs을 유도 증가 압력으로 표준 곡선을 따라 가을 것입니다. 이것은 연구자가 쉽게 확인할 수있는 경우 실험 남자ipulation는 무해한 유해 모두 방광 팽창 압력에서 VMR의 증가 또는 감소가 발생합니다. 등급을 매긴 팽창의 여러 라운드 할 수 있도록 또한, 하나의 동물로부터의 신호는 시간에 걸쳐 아주 안정되어있다 (그림 3B).이 연구원은 기준 UBD VMR를 얻을 수 있습니다 다음에 (예를 들면 약물을 전달한다) 동물을 조작 피험자 내 13 일치. 연구진은이 연구와 다른 사람들이 계속 기록하거나 조작하는 중추 신경계 척수 척수 후각 신경 세포 (16)와 다른 뉴런 (예 주동이의 복부 수질 17 또는 13, 16 편도.까지 생쥐와 쥐) UBD-VMR 시스템을 사용했습니다 방광 감각 입력과 처리에 신경 시스템의 다양한 구성 요소의 역할에 대한 우리의 기본적인 과학적 이해에 추가 궁극적으로 주관적인 고통이 침해 수용성 입력에서 느꼈다. UBD VMR 시스템은 많은 실험적인 장점을 포함하면서다시 모델에 몇 가지 제한 사항이 있습니다. 내장 방광 팽창이 인간의 "고통"의 주관적인 감정을 불러 일으키는 동안 생쥐의 복부 EMG 녹음이 고통을 진정으로 대표하는 경우 첫째, 그것은 알 수 없다. 그럼에도 불구하고, UBD VMR 응답은 VMR은 통증과 같은 반응이다 것을 제안 일반적인 진통제에 의해 억제된다. 둘째, 본 UBD-VMR 시스템에서, 동물은 녹화 중에 마취. 마취 UBD VMR 대 라이브의 비교 마취 (10)의 사용을 확인했지만, 통증과 같은 반응에 이소 플루 란이 가능합니다 알 수없는 효과가있다. 셋째, 기술 프로토콜은 그렇게 시간이 지남에 따라 개인 마우스의 다중 녹음은 할 수 없습니다 생존 수술이 아니다. 그럼에도 불구하고, UBD-VMR 모델뿐만 아니라 다른 내장 통증 시스템의 사용은 내장 통증의보다 완전한 이해를 허용하고 IC / BPS 및 기타 내장 통증 조건으로 고통받는 환자를위한 새로운 치료 수단으로 이어질 것입니다.

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    Acknowledgments

    우리는 Drs에 감사드립니다. 이 시스템을 설정하는 자신의 도움이 도움 로버트 Gereau, 헨리 라이 라라 오지 그릇. 우리는 또한이 작품에 대한 자금 출처를 인정하고 싶습니다 (BJK - 스캔에 의한 통증 초기 경력 연구 그랜트의 연구를위한 국제 협회 | INGER & 옌스 Bruun은 및 듀 케인 대학 Hunkele 두려워한 질병 기금 디자인 재단).

    Materials

    Name Company Catalog Number Comments
    Infrared heating blanket and monitoring system Kent Scientific Right-Temp System  This system is set up to monitor two separate temperatures.  This should include the animal and the heating blanket.  In addition, the system can automatically adjust the temperature to maintain a set temp.  However, this automatic function produces electrical interference during EMG recording and must be turned off.  Kent can provide a battery pack for the heating pad for use during the riEMG recording part of the experiment.
    Isoflurane vaporizer Draeger Vapor 19.1 Any isoflurane vaporizer will work, but it is helpful to have one that has multiple notches between 0-2% isoflurane.
    Isoflurane multiple sources n/a
    100% Oxygen air tank multiple sources n/a For ventilation of animal
    Air breathing grade multiple sources n/a For bladder distention
    24 G 0.56 in IV catheter BD Biosciences  381411 For bladder catheterization
    Surgilube (sterile) Savage Laboratories 0281-0205-02 Any surgical grade lubricate would work fine.
    Mineral oil (sterile) multiple sources n/a
    Saline (sterile) multiple sources n/a
    AG8W Silver Wire, 2 m, 0.20 mm (.008 in) D, L, No Insulation  Warner Instruments W4 64-1318  Any silver wire with these specifications will work.  Wire does not need to be "chlorinated."
    Ophthalmic ointment multiple sources n/a
    Small surgical scissors multiple sources n/a
    Sharp forceps multiple sources n/a
    21 G Needle multiple sources n/a
    Grass amplifier P511 with 3-lead input cable Grass Instruments P511 (F-P5IC3/REV1) This is the "amplifier" used in the protocol.  Amplifier with the following settings: Calibrator = 1 mV; Lo freq = 300 Hz; Amplification = 20; Hi freq = 10 kHz; Line filter = in.
    Cambridge Electronic Design (CED) 1401 Plus (or equivalent) Cambridge Electronic Design 1401 Plus This is the "digitizer" used in the protocol.  Other digitizer systems from WINDAQ or other companies would work fine; Need inputs for pressure signal, EMG, and stimulus signal.
    CED Spike2 software Cambridge Electronic Design Spike 2 This is the the "digitizer software" used in the protocol.  Should be from same manufacturer as digitizer.  Program should be setup with 3 channels for pressure (0-100 mmHg scale), EMG signal (typically -5 to +5 V range), and stimulus marker (0-2 V) range.
    Flow chart from air tank to bladder catheter n/a n/a Sequence of connections from pressurized air tank to animal bladder:  Air tank to 1/4 in tubing to Gilmont flowmeter to y connector.  Branch 1 of y connector to to sphygmomanometer.  Branch 2 to a single input on the 4-way gang valve to 4-way valve output to the timed pressure regulator to 3/32 tubing from timed pressure regulator to 2nd y connector (branch 1 to sphygmomanometer) with branch 2 to 3/32 tubing  to a 3rd y connector.  Branch 1 of y connector to a 3rd sphygmomanometer and branch 2 to animal bladder catheter.
    Gilmont Flowmeter  Gilmont GF8321-1401 Multiple brands of flowmeters will work.  For bladder distention air, flow meter should be able to handle high pressures (such as this Gilmont meter).  For breathing air, flow rate should be adjustable down to 100 ml/min (typical mouse rate is 500-1,000 ml/min). 
    4-way Gang valve Elite This is a specific piece of equipment.  The Elite gang valve is designed for fish tanks at low air pressures.  In the bladder distention setup, this valve acts as a safety valves in case the pressure spikes.  Too high pressure during initial turning on of the tank will ruin the pressure transducer in the Timed pressure regulator and/or the sphygnometers. In addition, by providing a small amount of leak in the system, this valve makes it easier to adjust the pressure between 10-80 mmHg.  
    1/4 in Tubing multiple sources n/a
    3/32 inch Tubing multiple sources n/a
    "Y" connectors (1/4 and 3/32 in) multiple sources n/a
    Sphygmomanometer CVS Any analog sphygmomanometer from a drug store will work for this application.  
    Timed Pressure Regulator custom This is a custom built machine (Washington University in St. Louis Machine shop) that allows for automated pressure delivery including digitization of air pressure, control of trial length, inter-trial interval automation, control of trial number, and stimulus onset digital signal.  However, the basic components of the system (pressure on and off for a given trial period) could be controlled with a simple on/off in-line switch.   Such analog control of a trial would necessitate additional analysis parameters (see Protocol 4).  In addition, one would have to manually assign the pressure based on the analog sphygmomanometer during data analysis.  
    IGOR Pro Wavemetrics n/a For analysis of EMG signal. Many different types of software can be used for data analysis in these experiments.

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    References

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    의학 제 86 방광 통증 근전도 (EMG) 간질 성 방광염 / 방광 통증 증후군 (IC / BPS) 방광의 팽창 (UBD) 내장 운동 반응 (VMR)
    쥐의 방광 통증 모델로 방광 팽창 유발 내장 운동 응답
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    Sadler, K. E., Stratton, J. M.,More

    Sadler, K. E., Stratton, J. M., Kolber, B. J. Urinary Bladder Distention Evoked Visceromotor Responses as a Model for Bladder Pain in Mice. J. Vis. Exp. (86), e51413, doi:10.3791/51413 (2014).

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